馬澤萌,陳允梓
南京醫(yī)科大學基礎(chǔ)醫(yī)學院免疫學系,江蘇 南京 211166
維生素D(vitamin D,VD)是一種脂溶性維生素[1],不僅調(diào)節(jié)鈣磷代謝和骨健康,在免疫系統(tǒng)[2]、神經(jīng)系統(tǒng)和代謝系統(tǒng)中也發(fā)揮重要的調(diào)節(jié)作用,它通過與維生素D受體(vitamin D receptor,VDR)結(jié)合而發(fā)揮作用[3-4]。VD 與VDR 的結(jié)合能激活VDR 發(fā)生核轉(zhuǎn)位,在細胞核內(nèi)發(fā)揮轉(zhuǎn)錄因子功能,啟動下游基因的表達,從而參與細胞的生長分化與免疫應答的調(diào)控[5-7]。
核定位信號(nuclear localization sequence,NLS)是蛋白質(zhì)實現(xiàn)核轉(zhuǎn)位的重要結(jié)構(gòu)域,通常由4~8 個氨基酸組成的短序列,含有Pro、Lys和Arg。有研究表明,VD 在細胞內(nèi)主要通過激活VDR 發(fā)生核轉(zhuǎn)位發(fā)揮轉(zhuǎn)錄因子功能[8-9],VDR核定位信號可能位于兩個鋅指結(jié)構(gòu)之間,其氨基酸序列與核定位相關(guān)[10-11],但缺乏精確定位和實驗鑒定。研究表明,VDR在胞質(zhì)中也發(fā)揮功能,它能與IKKβ相互作用并抑制NF?κB的激活[12]。因此,VDR的生物學功能與其細胞定位密切相關(guān),確定VDR 的NLS 對深入了解VDR 信號具有重要意義。本研究采用軟件分析預測NLS并進行點突變驗證,確定了VDR的NLS序列及其對VDR 活性的影響,為VD 及VDR 的入核信號通路的調(diào)控提供理論依據(jù)。
VD 由美國芝加哥大學Yanchun Li 教授贈送。胰酶、胎牛血清(Gibco 公司,美國),PVDF 膜(Bio?Rad公司,美國),Triton X?100、Tris、NP40、甘油和吐溫20(合肥Biosharp公司),NaCl、KCl、EDTA(上海凌峰化學試劑有限公司),膠回收試劑盒、質(zhì)粒小提試劑盒(上海Omega Bio?tek公司),HA抗體(Abmart公司,美國),Tublin 抗體、VDR 抗體(Santa Cruz 公司,美國),HRP 標記抗兔IgG 抗體、HRP 標記抗鼠IgG抗體(Jackson Immune Research 公司,美國),LaminB抗體、Tris?HCl pH 8.8、Tris?HCl pH 6.8、抗熒光猝滅劑、細胞核蛋白與細胞漿蛋白抽提試劑盒(上海碧云天技術(shù)有限公司),組織固定液(武漢賽維爾生物科技有限公司),Poly?JET(濟南Signa?Gen),GAPDH抗體(武漢三鷹生物技術(shù)有限公司),所有引物由南京金斯瑞公司合成。SYBR Green QPCR 試劑盒、逆轉(zhuǎn)錄酶試劑盒、點突變試劑盒(Mut Express ⅡFast Mutagenesis Kit V2)(南京諾唯贊生物科技有限公司)。
pCMV?HA?VDR 質(zhì)粒由本實驗室提供[6],HEK293T和HeLa細胞來自美國ATCC。
1.2.1 引物的設(shè)計
對質(zhì)粒引入單堿基或多堿基的定點突變,引物設(shè)計如表1,采用點突變試劑盒在質(zhì)粒pCMV?HA?VDR 上構(gòu)建了突變體HA?VDR(R49W/R50G)、HA?VDR(K53Q/R54G/K55EP)、HA?VDR(R49W/R50G/K53Q/R54G/K55E)。
表1 VDR基因點突變引物Table 1 VDR gene point mutation primers
1.2.2 實時熒光定量PCR分析
在質(zhì)粒轉(zhuǎn)染及VD 刺激后,收集HeLa 細胞,采用TRIzol 試劑提取總RNA,并根據(jù)逆轉(zhuǎn)錄酶試劑盒說明書將其逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,然后采用SYBR Green QPCR 試劑盒,在StepOnePlus(Applied Biosystems)上分析cDNA,進行靶基因的擴增(表2)。
表2 實時熒光定量PCR引物Table 2 Real?time fluorescent quantitative PCR primers
1.2.3 VDR的亞細胞定位分析
HEK293T 細胞進行質(zhì)粒轉(zhuǎn)染,經(jīng)VD 處理后收集細胞。采用細胞核蛋白與細胞漿蛋白抽提試劑盒分別獲得胞質(zhì)和胞核組分,點樣10%聚丙烯酰胺凝膠(SDS?PAGE)進行電泳分離,再經(jīng)濕轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,進行5%BSA室溫封閉1 h。一 抗分別采用VDR、Tubulin和Lamin B 抗體,4 ℃孵育過夜,二抗為辣根過氧化物酶標記的羊抗免多聚抗體,室溫孵育1 h。最后采用ECL 化學發(fā)光法檢測,在蛋白分析儀拍攝下進行結(jié)果分析。
1.2.4 免疫熒光分析
細胞樣品采用4%多聚甲醛固定,室溫15 min,PBS清洗2遍,再用0.02%NP?40處理15 min。然后用QuickBlockTM免疫染色封閉液封閉15 min,進行一抗HA 抗體孵育,4 ℃過夜。次日,PBS(含0.5%Tri?tion X?100)清洗后,加入熒光標記的二抗室溫孵育1 h。最后復染DAPI,細胞樣品進行熒光顯微鏡的圖像采集并分析。
實驗數(shù)據(jù)用GraphPad Prism 7.0 軟件進行統(tǒng)計學分析,各組數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準差(x ± s)表示,多組定量資料比較采用單因素方差分析(one?way ANOVA)檢驗,多組間數(shù)據(jù)兩兩比較采用LSD 法。兩組定量數(shù)據(jù)比較用t檢驗。P<0.05 為差異有統(tǒng)計學意義。
為了初步確定VDR的核定位信號位置,借助在線預測網(wǎng)站對VDR 氨基酸全序列進行了分析(http://nls ? mapper.iab.keio.ac.jp/cgi ? bin/NLS_Map?per_form.cgi),預測結(jié)果顯示核定位信號序列為49RRSMKRKALFLT61(圖1A)。對不同物種來源的VDR進行序列比對,發(fā)現(xiàn)預測的核定位信號序列具有很好的保守性(圖1B)。
圖1 預測VDR核定位信號Figure 1 Predicting the nuclear localization signal of VDR
根據(jù)預測的結(jié)果和文獻報道[10],針對VDR核定位序列中的保守氨基酸精氨酸(R)和賴氨酸(K)進行點突變設(shè)計,采用點突變試劑盒(Mut Express ⅡFast Mutagenesis Kit V2)以質(zhì)粒pCMV?HA?VDR 為模板,構(gòu)建了一系列突變體(R49W/R50G、K53Q/R54G/K55E 和R49W/R50G/K53Q/R54G/K55E),通過Vector NTI 軟件對測序結(jié)果進行分析,結(jié)果顯示VDR突變體成功引入突變點(圖2)。
圖2 構(gòu)建VDR點突變Figure 2 Constructing VDR point mutations
為了驗證點突變是否對VDR核定位產(chǎn)生影響,將VDR 突變體(HA?VDR、HA?VDR?R49W/R50G、HA?VDR?K53Q/R54G/K55E、HA?VDR?R49W/R50G/K53Q/R54G/K55E)轉(zhuǎn)染HEK 293T 細胞進行表達。在VD 100 nmol/L處理前后,分別獲取細胞樣品進行核質(zhì)分離,并采用Western blot 分析,其中Tubulin為胞質(zhì)內(nèi)參,Lamin B為胞核內(nèi)參。結(jié)果表明,VD處理能誘導野生型VDR 轉(zhuǎn)位細胞核內(nèi)(圖3A),而VDR突變體VDR(R49W/R50G),VDR(K53Q/R54G/K55E)和VDR(R49W/R50G/K53Q/R54G/K55E)的表達主要停留在胞質(zhì)中,不能被VD 誘導轉(zhuǎn)位入細胞核(圖3B~D)。由此可見,在預測的NLS里這些保守位點的突變抑制了VDR進入細胞核,初步確定它們是VDR入核的關(guān)鍵位點。
圖3 VDR的點突變抑制其核定位Figure 3 VDR point mutations inhibit the transfer of VDR to the nucleus
接著,采用免疫熒光法直接觀察VDR點突變對其空間分布的影響。在HeLa細胞中轉(zhuǎn)染VDR及其突變體載體,觀察這些蛋白的表達在VD 刺激前后在細胞空間上的分布差異,以DAPI 標記細胞核,紅色熒光標記HA?tag 指示VDR 及變體的所在位置。如圖4 結(jié)果所示,在VD 刺激下,野生型HA?VDR 發(fā)生明顯轉(zhuǎn)位進入細胞核,而VDR 突變體在VD 刺激前后,細胞內(nèi)的空間分布并未發(fā)生明顯變化,與上述Western blot 結(jié)果一致,表明這些點突變位點是VDR核定位的關(guān)鍵位點。
圖4 VDR點突變影響VDR在細胞內(nèi)的分布Figure 4 VDR point mutations affect the spatial distribution of VDR in cells
VD 的生物學功能主要由VDR 下游基因?qū)崿F(xiàn)。Cyp24a1、Atp2b1 是VDR 調(diào)控的下游基因[13-14],而Cyp27A 不受VDR 調(diào)控作為陰性對照。在HEK 293T 細胞里瞬時表達HA?VDR 及點突變體,采用100 nmol/L VD 處理,收集細胞樣品進行qPCR 檢測。如圖5所示,在VDR 表達的細胞里,VD 可以有效誘導Cyp24a1 mRNA、Atp2b1 mRNA 水平上調(diào);而在VDR 點突變表達的細胞中,VD 誘導Cyp24a1 mRNA、Atp2b1 mRNA 表達的能力顯著降低,說明VDR 的點突變能削弱了VD 的生物學功能,不能有效響應VD信號啟動下游基因的轉(zhuǎn)錄。
圖5 VDR的點突變影響了VDR對下游基因的轉(zhuǎn)錄Figure 5 VDR point mutations affect the transcription of downstream genes by VDR
VDR的活性受VD調(diào)控,在一些疾病如癌癥、神經(jīng)系統(tǒng)疾病、免疫性疾病的研究中已成為預防、診斷和治療的重要靶點分子[15-19]。VD 與VDR 結(jié)合能激活VDR入核發(fā)揮轉(zhuǎn)錄因子功能,確定其NLS有助于進一步了解VDR在細胞核和細胞質(zhì)中的不同功能,為研究相關(guān)疾病提供參考依據(jù)。
根據(jù)在線網(wǎng)站預測分析VDR 的核定位信號位置,提示VDR的NLS為49RRSMKRKALFLT61,并且通過序列比對顯示在不同種屬VDR 序列里該NLS 具有很好的保守性。根據(jù)NLS保守性分析,針對49/50位、53/54/55位、49/50/53/54/55位的保守氨基酸進行突變,通過Western blot 和免疫熒光等方法進行檢測,結(jié)果顯示:當VD 刺激后,野生型VDR 能快速入核;而VDR 的NLS 突變都能有效抑制VDR 入核,證明了這些氨基酸位點參與調(diào)控VDR 的入核。據(jù)文獻報道,VD 與VDR 結(jié)合能啟動生物反應,啟動下游基因如CYP24A1、ATP2B1 等的轉(zhuǎn)錄。通過qPCR檢測這些下游基因,結(jié)果表明突變體VDR明顯抑制了CYP24A1、ATP2B1 的mRNA 表達,確定了這5 個位點是VDR 入核并發(fā)揮轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)作用的關(guān)鍵位點?;谶@些VDR點突變體不能入核的性質(zhì),提示這些點突變體可作為研究胞質(zhì)VDR功能的新工具,應用于VDR的相關(guān)研究[20]。
通常,精氨酸(R)可以被甲基化修飾,賴氨酸(K)可以被泛素化修飾,而這些蛋白質(zhì)的后加工修飾形式也可以調(diào)控蛋白質(zhì)的核定位行為,例如:Laims 蛋白能發(fā)生泛素化調(diào)節(jié)其核定位[21],PRMT1甲基化酶能使p14ARF蛋白發(fā)生甲基化修飾調(diào)節(jié)該蛋白的核定位[22]。因此,對于VDR點突變體不能入核的現(xiàn)象,推測還存在另一個可能:當精氨酸和賴氨酸位點進行點突變后,可能抑制了VDR的泛素化或甲基化的后加工形式,從而影響VDR的入核行為。是否VDR的這些位點會發(fā)生后加工修飾參與VDR核定位的調(diào)節(jié)呢?這也是一個值得探究的問題。
總之,本研究通過預測分析,點突變體的構(gòu)建,結(jié)合亞細胞定位分析和qPCR 等方法,確定了VDR的核定位信號為49RRSMKRKALFLT61,并且證明了這5 個位點(49/50/53/54/55)的突變能夠影VD/VDR信號的生物學活性,這一發(fā)現(xiàn)為探索VDR 在細胞質(zhì)和細胞核中的作用提供研究平臺,為探討VD/VDR 相關(guān)疾病的預防、診斷和治療提供了一定的理論基礎(chǔ)。