曹新塏,張 琦,尹寶國(guó),張寶華,張雨晨
(北京市自來水集團(tuán)有限責(zé)任公司水質(zhì)監(jiān)測(cè)中心,北京 100012)
菌落總數(shù)作為評(píng)價(jià)水質(zhì)優(yōu)劣的衛(wèi)生指示標(biāo)準(zhǔn)指標(biāo),是微生物檢測(cè)的重要參數(shù)之一?,F(xiàn)階段國(guó)內(nèi)常用的水中菌落總數(shù)檢測(cè)方法為傳統(tǒng)平皿計(jì)數(shù)法,該方法所使用的營(yíng)養(yǎng)瓊脂平板不能滿足厭氧菌等特殊細(xì)菌的生理需求,導(dǎo)致部分細(xì)菌難以繁殖生長(zhǎng)[1]。且在整體試驗(yàn)過程中不僅前處理操作繁瑣,易引入外來污染與人為誤差,同時(shí)對(duì)實(shí)驗(yàn)室無菌環(huán)境及試驗(yàn)人員技術(shù)能力要求較高,部分實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)能力難以達(dá)到要求,不適用于實(shí)驗(yàn)室的日常檢測(cè)。
酶底物法(SimPlate法)培養(yǎng)基底物可與微生物特異性酶反應(yīng)生成藍(lán)色熒光的物質(zhì),培養(yǎng)后統(tǒng)計(jì)分析得到最終菌落總數(shù)[2-3]。美國(guó)環(huán)保署(EPA)于2002年將SimPlate法納入EPA 9215E中,表明飲用水及地表水可以使用其檢測(cè)菌落總數(shù)[4];廣東省地方標(biāo)準(zhǔn)《水中菌落總數(shù)復(fù)合酶底物檢測(cè)方法》(DB 44/T 1163—2013)[5]于2013年將SimPlate法引入國(guó)內(nèi);國(guó)家城市供水水質(zhì)監(jiān)測(cè)網(wǎng)武漢監(jiān)測(cè)站于2019年采用定量盤法檢測(cè)水中菌落總數(shù),該方法的試驗(yàn)原理與SimPlate法基本一致,其檢測(cè)結(jié)果與平皿計(jì)數(shù)法相比也沒有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異[6];《生活飲用水標(biāo)準(zhǔn)檢驗(yàn)方法 微生物指標(biāo)》(GB/T 5750.12—XXXX)(2022年征求意見稿)[7]中也表明,可以使用SimPlate法檢測(cè)生活飲用水及水源水的菌落總數(shù)。與平皿計(jì)數(shù)法相比,SimPlate法無需配制培養(yǎng)基,采用SimPlate法,不稀釋的情況下1 mL水樣可以檢測(cè)738 MPN/mL的菌落總數(shù),減少了培養(yǎng)基配制及樣品稀釋的誤差,且不需要嚴(yán)格的無菌環(huán)境,更適用于檢測(cè)水中菌落總數(shù)較高的樣品。
EasyDisc法是對(duì)平皿計(jì)數(shù)法的革新,于2021年研發(fā)成功,目前還處于試用階段。2022年,孫杰[8]采用EasyDisc法檢測(cè)水中菌落總數(shù),其檢測(cè)結(jié)果與平皿計(jì)數(shù)法相比沒有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。EasyDisc法的PCA培養(yǎng)基脫水固定于47 mm的平皿底部,無需配制,微生物生長(zhǎng)的代謝產(chǎn)物與PCA培養(yǎng)基中的顯色物質(zhì)反應(yīng)生成藍(lán)色菌落,便于人工計(jì)數(shù)。與平皿計(jì)數(shù)法相比,EasyDisc法減少了配制培養(yǎng)基等試驗(yàn)步驟,試驗(yàn)操作簡(jiǎn)便,生成的藍(lán)色菌落便于計(jì)數(shù),顯著降低了外來污染和人為誤差。
本文采用酶底物法、EasyDisc法和平皿計(jì)數(shù)法3種方法檢測(cè)NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品和實(shí)際樣品,并將檢測(cè)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析[9-10]。
SimPlate法培養(yǎng)基、84孔分配盤、EasyDisc法培養(yǎng)基、NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品、無菌緩沖液、無菌取樣瓶等耗材購(gòu)自愛德士公司;平皿計(jì)數(shù)法使用的營(yíng)養(yǎng)瓊脂購(gòu)自青島海博生物技術(shù)有限公司;試驗(yàn)使用經(jīng)計(jì)量部門校準(zhǔn)合格的國(guó)產(chǎn)隔水式恒溫生物培養(yǎng)箱,溫控精度為±0.5 ℃。
1.2.1 高濃度NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品制備
從-10 ℃ 以下的冰柜中取出NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品,常溫狀態(tài)下平衡15 min后,轉(zhuǎn)移至100 mL無菌緩沖液中,水平搖勻,制備成高濃度NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品。待樣品完全溶解后,需在30 min內(nèi)完成檢測(cè)。
1.2.2 低濃度NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品制備
將1.2.1小節(jié)的高濃度NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品充分混勻后,吸取10 mL轉(zhuǎn)移至100 mL無菌取樣瓶中,用無菌水稀釋至刻度線,制備成低濃度NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品。
1.2.3 實(shí)際樣品采集
采集北京地區(qū)出廠水、濾池出水及水源水各10組實(shí)際水樣,采集過程參照《生活飲用水標(biāo)準(zhǔn)檢驗(yàn)方法 水樣的采集與保存》(GB/T 5750.2—2006)[11]中樣品采集及保存要求,并在4 h內(nèi)完成檢測(cè)。
1.2.4 SimPlate法測(cè)定水中菌落總數(shù)
量取1 mL待測(cè)樣品及9 mL無菌水加入SimPlate法培養(yǎng)基中,充分混勻,轉(zhuǎn)移至84孔分配盤中,水平旋轉(zhuǎn)分配盤使待測(cè)樣品均勻分配于每個(gè)樣品孔中,多余液體由盤內(nèi)海綿吸收,倒置放入36 ℃ 培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h后,在366 nm紫外燈下統(tǒng)計(jì)藍(lán)色熒光孔數(shù),對(duì)照MPN表查詢菌落總數(shù)檢測(cè)結(jié)果。
1.2.5 EasyDisc法測(cè)定水中菌落總數(shù)
量取1 mL待測(cè)樣品加入EasyDisc法平皿中,水平混勻,使樣品均勻分布于EasyDisc法平皿中,常溫下靜置20 min,使樣品與培養(yǎng)基充分接觸,正置放入36 ℃ 培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h后,統(tǒng)計(jì)菌落總數(shù)檢測(cè)結(jié)果。
1.2.6 平皿計(jì)數(shù)法測(cè)定水中菌落總數(shù)
平皿計(jì)數(shù)法試驗(yàn)過程參照《生活飲用水標(biāo)準(zhǔn)檢驗(yàn)方法 微生物指標(biāo)》(GB/T 5750.12—2006)[12]中1.1小節(jié)平皿計(jì)數(shù)法進(jìn)行檢測(cè)。
將同一高濃度NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品以3種方法平行檢測(cè)10次。其檢測(cè)結(jié)果表明,3種方法檢測(cè)結(jié)果的合格率均為100%。為進(jìn)一步評(píng)價(jià)3種方法的準(zhǔn)確性和穩(wěn)定性,計(jì)算10組檢測(cè)結(jié)果與真值的相對(duì)誤差及檢測(cè)結(jié)果的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差,可得RSD(平皿計(jì)數(shù)法)=9.63%,RSD(SimPlate法)=5.69%,RSD(EasyDisc法)=6.07%,如表1、圖1所示。結(jié)果表明,SimPlate法與EasyDisc法檢測(cè)結(jié)果與真值的相對(duì)誤差及相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差均小于平皿計(jì)數(shù)法。由此可知,SimPlate法與EasyDisc法檢測(cè)高濃度NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品時(shí)的準(zhǔn)確性及穩(wěn)定性優(yōu)于平皿計(jì)數(shù)法。
表1 3種方法檢測(cè)高濃度NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品的檢測(cè)結(jié)果Tab.1 Detection Results of High Concentration NSI Total Number of Colonies QC Samples by Three Methods
圖1 3種方法檢測(cè)高濃度NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品檢測(cè)結(jié)果的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差Fig.1 Relative Standard Deviation of High Concentration NSI Total Number of Colonies QC Samples by Three Methods
為驗(yàn)證3種方法檢測(cè)低濃度樣品的準(zhǔn)確性及穩(wěn)定性,分別以3種方法平行檢測(cè)同一低濃度NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品10次,最終檢測(cè)結(jié)果為檢測(cè)結(jié)果×稀釋倍數(shù)。其最終檢測(cè)結(jié)果表明,3種方法檢測(cè)結(jié)果的合格率均為100%。為進(jìn)一步評(píng)價(jià)3種方法檢測(cè)低濃度樣品的準(zhǔn)確性及穩(wěn)定性,計(jì)算10組檢測(cè)結(jié)果與真值的相對(duì)誤差及檢測(cè)結(jié)果的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差,可得RSD(平皿計(jì)數(shù)法)=12.37%,RSD(SimPlate法)=8.13%,RSD(EasyDisc法)=8.72%,如表2、圖2所示。結(jié)果表明,檢測(cè)低濃度NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品時(shí),SimPlate法與EasyDisc法檢測(cè)結(jié)果與真值的相對(duì)誤差及相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差均小于平皿計(jì)數(shù)法,其準(zhǔn)確性及穩(wěn)定性仍優(yōu)于平皿計(jì)數(shù)法。
表2 3種方法檢測(cè)低濃度NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品的檢測(cè)結(jié)果Tab.2 Detection Results of Low Concentration NSI Total Number of Colonies QC Samples by Three Methods
圖2 3種方法檢測(cè)低濃度NSI菌落總數(shù)定量質(zhì)控樣品檢測(cè)結(jié)果的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差Fig.2 Relative Standard Deviation of Low Concentration NSI Total Number of Colonies QC Samples by Three Methods
選取北京地區(qū)出廠水、濾池出水及水源水各10組,分別以3種方法檢測(cè)選取的30組實(shí)際樣品。其中樣品序號(hào)21~30為水源水樣品,稀釋10倍后進(jìn)行檢測(cè),最終檢測(cè)結(jié)果=檢測(cè)結(jié)果×稀釋倍數(shù),3種方法的檢測(cè)結(jié)果如表3所示。為進(jìn)一步探究3種方法在檢測(cè)實(shí)際樣品時(shí)是否存在差異性,將3種方法檢測(cè)結(jié)果做對(duì)數(shù)處理滿足正態(tài)分布后,運(yùn)用軟件SPSS 軟件進(jìn)行t檢驗(yàn)分析,結(jié)果如表4所示。平皿計(jì)數(shù)法與SimPlate法、EasyDisc法的泊松相關(guān)系數(shù)分別為0.945、0.981,屬極強(qiáng)相關(guān)性;t檢驗(yàn)結(jié)果分別為P=0.366(>0.05)、P=0.798(>0.05),表明平皿計(jì)數(shù)法與SimPlate法、EasyDisc法的檢測(cè)結(jié)果高度一致,無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異??烧J(rèn)為3種方法均可有效檢測(cè)水中菌落總數(shù)。
表3 北京地區(qū)實(shí)際樣品的3種方法檢測(cè)結(jié)果Tab.3 Detection Results of Actual Samples in Beijing by Three Methods
表4 3種方法實(shí)際樣品檢測(cè)結(jié)果的t檢驗(yàn)Tab.4 t-Test of Results of Actual Sample by Three Methods
各選取3組滅菌生理鹽水、無菌純水和無菌緩沖液,在非無菌環(huán)境下分別以3種方法進(jìn)行檢測(cè),其檢測(cè)結(jié)果如表5所示。在非無菌環(huán)境下,平皿計(jì)數(shù)法檢測(cè)陰性樣品時(shí)部分陰性樣品有菌落檢出;SimPlate法和EasyDisc法檢測(cè)陰性樣品時(shí)所有陰性樣品均未檢出。由此表明,SimPlate法和EasyDisc法可以在非無菌條件下進(jìn)行試驗(yàn),降低了水中菌落總數(shù)檢測(cè)項(xiàng)目對(duì)實(shí)驗(yàn)室無菌環(huán)境的要求。
表5 陰性樣品的3種方法檢測(cè)結(jié)果Tab.5 Detection Results of Negative Samples by Three Methods
檢測(cè)20組高濃度和低濃度質(zhì)控樣品時(shí),平皿計(jì)數(shù)法共有12組檢測(cè)結(jié)果相對(duì)誤差不低于10%,大于SimPlate法及EasyDisc法。造成此類結(jié)果的原因是平皿計(jì)數(shù)法配制培養(yǎng)基的操作步驟(稱量、溶解、調(diào)節(jié)pH、高壓滅菌、保存及復(fù)溶等)過于繁瑣,易引入外來污染,且營(yíng)養(yǎng)瓊脂生成的菌落顏色較淺,不易觀察,易造成人為計(jì)數(shù)誤差;而SimPlate法及EasyDisc法無需配制培養(yǎng)基,特制的培養(yǎng)基與細(xì)菌代謝產(chǎn)物發(fā)生反應(yīng),生成易觀察的反應(yīng)產(chǎn)物,減少了外來污染,降低了試驗(yàn)及人為誤差。
平皿計(jì)數(shù)法、SimPlate法及EasyDisc法在檢測(cè)高濃度和低濃度質(zhì)控樣品時(shí)其檢測(cè)結(jié)果與真值相對(duì)誤差的標(biāo)準(zhǔn)偏差分別為9.27%、5.75%及5.86%和11.64%、8.30%及8.21%。由上述計(jì)算結(jié)果可知SimPlate法和EasyDisc法檢測(cè)結(jié)果的真值相對(duì)誤差相較于平皿計(jì)數(shù)法的真值相對(duì)誤差更小,表明SimPlate酶底物法和EasyDisc法的檢測(cè)結(jié)果更接近真值,準(zhǔn)確度更高,性能更加穩(wěn)定,更適用于水中菌落總數(shù)的檢測(cè)。
對(duì)于出廠水、濾池出水及水源水等實(shí)際樣品,SimPlate法及EasyDisc法與平皿計(jì)數(shù)法的泊松相關(guān)系數(shù)分別為0.945和0.981,表明兩種檢測(cè)方法皆與平皿計(jì)數(shù)法具有極強(qiáng)相關(guān)性;同時(shí)t檢驗(yàn)結(jié)果分別為P=0.366(>0.05)、P=0.798(>0.05),也表明SimPlate法及EasyDisc法與平皿計(jì)數(shù)法的檢測(cè)結(jié)果無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,均可有效檢測(cè)水中菌落總數(shù)。在非無菌環(huán)境下SimPlate法和EasyDisc法檢測(cè)陰性樣品時(shí)陰性樣品均未檢出,表明SimPlate法和EasyDisc法無需在專業(yè)無菌室環(huán)境操作,既滿足實(shí)驗(yàn)室對(duì)水中菌落總數(shù)的檢測(cè)需求,也降低了實(shí)驗(yàn)室維護(hù)無菌環(huán)境的成本。
SimPlate法和EasyDisc法特異性培養(yǎng)基可與細(xì)菌發(fā)生相關(guān)反應(yīng),使SimPlate法和EasyDisc法假陰性概率大幅下降。相較于平皿計(jì)數(shù)法,SimPlate法結(jié)果判讀方式更簡(jiǎn)單,不受菌落蔓延等意外因素的影響,適用于水源水的菌落總數(shù)檢測(cè);而EasyDisc法的47 mm平皿減少占用培養(yǎng)箱空間,適用于大批量樣品及應(yīng)急樣品的菌落總數(shù)檢測(cè)。但EasyDisc法計(jì)數(shù)值是0~300 CFU/mL,不太適宜用于原水檢測(cè),當(dāng)菌落數(shù)較大時(shí),容易發(fā)生菌落蔓延的情況,SimPlate法的操作步驟相對(duì)復(fù)雜,不利于大批量使用,且兩種方法價(jià)格相比平皿法價(jià)格較貴。
(1)常用檢測(cè)水中菌落總數(shù)的傳統(tǒng)平皿計(jì)數(shù)法具有一定的局限性,如配制培養(yǎng)基操作繁瑣、對(duì)整體實(shí)驗(yàn)室的無菌環(huán)境及人員能力要求較高等。而SimPlate法和EasyDisc法無需配制培養(yǎng)基,試驗(yàn)操作過程簡(jiǎn)便,更適合實(shí)驗(yàn)室日常檢測(cè)。
(2)實(shí)驗(yàn)室使用SimPlate法和EasyDisc法檢測(cè)水中菌落總數(shù),其高濃度與低濃度定量質(zhì)控樣品的檢測(cè)結(jié)果準(zhǔn)確性及穩(wěn)定性均優(yōu)于傳統(tǒng)的平皿計(jì)數(shù)法,實(shí)際樣品的檢測(cè)結(jié)果與平皿計(jì)數(shù)法具有極強(qiáng)相關(guān)性,無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,檢測(cè)結(jié)果準(zhǔn)確可靠。
(3)陰性樣品的檢測(cè)結(jié)果表明,SimPlate法和EasyDisc法無需在專業(yè)的無菌環(huán)境下操作,降低了實(shí)驗(yàn)室維護(hù)無菌室的成本,適用范圍更廣,滿足實(shí)驗(yàn)室對(duì)水中菌落總數(shù)的檢測(cè)需求。