朱 曦，李英俊，梅余霞，查 宇，王朝瑞，梁運祥*

1.華中農業(yè)大學農業(yè)微生物學國家重點實驗室，武漢 430070；2.湖北藍谷中微生物技術有限公司，湖北 宜昌 443100

丁酸梭狀芽孢桿菌（Clostridium butyricum），又名丁酸菌、宮入菌、酪酸菌，在自然界中多分布在腸道、酒窖、奶酪中。1933 年，由日本千葉醫(yī)科大學宮入近治博士首次發(fā)現[1]。丁酸梭菌屬于嚴格厭氧的革蘭氏陽性內生芽孢桿菌，細胞直徑（0.6～1.2）μm×（3.0～7.0）μm；在梭菌增菌培養(yǎng)基（RCM）平板上和高層瓊脂柱內菌落呈奶白色，邊緣不整齊；顯微視野中菌體呈桿狀或梭狀，多數單個，少數呈短鏈，部分菌株在對數生長初期菌體會呈現長絲狀[2]。

近幾年來，丁酸梭菌作為微生態(tài)制劑被廣泛應用于食品、醫(yī)藥、飼料與養(yǎng)殖等領域[3]。2009 年7 月，原農業(yè)部批準了丁酸梭菌為新飼料添加劑[4]。丁酸梭菌作為微生態(tài)制劑飼料添加劑，具有較強的抗生素耐受性，對氨芐西林、強力霉素、甲硝唑等抗生素均不敏感，相對于乳酸菌、枯草芽孢桿菌等常規(guī)菌劑，與抗生素聯用時受限度較小[5]。因丁酸梭菌是腸道原生有益菌，作為口服的丁酸梭菌制劑較其他益生菌類更能適應腸道生存環(huán)境，增強本菌株在腸道中的菌群優(yōu)勢；同時，其與雙歧桿菌、乳酸菌、糞腸球菌等有益菌不僅共生還可促進增殖，維護腸道良性微生態(tài)平衡[6]；其產生的以丁酸、乙酸為主的短鏈脂肪酸可抑制有害菌，大量動物試驗和人體臨床試驗表明，丁酸不僅可以修復腸道黏膜，還是腸道上皮細胞生長的直接能量來源，促進腸道絨毛發(fā)育，增強腸道對有害物質的屏障能力，常用于治療腸道疾病[7]，在抑制動物腹瀉、提高動物免疫力等方面具有積極的效果。丁酸梭菌產生的胞外活性酶如淀粉酶、蛋白酶、纖維素酶等，可幫助機體分解多糖、纖維素、脂肪、蛋白質等，利于機體消化吸收[8]。雖然丁酸梭菌是嚴格厭氧菌，因其是產芽孢桿菌，芽孢不僅具有耐熱、耐胃酸、膽酸還耐氧，使其具有一定的抗逆性，便于工業(yè)規(guī)?；a、運輸、保存和在常規(guī)環(huán)境下使用。

自丁酸梭菌被發(fā)現以來，國內外很多生物、醫(yī)藥等領域的學者對丁酸梭菌進行了深入的研究，重點在菌株分離鑒定及其應用機理，而在丁酸梭菌規(guī)?；l(fā)酵生產工藝及菌數檢測等方面的基礎研究還不夠深入，生產發(fā)酵水平偏低。目前在國內，1 t 以上的發(fā)酵罐產出的發(fā)酵液芽孢數普遍只在2×108～109CFU/mL。少數企業(yè)在后處理時經離心濃縮、噴霧干燥后有效活菌數才能達到1×1010CFU/g，市場上現有的丁酸梭菌相關產品普遍存在有效活菌數低、貨架期短、價格偏貴等問題[9]。隨著相關專業(yè)人員和普通大眾“減抗、禁抗”意識的增強及對益生菌劑認知的提高，現有的生產發(fā)酵水平已難以滿足食品、醫(yī)藥、養(yǎng)殖及飼料加工等行業(yè)對丁酸梭菌需求量大、有效活菌數高、貨架期長且價格低廉等要求，嚴重制約了丁酸梭菌的推廣和應用，各生產和使用廠家急切需要解決發(fā)酵工藝中的限制問題，突破現有發(fā)酵水平，降低發(fā)酵成本。本試驗通過探究丁酸梭菌的營養(yǎng)條件及其發(fā)酵工藝優(yōu)化，以期能在實際生產及應用等方面提供解決思路和策略，實現丁酸梭菌的高密度發(fā)酵，從而大幅度提高有效活菌數和芽孢轉化率及降低規(guī)?；a成本。

1 材料與方法

1.1 菌種來源

丁酸梭狀芽孢桿菌C.butyricumMY-Z，由華中農業(yè)大學農業(yè)微生物學國家重點實驗室提供。

1.2 試驗儀器

DL-CJ-2ND1 潔凈工作臺（北京東聯哈爾儀器制造有限公司）；顯微鏡GC-8860 氣相色譜儀（安捷倫科技有限公司）；GI54DWS 型高壓滅菌鍋；AOE INSTRUMENTS UV-1500 分光光度計；P70D20TLD4 格蘭仕微波爐；UPR-II-5/10T 超純水儀；C22-IH960D 蘇泊爾電磁爐。

1.3 培養(yǎng)基

梭菌增殖培養(yǎng)基（RCM 培養(yǎng)基）：酵母粉3 g，牛肉浸膏10 g，胰蛋白胨10 g，葡萄糖5 g，可溶性淀粉1 g，氯化鈉5 g，三水合乙酸鈉3 g，半胱氨酸鹽酸鹽0.5 g，0.5%美藍0.2 mL，蒸餾水1 000 mL，調節(jié)pH 至7.0±0.2。

發(fā)酵基礎培養(yǎng)基：葡萄糖10.0 g、蛋白胨10.0 g、酵母粉5.0 g、牛肉粉10.0 g、可溶性淀粉2.0 g、K2HPO41.05 g、MgSO4·7H2O 1.21 g、NaCl 0.3 g、CaCO31.5 g、MnSO4·H2O 0.012 g、促生長因子0.2 g、蒸餾水1 000 mL，調節(jié)pH 至7.0±0.2。

計數培養(yǎng)基：梭菌增殖培養(yǎng)基（RCM 培養(yǎng)基）加0.4%～0.8%的瓊脂，分裝試管，上封液體石蠟，制成高層半固體培養(yǎng)基。

計數稀釋液：0.85%的生理鹽水加0.03%的吐溫80。

上述培養(yǎng)基均115 ℃滅菌30 min。

1.4 培養(yǎng)方法

1）種子活化及培養(yǎng)方法：取超低溫保存的甘油管菌種100 μL，接種到含有15 mL 的已除氧溶化冷卻至40 ℃的RCM 半固體培養(yǎng)基的試管中，培養(yǎng)基表面覆蓋高2～3 cm 液體石蠟以隔絕空氣，37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中靜止培養(yǎng)12～18 h。再取此菌液100 μL 接種到已除氧RCM 培養(yǎng)基中，37 ℃靜置培養(yǎng)至對數期作為種子液備用。

2）丁酸梭菌發(fā)酵培養(yǎng)：采用液體深層靜止培養(yǎng)，250 mL 試劑瓶，裝液量150 mL，表面覆蓋高2～3 cm 液體石蠟以隔絕氧氣，于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中靜止培養(yǎng)24 h 后計數。

1.5 檢測方法

1）丁酸梭菌芽孢計數方法（試管高層半固體瓊脂法）。取菌液于80 ℃水浴加熱10 min，取經處理后的待測菌液10 mL 加到90 mL 去氧液封稀釋液內，并用移液管攪打均勻，不形成氣泡，制成1∶10 的均勻稀釋液，取此菌懸液1 mL 注入到9 mL 去氧液封稀釋液內，同上，制成1∶100 均勻稀釋液，按上述操作依次進行10 倍遞增稀釋，選擇1～3 個合適的稀釋度，取1 mL 注入到10～15 mL 已除氧高層半固體培養(yǎng)基內，每個梯度做3 管平行，置（36±1）℃培養(yǎng)16～24 h，計數。

2）還原糖的檢測方法。采用3，5 二硝基水楊酸法（DNS 法）。

3）氣相色譜測定丁酸產量。取發(fā)酵液10 mL，用50%硫酸和乙醚提取丁酸，以丁酸標準品為內標進行氣相色譜儀測定。色譜條件：柱流量為1 mL/min，FID 檢測器，檢測器溫度為250 ℃，進樣量為1 μL；升溫程序如下：60 ℃保持4 min，以6 ℃/min 的速度升溫至180 ℃，再以20 ℃/min 的速度升溫至200 ℃，保持5 min。

1.6 單因素試驗

1）最佳接種量及初始pH 的確定。分別以1%、2%、3%、4%、5%、10%的接種量接種到基礎培養(yǎng)基中，另將基礎培養(yǎng)基初始pH 分別用0.5 mol/L 的鹽酸溶液和飽和碳酸氫鈉溶液調制成pH 5.5、6.0、6.5、7.0、7.5，其他培養(yǎng)條件不變，以確定最佳接種量及初始pH。

2）碳源的篩選。分別以1.0%的量添加紅糖、糖蜜、甘油、麩皮、玉米粉、可溶性淀粉、乙酸鈉等原料替換初始培養(yǎng)基中的碳源，其他營養(yǎng)組分不變，以初始培養(yǎng)基為對照，探究不同碳源對丁酸梭菌增菌的影響。3%的接種量，37 ℃培養(yǎng)24 h 后，取樣測定菌落數。

3）優(yōu)勢碳源添加量的確定。篩選出優(yōu)勢碳源后，再分別以2.0%、2.5%、3.0%、3.5%、4.0%、5.0%的量替代初始發(fā)酵培養(yǎng)基中的碳源，以確定最佳添加量。接種量及培養(yǎng)方法同1.6 2）。

4）氮源的篩選。在1.6 3）的基礎上，分別以2.0%的肽、玉米漿、魚粉、花生粕、酵母粉、豆粕、酶解羽毛粉、硫酸銨等量替代初始發(fā)酵培養(yǎng)基中胰蛋白胨和蛋白胨2 種主要的氮源，考察不同的氮源對丁酸梭菌增菌的影響，接種量及培養(yǎng)方法同1.6 2）。

5）最佳氮源添加量的篩選。在1.6 4）的基礎上，本試驗采用增菌明顯的酵母粉、肽粉和魚粉分別以2.5%、3.0%、4.0%、5.0%的量替代初始培養(yǎng)基中的胰蛋白胨和蛋白胨，以確定最佳添加量，接種量及培養(yǎng)方法同1.6 2）。

1.7 發(fā)酵工藝的研究

以下試驗培養(yǎng)基均以2.5%的葡萄糖、3.5%魚粉和0.5%的酵母粉，其他營養(yǎng)成分與比例同初始培養(yǎng)基。

1）發(fā)酵過程中間歇調控pH 對增菌的影響。在單因素試驗基礎上，三角瓶發(fā)酵靜置培養(yǎng)至10 h，10、15 h 時分別用濃度為20%的NaOH 溶液調節(jié)發(fā)酵液pH 至6.0，并檢測葡萄糖，接種量及培養(yǎng)方法同1.6 2）。

2）在發(fā)酵過程中補料對增菌的影響。本試驗在1.7 1）的基礎上，培養(yǎng)至10、15 h 時分別按1.0%、2.0%、2.5%、3.0%、3.5%、4.0%、5.0%的量向發(fā)酵液中補充初始培養(yǎng)基營養(yǎng)液，接種量及培養(yǎng)方法同本文1.6 2）。

3）發(fā)酵過程中在線控制pH 并補料對增菌的影響。50 L 自控發(fā)酵罐，配制優(yōu)化后的培養(yǎng)基，裝液系數60%，上覆2～3 cm 厚的液體石蠟或連續(xù)通入氮氣以保證相對厭氧環(huán)境，低速攪拌，接種量3%，培養(yǎng)溫度37 ℃，培養(yǎng)至10 h 開始變量流加補充培養(yǎng)基營養(yǎng)液，總流加量為5%，同時用中和劑維持培養(yǎng)液pH 在6.0。發(fā)酵過程中分時段取樣檢測葡萄糖、丁酸及芽孢數。

2 結果與分析

2.1 不同的接種量和初始pH 值對菌數的影響

從圖1 可以看出，接種量為3%的發(fā)酵液生物量最高，隨著接種量的增加，生物量略有下降。分析原因：由于接種量大，生長速率快，營養(yǎng)消耗快，且接種量過大，種液中的代謝物特別是酸性物質降低了培養(yǎng)基的初始pH 值，縮短了菌體的生長對數期。由此可見，在實際應用中并不是接種量越大越好，應根據實際的試驗和生產情況確定相應的接種量。另外，在本試驗中發(fā)現接種量越小，相對啟動耗時越長，接種量越大，發(fā)酵啟動越快，接種量為10%的發(fā)酵液啟動時間比1%組提前了約1.5 h，接種量過低啟動時間過長，增加了動力消耗和發(fā)酵液污染的風險。本研究后面試驗均采用3%的接種量。

圖1 不同的接種量對菌落數的影響

由圖2 可知，初始pH 為5.5 時，丁酸梭菌的啟動很慢，生長很弱，隨著pH 值的升高菌數增加，pH值為6.0 時菌數最高，pH 6.5 時菌數略低，2 組差異不明顯。此后，隨著pH 升高，菌數開始下降，由此表明初始pH 在偏酸范圍內較好。后面試驗確定初始pH 值為6.0。

圖2 不同的初始pH 值對菌落數的影響

2.2 不同碳源篩選

碳源是微生物培養(yǎng)基的主要營養(yǎng)成分，為微生物的生長繁殖、構成菌體細胞和代謝活動提供能源。丁酸梭菌可以利用多種碳源，包括單糖和多糖。本試驗所選的8 種碳源中包括單糖、多糖及乙酸鈉。由圖3 可知，葡萄糖作為碳源時芽孢數最高，達到0.98×108CFU/mL，明顯高于其他碳源組（P>0.05），因此優(yōu)選葡萄糖作為本次后續(xù)試驗碳源。紅糖和糖蜜僅次于葡萄糖，從原料來源和生產成本考慮，建議在工業(yè)化生產中選這2 種作為主要碳源。

圖3 不同碳源對丁酸梭菌菌落數的影響

2.3 最佳碳源添加量的確定

微生物在生長過程中對營養(yǎng)物質的需求有一定的限量范圍，營養(yǎng)物質過低或過高都會對菌體的生長造成很大的影響，因此確定適當的量，對微生物生長尤為重要。本試驗在確定最佳碳源的基礎上，優(yōu)化其最佳添加量，結果見圖4。從圖4 可以看出，葡萄糖添加量為3.0%的發(fā)酵液菌數最高，達到2.33×108CFU/mL，明顯高于1.0%組，與2.5%組差異不顯著，與4.0%、5.0%組差異顯著。由表1 可知，發(fā)酵結束后1.0%、2.0%組的培養(yǎng)液所含還原糖分別為0.18%和0.23%，表明糖幾乎消耗殆盡，2.5%添加量的培養(yǎng)液內還原糖為0.48%，3.0%及以上各組培養(yǎng)液里還原糖均高于2.5%組，5.0%組還原糖值最高，達到了2.21%。隨著糖量的增加，培養(yǎng)液還原糖值越高，培養(yǎng)基內的殘?zhí)窃蕉?，并且從發(fā)酵液的pH值可以看出，所添加的糖并沒有被利用轉化，由此確定葡萄糖的最適添加量為2.5%。

圖4 優(yōu)勢碳源不同添加量對丁酸梭菌菌落數的影響

表1 各組發(fā)酵液中還原糖及pH 的檢測結果

2.4 優(yōu)勢氮源添加量的確定

氮是構成生命重要物質蛋白質和核酸等的主要元素，與碳源相同，氮源也是微生物的主要營養(yǎng)物質，通常分為有機氮源和無機氮源。本試驗以市場上常見的包含有機氮和無機氮的8 種氮源，以部分替代基礎培養(yǎng)基中原有氮源的方式，考查不同氮源對丁酸梭菌生長的影響，結果見圖5。其中，肽粉、魚粉和酵母粉3 組間菌數差異不顯著，但優(yōu)于對照組，且顯著高于其他氮源。

圖5 不同氮源對丁酸梭菌菌落數的影響

本試驗選擇菌落數相對較高的酵母粉、魚粉和肽粉作為優(yōu)勢氮源，在一定范圍內以確定最佳添加量，結果見圖6，酵母粉在2.5%時菌數為3.12×108CFU/mL。肽粉和魚粉分別在3%菌數最高，分別達到2.95×108、3.05×108CFU/mL。各組添加比例間菌落數沒有隨著添加量的增加而顯著提升，且各組最高菌數間差異不顯著。3 種優(yōu)勢氮源中，酵母粉不僅是微生物生長的優(yōu)質氮源，還含有多種生長因子，但價格相對來說要高出很多。在發(fā)酵生產中，為保證營養(yǎng)互補多采用復合氮源的方式。因此，本試驗確定酵母粉為0.5%與3.0%的肽粉或3.0%的魚粉組合成復合氮源。

圖6 3 種優(yōu)勢氮源不同的添加量對丁酸梭菌菌落數的影響

2.5 發(fā)酵過程中間歇調控pH 對增菌的影響

1.6 1)試驗結果顯示，初始pH 在5.5 時菌體生長緩慢，表明過低的pH 值對丁酸梭菌生長會形成抑制。1.6 3)試驗結果可知，發(fā)酵結束時培養(yǎng)液的pH 值顯示為4.7 左右，且除1.0%組外，其他各組培養(yǎng)液內均有不等量的殘留葡萄糖，表明菌體可能是由于受到酸性代謝物的抑制，糖沒有被完全利用。為了解除酸抑制，本試驗在培養(yǎng)至10 h 和培養(yǎng)至10、15 h 分別調節(jié)pH 至6.0，培養(yǎng)結果見圖7。由圖7 可知，在培養(yǎng)過程中調節(jié)pH 可以明顯提高丁酸梭菌的生物量，在10 h 和10、15 h 分別調節(jié)pH 至6.0 的試驗組菌落數比對照組分別提高了21.02%和39.66%。檢測培養(yǎng)液內剩余葡萄糖，由表2 可知，1次補堿組剩余葡萄糖為0.31%、2 次補堿組剩余葡萄糖為0.06%。經2 次補堿后，葡萄糖基本被利用完全。表明解除酸抑制，不僅延長了菌體的生長對數期，還可提高糖的利用率，同時也大幅度提高了生物量。

圖7 不同補堿次數對丁酸梭菌菌落數的影響

表2 間歇控酸發(fā)酵液殘?zhí)橇繖z測結果

2.6 發(fā)酵過程中補料對增菌的影響

從1.7 1)試驗可知解除酸抑制后，培養(yǎng)液里的糖基本利用完全，培養(yǎng)基內的碳量偏低，表明對數期菌體生長快，培養(yǎng)基中的營養(yǎng)物質消耗也快，可能會造成后期發(fā)酵動力不足。本試驗通過培養(yǎng)至10、15 h 在2 次補堿的同時分別按總量為1%、2%、3%、5%補充初始培養(yǎng)基營養(yǎng)液，結果見圖8。2%的補料量菌數最高，但與1%組差異不顯著。3%、5%補料組的菌落數沒升反而有所下降，可能是因菌體生長快，產酸量大，調節(jié)酸堿的間隔時間過長，發(fā)酵液的營養(yǎng)過于豐富，影響了轉孢率。由于本試驗所用的檢測方法為丁酸梭菌芽孢計數法，所計菌數實際為芽孢數，使得菌數低于前2 組。試驗結果表明，適量的補料可為菌體持續(xù)性的生長繁殖提供充足的動力，延長對數期。

圖8 梯度補充營養(yǎng)液對丁酸梭菌菌落數的影響

2.7 發(fā)酵過程中在線控制pH 并補料對增菌的影響

由圖9 和表3 可知，隨著發(fā)酵的啟動，在發(fā)酵至10 h 測得發(fā)酵液中葡萄糖的含量為0.18%，而發(fā)酵液中的丁酸含量呈持續(xù)性增加。補料泵開啟后，菌數保持快速生長的狀態(tài)，發(fā)酵至24 h 左右丁酸的含量增加緩慢，此時停止補料，此后菌落數仍然在增長，表明發(fā)酵液中菌體萌發(fā)芽孢，此后芽孢大量的形成和成熟，發(fā)酵至32 h，菌落數為2.28×109CFU/mL，鏡檢發(fā)酵液芽孢率已達90%以上。

圖9 發(fā)酵罐中丁酸含量與丁酸梭菌生長之間的關系

表3 補料前發(fā)液中葡萄糖的含量

3 討 論

本試驗通過優(yōu)化調整培養(yǎng)基中主要碳、氮源，對常見的8 種碳源和氮源篩選比較，確定葡萄糖為最佳碳源，這與杜孟思等[11]、戚薇等[12]及耿正穎[13]的研究結果相一致。在試驗結果中可見紅糖、糖蜜的菌落數與葡萄糖的差異不大，糖蜜為制糖下角料，相對于葡萄糖價格低廉，在規(guī)?；a中因量大原料成本間的差異突出顯現，可考慮采用糖蜜作為唯一碳源或補充碳源。氮源的篩選結果是酵母粉為最佳氮源，其次是魚粉和肽粉，二者差異不顯著，與夏會麗等[14]研究結果大致相同（酵母粉為最佳氮源）。與目前丁酸梭菌常用的牛肉粉和各種蛋白胨及戚薇等[15]采用水解3 h 的豆粕作為最佳氮源不同的是，本試驗選擇魚粉和肽粉作為備選原料，主要是考慮到牛肉粉和胰蛋白胨價格昂貴，水解豆粕工藝相對復雜，對于生產丁酸梭菌的廠家來說自己處理比較繁瑣，市場來源相對較少。且目前由于本菌發(fā)酵水平和后期處理工藝不成熟，利潤空間有限，生產廠家急需相對廉價且易得的生產原料。本試驗考慮到魚粉是飼料行業(yè)常用原料，不僅含優(yōu)質蛋白還含有豐富的維生素及礦物質元素；而肽粉是近些年來飼料行業(yè)新興原料，富含小分子物質，宜于機體吸收利用，廣泛用于飼料及食品行業(yè)，生產工藝成熟，市場來源廣泛，易于采購且質量有保障。試驗結果表明，酵母粉、魚粉、肽粉3 種優(yōu)勢氮源可完全替代常用的牛肉粉和胰蛋白胨。經優(yōu)化，2.5%葡萄糖和復合氮源（3.0%肽粉與0.5%酵母粉或3.0%魚粉與0.5%酵母粉）、無機鹽及其他組分同初始培養(yǎng)基，為最佳營養(yǎng)條件，初始pH 6.0，接種量3%，在此條件下三角瓶靜置培養(yǎng)芽孢數可達3.35×108CFU/mL。

在1.6 3）的試驗中發(fā)現，發(fā)酵過程中隨著發(fā)酵時間的延長，菌體代謝產生的如丁酸、乙酸、乳酸等有機酸的積累[16]，發(fā)酵液的pH 快速降低并對菌體的生長形成抑制，出現“酸脅迫”現象，菌體生長對數期只有短短的3～5 h。1.7 1）試驗采用在發(fā)酵過程中補堿來解除“酸脅迫”。在試驗中發(fā)現，1 次補堿可延長生長對數期1～3 h，培養(yǎng)液中葡萄糖的量明顯降低，二次調節(jié)后培養(yǎng)液中所剩葡萄糖的量微乎其微。本試驗在調節(jié)pH 時沒有采用鄒孟琳等[17]使用飽和碳酸氫鈉溶液作為中和劑，而是用質量分數為20% NaOH 溶液作為中和劑，避免了在發(fā)酵過程中由于本菌產酸量高，需消耗的碳酸氫鈉溶液的量大，不僅稀釋了培養(yǎng)基，還使得發(fā)酵液的終體積大幅增加，影響發(fā)酵器具的初裝量。

通過1.7 1）試驗發(fā)現，在間隔2 次調pH 試驗過程中，對數期的丁酸梭菌對營養(yǎng)需求量比較大，初始糖很快消耗殆盡，遠不能滿足菌體快速生長的需要，菌體生長過程中出現“碳饑餓”。1.7 2）試驗通過一定量的補料延長了菌體生長的對數期，大幅度提高了生物量。

在50 L 發(fā)酵罐發(fā)酵過程中，由于可在線調控恒定發(fā)酵液的酸堿度，菌體處于持續(xù)性良好的生長環(huán)境，生長繁殖速度快，培養(yǎng)基內的營養(yǎng)消耗相應也快，在發(fā)酵10 h 左右取樣檢測培養(yǎng)基里葡萄糖的量已不到0.2%，這說明從發(fā)酵10 h 開始，發(fā)酵液中的營養(yǎng)已不能滿足丁酸梭菌快速生長的需要，這與夏會麗等[14]研究的發(fā)酵至12 h 檢測發(fā)酵液中的糖近乎為0 的結果相近。由于丁酸梭菌存在“碳溢流”現象[18]，并且高濃度培養(yǎng)基的高滲透壓會給菌體細胞膜帶來壓力和損傷，為避免此類影響，發(fā)酵初始培養(yǎng)基通常只提供基本生長的營養(yǎng)。為了提高生物量，在菌體快速生長時期需要增補充足的營養(yǎng)。本試驗在發(fā)酵過程中及時進行在線連續(xù)補料，不僅使菌體在快速生長時得到充足的營養(yǎng)，延長菌體生長對數期，還可以避免因營養(yǎng)不足出現菌體因“饑餓”而急速衰亡。培養(yǎng)至28 h，芽孢數為2.12×109CFU/mL，取樣鏡檢芽孢率達90%以上，4 h 后測得發(fā)酵液菌數達2.28×109CFU/mL，再延時培養(yǎng)至36 h，菌落數并沒有顯著增加，芽孢數趨于平穩(wěn)，由此建議在實際生產中發(fā)酵至32 h 即可下罐。

4 結 論

通過單因素試驗，得到優(yōu)化的培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件：葡萄糖25 g/L、酵母粉5 g/L、肽粉30 g/L 或（酵母粉5 g/L、魚粉30 g/L）、K2HPO41.05 g/L、MgSO4·7H2O 1.21 g/L、NaCL 0.3 g/L、CaCO31.5 g/L、MnSO4·H2O 0.012 g/L、促生長因子0.2 g/L，接種量3%，37 ℃培養(yǎng)30～36 h，發(fā)酵過程中在線恒定pH為6.0，并在發(fā)酵10 h 左右進行培養(yǎng)基營養(yǎng)液總量為5.0%的連續(xù)補料。丁酸梭菌MY-Z 在此發(fā)酵工藝條件下，芽孢數可達2.28×109CFU/mL。