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發(fā)酵桔梗活性成分分析及抗氧化能力研究△

2022-12-26 03:57:14張?jiān)?/span>趙崇杰韓先磊孫楊羅學(xué)剛霍金海張同存王偉明王楠
中國(guó)現(xiàn)代中藥 2022年11期
關(guān)鍵詞:桔梗提取液皂苷

張?jiān)拢w崇杰,韓先磊,孫楊,羅學(xué)剛,霍金海,張同存,王偉明,王楠*

1.天津科技大學(xué) 生物工程學(xué)院 教育部工業(yè)發(fā)酵微生物學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津 300457;

2.天津市微生物代謝與發(fā)酵過(guò)程控制工程研究中心,天津 300457;

3.黑龍江省中醫(yī)藥科學(xué)院 中藥研究所,黑龍江 哈爾濱 150036

桔梗(Platycodonis Radix)為桔??平酃僦参锝酃latycodon grandiflorum(Jacq.)A.DC.的干燥根,屬于藥食同源的中藥材[1]。桔梗種植廣泛,在我國(guó)主要產(chǎn)于安徽、河南、湖北、遼寧、吉林等地,以東北、華北產(chǎn)量最高[2]。桔梗始載于《神農(nóng)本草經(jīng)》,性微溫,味甘、苦、辛,入肺經(jīng),具有宣肺利咽、祛痰排膿之功效[1]。由于其含有豐富的黃酮、多酚、皂苷、多糖類(lèi)物質(zhì),因此具有較強(qiáng)的抗氧化、抗腫瘤、抗炎、降血糖、調(diào)血脂等功效[3-5]。除了富含這些藥效物質(zhì)外,鮮桔梗中還含有蛋白質(zhì)、脂肪、碳水化合物等營(yíng)養(yǎng)成分及鈣、磷、鐵等礦物質(zhì)[6]。

近年來(lái),越來(lái)越多的研究報(bào)道了桔梗提取物的抗氧化作用[7-10]。孫曉春等[7]對(duì)安徽、吉林和陜西3個(gè)產(chǎn)地桔梗水提物、醇提物和桔梗多糖中主要成分的含量進(jìn)行測(cè)定,分析不同提取物的抗氧化活性,發(fā)現(xiàn)桔梗醇提物中總黃酮含量與多糖含量均為安徽>吉林>陜西,同時(shí)對(duì)1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)自由基和羥自由基的清除率也為安徽>吉林>陜西。劉華麗等[8]采用正交設(shè)計(jì)法優(yōu)化桔梗多酚的提取工藝,并測(cè)定了其抗氧化作用。王曉林等[9]優(yōu)化了利用大孔吸附樹(shù)脂純化桔梗莖總黃酮的工藝條件,同時(shí)檢測(cè)了其體外抗氧化活性。李根等[10]通過(guò)酶解法制備桔梗汁,對(duì)出汁率和多酚含量進(jìn)行測(cè)定,并評(píng)價(jià)其抗氧化活性,證實(shí)酶解工藝制備的桔梗汁具有較強(qiáng)的體外抗氧化活性。

發(fā)酵中藥成分經(jīng)微生物發(fā)酵轉(zhuǎn)化是其發(fā)揮藥理作用的關(guān)鍵過(guò)程[11]。微生物發(fā)酵中藥具有提高有效成分含量、增強(qiáng)療效、擴(kuò)大適應(yīng)證、減少不良反應(yīng)、產(chǎn)生新的藥用資源等作用[12]。然而,目前關(guān)于微生物發(fā)酵桔梗的研究中針對(duì)適用菌種的研究較少。因此,本研究選用多個(gè)菌株對(duì)桔梗進(jìn)行發(fā)酵,對(duì)比發(fā)酵前后桔梗提取液中總多酚、總黃酮、總多糖含量變化,篩選出優(yōu)勢(shì)菌株并分析發(fā)酵液的抗氧化活性,為桔梗的進(jìn)一步開(kāi)發(fā)利用提供參考。

1 材料

1.1 菌株

巨大芽孢桿菌Bacillus megateriumZY2104 和人參芽孢桿菌B.ginsengisoliZY2103 來(lái)源于新鮮桔梗根部土壤;類(lèi)腸膜魏斯菌Weissella paramesenteroidesZY2101 和綠色魏斯菌W.viridescensZY2102 來(lái)源于桔梗泡菜;鼠李糖乳桿菌Lactobacillus rhamnosussw01 和枯草芽孢桿菌B.SubtilisRZ001 為本實(shí)驗(yàn)室自有菌株;啤酒酵母Saccharomyces pastorianusS5、釀酒酵母S.CerevisiaeAY12 和S.CerevisiaeBY14 由天津科技大學(xué)現(xiàn)代釀造課題組饋贈(zèng);菌株均保藏于天津科技大學(xué)工業(yè)微生物菌種資源平臺(tái)。

1.2 試藥

干燥桔梗藥材購(gòu)于河北安國(guó)藥材基地,由天津科技大學(xué)王楠教授鑒定為桔??平酃僦参锝酃latycodon grandiflorum(Jacq.)A.DC.的干燥根;對(duì)照品蘆丁(批號(hào):A27GB146690,純度≥98%)、MRS 培養(yǎng)基、瓊脂粉、七葉苷、總抗氧化能力(TAOC)檢測(cè)試劑盒、福林酚(北京索萊寶科技有限公司);R2A液體培養(yǎng)基(青島高科技工業(yè)園海博生物技術(shù)有限公司);蛋白胨、酵母提取物(賽默飛世爾科技公司);對(duì)照品沒(méi)食子酸(批號(hào):C10271829,純度≥99%)、K3[Fe(CN)5](上海麥克林生化科技有限公司);鄰苯三酚、Al(NO3)3、濃硫酸、NaNO2、C2HCl3O2(天津市江天化工技術(shù)股份有限公司);檸檬酸鐵、水楊酸(上海阿拉丁生化科技有限公司);苯酚(上海生工生物工程有限公司);無(wú)水乙醇(天津市立元化工有限公司);對(duì)照品桔梗皂苷D(批號(hào):414K024,純度≥98%,上海源葉生物科技有限公司);FeSO4(天津市北方天醫(yī)化學(xué)試劑廠(chǎng));H2O2(山東利爾康醫(yī)療科技股份有限公司);FeCl3(天津渤化化學(xué)試劑有限公司);DPPH(上海吉至生化科技有限公司);HCl、NaOH(天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司)。

1.3 儀器

TMC 型恒溫孵育器(合肥艾本森科學(xué)儀器有限公司);S.VS-840U型超凈工作臺(tái)(上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠(chǎng));SPX-150 型生化培養(yǎng)箱(上海精天儀器有限公司);S30408 型立式壓力蒸汽滅菌器(上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠(chǎng));Hybrid Technology?型多功能酶標(biāo)儀(美國(guó)伯騰儀器有限公司);JIDI-18D型離心機(jī)(廣州吉迪儀器有限公司)。

2 方法

2.1 培養(yǎng)基配制

MRS液體培養(yǎng)基:蛋白胨10 g、牛肉粉5 g、酵母粉4 g、葡萄糖20 g、聚山梨酯-80 1 mL、磷酸氫二鉀2 g、乙酸鈉5 g、檸檬酸三銨2 g、硫酸鎂0.2 g、硫酸錳0.05 g,加蒸餾水至1 L。調(diào)節(jié)pH 至7.0,121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min,用于乳酸菌活化和培養(yǎng)。

MRS瓊脂固體培養(yǎng)基:在MRS液體培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上添加瓊脂15 g·L-1,121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min。用于乳酸菌的分離和純化。

YPD 培養(yǎng)基:蛋白胨20 g、葡萄糖20 g、酵母提取物10 g。加蒸餾水至1 L。調(diào)節(jié)pH 至7.0,121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min。用于酵母的活化和培養(yǎng)。

YPD 瓊脂固體培養(yǎng)基:在YPD 液體培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上添加瓊脂15 g·L-1,121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min。用于乳酸菌的分離和純化。

E-R2A固體培養(yǎng)基:R2A液體3.2 g、瓊脂20 g、七葉苷1 g、檸檬酸鐵0.5 g,加蒸餾水至1 L。用于判斷微生物的β-D-葡萄糖苷酶活力。

2.2 桔梗發(fā)酵液中多酚、黃酮、多糖含量測(cè)定

2.2.1 發(fā)酵桔梗的制備 將桔梗片粉碎,過(guò)40 目篩,精確稱(chēng)量桔梗粉末2.5 g 和蒸餾水50 mL,充分混勻后于121 ℃滅菌20 min,按2%的接種量分別向其中接入各菌種,未發(fā)酵組加入等量蒸餾水作為對(duì)照組。于37 ℃發(fā)酵72 h,將對(duì)照組和發(fā)酵液組離心后,取全部上清液,用蒸餾水定容到50 mL,滅菌后于4 ℃保存,用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

2.2.2 總多酚含量的測(cè)定 采用福林酚測(cè)定法[13]測(cè)定多酚的含量。精確稱(chēng)取沒(méi)食子酸對(duì)照品5 mg,用蒸餾水溶解并定容至50 mL 量瓶中,配制成質(zhì)量濃度為0.1 mg·mL-1的沒(méi)食子酸對(duì)照品溶液。分別將沒(méi)食子酸對(duì)照品溶液0、1、2、3、4、5、6、7 mL置于試管中,并加入蒸餾水至10 mL,配成0、10、20、30、40、50、60、70 μg·mL-1的系列沒(méi)食子酸對(duì)照品溶液。分別從上述系列對(duì)照品溶液中吸1.0 mL于試管中,分別加入蒸餾水5 mL、福林酚試劑1 mL、Na2CO3溶液(0.075 g·mL-1)3 mL,振蕩顯色1 h后,在760 nm 波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度(A)并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。將待測(cè)樣品稀釋后取1 mL,按照上述步驟分別加入各種試劑測(cè)定A,進(jìn)行3 次重復(fù)實(shí)驗(yàn)取平均值,由標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)計(jì)算出樣品中的總多酚含量。

2.2.3 總黃酮含量的測(cè)定 用硝酸鋁分光光度法[14]測(cè)定樣品中總黃酮含量。精密稱(chēng)取對(duì)照品蘆丁5 mg,用70%乙醇溶解并定容在25 mL 量瓶中,配制成0.2 mg·mL-1蘆丁對(duì)照品溶液。分別吸取蘆丁對(duì)照品溶液0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7 mL置于試管中,分別加入70%乙醇至2 mL,再加入5%的NaNO2溶液0.3 mL,搖勻、靜置6 min 后再加入10%的Al(NO3)3溶液0.3 mL,搖勻、靜置6 min,加入4%NaOH溶液2 mL,搖勻、靜置10 min后,于510 nm 波長(zhǎng)下測(cè)定A并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。取待測(cè)樣品溶液1 mL加入70%乙醇1 mL,如果A過(guò)高,則將樣品倍數(shù)稀釋?zhuān)侔凑丈鲜霾襟E測(cè)定,每個(gè)樣品測(cè)3次取平均值。由標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)計(jì)算出樣品中的總黃酮含量。

2.2.4 總多糖含量的測(cè)定 采用苯酚-硫酸法[15]測(cè)定多糖的含量。稱(chēng)取葡萄糖50 mg 放入100 mL 量瓶中,加水將葡萄糖溶解;再分別吸取葡萄糖溶液0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7 mL,加蒸餾水至2.0 mL,分別加入6%苯酚1.0 mL 和濃硫酸5.0 mL,振蕩搖勻,沸水浴中加熱15 min 顯色,冷卻后用紫外分光光度計(jì)測(cè)490 nm 波長(zhǎng)處的A,用水作為空白對(duì)照,制得標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn),將樣品倍數(shù)稀釋后,按照上述步驟測(cè)定,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)計(jì)算多糖的含量。

2.3 桔梗發(fā)酵液皂苷含量、體外抗氧化能力測(cè)定

2.3.1 七葉苷顯色平板法確定產(chǎn)酶菌 分別取不同微生物,采用三區(qū)劃線(xiàn)方法接種于含有E-R2A 固體培養(yǎng)基的平板上,37 ℃倒置培養(yǎng)48 h。利用七葉苷顯色原理,根據(jù)顏色變化(變黑)評(píng)估其β-D-葡萄糖苷酶的活性。

2.3.2 菌株生長(zhǎng)曲線(xiàn) 取活化后的巨大芽孢桿菌ZY2014 在37 ℃培養(yǎng)24 h,每隔2 h 取1 次樣品,以空白培養(yǎng)基為對(duì)照,600 nm 下測(cè)得樣品的A。以生長(zhǎng)時(shí)間為橫坐標(biāo),A為縱坐標(biāo)繪制生長(zhǎng)曲線(xiàn)。

2.3.3 皂苷含量的測(cè)定 采用香草醛-濃硫酸法[16],精密稱(chēng)取桔梗皂苷D 對(duì)照品3 mg,溶于70%甲醇1 mL,充分溶解。分別吸取對(duì)照品溶液0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mL,水浴蒸發(fā)至干燥,分別加入10%香草醛甲醇溶液0.5 mL 和60%硫酸5 mL,60 ℃水浴加熱15 min,冰水浴冷卻3 min。于472 nm 波長(zhǎng)測(cè)定A并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。取待測(cè)樣品1 mL,按照上述步驟測(cè)定,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)計(jì)算出樣品中桔梗皂苷D的含量。

2.3.4 T-AOC 的測(cè)定 桔梗發(fā)酵液的T-AOC 檢測(cè)方法參照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。

2.3.5 DPPH 自由基清除率測(cè)定 加入稀釋0、2、4、8 倍樣品4 mL 和0.15 mmol·L-1DPPH-乙醇溶液4 mL,混勻避光后靜止30 min。以蒸餾水為空白組,于517 nm 處測(cè)A,按照公式(1)計(jì)算DPPH 自由基清除率。

式中A0為空白組吸光度,A1為樣品吸光度,A2為對(duì)照組吸光度(以乙醇代替DPPH-乙醇溶液)。

2.3.6 羥自由基清除率測(cè)定 配制稀釋0、2、4、8 倍樣品,取2 mL 置于試管中,加入6 mmol·L-1FeSO4溶液和6 mmol·L-1H2O2溶液各2 mL,室溫下靜置10 min后,再加入6 mmol·L-1水楊酸溶液2 mL,搖勻;室溫下靜置30 min,于510 nm 處測(cè)A。以蒸餾水為空白組,按照公式(2)計(jì)算羥自由基清除率。

式中A0為空白組吸光度,A1為樣品吸光度,A2為對(duì)照組吸光度(以蒸餾水代替水楊酸)。

2.3.7 Fe3+還原能力測(cè)定 配制不同質(zhì)量濃度的樣品,分別取1 mL 于試管中。加入pH 6.6 的磷酸鹽緩沖液2.5 mL,搖勻后加入K3[Fe(CN)5] 水溶液2.5 mL,充分混勻后于50 ℃反應(yīng)20 min。再加入10%三氯乙酸溶液2.5 mL,3000 r·min-1離心10 min(離心半徑為4 cm)。取上清液5 mL,加入蒸餾水5 mL 和0.1% FeCl3溶液1 mL。反應(yīng)30 min 后,于700 nm 處測(cè)定A,以蒸餾水作為空白組,每個(gè)樣品測(cè)3次取平均值,按照公式(3)計(jì)算還原能力。

式中A為樣品的吸光度,A0為空白組吸光度。

2.4 數(shù)據(jù)處理

3 結(jié)果

3.1 桔梗發(fā)酵前后提取液中總多酚含量

微生物發(fā)酵對(duì)桔梗提取液中總多酚含量的影響如圖1 所示,其中巨大芽孢桿菌ZY2104 發(fā)酵組總多酚質(zhì)量濃度最高,為(5.06±0.05)mg·mL-1,其次是枯草芽孢桿菌RZ001、啤酒酵母S5 發(fā)酵組,分別為(4.83±0.01)、(4.37±0.01)mg·mL-1,而其他發(fā)酵組總多酚質(zhì)量濃度與對(duì)照組比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

圖1 不同菌株發(fā)酵前后桔梗提取液中總多酚質(zhì)量濃度變化(,n=3)

3.2 桔梗發(fā)酵前后提取液中總黃酮含量

微生物發(fā)酵對(duì)桔梗提取液中總黃酮含量的影響如圖2 所示,其中巨大芽孢桿菌ZY2104 發(fā)酵組的總黃酮質(zhì)量濃度最高,為(5.83±0.06)mg·mL-1,其次是釀酒酵母AY12、類(lèi)腸膜魏斯菌ZY2101、枯草芽孢桿菌RZ001、人參芽孢桿菌ZY2103發(fā)酵組,總黃酮質(zhì)量濃度分別為(5.66±0.03)、(5.65±0.01)、(5.60±0.05)、(5.57±0.06)mg·mL-1,而釀酒酵母BY14、鼠李糖桿菌sw01、綠色魏斯菌ZY2102、啤酒酵母S5 發(fā)酵組總黃酮含量與對(duì)照組相比差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

圖2 不同菌株發(fā)酵前后桔梗提取液中總黃酮質(zhì)量濃度變化(,n=3)

3.3 桔梗發(fā)酵前后提取液中總多糖含量

微生物發(fā)酵對(duì)桔梗提取液中總多糖含量的影響如圖3 所示,其中鼠李糖桿菌sw01 發(fā)酵組的多糖質(zhì)量濃度最高,為(11.84±0.87)mg·mL-1,其次是釀酒酵母AY12、釀酒酵母BY14、類(lèi)腸膜魏斯菌ZY2101發(fā)酵組,分別為(10.95±0.37)、(10.89±0.49)、(10.85±1.02)mg·mL-1。而巨大芽孢桿菌ZY2104發(fā)酵組多糖質(zhì)量濃度為(8.96±0.14)mg·mL-1,也顯著高于對(duì)照組 [(5.55±0.43)mg·mL-1]??莶菅挎邨U菌RZ001 發(fā)酵組多糖含量與對(duì)照組相比差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

圖3 不同菌株發(fā)酵前后桔梗提取液中總多糖質(zhì)量濃度變化(,n=3)

相對(duì)于對(duì)照組及其他微生物發(fā)酵組,巨大芽孢桿菌ZY2104發(fā)酵組總多酚、總黃酮含量均最高,總多糖含量也處于較高水平。有研究報(bào)道[5,7],桔梗皂苷是桔梗中的主要成分,具有抗氧化作用,因此后續(xù)實(shí)驗(yàn)測(cè)定了對(duì)照組及發(fā)酵組中桔梗皂苷D的含量,并對(duì)巨大芽孢桿菌ZY2104是否具有β-D-葡萄糖苷酶活性進(jìn)行了驗(yàn)證,同時(shí)也對(duì)巨大芽孢桿菌ZY2104發(fā)酵桔梗提取液進(jìn)行抗氧化活性測(cè)定。

3.4 巨大芽孢桿菌ZY2104的基本形態(tài)和生長(zhǎng)曲線(xiàn)

菌落呈圓形、灰白色,表面光滑濕潤(rùn)(圖4A)。革蘭染色呈紫色,棒狀桿菌,單個(gè)或呈短鏈排列(圖4B)。巨大芽孢桿菌ZY2104 的生長(zhǎng)曲線(xiàn)如圖5所示,培養(yǎng)至18 h時(shí),菌體生長(zhǎng)進(jìn)入穩(wěn)定期。

圖4 巨大芽孢桿菌ZY2104的形態(tài)

圖5 巨大芽孢桿菌ZY2104的生長(zhǎng)曲線(xiàn)

3.5 巨大芽孢桿菌ZY2104 產(chǎn)β-D-葡萄糖苷酶活性檢測(cè)

利用七葉苷顯色培養(yǎng)基對(duì)生物菌株產(chǎn)β-D-葡萄糖苷酶的情況進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)巨大芽孢桿菌ZY2104 可以在七葉苷顯色培養(yǎng)基中產(chǎn)黑色水解斑,且顏色較深,說(shuō)明其β-D-葡萄糖苷酶活性較強(qiáng)(圖6)。

圖6 七葉苷顯色培養(yǎng)基中的巨大芽孢桿菌ZY2104

3.6 巨大芽孢桿菌ZY2104 發(fā)酵前后桔梗提取液中桔梗皂苷D含量

對(duì)照組桔梗提取液中桔梗皂苷D 質(zhì)量濃度為(34.07±1.47)μg·mL-1,巨大芽孢桿菌ZY2104 發(fā)酵后桔梗提取液桔梗皂苷D 質(zhì)量濃度降至(26.70±1.57)μg·mL-1(P<0.05)。

3.7 發(fā)酵前后桔梗提取液抗氧化活性

巨大芽孢桿菌ZY2104發(fā)酵前后桔梗提取液的抗氧化能力變化情況見(jiàn)表1。不同的稀釋倍數(shù)下,發(fā)酵組T-AOC、DPPH 自由基的清除率與對(duì)照組比較均顯著提高(P<0.05);發(fā)酵組羥自由基清除率與對(duì)照組比較均提高。在未稀釋情況下,發(fā)酵組TAOC、還原能力與對(duì)照組比較顯著提高(P<0.05),其他稀釋倍數(shù)下均有提高的趨勢(shì)。說(shuō)明巨大芽孢桿菌ZY2104發(fā)酵能夠提高桔梗的抗氧化能力。

表1 發(fā)酵對(duì)桔梗提取液抗氧化能力的影響(,n=3)

表1 發(fā)酵對(duì)桔梗提取液抗氧化能力的影響(,n=3)

注:同列不同字母代表與相同稀釋倍數(shù)的對(duì)照組比較P<0.05。

4 討論

中藥發(fā)酵主要是指在一定的環(huán)境條件下(如濕度、溫度等)借助微生物的作用使中藥的藥性、活性成分和功效應(yīng)用均發(fā)生了變化,從而達(dá)到增強(qiáng)療效、減少不良反應(yīng)、擴(kuò)大用藥品種,適應(yīng)臨床用藥的需要[17]。微生物發(fā)酵可以提高中藥有效成分的溶出,同時(shí)模擬體內(nèi)微生物轉(zhuǎn)化過(guò)程,在體外把藥物轉(zhuǎn)化為人體能迅速吸收的有效成分,并產(chǎn)生豐富的次生代謝產(chǎn)物。

微生物含有多種豐富酶系,可以利用中藥中的蛋白質(zhì)、多糖、微量元素、維生素等多種營(yíng)養(yǎng)成分對(duì)中藥成分進(jìn)行轉(zhuǎn)化。微生物可以通過(guò)利用降解苷類(lèi)物質(zhì)產(chǎn)生的糖類(lèi)作為碳源,為其發(fā)酵生長(zhǎng)提供能量。微生物發(fā)酵也可以提升多種中藥中黃酮、多酚類(lèi)物質(zhì)的含量。劉鋒等[18]研究表明,淡豆豉發(fā)酵過(guò)程中總黃酮和多糖含量隨發(fā)酵時(shí)間累積呈上升趨勢(shì),總黃酮含量在發(fā)酵9 d 達(dá)到最高,多糖含量在發(fā)酵13 d 達(dá)到峰值。曾玲等[19]發(fā)現(xiàn)利用貝萊斯芽孢桿菌和庫(kù)德里阿茲威畢赤酵母菌株2 種菌株發(fā)酵桔梗提取液后,總黃酮、總酚含量均顯著升高,同時(shí)發(fā)酵液的抗氧化活性也顯著提升,其中貝萊斯芽孢桿菌菌株發(fā)酵后的體外抗氧化能力最強(qiáng)。Wang 等[20]利用鼠李糖乳桿菌217-1發(fā)酵桔梗根,制備的發(fā)酵液中桔梗皂苷D、類(lèi)黃酮和多酚的質(zhì)量濃度均顯著增加,同時(shí)DPPH 自由基清除率顯著提高,并且這種桔梗根發(fā)酵液可以降低葡聚糖硫酸鈉誘導(dǎo)的小鼠潰瘍性結(jié)腸炎的發(fā)生。

本研究中篩選出的活性較好的巨大芽孢桿菌ZY2104 是從新鮮桔梗的土壤中獲得,屬于植株內(nèi)生菌。與其他菌株相比,其發(fā)酵桔梗提取液顯示了較高的多酚、黃酮和多糖含量。同時(shí)七葉苷平板實(shí)驗(yàn)中也展示了巨大芽孢桿菌ZY2104 具有較高的β-D-葡萄糖苷酶活性。巨大芽孢桿菌ZY2104 發(fā)酵桔梗后,提取液中桔梗皂苷D 質(zhì)量濃度從(34.07±1.47)μg·mL-1下降到(26.70±1.57)μg·mL-1。已有研究報(bào)道,五環(huán)三萜皂苷類(lèi)成分由于口服吸收較差及機(jī)體代謝作用致使其生物利用度普遍較低[21-22]。大多數(shù)皂苷主要經(jīng)各種酶系、菌群等轉(zhuǎn)化為次級(jí)苷、苷元及氧化還原產(chǎn)物等而產(chǎn)生生物活性[23-25]。已知β-D-葡萄糖苷酶可以將桔梗中桔梗皂苷E 依次通過(guò)去掉1 個(gè)葡萄糖基分別生成桔梗皂苷D3和桔梗皂苷D,而桔梗皂苷D 在β-D-葡萄糖苷酶的作用下繼續(xù)生成去糖基化桔梗皂苷D[26-27]。桔梗皂苷D 在細(xì)胞酶PCL5 的作用下也可以通過(guò)去除1 個(gè)芹糖基和1 個(gè)木糖基分別生成去芹糖桔梗皂苷D 和脫脂木糖桔梗皂苷D[28]。本研究發(fā)現(xiàn),在巨大芽孢桿菌ZY2104 發(fā)酵桔梗后提取液中桔梗皂苷D 的含量降低,可能是由于其在β-D-葡萄糖苷酶或其他酶的作用下繼續(xù)轉(zhuǎn)化生成了其他有功能活性的物質(zhì)。

巨大芽孢桿菌具有廣泛的應(yīng)用價(jià)值。李秀穎等[29]將提取完皂苷后的黃姜藥渣、沸石粉、豆餅、過(guò)硫酸鈣等制成的固體培養(yǎng)基為原料,通過(guò)添加巨大芽孢桿菌、膠質(zhì)芽孢桿菌、圓褐固氮菌等多種益生菌進(jìn)行發(fā)酵,得到的生物有機(jī)肥料不僅生產(chǎn)成本低,還減少了藥渣對(duì)環(huán)境的污染。劉虎等[30]篩選出的1 株巨大芽孢桿菌具有高產(chǎn)β-D-葡萄糖苷酶能力,該酶可選擇性地將甜菊苷轉(zhuǎn)化,進(jìn)而使甜菊糖(RA)的純度得到提高。本研究中也發(fā)現(xiàn)巨大芽孢桿菌ZY2104 顯著提高了桔梗發(fā)酵液的T-AOC、DPPH自由基清除率、羥自由基清除率和還原能力。

綜上所述,本研究利用多種不同來(lái)源的微生物對(duì)桔梗提取物進(jìn)行發(fā)酵,結(jié)果發(fā)現(xiàn)內(nèi)生菌巨大芽孢桿菌ZY2104是發(fā)酵桔梗的優(yōu)勢(shì)菌種,可以顯著提高桔梗提取物中有效成分的含量,提高其抗氧化活性,為桔梗發(fā)酵研究與應(yīng)用開(kāi)發(fā)提供參考。

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