李婷,劉蕾,黃敏,任格瑞,謝湖均,董麗娟
(浙江工商大學食品與生物工程學院,浙江杭州 310018)
姜黃素是一種從姜黃植物中分離的、具有二酮結構的天然多酚化合物,具有抗菌、抗氧化、抗病毒、抗癌等特性,在食品、藥品和化妝品等領域具有廣泛的應用[1-5]。然而,姜黃素難溶于水、易溶于有機溶劑,光穩(wěn)定性和熱穩(wěn)定性較差,在酸堿條件下容易失活,使得姜黃素的生物利用率很低[6]。因此有必要開發(fā)合適的遞送系統(tǒng),改善姜黃素在體外和體內的穩(wěn)定性,提高其在胃腸中的生物利用率。
多糖和蛋白是常見的天然高分子材料,利用蛋白質和多糖制備復合納米顆粒被認為是制備食品級給藥系統(tǒng)最有前景的方法之一[7-10]。Elbialy 等[11]利用酪蛋白、海藻酸鹽及殼聚糖制備了可以封裝具有抗癌性能的姜黃素的納米顆粒,顯著提高了姜黃素的包封率(75%),且具有比合成類抗癌藥物更好的生物安全性。卵白蛋白和海藻酸鈉構建的納米復合物可以有效封裝姜黃素,能提高姜黃素的水溶性和生物利用度[12]。負載姜黃素的海藻酸鈉-明膠復合微纖維具有足夠的抗機械性能和可降解性能,可作為傷口護理的潛在藥物輸送系統(tǒng)[13]。
玉米醇溶蛋白(Zein)是一種高度疏水的蛋白質,是疏水活性物質的理想載體。它不僅能夠通過疏水作用與姜黃素(CUR)形成復合物,提高姜黃素的水溶性和生物利用度[14,15];而且制備Zein-CUR 納米復合物不需要大量有機溶劑,有利于實現(xiàn)姜黃素的安全使用。但玉米醇溶蛋白納米顆粒在水中的再分散性差,在某些環(huán)境應力下(pH 值接近等電點、高離子強度和高溫等)容易聚集。采用靜電沉積或反溶劑沉淀等方法將多糖包覆在玉米醇溶蛋白納米顆粒上,可以有效解決這個問題[16-18]。羧甲基殼聚糖(CMCS)是殼聚糖的水溶性衍生物,具有良好的生物相容性,可以用來穩(wěn)定玉米蛋白納米顆粒。CMCS 包覆玉米醇溶蛋白的納米粒子已被證明是一種有前途的遞送系統(tǒng),可改善疏水性營養(yǎng)素(如維生素D3)的釋放并增強其穩(wěn)定性[19],還可封裝納他霉素改善其水分散性并用于采后水果保鮮[20]。
本文以粒徑、電位、包封率、負載量和多分散系數(shù)(PDI)為指標,優(yōu)化了Zein/CMCS-CUR 納米復合物的制備條件。利用傅里葉變換紅外(FT-IR)、差示掃描量熱法(DSC)和X 射線衍射(XRD)探討了Zein、CMCS 和CUR 之間的相互作用,并通過透射電鏡(TEM)和掃描電鏡(SEM)研究了納米復合物的微觀形貌變化。通過體外模擬消化實驗考查了納米復合物在模擬胃腸道中的穩(wěn)定性和緩釋性,同時還分析了Zein/CMCS-CUR 納米復合物的穩(wěn)定性及抗氧化能力。通過以上研究,以期開發(fā)出用于功能食品和藥物的姜黃素納米輸送系統(tǒng)。
玉米醇溶蛋白(Zein),購自Sigma 公司;羧甲基殼聚糖(CMCS,脫乙酰度96%,取代度65%),購自南通興成生物制品有限公司;姜黃素(CUR)、胃蛋白酶(3816 units/mg)、豬胰臟胰蛋白酶(283 units/mg)、Na2PO4·2H2O(AR,≥98%)、NaCl(AR,99.5%)和NaH2PO4(AR,99.0%),購自阿拉丁有限公司。
MX-E 漩渦振蕩器,北京大龍;UV-2600 紫外-可見分光光度計,日本Shimadzu 公司;Zetasizer Nano-ZS激光粒度儀,英國Malvern 公司;高度冷凍離心機,德國Eppendorf 公司;紅外光譜儀,德國Thermo Scientific公司;差示掃描量熱儀,法國Setaram 公司。
1.3.1 Zein/CMCS-CUR 納米復合物的制備
Zein(0.04 g)和不同質量的姜黃素(CUR)溶于20 mL 乙醇-水溶液(80:20,V/V)中,Zein 與CUR 的質量比分別為30:1、20:1、10:1 和5:1,分別在400 r/min磁力攪拌2 h,然后與CMCS(0.04 g)在600 r/min 混合2 h,用HCl 和NaOH 溶液將復合物溶液體系的pH值調節(jié)至6.5,攪拌2 h 后用旋轉蒸發(fā)儀將乙醇蒸發(fā)(45 °C,8 min),制備得到包載不同濃度CUR 的Zein/CMCS-CUR 納米復合物溶液。固態(tài)Zein/CMCS-CUR 納米復合物采用冷凍干燥法制得。Zein 與CUR 的比例為30:1、20:1、10:1 和5:1 的樣品分別表示為Zein/CMCS-CUR30:1、Zein/CMCS-CUR20:1、Zein/CMCS-CUR10:1、和Zein/CMCS-CUR5:1。
1.3.2 粒徑與電位
實驗使用Nano-ZS 型激光粒度儀檢測樣品的粒徑和Zeta 電位。所測樣品的粒子粒徑和多分散性指數(shù)(PDI)是通過Stokes-Einstein 方程計算得到的,同時利用Smoluchowski 模型計算出所測樣品的Zeta 電位。實驗在室溫下進行,測量前平衡120 s,每次測量掃描12 次,每個樣品平行測量三次,最終取數(shù)據平均值。
1.3.3 包封率及負載量的測定
將適量的CUR溶解在無水乙醇中,漩渦震蕩10 min后超聲30 min 置于冰箱過夜,使其充分溶解,分別配制成不同濃度(2、4、6、8、10 mg/L)的CUR 溶液。利用紫外分光光度計在425 nm 處測得CUR 的吸收值,并繪制標準曲線。
采用超濾離心的方式測定納米復合物中CUR 的包封率(Encapsulation Efficiency,EE)和負載量(Loading Capacity,LC),具體操作如下:吸取一定體積包載CUR的納米復合物溶液于超濾離心管(濾膜的截留分子量為3 ku)中,5 000 r/min 下離心20 min,收集下管濾液,利用紫外分光光度計在425 nm 處進行測定。分別通過以下等式(1)和(2)計算EE和LC。
1.3.4 傅里葉變換紅外光譜(FT-IR)測定
將新鮮制備的樣品進行冷凍干燥后,與溴化鉀按照1:100 的比例混合研磨,然后進行壓片。設置掃描范圍為4 000~400 cm-1,分辨率為4 cm-1,累計掃描32 次,環(huán)境溫度為25 ℃。
1.3.5 差示掃描量熱法(DSC)
稱取約5 mg 的凍干后的樣品放入鋁坩堝進行分析,加熱溫度設置為20~200 ℃,升溫速率設置為10 °C/min,氮氣的流速設定為20 mL/min。
1.3.6 X 射線衍射(XRD)
將樣品充分研磨至粉末后,放入X 射線衍射儀中。采用Cu-Ka 輻射,在20 ℃、40 kV 和50 mA 的條件下,以10 °/min 的頻率在20~80 °的范圍內進行掃描。
1.3.7 透射電鏡(TEM)分析
樣品用超純水稀釋適當倍數(shù),混合均勻后取10 μL稀釋液滴在帶有碳支持膜的銅網上,靜置自然干燥后,使用質量分數(shù)2%的磷鎢酸溶液負染色4 min,多余的磷鎢酸用超純水進行沖洗,繼續(xù)在室溫下干燥。之后使用透射電子顯微鏡進行觀察,加速電圧為200 kV。
1.3.8 掃描電鏡(SEM)分析
將樣品用雙面粘合劑粘貼,安裝在不銹鋼上,并在觀察之前使用濺射涂布機涂覆金層,用掃描電子顯微鏡(SEM)在15.0 kV 的加速電壓下觀察這些樣品的微觀表面形態(tài)。
1.3.9 抗氧化能力測定
(1)ABTS 自由基清除活性
ABTS 自由基是由ABTS(7.4 mmol/L)與過硫酸鉀(2.6 mmol/L)以1:1(V/V)的比例混合在暗處反應16 h 生成的。用PBS 溶液(10 mmol/L,pH 值7.4)將上述混合物稀釋至吸光度值為0.70±0.01(734 nm 處),獲得ABTS 工作溶液。將樣品(40 μL)與4 mL ABTS工作溶液混合均勻并反應5 min。AC為4 mL ABTS 與40 μL PBS 溶液混合5 min 后的吸光值,As為4 mL ABTS 與40 μL 樣品反應5 min 的吸光值。使用公式(3)確定ABTS 自由基的清除能力(記為D,%)。
(2)DPPH 自由基清除能力測定
選擇DPPH 自由基清除活性實驗來評估含有不同濃度CUR 的樣品的自由基清除能力。稱量一定量的DPPH,并將其溶解在無水乙醇(0.1 mmol/L)中。將5 mL 樣品與5 mL 新鮮制備的DPPH 乙醇溶液混合。在渦旋振蕩器上震蕩10 min 后,將其置于黑暗環(huán)境中30 min。通過紫外-可見光譜在538 nm 處測量樣品吸光度(Asample),Ablank為5 mL 樣品與等量乙醇混合后的吸光值,Acontrol為5 mL 的DPPH 與等量的磷酸鹽緩沖液混合后的吸光值。使用公式(4)確定DPPH 自由基的清除能力(記為F,%)。
1.3.10 體外消化實驗
根據Minekus 等[21]和Hur 等[22]的實驗研究,建立了本復合體系的體外模擬消化實驗,條件如下:
模擬胃液的配制:取0.5 mL 的濃鹽酸定容至25 mL,在該鹽酸溶液中加入1 g 胃蛋白酶和0.2 g NaCl后,用超純水定容至100 mL 并超聲10 min 制得模擬胃液(SGF)。
模擬腸液的配制:將0.68 g NaH2PO4和1 g 胰蛋白酶用超純水溶解定容至100 mL,超聲10 min 后低溫離心10 min,制得模擬腸液(SIF)。
將樣品按照1:1(V/V)的比例置于配好的模擬胃液中并調pH 值為2.0,然后于37 ℃、100 r/min 的恒溫水浴搖床中進行模擬消化實驗,分別在0、0.5、1、1.5 h后取樣進行測定。按照1:1(V/V)的比例像上述消化液中加入模擬腸液,調pH 值為6.8,然后分別在0.5、1、1.5 和2 h 后取樣進行測定。模擬胃腸道消化的總消化時間為3.5 h。累積CUR 釋放量通過以下公式計算:
式中:
C——T時刻混合溶液釋放的CUR 的濃度,mg/L;
V——T時刻混合溶液體積,mL;
M——復合物中所含CUR 的量,mg。
每個樣品至少測定3 次,以平均值±標準偏差表示,用SPSS 18.0 軟件進行顯著性分析,p<0.05 認為有顯著性差異。
Zein/CMCS 與CUR 的質量比對Zein/CMCS-CUR納米復合物的粒徑、Zeta 電位和多分散性指數(shù)(PDI)的影響如表1 所示。Zein/CMCS 納米復合物的粒徑為151.88 nm,Zein-CUR 復合物的粒徑為1 198.41 nm,而 Zein/CMCS-CUR 納米復合物的粒徑在98.66~106.03 nm 范圍內,明顯小于二元納米復合物的粒徑。三元納米復合物粒徑較小可能是由于Zein、CMCS、CUR 之間的相互作用使Zein/CMCS-CUR 納米復合物被緊密地結合在一起。隨著CUR 的濃度的增加,三元納米復合物(Zein/CMCS-CUR30:1)的粒徑由98.66 nm增加到106.03 nm,這可能是因為體系中過多的CUR超出了Zein/CMCS 復合物對CUR 的負荷能力,導致了一部分不溶于水的CUR 附在納米復合物表面,從而使納米復合物的粒徑增加[23]。但由于CUR 的分子量較小,納米復合物的整體尺寸僅略有增加。另外,從表1可以看出,所有樣品測得的PDI 值均較低,說明Zein/CMCS-CUR 納米復合物在溶液中分布非常均勻。
表1 Zein、Zein-CMCS、Zein-CUR 和Zein/CMCS-CUR 復合物的粒徑、電位、包封率和負載量Table 1 The particle size,Zeta potential,EE and LC of Zein,Zein-CMCS,Zein-CUR and Zein/CMCS-CUR nanoparticles
如表1 所示,Zein/CMCS 納米復合物的Zeta 電位為-30.30 mV。當Zein/CMCS 與CUR 的比值從30:1 降低到5:1 時,其電勢從-18.20 mV 變化到-24.70 mV,這是因為CUR 濃度的增加會加強CUR 與Zein 的疏水相互作用,使得包載在納米復合物的姜黃素增多,從而引起電位的變化。由表1 可知含有不同濃度姜黃素的Zein/CMCS-CUR 納米復合物包封率差異不明顯,只有樣品Zein/CMCS-CUR30:1的包封率低于90%。但從納米復合物的穩(wěn)定性考慮,選擇粒徑最小、包封率較高的Zein/CMCS-CUR10:1為最優(yōu)比例。
紅外光譜中,3 200~3 400 cm-1的波段是由O-H 伸縮振動引起的。從圖1 可以看出,Zein 的特征峰為3 413 cm-1,Zein/CMCS 和Zein/CMCS-CUR10:1的特征峰分別移到3 415 cm-1和3 423 cm-1,表明Zein、CMCS和CUR 之間發(fā)生了氫鍵相互作用[24]。Zein 的酰胺I 帶和酰胺II 帶分別位于1 654 cm-1和1 535 cm-1處,當形成Zein/CMCS 復合物后,特征峰分別移動到1 652 cm-1和1 546 cm-1處;形成Zein/CMCS-CUR10:1納米復合物后,特征峰分別移動到1 653 cm-1和1 541 cm-1處,這表明Zein、CUR 和CMCS 之間發(fā)生了一定程度的靜電相互作用[25];以前的研究結果表明Zein 與CUR 之間存在疏水相互作用,因此疏水作用是生成Zein/CMCS-CUR 納米復合物的另外一個驅動力[26,27]。綜上所述,氫鍵、靜電和疏水相互作用是納米復合物形成的驅動力。
圖1 Zein、CMCS、Zein-CUR 和Zein/CMCS-CUR 樣品的紅外光譜圖Fig.1 Infrared spectra of Zein CMCS,Zein-CMCS,Zein-CUR,CMCS-CUR and Zein/CMCS-CUR samples
CUR 的特征吸收峰則分別位于3 508、1 031、1 279、1 511 和1 599 cm-1處,其中3 508 cm-1特征吸收峰由酚羥基的拉伸振動引起,但是在圖中Zein/CMCS-CUR10:1納米復合物中未觀察到這些峰[28]。Zhang 等[29]也觀察到了類似的結果,CUR 經Zein 和巖藻多糖包埋以后特征峰消失。這是因為CUR 與蛋白和多糖發(fā)生氫鍵或疏水作用后,限制了CUR 中化學鍵的拉伸和彎曲,導致納米復合物中CUR 的大多數(shù)特征峰消失,表明CUR 已成功包封在納米復合物中。
如圖2 顯示,Zein、CMCS 分別在95.2 ℃和122.9 ℃處出現(xiàn)特征吸熱峰,是樣品中結合水蒸發(fā)時的能量吸收所致。CUR 在179.2 ℃處出現(xiàn)一個明顯的吸熱峰,與Cai 等[30]獲得的結果相似(184 ℃),這是由CUR晶體熔化引起的。對于Zein、CMCS 和CUR 的物理混合物,由于物理混合物中姜黃素含量僅為10 wt%,稀釋效應導致吸熱峰強度急劇降低,并向低溫方向移動,因此三者的物理混合物吸熱峰出現(xiàn)在129.3 ℃。而DSC 圖顯示了Zein-CUR、Zein/CMCS-CUR10:1納米復合物的吸熱峰對應的溫度為72.7 ℃、101.8 ℃,在其曲線中未觀察到CUR 的吸熱峰,這意味著CUR 以非晶態(tài)封裝在納米復合物中[31],并不是單純的物理混合。而CMCS的加入,使得 Zein-CUR 的吸熱峰 72.7 ℃升至Zein/CMCS-CUR10:1時的101.8 ℃。Dai 等[32]的研究中也有類似的結果,加入卵磷脂后增強了納米復合物中不同組分之間的疏水作用和靜電相互作用,導致吸熱峰溫度高,從而增加了蛋白質的熱穩(wěn)定性。
圖2 Zein,CMCS,CUR,Zein-CUR,Zein/CMCS-CUR10:1物理混合物和Zein/CMCS-CUR10:1樣品的DSC 圖Fig.2 DSC plots of Zein,CMCS,CUR,Zein-CUR,Zein/CMCS-CUR10:1 physical mixtures and Zein/CMCS-CUR10:1 samples
XRD 可用于檢測姜黃素的結晶狀態(tài)。如圖3 所示,Zein 的衍射角在10.1°和21.9°附近時,在XRD 圖譜中可以觀察到兩個寬峰。CMCS 在21.4°附近也出現(xiàn)一個寬峰。這些結果表明Zein 和CMCS 以無定型形式存在,純CUR 特征晶體吸收峰主要分布在2θ=7.7°、17.3°和25.1°處,顯示出具有尖銳特征衍射峰的結晶狀態(tài),這一結果與Ren 等[33]的研究相一致。當用Zein 對CUR進行封裝以后,Zein-CUR 顯示出相對平坦的圖像,沒有明顯的姜黃素衍射峰。而這種現(xiàn)象在Zein/CMCS-CUR10:1中表現(xiàn)更加明顯,表明姜黃素從結晶狀態(tài)轉變?yōu)榉蔷B(tài),并很好地封裝在Zein/CMCS 納米復合物中[34]。
圖3 Zein,CMCS,Zein/CMCS,CUR,Zein-CUR 和Zein/CMCS-CUR10:1樣品的XRD 圖Fig.3 XRD patterns of Zein,CMCS,Zein/CMCS,CUR,Zein-CUR and Zein/CMCS-CUR10:1 samples
圖4 的透射電鏡測量中可以觀察到Zein 為光滑的球形,大概粒徑在80~100 nm 左右。Zein/CMCS-CUR10:1納米復合物呈球形,大多數(shù)顆粒的粒徑范圍為100~200 nm,這與粒徑結果一致。粒徑的增加可能是由于CMCS 的表面吸附導致的,Meng 等[34]利用玉米醇溶蛋白和羧甲基葡聚糖包載姜黃素的研究中也有類似的結果。從圖像中可以觀察到Zein-CUR 體系的分散性較差,存在粒子聚集的現(xiàn)象。粒子聚集可能是由蛋白自身的團聚和小分子物質的姜黃素附著在蛋白上造成的。而Zein/CMCS-CUR10:1呈現(xiàn)出均勻、穩(wěn)定的狀態(tài),可能是CMCS 和Zein 之間存在的靜電相互作用形成了穩(wěn)定的復合物,從而阻止了蛋白的聚集。
通過掃描電鏡對Zein、CMCS、Zein-CUR 和Zein/CMCS-CUR10:1的微觀結構進行了表征,結果如圖5 所示。Zein 呈球形,分布較均勻[34],CMCS 呈薄片狀,而Zein-CUR 的圖像顯示其表面較為粗糙且多為聚集狀態(tài),可能是多余的CUR 通過疏水作用附著在Zein的表面,這從圖4 的Zein-CUR 體系中也可以觀察到。而加入CMCS 后,Zein/CMCS-CUR10:1納米復合物表面變得光滑,這可能是因為CMCS 通過與蛋白作用,從而防止了蛋白聚集,形成了較均勻的納米復合物,這與TEM 中的結論一致。此外,SEM 樣品需要經過冷凍干燥處理,而TEM 樣品經稀釋后直接制樣,制備方法存在不同,因而觀察到的樣品微觀形貌也存在差異。
圖4 Zein,CMCS,Zein-CUR 和Zein/CMCS-CUR 的TEM 圖像Fig.4 TEM images of Zein,CMCS,Zein-CUR and Zein/CMCS-CUR10:1
圖5 Zein,CMCS,Zein-CUR 和Zein/CMCS-CUR10:1的SEM 圖像Fig.5 SEM images of Zein,CMCS,Zein-CUR and Zein/CMCS-CUR10:1
圖6 為不同處理條件下CUR 的抗氧化活性。如圖所示,CUR、Zein-CUR、Zein/CMCS-CUR10:1的DPPH自由基清除能力分別為55.62%、65.50%和87.12%。Zein-CUR 和DPPH 自由基清除活性高于水中游離的CUR,說明疏水性蛋白Zein 能使CUR 更好地分散在水中。此外,Zein/CMCS-CUR10:1納米復合物比Zein-CUR復合物表現(xiàn)出更強的自由基清除能力,可能是Zein/CMCS復合物使CUR的共軛二烯結構更容易電離出氫質子與DPPH 反應,從而增強了Zein/CMCS-CUR10:1納米復合物的自由基清除能力[36]。Zein/CMCS-CUR10:1納米復合物在ABTS 測定中也表現(xiàn)出最強的自由基清除能力(84.41%)。這些結果表明,在Zein/CMCS 中封裝CUR 是增強其抗氧化能力的有效途徑。
圖6 CUR,CMCS-CUR,Zein-CUR 和Zein/CMCS-CUR10:1的抗氧化活性Fig.6 Antioxidant activity of CUR,CMCS-CUR,Zein-CUR and Zein/CMCS-CUR10:1
如圖7 所示,將CUR 分別包載在Zein 和Zein/CMCS 中,經胃液消化1.5 h 后釋放率分別為26.42%和11.17%,表明Zein/CMCS 復合物在胃液中對CUR 有保護作用,在連續(xù)消化3.5 h 后,Zein-CUR 和Zein/CMCS-CUR10:1中CUR 的釋放率分別為50.41%和65.28%。實驗結果表明Zein/CMCS 有保護CUR 的作用,有利于CUR 在腸道內的釋放。胃蛋白酶通過剪切蛋白質中的疏水氨基酸的肽鍵使蛋白質結構發(fā)生改變,而蛋白質和多糖復合物可保護蛋白質的疏水氨基酸,減少蛋白質損壞。Zein 的疏水內核中包載了大部分的姜黃素,在模擬胃液下,Zein/CMCS-CUR10:1納米復合物阻礙了胃蛋白酶對CUR 的消化,只有少量的CUR 被釋放。當Zein/CMCS-CUR10:1納米復合物轉移到模擬腸液中時,環(huán)境的pH 的改變致使Zein 與CMCS的相互作用減弱,此時,胰蛋白酶將蛋白質結構破壞,CUR 得以釋放。Huang 等[37]研究表明經溶菌酶-κ-卡拉膠復合物包埋的姜黃素在模擬胃液中的釋放率為17.91%,在模擬腸液中前1.5 h 內可以快速釋放出姜黃素,釋放率達到62.56%。因此溶菌酶-κ-卡拉膠復合物可以為姜黃素在模擬胃液中提供屏障和保護作用,而在模擬腸液中快速釋放出姜黃素。Xue 等[38]的研究結果表明玉米醇溶蛋白-鼠李糖復合體系在胃液中對CUR 有保護作用,當樣品從胃液轉移到腸液時,CUR能夠快速釋放可能是由于涂覆在納米顆粒表面的鼠李糖的溶解,致使玉米醇溶-鼠李糖體系對CUR 的保護減弱而造成的。其他學者也有相似的報道[39,40]。
圖7 CUR 在模擬胃液和腸液中的累計釋放率Fig.7 Cumulative release rate of CUR in simulated gastric and intestinal fluids
本文以玉米醇溶蛋白和羧甲基殼聚糖為壁材,制備了Zein/CMCS-CUR 納米復合物,考察了Zein/CMCS 與CUR 的質量比對粒徑和包封率的影響,分析了CUR 在模擬胃腸道消化的釋放行為。當Zein/CMCS 與CUR 的比例為10:1 時制備的納米復合物粒徑較小(95.37 nm),其zeta 電位為-21.70 mV,包封率和負載量分別為96.63%和4.55%。微觀形貌觀察發(fā)現(xiàn)Zein-CUR 體系呈現(xiàn)表面粗糙且多為聚集的狀態(tài),而Zein/CMCS-CUR 納米復合物呈光滑的球形,且分布均勻。進一步研究Zein、CMCS、CUR 三者之間的相互作用,發(fā)現(xiàn)靜電相互作用和氫鍵是組裝該納米復合物的主要驅動力。與游離的姜黃素相比,納米復合物包載的姜黃素具有更強的DPPH 自由基清除能力和ABTS 自由基清除能力。納米復合物的體外緩釋實驗也顯示了Zein/CMCS有保護CUR 的作用,有利于CUR 在腸道內的釋放?;谝陨蠈嶒灲Y果,本研究制備的負載姜黃素的納米復合物具有應用于功能性食品和藥物等領域的潛力。