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CP-25調(diào)控巨噬細(xì)胞來(lái)源的外泌體分泌對(duì)子宮內(nèi)膜癌Ishikawa細(xì)胞系自噬性細(xì)胞死亡的影響①

2023-03-17 04:53鄭小妹林葉飛張韶瓊陳曼玲海南醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院婦科???/span>570100
中國(guó)免疫學(xué)雜志 2023年2期
關(guān)鍵詞:共培養(yǎng)外泌體染色

鄭小妹 林葉飛 張韶瓊 楊 潔 陳曼玲 (海南醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院婦科,???570100)

子宮內(nèi)膜癌(endometrial cancer,EC)是我國(guó)婦科惡性腫瘤的常見(jiàn)類型,其發(fā)病率已位居?jì)D科惡性腫瘤第二位。EC主要發(fā)生于絕經(jīng)后婦女人群,僅有約7%的患者為20~44 歲,然而,近年來(lái)其在年輕女性中發(fā)生率逐漸升高[1-2]。盡管多數(shù)患者可在疾病早期診斷出,但仍有部分惡性程度高、發(fā)生轉(zhuǎn)移性或復(fù)發(fā)性疾病的患者預(yù)后較差,甚至引發(fā)死亡[3]。EC 的傳統(tǒng)治療方法包括外科治療、免疫療法、放射療法及化學(xué)療法,其中一些療法不可避免地對(duì)人體造成損害并產(chǎn)生毒副作用。因此,在正常人體功能范圍內(nèi)尋找一種新型有效的治療方法對(duì)于EC 患者至關(guān)重要。

巨噬細(xì)胞作為腫瘤微環(huán)境的重要組成部分,參與腫瘤的生長(zhǎng)、轉(zhuǎn)移及血管生成等過(guò)程。外泌體(exosome,Exo)是由包括巨噬細(xì)胞在內(nèi)的多種細(xì)胞分泌的膜性囊泡,直徑為50~100 nm,參與許多細(xì)胞行為,能夠?qū)崿F(xiàn)細(xì)胞與細(xì)胞間的信息交換過(guò)程,通過(guò)與靶細(xì)胞融合并釋放信號(hào)分子來(lái)介導(dǎo)表觀遺傳或非表觀遺傳機(jī)制,以調(diào)節(jié)基因表達(dá)從而影響腫瘤細(xì)胞的表型轉(zhuǎn)化[4-5]。芍藥苷-6'-O-苯磺酸酯(paeoniflorin-6'-O-benzene sulfonate,CP-25)是一種酯化修飾合成的藥物,屬于芍藥苷的新型衍生物,具有抗炎、抗腫瘤和免疫調(diào)節(jié)作用,但相關(guān)作用機(jī)制研究較少[6]。本研究從巨噬細(xì)胞來(lái)源的外泌體著手,研究其對(duì)EC Ishikawa 細(xì)胞活性與轉(zhuǎn)移的影響,并檢測(cè)CP-25 干預(yù)巨噬細(xì)胞來(lái)源的外泌體后對(duì)Ishikawa 細(xì)胞的作用及機(jī)制,為EC的診治研究提供新思路。

1 材料與方法

1.1 材料 人單核細(xì)胞株THP-1 和人EC 細(xì)胞系Ishikawa(中國(guó)科學(xué)院典型培養(yǎng)物保藏委員會(huì)細(xì)胞庫(kù));CP-25(安徽臨床藥理研究所);胎牛血清(杭州四季青公司);胰蛋白酶、青霉素、鏈霉素、RPIM1640培養(yǎng)基及DMEM 培養(yǎng)基(Hyclone 公司);佛波酯(PMA,Sigma公司);BCA蛋白檢測(cè)試劑盒、ECL試劑液和結(jié)晶紫染液(上海碧云天生物研究所);Transwell 小室(Corning 公司);CCK-8 試劑盒、Hoechst 33342 染色試劑盒、免疫熒光染色試劑盒(南京諾唯贊生物公司);Matrigel 膠和Annexin V-FITC/PI 細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒(BD公司);CD9、CD63、Alix、LC3-Ⅱ、LC3-Ⅰ、Beclin-1 及P62 抗體(Abcam 公司);GAPDH和辣根過(guò)氧化物酶(HRP)標(biāo)記的山羊抗兔抗體(北京中杉金橋公司);其他試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

1.2 方法

1.2.1 THP-1 巨噬細(xì)胞的培養(yǎng)與誘導(dǎo) 在THP-1細(xì)胞中加入含10%胎牛血清、1%青-鏈霉素的RPIM1640 培養(yǎng)基,培養(yǎng)于37 ℃、5%CO2恒溫箱,消化傳代。取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的細(xì)胞,調(diào)整密度為 1×106個(gè)/ml,接種于無(wú)菌培養(yǎng)皿(直徑10 cm),加入含終濃度為100 ng/ml PMA 的RPMI1640 培養(yǎng)液,繼續(xù)誘導(dǎo)培養(yǎng)48 h。

1.2.2 外泌體的分離與鑒定 使用PBS 洗滌誘導(dǎo)后的巨噬細(xì)胞,加入無(wú)血清DMEM 培養(yǎng)基,置于37 ℃、5%CO2恒溫箱培養(yǎng)48 h 后,在低溫離心機(jī)中依次以300 g 離心15 min,留取上清液;2 000 g 離心15 min,留取上清液;10 000 g 離心30 min,留取上清液;再以100 000 g 離心1.5 h,棄上清液,加入PBS重懸沉淀,通過(guò)0.22 μmol/L 過(guò)濾器過(guò)濾,再次離心后獲得外泌體懸液。透射電子顯微鏡觀察外泌體形態(tài),NTA 測(cè)量直徑,Western blot 實(shí)驗(yàn)檢測(cè)外泌體標(biāo)志蛋白CD9、CD63、Alix表達(dá)。

1.2.3 Western blot 在外泌體或細(xì)胞中加入RIPA裂解液,冰上裂解30 min,抽提總蛋白,BCA 法檢測(cè)蛋白濃度。制備10%SDS-PAGE 膠,取各樣本等量蛋白上樣后進(jìn)行凝膠電泳分離蛋白,以90 min、恒流200 mA 電轉(zhuǎn)至PVDF 膜;5%脫脂奶粉室溫封閉 1 h,膜上滴加稀釋的兔抗人Alix、CD9、CD63、LC3-Ⅱ、LC3-Ⅰ、Beclin-1、P62 抗體,4 ℃孵育過(guò)夜;第2 天,TBST 溶液洗膜,滴加稀釋的HRP 標(biāo)記的山羊抗兔抗體置于搖床,室溫繼續(xù)孵育1 h;結(jié)束后,TBST 溶液再次洗膜,ECL試劑液顯色,凝膠成像系統(tǒng)采集圖像,觀察各蛋白表達(dá)情況,其中自噬相關(guān)蛋白檢測(cè)以GAPDH 為內(nèi)參,Image J 圖像軟件分析蛋白灰度值,以目的蛋白灰度值與內(nèi)參蛋白灰度值的比值作為目的蛋白相對(duì)表達(dá)量。

1.2.4 CP-25干預(yù)外泌體 在Ishikawa細(xì)胞中添加含10%胎牛血清、1%青-鏈霉素的DMEM 培養(yǎng)液,置于37 ℃、5%CO2恒溫箱內(nèi)培養(yǎng),消化傳代,收集對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞,將其濃度調(diào)整為1×107個(gè)/ml,取 100 μl接種于96孔板,并隨機(jī)分為5組,分別按照以下方法進(jìn)行處理:①對(duì)照組:正常培養(yǎng)Ishikawa 細(xì)胞;②Exo 組:使用外泌體與Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng) 24 h;③0.1 μmol/L CP-25+Exo 組:使用0.1 μmol/L CP-25 干預(yù)的外泌體與Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng)24 h; ④0.5 μmol/L CP-25+Exo組:使用0.5 μmol/L CP-25干預(yù)的外泌體與Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng)24 h;⑤1 μmol/L CP-25+Exo組:使用1 μmol/L CP-25干預(yù)的外泌體與Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng)24 h。置于37 ℃、5%CO2恒溫箱內(nèi),處理結(jié)束后,收集Ishikawa 細(xì)胞,進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

1.2.5 CCK-8 法檢測(cè)細(xì)胞活性 調(diào)整各處理組Ishikawa 細(xì)胞密度,以1×103個(gè)/孔接種于96 孔板,使用含10%胎牛血清和1%青-鏈霉素的DMEM培養(yǎng)液,并置于37 ℃、5%CO2恒溫箱內(nèi)培養(yǎng)細(xì)胞,采用CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞活性,CCK-8 是一種基于WST-8 的細(xì)胞增殖檢測(cè)試劑,原理是在電子載體1-甲氧基-5-甲基吩嗪鎓硫酸二甲酯(1-methoxy PMS)存在的情況下,能夠被線粒體中的脫氫酶還原為具有高度水溶性的橙黃色甲瓚產(chǎn)物,顏色深淺與細(xì)胞增殖成正比。每組設(shè)5 個(gè)復(fù)孔,分別在培養(yǎng)24 h、48 h、72 h,每孔加入10 μl CCK-8 試劑,混合均勻,置于培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)4 h,全自動(dòng)酶標(biāo)儀檢測(cè)450 nm 處各孔細(xì)胞的吸光度(OD)值。

1.2.6 Transwell 實(shí)驗(yàn) 將50 μl 稀釋的Matrigel 膠包被于24 孔Transwell 小室上室底部,置于37 ℃恒溫箱使膠凝固。將各處理組Ishikawa 細(xì)胞密度調(diào)整為2×104個(gè)/ml,取200 μl 細(xì)胞懸液加入包被Matrigel膠的Transwell 小室上室,下室加入600 μl 含10%胎牛血清新鮮培養(yǎng)液,在37 ℃、5%CO2恒溫箱培養(yǎng) 24 h,取出小室,棄培養(yǎng)液,擦去上室細(xì)胞,加入4%多聚甲醛固定30 min,0.1%結(jié)晶紫染色,PBS 清洗干凈,光學(xué)顯微鏡下觀察并拍攝圖像,隨機(jī)選擇5個(gè)視野計(jì)數(shù)取其平均數(shù),結(jié)果記為細(xì)胞侵襲數(shù)目。Transwell 檢測(cè)細(xì)胞遷移中除不鋪Matrigel 膠外,其他步驟均與侵襲步驟一致。

1.2.7 Hoechst 33342 染色 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的Ishikawa細(xì)胞,將濃度調(diào)整為1×107個(gè)/ml,取100 μl接種于96 孔板,隨機(jī)分為4 組,分別按照以下方法處理:①對(duì)照組:正常培養(yǎng)Ishikawa 細(xì)胞;②3-MA 組:使用5 mmol/L 3-MA 處理Ishikawa細(xì)胞24 h;③Exo-CP-25組:使用0.5 μmol/L CP-25干預(yù)的外泌體與Ishikawa細(xì)胞共培養(yǎng)24 h;④3-MA+Exo-CP-25組:使用5 mmol/L 3-MA處理Ishikawa細(xì)胞24 h,再用0.5 μmol/L CP-25干預(yù)的外泌體與Ishikawa細(xì)胞共培養(yǎng)24 h。

收集各處理組Ishikawa 細(xì)胞,4%多聚甲醛固定,滴加0.5%Triton X-100 透化15 min,PBS 洗滌細(xì)胞,滴加終濃度5 mg/L 的Hoechst 33342 染色,避光條件下室溫孵育30 min,PBS 再次洗滌細(xì)胞,脫水,封片并干燥,熒光顯微鏡觀察并拍攝圖像。

1.2.8 流式細(xì)胞術(shù) Ishikawa細(xì)胞按照1.2.7進(jìn)行分組處理后,0.25%胰蛋白酶消化,PBS 洗滌細(xì)胞,以4 000 r/min 離心10 min,棄上清液,使用染色緩沖液1×binding buffer 重懸細(xì)胞,制備細(xì)胞密度為 1×106個(gè)/ml 的單細(xì)胞懸液,在無(wú)菌離心管內(nèi)加入 100 μl 單細(xì)胞懸液,分別依次加入10 μl Annexin V-FITC與5 μl PI,混勻,避光條件下室溫孵育15 min,在1 h 內(nèi)通過(guò)流式細(xì)胞儀檢測(cè)各處理組細(xì)胞凋亡比例。

1.2.9 透射電子顯微鏡檢測(cè) Ishikawa 細(xì)胞按照1.2.7 進(jìn)行分組處理后,PBS 洗滌細(xì)胞,以預(yù)冷的戊二醛固定過(guò)夜,再固定在四氧化鋨中,不同濃度梯度丙酮脫水,使用四乙酸鈾和檸檬酸三水合物進(jìn)行雙重染色,包埋,于Zeiss 910 透射電子顯微鏡下觀察各處理組細(xì)胞中自噬體形態(tài)。

1.2.10 免疫熒光染色 Ishikawa 細(xì)胞按照1.2.7進(jìn)行分組處理后,收集各處理組細(xì)胞,PBS 洗滌,使用4%多聚甲醛固定30 min,自來(lái)水沖洗去除殘留固定液,滴加0.5%TritonX-100 透膜處理15 min,再用10%山羊血清室溫封閉2 h后,滴加稀釋的兔抗人LC3B 抗體,4 ℃孵育過(guò)夜;第2 天,棄去一抗液,PBS洗滌干凈,滴加對(duì)應(yīng)熒光二抗,避光條件下室溫 孵育1 h,洗去未結(jié)合的二抗,滴加DAPI 室溫染色10 min,PBS 再次洗滌,封片并干燥,熒光顯微鏡下觀察熒光表達(dá),Image J圖像軟件分析熒光強(qiáng)度。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS23.0統(tǒng)計(jì)軟件對(duì)本研究數(shù)據(jù)進(jìn)行分析處理,計(jì)量資料均采用±s表示,多樣本比較采用單因素方差分析,組間樣本比較采用t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 外泌體的鑒定 利用透射電子顯微鏡觀察巨噬細(xì)胞提取物,可見(jiàn)其外形呈杯狀或球形,邊緣膜狀,測(cè)量其直徑約為120 nm(圖1A)。Western blot檢測(cè)發(fā)現(xiàn),外泌體標(biāo)志蛋白Alix、CD9、CD63 均表達(dá)為陽(yáng)性(圖1B),表明分離的納米顆粒為外泌體。

圖1 分離的外泌體觀察與鑒定Fig.1 Observation and identification of isolated exosomes

2.2 CP-25干預(yù)巨噬細(xì)胞外泌體對(duì)Ishikawa細(xì)胞活性的影響 CCK-8檢測(cè)結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,與巨噬細(xì)胞外泌體共培養(yǎng)24 h、48 h、72 h 后,Ishikawa細(xì)胞活性顯著提高(P<0.05);而使用0.1、0.5、 1.0 μmol/L CP-25干預(yù)巨噬細(xì)胞外泌體再與Ishikawa細(xì)胞共培養(yǎng)24 h、48 h、72 h 后,Ishikawa 細(xì)胞活性均明顯降低(P<0.05),見(jiàn)表1。

表1 各處理組Ishikawa細(xì)胞不同時(shí)間點(diǎn)吸光度值比較(±s)Tab.1 Comparison of absorbance values of Ishikawa cells at different time points in each treatment group (±s)

表1 各處理組Ishikawa細(xì)胞不同時(shí)間點(diǎn)吸光度值比較(±s)Tab.1 Comparison of absorbance values of Ishikawa cells at different time points in each treatment group (±s)

Note: Compared with control group, 1)P<0.05; compared with Exo group, 2)P<0.05.

2.3 CP-25干預(yù)巨噬細(xì)胞外泌體對(duì)Ishikawa細(xì)胞轉(zhuǎn)移的影響 Transwell 實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,與巨噬細(xì)胞外泌體共培養(yǎng)的Ishikawa 細(xì)胞,其遷移細(xì)胞數(shù)與侵襲細(xì)胞數(shù)均顯著高于對(duì)照組(P<0.01);而經(jīng)0.1、0.5、1.0 μmol/L CP-25干預(yù)巨噬細(xì)胞外泌體再與Ishikawa細(xì)胞共培養(yǎng)后,與巨噬細(xì)胞外泌體共培養(yǎng)的Ishikawa細(xì)胞相比,各處理組Ishikawa 細(xì)胞的遷移細(xì)胞數(shù)與侵襲細(xì)胞數(shù)均顯著減少(P<0.01),見(jiàn)圖2。

圖2 Transwell 小室實(shí)驗(yàn)檢測(cè)各處理組Ishikawa 細(xì)胞遷移與侵襲能力Fig.2 Transwell chamber experiment to detect migration and invasion ability of Ishikawa cells in each treatment group

2.4 CP-25干預(yù)巨噬細(xì)胞外泌體對(duì)Ishikawa細(xì)胞凋亡的影響 通過(guò)Hoechst 33342 染色從形態(tài)上觀察各處理組Ishikawa 細(xì)胞的凋亡情況,可見(jiàn)對(duì)照組細(xì)胞偶見(jiàn)核濃縮;3-MA處理的細(xì)胞核外圍輪廓較為清晰,未見(jiàn)明顯核濃縮;0.5 μmol/L CP-25 干預(yù)的外泌體與Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng)的細(xì)胞中有較多濃縮、碎裂的藍(lán)色凋亡體;而經(jīng)5 mmol/L 3-MA 處理Ishikawa細(xì)胞再用0.5 μmol/L CP-25干預(yù)的外泌體與Ishikawa細(xì)胞共培養(yǎng)后,細(xì)胞核濃縮與碎裂的現(xiàn)象明顯減少,見(jiàn)圖3。

圖3 Hoechst 33342 染色觀察各處理組Ishikawa 細(xì)胞凋亡(×100)Fig.3 Hoechst 33342 staining to observe apoptosis of Ishikawa cells in each treatment group (×100)

流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,經(jīng)3-MA處理的Ishikawa 細(xì)胞凋亡率顯著降低,0.5 μmol/L CP-25 干預(yù)的外泌體與Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng)后細(xì)胞凋亡率顯著提高(P<0.01);而相較于0.5 μmol/L CP-25 干預(yù)的外泌體與Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng)組, 5 mmol/L 3-MA 處理Ishikawa 細(xì)胞再用0.5 μmol/L CP-25干預(yù)的外泌體與Ishikawa細(xì)胞共培養(yǎng)后,細(xì)胞凋亡率顯著降低(P<0.01),見(jiàn)圖4。

圖4 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)各處理組Ishikawa細(xì)胞凋亡Fig.4 Flow cytometry detection of Ishikawa cell apoptosis in each treatment group

2.5 CP-25干預(yù)巨噬細(xì)胞外泌體對(duì)Ishikawa細(xì)胞自噬的影響 通過(guò)免疫熒光染色觀察Ishikawa 細(xì)胞中綠色熒光表達(dá),與對(duì)照組相比,3-MA 處理的細(xì)胞中綠色熒光表達(dá)明顯減弱,LC-3 表達(dá)強(qiáng)度顯著降低,而0.5 μmol/L CP-25 干預(yù)的外泌體與Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng)后的細(xì)胞中綠色熒光表達(dá)明顯增強(qiáng),LC-3 表達(dá)強(qiáng)度則顯著提高(P<0.01);5 mmol/L 3-MA 處理Ishikawa 細(xì)胞后再用0.5 μmol/L CP-25 干預(yù)的外泌體與Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng)后,細(xì)胞中綠色熒光表達(dá)明顯減弱,LC-3表達(dá)強(qiáng)度顯著降低(P<0.01),見(jiàn)圖5。

圖5 免疫熒光染色檢測(cè)各處理組Ishikawa細(xì)胞自噬標(biāo)志物L(fēng)C3表達(dá)(×200)Fig.5 Immunofluorescence staining to detect expression of autophagy marker LC3 in Ishikawa cells of each treatment group (×200)

透射電子顯微鏡觀察到對(duì)照組細(xì)胞偶見(jiàn)自噬體,3-MA 處理的Ishikawa 細(xì)胞未觀察到自噬體, 0.5 μmol/L CP-25 干預(yù)的外泌體與Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng)后的細(xì)胞質(zhì)中可見(jiàn)多個(gè)由單層膜或雙層膜組成的自噬體,5 mmol/L 3-MA 處理Ishikawa 細(xì)胞再用0.5 μmol/L CP-25 干預(yù)的外泌體與Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng)后的細(xì)胞中自噬體較少,見(jiàn)圖6。

圖6 透射電子顯微鏡觀察自噬體(×10 000)Fig.6 Observation of autophagosomes by transmission electron microscope (×10 000)

Western blot檢測(cè)結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,3-MA處理的Ishikawa細(xì)胞中LC3-Ⅱ、Beclin-1蛋白表達(dá)減少,P62 蛋白表達(dá)增多,LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ顯著下調(diào),而0.5 μmol/L CP-25 干預(yù)的外泌體與Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng)后的細(xì)胞中LC3-Ⅱ、Beclin-1 蛋白表達(dá)增加,P62 蛋白表達(dá)減少,LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ顯著上調(diào)(P<0.01);與0.5 μmol/L CP-25干預(yù)的外泌體與Ishikawa細(xì)胞共培養(yǎng)細(xì)胞相比,5 mmol/L 3-MA 處理Ishikawa細(xì)胞后再用0.5 μmol/L CP-25 干預(yù)的外泌體與Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng)的細(xì)胞中LC3-Ⅱ、Beclin-1 蛋白表達(dá)減少,P62 蛋白表達(dá)增多,LC3-Ⅱ/LC3-Ⅰ顯著下調(diào)(P<0.01),見(jiàn)圖7。

圖7 Western blot 檢測(cè)各處理組Ishikawa 細(xì)胞自噬相關(guān) 蛋白表達(dá)Fig.7 Western blot detection of autophagy-related proteins expressions of Ishikawa cells in each treatment group

3 討論

目前,EC已成為多個(gè)國(guó)家和地區(qū)主要的婦科惡性腫瘤疾病之一,其發(fā)病率和病死率呈不斷上升趨勢(shì),給患者和社會(huì)造成了越來(lái)越高的醫(yī)療負(fù)擔(dān)。與EC發(fā)生相關(guān)的因素包括雌激素抵抗、飲食、肥胖、代謝紊亂和子宮內(nèi)膜增生等,其發(fā)病機(jī)制非常復(fù)雜,目前尚不完全清楚[2]。盡管各項(xiàng)治療手段技術(shù)取得了一定的進(jìn)步,但在各種臨床試驗(yàn)中觀察到了低應(yīng)答率或不良反應(yīng)等現(xiàn)象,例如免疫療法的應(yīng)答率僅為13%[7]。迄今為止,尚無(wú)針對(duì)轉(zhuǎn)移或復(fù)發(fā)性EC 患者的精準(zhǔn)治療方法。

在既往研究中,CP-25 顯示出良好的抗炎和免疫調(diào)節(jié)活性,例如,CP-25 通過(guò)減少滑膜炎癥和抑制炎癥反應(yīng)明顯抑制了小鼠自身免疫性關(guān)節(jié)炎進(jìn)展,該作用與其對(duì)免疫細(xì)胞(T細(xì)胞、B細(xì)胞、樹(shù)突狀細(xì)胞等)的功能調(diào)節(jié)及免疫細(xì)胞和G 蛋白偶聯(lián)受體介導(dǎo)的細(xì)胞信號(hào)通路的相互作用密切相關(guān)[8-9];CP-25 通過(guò)抑制JAK1-STAT1/2-CXCL13 信號(hào)途徑并干擾 B 細(xì)胞向唾液腺的遷移來(lái)緩解抗原誘導(dǎo)的小鼠實(shí)驗(yàn)性干燥綜合征[10];CP-25 對(duì)甲氨蝶呤誘導(dǎo)的大鼠腎毒性具有良好的保護(hù)作用,這種作用通過(guò)抗腎細(xì)胞凋亡和排毒特性實(shí)現(xiàn)[11]。此外,關(guān)于CP-25 在腫瘤中的作用研究也在逐步開(kāi)展。然而,關(guān)于CP-25 是否具有抗EC 的作用尚未見(jiàn)文獻(xiàn)報(bào)道,值得進(jìn)行相關(guān)實(shí)驗(yàn)探究。

外泌體是大多數(shù)細(xì)胞類型分泌的膜囊泡,已確定其在腫瘤生物學(xué)、免疫學(xué)、神經(jīng)生物學(xué)等領(lǐng)域的細(xì)胞間通訊中發(fā)揮重要作用。其不同特征和功能主要取決于來(lái)源的細(xì)胞類型,其中一些細(xì)胞特定的生物活性脂質(zhì)、蛋白質(zhì)和遺傳物質(zhì)被包裝在外泌體中。其中,腫瘤細(xì)胞來(lái)源的外泌體能夠促進(jìn)血管生成,重塑基質(zhì)并調(diào)節(jié)遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移[12]。此外,這還代表了一系列的免疫抑制機(jī)制。例如,腫瘤細(xì)胞來(lái)源的外泌體以誘導(dǎo)活化的細(xì)胞毒性T 細(xì)胞凋亡,促進(jìn)骨髓單核細(xì)胞的分化或關(guān)閉自然殺傷細(xì)胞的反應(yīng)[13]。由于不同環(huán)境中細(xì)胞的可塑性,巨噬細(xì)胞被認(rèn)為是一組異質(zhì)單核巨噬細(xì)胞譜系細(xì)胞,能夠根據(jù)不同的刺激表現(xiàn)出不同表型,活化的巨噬細(xì)胞通過(guò)增強(qiáng)的遷移、吞噬作用及抗原加工和呈遞對(duì)刺激做出反應(yīng),并分泌各種細(xì)胞因子,通過(guò)募集更多極化的巨噬細(xì)胞,以反饋的方式放大或減小炎癥信號(hào)。已有研究表明,巨噬細(xì)胞釋放的外泌體可被心肌組織中的心肌細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞等吸收[14]。巨噬細(xì)胞外泌體還在多種生理及病理?xiàng)l件下發(fā)揮重要作用,能夠促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的遷移、浸潤(rùn)和耐藥。近期研究發(fā)現(xiàn),巨噬細(xì)胞外泌體參與癌細(xì)胞代謝重編程,還可抑制特異性免疫細(xì)胞功能[15-16]。

本研究對(duì)分離的巨噬細(xì)胞來(lái)源外泌體進(jìn)行鑒定,發(fā)現(xiàn)其外形呈球形至杯形,直徑約為120 nm,外泌體標(biāo)志蛋白Alix、CD9、CD63 均呈陽(yáng)性表達(dá),以上結(jié)果均表明成功分離并得到巨噬細(xì)胞來(lái)源外泌體。經(jīng)檢測(cè)發(fā)現(xiàn),與巨噬細(xì)胞來(lái)源外泌體共培養(yǎng)的EC Ishikawa 細(xì)胞,其細(xì)胞活性與遷移侵襲能力均明顯提高。為進(jìn)一步探討CP-25是否能夠介導(dǎo)巨噬細(xì)胞來(lái)源的外泌體分泌影響EC Ishikawa 細(xì)胞,通過(guò)使用CP-25 干預(yù)巨噬細(xì)胞來(lái)源的外泌體并與EC Ishikawa細(xì)胞共培養(yǎng)后發(fā)現(xiàn),細(xì)胞增殖活性下降,同時(shí),細(xì)胞的遷移數(shù)與侵襲數(shù)均明顯減少。由此推測(cè),CP-25可能介導(dǎo)巨噬細(xì)胞來(lái)源外泌體的分泌從而調(diào)控EC Ishikawa細(xì)胞的生物學(xué)行為。

促進(jìn)腫瘤細(xì)胞死亡一直是腫瘤研究中的重點(diǎn)內(nèi)容,細(xì)胞死亡過(guò)程復(fù)雜,涉及一系列調(diào)控因子,且越來(lái)越多的證據(jù)表明,許多類型的癌癥都可發(fā)展為具有抗凋亡特性的細(xì)胞,例如各種化療藥物的使用使得腫瘤細(xì)胞產(chǎn)生化療抗性[17-18]。自噬是調(diào)節(jié)細(xì)胞穩(wěn)態(tài)的關(guān)鍵機(jī)制,通過(guò)觸發(fā)降解細(xì)胞質(zhì)大分子物質(zhì)或細(xì)胞器為自身提供能量,是細(xì)胞內(nèi)蛋白質(zhì)質(zhì)量控制系統(tǒng)的主要組成部分之一。過(guò)度自噬會(huì)誘導(dǎo)細(xì)胞死亡,且激發(fā)自噬死亡機(jī)制可使耐藥腫瘤細(xì)胞發(fā)生死亡,因此,以自噬作為細(xì)胞死亡發(fā)生機(jī)制是針對(duì)癌癥治療的一種反應(yīng)[19-20]。本研究結(jié)果顯示,經(jīng)CP-25 干預(yù)巨噬細(xì)胞來(lái)源的外泌體并與EC Ishikawa細(xì)胞共培養(yǎng)后,細(xì)胞凋亡增加,自噬水平也增加,由此推測(cè),CP-25 可能干預(yù)EC Ishikawa 細(xì)胞自噬性死亡。為了驗(yàn)證這一猜想,通過(guò)自噬抑制劑3-MA 處理Ishikawa 細(xì)胞,再用CP-25 干預(yù)巨噬細(xì)胞來(lái)源的外泌體與EC Ishikawa 細(xì)胞共培養(yǎng),結(jié)果發(fā)現(xiàn)細(xì)胞凋亡率降低,同時(shí)細(xì)胞自噬水平也降低。

綜上所述,本研究揭示了CP-25 干預(yù)巨噬細(xì)胞來(lái)源外泌體對(duì)EC Ishikawa 細(xì)胞的作用,可抑制Ishikawa 細(xì)胞的活性、遷移與侵襲,調(diào)控自噬性死亡過(guò)程,為EC 病理機(jī)制與治療的研究提供了新視角。但CP-25干預(yù)巨噬細(xì)胞來(lái)源外泌體中的潛在靶點(diǎn)分子有待進(jìn)一步深入探究,以期為EC 的診治提供新途徑。

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