毛銳,林 浩,劉 川,姚 靜,肖全偉,戴 琴
(成都市食品檢驗研究院,國家市場監(jiān)督管理總局重點實驗室(營養(yǎng)與健康化學計量及應(yīng)用),四川成都 611130)
β-受體激動劑(俗稱“瘦肉精”),是一類具有促腎上腺素功能的人工合成化合物,在醫(yī)學上主要用于治療支氣管哮喘、阻塞性肺炎等病癥[1?2]。該類化合物具有苯乙醇胺母核,根據(jù)苯環(huán)上取代基不同,可分為苯酚型(非諾特羅、特布他林、萊克多巴胺、沙丁胺醇、福莫特羅等)和苯胺型(克倫特羅、馬布特羅、溴布特羅、馬噴特羅、克侖潘特等)[3]。β-受體激動劑具有營養(yǎng)物質(zhì)“再分配效應(yīng)”,可促進脂肪分解和蛋白質(zhì)合成,顯著提高家畜瘦肉率[4],常被不良商家非法用于家畜飼養(yǎng)。人食入β-受體激動劑殘留的畜肉制品后可出現(xiàn)心慌、心悸、惡心、嘔吐等癥狀,造成急、慢性中毒,全國食品安全整頓工作辦公室發(fā)布的整頓辦函〔2010〕50 號已明確將β-受體激動劑類藥物列入食品中可能違法添加的非食用物質(zhì)名單。
目前β-受體激動劑的常見檢測方法有高效液相色譜法(HPLC)[5]、液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(HPLC-MS/MS)[6?10]、氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(GC-MS/MS)[11]、酶聯(lián)免疫分析法(ELISA)[12?13]。β-受體激動劑代謝后殘留于動物體內(nèi)的含量非常低,HPLC 檢出限難以滿足檢測要求;GC-MS/MS 測定時需要衍生化,操作繁瑣,影響檢測效率;ELISA 專屬性差,檢測中易出現(xiàn)假陽性;相比之下HPLC-MS/MS 無需衍生,靈敏度高、選擇性強,已成為國內(nèi)外β-受體激動劑定量分析的主要檢測手段。
苯酚型β-受體激動劑在代謝過程中軛合作用較強,進入動物體內(nèi)后極易與硫酸或葡萄糖醛酸形成軛合物[14?15],因此在建立苯酚型β-受體激動劑多殘留分析方法時,需先對樣品進行酶解,將待測物從軛合狀態(tài)轉(zhuǎn)化為游離態(tài)后再進行提取凈化。畜肉含有豐富的蛋白質(zhì),脂肪含量高,樣品基質(zhì)復雜,常見的凈化方式主要有固相萃取法[16?17]與QuEChERS 凈化法[18?19],QuEChERS 法無淋洗、洗脫步驟,與固相萃取法相比更簡便、快速,凈化時僅選擇性吸附雜質(zhì),不會造成目標分析物損失,在畜肉中β-受體激動劑的檢測上應(yīng)用越來越廣泛。
增強型脂質(zhì)去除填料EMR-Lipid 是一種改良的QuEChERS 技術(shù),能高選擇性地去除基質(zhì)中的脂類雜質(zhì),與傳統(tǒng)QuEChERS 法相比更適用于脂肪、蛋白質(zhì)含量較高的樣品,方法穩(wěn)定,重現(xiàn)性好。目前已有文獻采用QuEChERS EMR-Lipid 凈化法[20]進行畜肉中β-受體激動劑的檢測,但在定量時多數(shù)文獻采用基質(zhì)匹配標準曲線法[21]進行結(jié)果校正,實際檢測工作中發(fā)現(xiàn),基質(zhì)曲線樣品與待測樣品中蛋白質(zhì)、脂肪等組成不完全相同,β-受體激動劑在不同樣品中的基質(zhì)效應(yīng)存在差異,校正效果有限,影響測定結(jié)果的準確性。同位素內(nèi)標與待測物性質(zhì)相近,二者在前處理及離子化過程中受到的影響基本一致,響應(yīng)比值穩(wěn)定[22],采用同位素內(nèi)標法定量比基質(zhì)匹配標準曲線法更加準確,但現(xiàn)有文獻[23]在內(nèi)標品種的選擇上有較大局限性,非同位素內(nèi)標與待測物在前處理及離子化過程中受到的影響存在差異,對測定結(jié)果的校正效果不佳。
為提高β-受體激動劑定量分析的準確性,本研究將QuEChERS EMR-Lipid 凈化法與同位素內(nèi)標稀釋技術(shù)相結(jié)合,盡可能多地采用與待測物相對應(yīng)的同位素內(nèi)標進行校正,建立了畜肉中17 種β-受體激動劑藥物殘留的液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(UPLC-MS/MS)檢測方法,在簡化前處理步驟、提高檢測結(jié)果準確性方面具有顯著優(yōu)勢,可滿足食品安全風險監(jiān)測精準定量的技術(shù)要求。
牛肉、豬肉、羊肉樣品 購自當?shù)厥袌?,用料理機攪碎備用;克侖潘特鹽酸鹽、羥甲基克倫特羅、噴布特羅、鹽酸克侖特羅、硫酸特布他林、萊克多巴胺鹽酸鹽、富馬酸福莫特羅、沙丁胺醇、鹽酸班布特羅、非諾特羅鹽酸鹽標準品 純度均≥96%,德國Dr.Ehrenstorfer 公司;馬噴特羅鹽酸鹽、鹽酸溴布特羅、苯乙醇胺A、氯丙那林、妥布特羅鹽酸鹽、鹽酸馬布特羅、西布特羅標準品 純度均≥99%,德國WITEGA Laboratorien Berlin-Adlershof 公司;馬布特羅-D9鹽酸鹽、班布特羅-D9鹽酸鹽、妥布特羅-D9鹽酸鹽、氯丙那林-D7、噴布特羅-D9鹽酸鹽、特布他林-D9醋酸鹽半水化合物、溴布特羅-D9、苯乙醇胺A-D3、西布特羅-D9標準品 純度均≥99%,德國WITEGA Laboratorien Berlin-Adlershof 公司;萊克多巴胺-D3鹽酸鹽標準品 純度97.0%,加拿大C/D/N Isotopes Inc 公司;克侖特羅-D9、沙丁胺醇-D3標準品 濃度:100 μg/mL,德國Dr.Ehrenstorfer公司;甲醇、乙腈、甲酸 色譜純,賽默飛世爾科技(中國)有限公司;乙酸銨 色譜純,天津市科密歐化學試劑有限公司;實驗用水 超純水,由Milli-Q 型超純水儀制備;β-葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酯酶>100.000 Units/mL 上海安譜實驗科技股份有限公司;QuEChERS dSPE EMR-Lipid、QuEChERS Final Polish EMR-Lipid 安捷倫科技有限公司。
AB SCIEX QTRAP 5500 三重四極桿串聯(lián)質(zhì)譜儀 配有電噴霧離子源(ESI),美國應(yīng)用生物系統(tǒng)公司;ACQUITYTM UPLC I-Class 超高效液相色譜儀美國沃特世科技公司;CORTECSTMUPLC?C18柱(3.0 mm×100 mm,1.6 μm)、ACQUITY UPLC BEH C18柱(3.0 mm×100 mm,1.7 μm)美國沃特世科技公司;Eppendorf Centrifuge 5810 R 型高速冷凍離心機 德國艾本德股份公司;IKA VORTEX 3 旋渦混勻器 德國艾卡公司;Heidolph 渦旋振蕩器 德國海道爾夫公司;Mettler-Toledo ME204 型電子分析天平 瑞士梅特勒-托利多集團;BP211D 型電子分析天平 德國賽多利斯集團;Milli-Q 超純水儀 美國默克集團。
1.2.1 標準溶液的配制 混合標準溶液的配制:分別稱取適量β-受體激動劑標準品,用甲醇溶解,配制成1 mg/mL 的單一標準儲備液,于?20 ℃冰箱中儲存。取適量各標準儲備液用甲醇稀釋得17 種β-受體激動劑的混合標準溶液。
混合內(nèi)標溶液的配制:分別稱取適量馬布特羅-D9鹽酸鹽、班布特羅-D9鹽酸鹽、妥布特羅-D9鹽酸鹽、氯丙那林-D7、噴布特羅-D9鹽酸鹽、特布他林-D9醋酸鹽半水化合物、溴布特羅-D9、苯乙醇胺AD3、西布特羅-D9、萊克多巴胺-D3鹽酸鹽標準品,用甲醇溶解,配制成0.5 mg/mL 的單一內(nèi)標儲備液,于-20 ℃冰箱中儲存。取適量上述內(nèi)標儲備液及克侖特羅-D9、沙丁胺醇-D3標準品(濃度100 μg/mL),用甲醇稀釋得混合內(nèi)標溶液。
標準曲線工作液的配制:分別準確量取適量β-受體激動劑混合標準溶液及混合內(nèi)標溶液,用10%甲醇水溶液逐級稀釋,配制得濃度為0、0.5、1、2、5、10、20 ng/mL 的標準曲線工作液,內(nèi)標濃度2 ng/mL,臨用現(xiàn)配。
1.2.2 樣品前處理
1.2.2.1 提取 稱取均勻樣品2 g(精確到0.01 g)置50 mL 離心管中,加入0.2 mol/L 乙酸銨緩沖溶液(pH5.2)5 mL、β-葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酯酶100 μL,2000 r/min 渦旋振蕩1 min,于37 ℃避光水浴2 h。取出后放置至室溫,加入100 ng/mL 混合內(nèi)標溶液40 μL、5%甲酸乙腈15 mL,2000 r/min 渦旋振蕩提取20 min,于4 ℃下以9500 r/min 離心5 min,待凈化。
1.2.2.2 凈化 在裝有QuEChERS dSPE EMR-Lipid粉末的離心管中加入5 mmol/L 乙酸銨溶液5 mL,渦旋30 s 使EMR-Lipid 充分混合。將1.2.2.1 中離心后的上清液全部倒入此管,渦旋1 min,于4 ℃下以9500 r/min 離心5 min。精密吸取上清液8 mL 置另一50 mL 離心管中,倒入Final Drying Pouches-MgSO4粉末(約3.5 g),迅速振搖,渦旋1 min,于4 ℃下以9500 r/min 離心5 min。精密吸取3 mL 上清液置離心管中,在50 ℃水浴下氮氣吹干,加入0.4 mL 10%甲醇水,渦旋30 s 復溶,過0.22 μm濾膜,供液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀測定[24]。
1.2.3 色譜條件 CORTECS? UPLC?C18柱(3.0 mm×100 mm,1.6 μm);柱溫:35 ℃;流速:0.2 mL/min;進樣量5.0 μL;流動相A 為5%甲醇水溶液(含0.1%甲酸),B 為甲醇;梯度洗脫程序:0~8.00 min,10%~30% B;8.00~15.00 min,30%~95%B;15.00~18.00 min,95% B;18.00~19.00 min,95%~10% B;19.00~20.00 min,10% B。
1.2.4 質(zhì)譜條件 電噴霧離子源(ESI):正離子模式;掃描方式:分時段多反應(yīng)監(jiān)測(Scheduled MRM,sMRM),監(jiān)測窗口(MRM detection window):60 s,掃描時間(Target scan time):0.3 s。電噴霧電壓:5500 V;霧化氣(GS1)壓力:60 psi;輔助氣(GS2)壓力:60 psi;氣簾氣(CUR)壓力:20 psi;離子源溫度:450 ℃;碰撞池入口電壓:10 V;碰撞池出口電壓:13 V。
采用Analyst 1.6.3 軟件采集數(shù)據(jù),MultiQuant 3.0.2 軟件建立標準曲線、計算結(jié)果,Microsoft Excel 2013 處理數(shù)據(jù)及繪制圖表。本文基質(zhì)效應(yīng)和絕對萃取回收率均采用三個平行樣品計算,以平均值±標準差表示。
2.1.1 色譜條件的優(yōu)化β-受體激動劑是在苯乙醇胺母核上修飾得到的系列化合物,結(jié)構(gòu)相近,分離難度大。本文比較了CORTECS? UPLC?C18柱(3.0 mm×100 mm,1.6 μm)和ACQUITY UPLC BEH C18柱(3.0 mm×100 mm,1.7 μm)對17 種β-受體激動劑的分離效果,妥布特羅、溴布特羅、馬布特羅、克侖潘特因極性相近,在BEH C18柱上難以分離,換用粒徑更小的實心核顆粒CORTECS? UPLC?C18柱分離效果更好,且各化合物峰形尖銳(見圖1),因此選用CORTECS? UPLC?C18柱分離17 種β-受體激動劑。
圖1 17 種β-受體激動劑的提取離子流色譜圖Fig.1 Extracted ion chromatogram of 17 β-receptor agonists
在相同梯度條件下比較了甲醇水、乙腈水兩種流動相體系的分離效果,結(jié)果發(fā)現(xiàn)乙腈較甲醇有更強的洗脫能力,在乙腈水系統(tǒng)下β-受體激動劑出峰快,分離度更差,因而選用甲醇水系統(tǒng)。電噴霧離子源正離子模式下,流動相中加入適量甲酸可增強待測組分離子化效率,提高檢測靈敏度,本文以甲醇-0.1%甲酸水作為流動相,調(diào)整梯度洗脫程序,盡可能使各組分基線分離,減少組分間離子化競爭。在優(yōu)化后的色譜條件下(見1.2.3)17 種β-受體激動劑分離度良好,均可獲得滿意的檢測靈敏度,優(yōu)化后的譜圖見圖1。
2.1.2 質(zhì)譜條件的優(yōu)化 電噴霧離子源正離子模式下,用流動注射泵將濃度為200 ng/mL 的17 種β-受體激動劑混合標準溶液以5 μL/min 的流速注入質(zhì)譜儀,通過Q1全掃描,找出準確的母離子峰,再對母離子施加一定的碰撞能量進行MS2掃描,獲得各自的二級碎片離子,選取2 個信號較強且干擾小的碎片離子與其母離子組成監(jiān)測離子對。在MRM 模式下,分別對去簇電壓(DP)、碰撞能量(CE)等質(zhì)譜參數(shù)進行優(yōu)化。為了提高方法靈敏度,本研究根據(jù)17 種β-受體激動劑的保留時間,采用智能時間分段的方法進行多反應(yīng)監(jiān)測掃描(Scheduled MRM,sMRM),最終確定的離子對信息及質(zhì)譜參數(shù)見表1。sMRM數(shù)據(jù)采集模式可根據(jù)每個化合物的保留時間自動調(diào)整監(jiān)測窗口,每對離子均有最恰當?shù)难h(huán)時間和駐留時間,能夠顯著提高檢測方法靈敏度[25?26]。
表1 17 種β-受體激動劑的質(zhì)譜參數(shù)Table 1 Mass spectrometric parameters of 17 β-receptor agonists
GB/T 22286-2008[27]、GB/T 21313-2007[28]測定畜肉中β-受體激動劑時需先將樣品酶解過夜,俞曉蘭等[29]研究表明β-受體激動劑在37 ℃酶解2 h 后水解作用已基本完成,繼續(xù)延長酶解時間對提取效率的影響不顯著,且隨水解時間延長,以特布他林為代表的部分β-受體激動劑水解產(chǎn)物不穩(wěn)定導致測定結(jié)果降低。本文參考該文獻將樣品于37 ℃酶解2 h 后再用QuEChERS EMR-Lipid 凈化,與β-受體激動劑日常監(jiān)管常用的檢測方法[27?28]相比,在保證測定結(jié)果準確性的基礎(chǔ)上縮短了前處理時間,提高了樣品檢測效率。
本文考察了牛肉、豬肉、羊肉加標樣品前處理后17 種β-受體激動劑的絕對萃取回收率,結(jié)果見圖2,班布特羅、克倫特羅、羥甲基克倫特羅、氯丙那林、馬布特羅、妥布特羅、溴布特羅、苯乙醇胺A、馬噴特羅、克侖潘特絕對萃取回收率大于60%,其余7 種絕對萃取回收率在46.3%~58.9%之間。同位素內(nèi)標與待測物化學結(jié)構(gòu)、理化性質(zhì)相似,在前處理過程中受到的影響基本一致,二者響應(yīng)比值穩(wěn)定,在絕對萃取回收率不高的情況下仍能保證測定結(jié)果的準確性。為實現(xiàn)精準定量分析,本研究在經(jīng)費許可的情況下,盡可能多地購置與待測物相對應(yīng)的同位素內(nèi)標,定量分析時均以自身同位素內(nèi)標進行計算。非諾特羅、福莫特羅、克侖潘特、馬噴特羅、羥甲基克倫特羅未購得對應(yīng)的同位素內(nèi)標,非諾特羅、福莫特羅與萊克多巴胺同屬苯酚型β-受體激動劑,三者具有相近的絕對萃取回收率與基質(zhì)效應(yīng)(見圖2、圖3),故以萊克多巴胺-D3作為非諾特羅、福莫特羅的內(nèi)標??藖雠颂?、馬噴特羅、羥甲基克倫特羅均為苯胺型化合物,絕對萃取回收率與同為苯胺型的馬布特羅、克倫特羅相近(見圖2),但克倫特羅和羥甲基克倫特羅基質(zhì)抑制效應(yīng)較強(見圖3),以克倫特羅-D9作羥甲基克倫特羅的內(nèi)標可補償基質(zhì)抑制效應(yīng)對羥甲基克倫特羅的影響,故選擇克倫特羅-D9為羥甲基克倫特羅的內(nèi)標,馬布特羅-D9為克侖潘特、馬噴特羅的內(nèi)標。
圖2 牛肉、豬肉、羊肉樣品中17 種β-受體激動劑的絕對萃取回收率Fig.2 Absolute extraction recovery of 17 β-receptor agonists in beef,pork and mutton
圖3 牛肉、豬肉、羊肉樣品中17 種β-受體激動劑的基質(zhì)效應(yīng)Fig.3 Matrix effect of 17 β-receptor agonists in beef,pork and mutton
基質(zhì)效應(yīng)(ME)計算方法見公式(1),式中A1為待測物溶于有機溶劑中的峰面積,A2為待測物溶于空白基質(zhì)溶液中的峰面積,ME 在±20%以內(nèi)為可接受范圍[30?31]。
基質(zhì)效應(yīng)結(jié)果見圖3,牛肉、豬肉、羊肉對17 種β-受體激動劑均呈現(xiàn)出基質(zhì)抑制效應(yīng),其中克倫特羅、特布他林ME 絕對值大于20%,具有明顯的基質(zhì)抑制效應(yīng),其余15 種β-受體激動劑ME 絕對值在5.16%~17.9%之間,基質(zhì)效應(yīng)較弱,表明QuEChERS EMR-Lipid 法凈化效果良好。克倫特羅、特布他林定量分析時均以自身同位素標志物作內(nèi)標,補償了基質(zhì)抑制效應(yīng)對測定結(jié)果的影響,提高了定量準確性。
以牛肉為例,比較QuEChERS 法與MCX 法對17種β-受體激動劑的凈化效果?;|(zhì)效應(yīng)對比結(jié)果見圖4,兩種前處理方法均呈現(xiàn)基質(zhì)抑制效應(yīng),大多數(shù)β-受體激動劑基質(zhì)效應(yīng)不明顯,僅有QuEChERS法克倫特羅和特布他林的ME 絕對值略大于20%,表明兩種前處理方法均有較強的基質(zhì)干擾去除效果。
圖4 牛肉樣品QuEChERS 法與MCX 法基質(zhì)效應(yīng)對比圖Fig.4 Matrix effect comparison between QuEChERS method and MCX method in beef samples
牛肉樣品QuEChERS 法與MCX 法的絕對萃取回收率對比結(jié)果見圖5,17 種β-受體激動劑在QuEChERS 法中的萃取回收率普遍高于MCX 法。MCX 柱是混合型陽離子交換柱,具有反相和陽離子交換雙重保留性能,對非極性的堿性化合物具有更高的選擇性。MCX 柱凈化需經(jīng)歷上樣、淋洗、洗脫過程,17 種β-受體激動劑母體結(jié)構(gòu)中苯環(huán)上取代基不同,極性與堿性各有差異,在MCX 柱上呈現(xiàn)出不同的保留特性,同一凈化條件下理化性質(zhì)差異大的化合物易在淋洗中損失或在洗脫中流出不完全,難以兼顧所有化合物的絕對萃取回收率,MCX 凈化下噴布特羅、苯乙醇胺A、福莫特羅的絕對萃取回收率僅有12.3%、16.4%、27.2%。QuEChERS 法使用的EMRLipid 是一種新型吸附材料,該吸附劑結(jié)合體積排阻和疏水作用兩種機制,能高選擇性地去除基質(zhì)中的脂類雜質(zhì),凈化時僅有雜質(zhì)吸附與脫水過程,不會造成目標分析物損失,對17 種β-受體激動劑能提供更為均衡的絕對萃取回收率,最低絕對萃取回收率也能達到46.3%,與MCX 法相比更適用于多殘留的同時檢測,因而本研究選用QuEChERS EMR-Lipid 法進行樣品前處理。
圖5 牛肉樣品QuEChERS 法與MCX 法絕對萃取回收率對比圖Fig.5 Absolute extraction recovery comparison between QuEChERS method and MCX method in beef samples
2.6.1 線性范圍與檢出限 取標準曲線系列工作液進樣測定,以標準品與相應(yīng)內(nèi)標的峰面積比為縱坐標,以標準品濃度為橫坐標,繪制標準曲線,得到線性回歸方程。采用逐步稀釋法,以3 倍信噪比(S/N)為檢出限,10 倍信噪比(S/N)為定量限,結(jié)果見表2。17種β-受體激動劑在0~20 ng/mL 范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)均大于0.99,檢出限為0.01~0.09 μg/kg,定量限為0.05~0.31 μg/kg,可滿足檢測要求。
表2 17 種β-受體激動劑線性范圍、回歸方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限及定量限Table 2 Linear equation,correlation coefficient,LOD,LOQ of 17 β-receptor agonists
2.6.2 回收率與精密度 選擇豬肉、牛肉、羊肉陰性樣品,以低(0.5 μg/kg)、中(2.0 μg/kg)、高(5.0 μg/kg)三個濃度進行加標回收試驗,每個濃度水平各6 份,按照1.2.2 項下方法處理樣品后進樣測定,計算方法回收率與精密度,結(jié)果如表3 所示,3 個濃度水平下,豬肉樣品中17 種β-受體激動劑的平均回收率為83.1%~109.3%,相對標準偏差為0.8%~9.8%,牛肉樣品中17 種β-受體激動劑的平均回收率為81.7%~111.8%,相對標準偏差為1.0%~10.2%,羊肉樣品中17 種β受體激動劑的平均回收率為86.5%~111.6%,相對標準偏差為1.0%~10.3%。本方法具有較好的準確度和精密度,可滿足畜肉中17 種β-受體激動劑的檢測要求。12 種以自身同位素標志物作內(nèi)標的β-受體激動劑平均回收率在91.4%~111.8%之間,與部分已有方法[10,23]相比準確度更高,定量更為精準可靠。
表3 17 種β-受體激動劑回收率及精密度(n=6)Table 3 Recoveries and RSD of 17 β-receptor agonists (n=6)
采用本文建立的方法對100 批市售生鮮畜肉中17 種β-受體激動劑進行檢測,其中豬肉31 批,牛肉38 批,羊肉31 批,結(jié)果均為未檢出,暫未發(fā)現(xiàn)生鮮畜肉中β-受體激動劑殘留風險,與GB/T 22286-2008《動物源性食品中多種β-受體激動劑殘留量的測定 液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法》檢測結(jié)果一致。
本研究采用QuEChERS EMR-Lipid 凈化法及同位素稀釋-超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜技術(shù)建立了畜肉中17 種β-受體激動劑藥物殘留的檢測方法。酶解2 h 后的樣品經(jīng)QuEChERS EMR-Lipid 凈化,前處理步驟簡便,凈化效果良好,有效消除了基質(zhì)效應(yīng)影響,同時縮短酶解時間,提高了樣品檢測效率。采用同位素內(nèi)標法定量,補償了樣品前處理過程對測定結(jié)果的影響,17 種β-受體激動劑在0~20 ng/mL 范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,3 個加標濃度水平下平均回收率為81.7%~111.8%,RSD 為0.8%~10.3%,檢出限為0.01~0.09 μg/kg,定量限為0.05~0.31 μg/kg,定量精準可靠,適用于大批量畜肉樣品中多種β-受體激動劑藥物殘留的同時檢測,為動物源性食品風險監(jiān)測提供了技術(shù)支持,具有廣闊的應(yīng)用前景。