李 棟,葉光斌,2*,宗緒巖,2,鄒 偉,2
(1.四川輕化工大學(xué)生物工程學(xué)院,四川宜賓 644000;2.四川輕化工大學(xué)釀酒生物技術(shù)及應(yīng)用四川省重點實驗室,四川宜賓 644000)
我國的白酒文化可追溯到四五千年前的“龍山文化”時期,可謂歷史悠久[1]。濃香型白酒作為我國的第一大蒸餾酒,其酒體具有綿甜醇厚、窖香濃郁、舒適協(xié)調(diào)等特點,深受人們喜愛,且市場份額占比大[2]。窖泥作為濃香型白酒生產(chǎn)過程中主要微生物來源之一,其質(zhì)量對白酒品質(zhì)改善及特質(zhì)香氣的形成具有重要的影響。泥窖池作為濃香型白酒特有的發(fā)酵容器,也是優(yōu)良釀酒微生物棲息繁衍地,經(jīng)過長期高酸度和密閉厭氧發(fā)酵等特殊釀酒環(huán)境的馴化,窖泥中逐漸富集了大量具有產(chǎn)香功能的微生物[3]。
在成熟的純培養(yǎng)技術(shù)下,窖泥中的產(chǎn)香功能微生物也逐漸被發(fā)掘出來。己酸乙酯是濃香型白酒的主要風(fēng)味物質(zhì)[4],己酸作為己酸乙酯合成的前體物質(zhì),其產(chǎn)生菌種類較多。主要有梭菌屬中的克氏梭菌(Clostridium kluyveri)、廣西梭菌(Clostridium guangxiense)[5-10];芽孢桿菌屬中的地衣芽孢桿菌(Bacillus licheniformis)、巨大芽孢桿菌(Bacillus megaterium)[11];顫桿菌科的Caproicibacterium菌屬[12];產(chǎn)己酸菌屬(Caproiciproducens)[13];瘤胃球菌科CPB6 菌株[14]等。有研究表明,多數(shù)梭菌可通過逆β 氧化途徑,以乙醇或乳酸為基礎(chǔ),通過乙酰輔酶A,最終縮合成己酸,而其他菌屬產(chǎn)己酸的代謝途徑卻鮮有報道[15-16]。
除己酸外,丁酸、乙酸等酸也對白酒的風(fēng)味影響頗深。對酪酸梭菌(Clostridium butyricum)[17-18]、毛螺旋菌科(Lachnospiraceae)JN500902T 菌株[19]的研究發(fā)現(xiàn),其可產(chǎn)生多種脂肪酸,如丁酸、乙酸等;在白酒釀造中,丁酸被轉(zhuǎn)化為丁酸乙酯,乙酸被轉(zhuǎn)化為乙酸乙酯,兩者皆是白酒中重要的香味成分。也有研究發(fā)現(xiàn)丁酸可作為合成己酸的前體物質(zhì),同時對于新窖泥生成正丁醇起到至關(guān)重要的作用[20-21]。甲烷菌可實現(xiàn)“種間氫轉(zhuǎn)移關(guān)系”,與己酸菌能夠形成共棲作用,從而更加有利于己酸的生成[22]。
在窖泥環(huán)境體系中,微生物十分豐富,種間關(guān)系復(fù)雜,代謝產(chǎn)物多樣。加之實驗室條件下可培養(yǎng)的微生物種類有限,因此通過分離培養(yǎng)的方式必然會忽略窖泥中絕大部分具有產(chǎn)酸功能的微生物類型[23]。富集培養(yǎng)是目前有效分離環(huán)境樣品中難培養(yǎng)微生物的有效方法,例如Wu 等[24]從富集培養(yǎng)物中分離到了許多針對環(huán)境污染物的降解菌;Pernicova 等[25]將活性污泥加入到富集培養(yǎng)基(MSM)中培養(yǎng),分離出了能產(chǎn)聚羥基鏈烷酸酯(PHA)的芽孢桿菌。對于微生物的分離而言,培養(yǎng)基選擇與設(shè)計無疑具有重要的作用。窖泥在不同富集處理下發(fā)酵產(chǎn)物的變化規(guī)律研究對于功能發(fā)酵菌液的開發(fā)與難培養(yǎng)微生物的分離等都具有重要的意義。如在培養(yǎng)基富集微生物時,進(jìn)行熱激的前處理,就會使得大量非孢子形成的細(xì)菌減少,降低微生物的物種豐富度,從而使多數(shù)含有芽孢的梭菌、芽孢桿菌等得以生存[26];在培養(yǎng)基組分上加入乙醇作為碳源,富集窖泥后發(fā)現(xiàn)代謝產(chǎn)物乙酸的含量會高于己酸的含量,而以葡萄糖作為碳源時,己酸含量則高于乙酸含量[16]。盡管現(xiàn)在富集培養(yǎng)應(yīng)用領(lǐng)域十分廣泛,也幫助學(xué)者分離或富集了眾多的新種和目的功能菌,但是在白酒上的研究還是較少,限制我們對中國濃香型白酒發(fā)酵過程中窖泥微生物驅(qū)動原理的了解,所以窖泥中功能微生物的開發(fā)、難培養(yǎng)微生物的富集等工作仍是我們現(xiàn)在首要的目標(biāo)。
本研究設(shè)計不同的培養(yǎng)基營養(yǎng)成分和是否使用熱激處理等不同的處理組合(具體處理見表1),通過比較不同處理下6 輪次發(fā)酵產(chǎn)物確定最佳發(fā)酵處理措施。相關(guān)研究結(jié)果可以為窖泥功能菌液功能導(dǎo)向性富集、富集產(chǎn)酸培養(yǎng)條件優(yōu)化、窖泥老熟、難培養(yǎng)微生物的分離等提供理論支撐。
表1 培養(yǎng)基成分表
1.1.1 窖泥樣本
優(yōu)質(zhì)老窖泥取自瀘州某名優(yōu)酒廠,用冰盒迅速運回實驗室,于4 ℃冰箱保存,用其配置成富集液樣品1—20號。
1.1.2 主要儀器與設(shè)備
氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀,美國Agilent 科技有限公司;厭氧工作站,北京八方世紀(jì)科技有限公司。
1.1.3 培養(yǎng)基
窖泥用不同培養(yǎng)基進(jìn)行富集培養(yǎng),培養(yǎng)基組分見表1。
1.2.1 窖泥的富集
取25 g 窖泥于厭氧工作站中接種至250 mL 已除氧液體培養(yǎng)基(1.1.3)中,所有樣品于35 ℃培養(yǎng)7 d 后,以10 %的接種量進(jìn)行轉(zhuǎn)接,共富集6 輪(詳見圖1)。將每輪富集液分別保存至4 ℃及-20 ℃冰箱中,用于后續(xù)代謝產(chǎn)物研究。
圖1 窖泥富集培養(yǎng)接種方法
1.2.2 窖泥富集液代謝產(chǎn)物
取發(fā)酵液20 mL,使用2 mol/L 硫酸酸化至pH2,加無水乙醇定容至25 mL,12000 r/min、4 ℃冷凍離心5 min,取上清液,過0.2 μm 微孔濾膜[30]。進(jìn)樣前加10 μL乙酸丁酯(84 mg/mL)作為內(nèi)標(biāo)混勻。
氣相色譜條件:DB-WAX(60 m×250 μm×0.25 μm)色譜柱;載氣為高純度He,流速1 mL/min,進(jìn)樣口溫度230 ℃;程序升溫:初始溫度為60 ℃保持1 min,8 ℃/min 的升溫速率升至180 ℃保持2 min,再以15 ℃/min升至230 ℃,保持5 min。
質(zhì)譜(MS)條件:電子離子源(EI),70 eV 電子能量,采集模式為全掃描,質(zhì)量范圍20~550 u,離子源溫度230 ℃,四級桿溫度150 ℃,接口溫度230 ℃。
定性分析:質(zhì)譜圖通過與美國Agilent 公司提供的美國國家標(biāo)準(zhǔn)技術(shù)研究所(national institute of standards and technology,NIST)標(biāo)準(zhǔn)譜庫05a.L 進(jìn)行比對,選擇匹配度均>80的進(jìn)行定性分析[31]。
半定量分析:以乙酸丁酯作為內(nèi)標(biāo),測定樣品中酸類、酯類、醇類及芳香類化合物的峰面積與乙酸丁酯峰面積之比,再根據(jù)乙酸丁酯的質(zhì)量濃度進(jìn)一步計算其含量[32]。
窖泥富集液在不同培養(yǎng)基條件下經(jīng)過六次富集后,其代謝產(chǎn)物數(shù)據(jù)顯示(圖2),總酸、乙酸、丁酸和己酸產(chǎn)量范圍分別為61.8~11392 mg/100 mL、0~3491 mg/100 mL、0~9695 mg/100 mL、0~1744 mg/100 mL,對于能起到富集酸作用的培養(yǎng)基而言,總酸富集趨勢為第一輪富集到第三輪富集呈快速上升,第三輪富集到第四輪富集呈緩慢上升,而在第四輪富集到第六輪富集時則呈現(xiàn)下降,可以看出濃香型白酒的主要揮發(fā)性酸積累是在第三輪、第四輪富集時得到最大積累量(最高能到11392 mg/100 mL)。因此我們可以將整個發(fā)酵過程分為三個階段,第一階段為微生物生長繁殖時期(第一輪、第二輪富集時期),第二階段為微生物代謝時期(第三輪、第四輪富集時期),第三階段為微生物衰退消亡時期(第五輪、第六輪富集時期)。
圖2 樣品富集總酸圖
第三輪、第四輪富集時期,為微生物代謝時期,且在該時期有大量的酸積累。所以,將同培養(yǎng)基條件下,第三輪、第四輪富集時期的總酸積累作為分析基礎(chǔ),對其熱激與未熱激處理下的樣本做顯著性分析,如圖3 所示,相同培養(yǎng)基組分在不同處理結(jié)果下,熱激與未熱激對酸的富集不呈顯著性差異,所以認(rèn)為熱激與未熱激的前處理對微生物發(fā)酵中期產(chǎn)酸的影響很小。
圖3 同培養(yǎng)基組分下,熱激與未熱激處理下微生物的富集與第三輪、第四輪發(fā)酵時期總酸積累的顯著性關(guān)系
雖然在主發(fā)酵時期,是否熱激處理對同組分富集樣本影響較小,但是培養(yǎng)基自身的成分組成對代謝產(chǎn)物的影響極其重要。對此,針對主發(fā)酵時期的各個酸代謝量同20 組不同處理的富集樣本的營養(yǎng)物質(zhì)進(jìn)行相關(guān)性冗余分析(RDA 分析),如圖4 所示,RDA 分析顯示,培養(yǎng)基中的營養(yǎng)物質(zhì)(硫酸銨、蛋白胨、酵母粉、乙酸鈉、丁酸鈉、可溶性淀粉)與總酸、乙酸、丁酸、己酸呈正相關(guān)關(guān)系,乳酸、黃水、乙醇、葡萄糖、巰基乙酸鈉、牛肉膏則與上述酸呈負(fù)相關(guān)關(guān)系。
圖4 不同處理下,富集培養(yǎng)在第三輪、第四輪富集時培養(yǎng)基的主要組分和總酸、乙酸、丁酸、己酸的冗余分析(RDA分析)
3號、4號、5號、6號、7號、8號、13號、14號處理與總酸、乙酸、丁酸、己酸呈正相關(guān)關(guān)系,這些酸也與上述處理中的營養(yǎng)物質(zhì)(3 號、4 號、5 號、6 號、13號、14 號處理共同的營養(yǎng)組分:乙酸鈉、硫酸銨、蛋白胨、酵母粉)呈正相關(guān),唯獨與7 號、8 號處理中的黃水呈負(fù)相關(guān),但這些處理都在富集過程中積累了較好的混合酸(總酸、乙酸、丁酸、己酸)。相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),在葡萄糖CGM 培養(yǎng)基(本實驗5 號處理使用的培養(yǎng)基)中加入丁酸鈉和乙酸鈉后,能有效提高丁酸、乙酸的產(chǎn)量,進(jìn)而影響己酸的積累(從654 mg/100 mL 提高至892 mg/100 mL)[16],而3號、4 號、5 號、6 號處理中的丁酸鈉和乙酸鈉與混合酸呈正相關(guān)關(guān)系,表明丁酸鈉和乙酸鈉對混合酸的積累有著促進(jìn)作用(圖2,圖4)。其表現(xiàn)為,3號、4 號處理在第四輪富集時,積累了較多的總酸和丁酸(9705.2~11392 mg/100 mL 和8435~9695 mg/100 mL),5 號、6 號處理(獨特的營養(yǎng)組分:丁酸鈉)在第三輪富集時對總酸、乙酸和丁酸有一定積累(4618~5083 mg/100 mL,2061~2259 mg/100 mL,2351~2687 mg/100 mL)。黃水作為濃香型白酒發(fā)酵過程中的產(chǎn)物[33],推測其含有較豐富的促生長因子,所以在加入了黃水的7號、8 號處理中表現(xiàn)出較高的乙酸、丁酸積累。其中7 號處理在第二輪富集時積累了較多總酸、乙酸和己酸(7892 mg/100 mL、3067 mg/100 mL 和1587 mg/100 mL),8 號處理則在第三輪富集時主要對總酸、丁酸有所積累(5159 mg/100 mL,3817 mg/100 mL)。己酸乙酯是濃香型白酒中的主體呈香物質(zhì),過多的乳酸會抑制濃香白酒主體香的形成,所以現(xiàn)在的研究推行通過“增己降乳”的方法來提高己酸乙酯的含量[34],1 號、2 號、11 號、12 號處理中富含乳酸,并且與總酸、乙酸、丁酸、己酸呈負(fù)相關(guān)關(guān)系,因此推測過高的酸度對微生物代謝形成了反饋抑制,導(dǎo)致了產(chǎn)酸量的減少。Clostridium kluyveri可以利用乙醇來產(chǎn)己酸,但在窖泥菌群研究中,該菌的相對豐度不高[35],本實驗中的9 號、15號、16 號、17 號、18 號處理均加有乙醇,且與總酸、乙酸、丁酸、己酸呈負(fù)相關(guān)關(guān)系,同時產(chǎn)酸(如己酸)較低(平均酸含量<1336.4 mg/100 mL),所以推測乙醇能抑制混菌的生長或能抑制以乙醇為碳源生長的細(xì)菌(如Clostridium kluyveri)。有研究表明,巰基乙酸鈉作為抑制劑,可以抑制微生物芽孢的形成[36],所以認(rèn)為15 號、16 號處理中加入的巰基乙酸鈉,也會使微生物的含量降低,從而使得產(chǎn)酸很低。10號處理中加入乙醇后,依然在第二輪富集中表現(xiàn)出較高的丁酸含量(4465 mg/100 mL),可能因為該培養(yǎng)基在滅菌后加入乙醇,然后又進(jìn)行了熱激處理,使得乙醇揮發(fā)(沸點:78 ℃),不用抑制該培養(yǎng)基的微生物生長。19 號、20 號處理對揮發(fā)性酸積累很低(平均酸含量<1336.4 mg/100 mL),可能因為該培養(yǎng)基(MRS 培養(yǎng)基)主要是用來培養(yǎng)乳酸桿菌的,所以使得其它產(chǎn)酸微生物難以生存。13號、14 號處理(獨特的營養(yǎng)組分:可溶性淀粉、葡萄糖)能在第三輪、第四輪富集時積累總酸、乙酸、丁酸、己酸(5843~7444.7 mg/100 mL,2254~3055 mg/100 mL,2452~3383 mg/100 mL,652~1067 mg/100 mL),而且混合酸的含量在富集過程中有先增加后下降的趨勢,說明富集中期時,有利于這些處理對混合酸的積累。
經(jīng)過多組處理間的總酸比較,篩選出了13 號、14號處理作為最優(yōu)的富集培養(yǎng)基組合,為進(jìn)一步探究熱激對其各揮發(fā)性酸的影響,我們對其微生物代謝時期的各酸代謝量進(jìn)行了差異分析,如圖5 所示。對比之下,13號、14號處理,在微生物代謝時期(第三輪、第四輪富集)產(chǎn)混合酸差異很小,兩輪富集乙酸、丁酸、己酸差距分別在225~801 mg/100 mL、116~155 mg/100 mL、141~301 mg/100 mL 之間,并無顯著性差異,且產(chǎn)混合酸能力很高。由于13號、14 號處理在多輪次富集中產(chǎn)酸高且穩(wěn)定,受熱激處理影響小,所以我們認(rèn)為其可作為窖泥產(chǎn)酸核心菌群研究的出發(fā)樣本。
圖5 13號、14號處理第三輪、第四輪富集時,富集輪次與酸之間的顯著性關(guān)系
本實驗通過不同培養(yǎng)條件對窖泥進(jìn)行連續(xù)富集培養(yǎng),篩選出了能夠高產(chǎn)酸的13 號、14 號處理。在發(fā)酵第三輪、第四輪時,13 號處理和14 號處理間無顯著性差異,且都能夠有效的富集混合酸(乙酸、丁酸、己酸)。在最佳產(chǎn)酸時期,總酸的產(chǎn)值在5000~7500 mg/100 mL之間,乙酸在2254~3055 mg/100 mL之間,丁酸在2452~3383 mg/100 mL之間,己酸在909~1744 mg/100 mL 之間。該項研究成果,后續(xù)可作為窖泥產(chǎn)酸核心菌群的研究對象,也可以開展純菌的分離研究。同時本課題相關(guān)研究可以為后續(xù)單菌分離、改善窖泥質(zhì)量、生物強化法生產(chǎn)濃香型白酒等提供理論依據(jù)及實踐基礎(chǔ)。