摘要:喹諾酮類抗生素(Quinolones,QNs)被廣泛應(yīng)用于醫(yī)療衛(wèi)生、種植業(yè)、水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)和畜牧業(yè)等,因其具有較高的吸附系數(shù)(Kd)和有機(jī)碳分配系數(shù)(Koc),能在環(huán)境中長久存在并經(jīng)遷移轉(zhuǎn)化排放到土壤、水體中,進(jìn)而對植物生長和代謝產(chǎn)生影響。本文詳述了QNs對陸生植物、水生大型植物及浮游植物生長和代謝的生態(tài)毒理效應(yīng)研究進(jìn)展,重點綜述了不同QNs脅迫下這些植物生長、細(xì)胞形態(tài)、光合作用、抗氧化系統(tǒng)、滲透調(diào)節(jié)、代謝指標(biāo)的響應(yīng)情況。最后對QNs植物生態(tài)毒性機(jī)制進(jìn)行了展望。
關(guān)鍵詞:喹諾酮類抗生素;植物生長;代謝;生態(tài)毒理
中圖分類號:X173;X171.5 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A 文章編號:1672-2043(2024)11-2627-10 doi:10.11654/jaes.2024-0620
抗生素被廣泛而有效地用于人類醫(yī)療以及農(nóng)業(yè)、水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)和養(yǎng)蜂業(yè)[1-2]。喹諾酮類抗生素(Quino?lones,QNs)是臨床上使用的第二大類抗菌藥物,通常在使用后并不能被人或動物完全吸收,高達(dá)70% 的QNs不被代謝而以原藥或代謝產(chǎn)物的形式隨著尿液或糞便排出[3];此外制藥廠、醫(yī)院和家庭直接丟棄的原藥也是水環(huán)境中檢測到QNs的重要來源[4]。QNs中常用的有諾氟沙星(Norfloxacin,NOR)、環(huán)丙沙星(Ciprofloxacin,CIP)、氧氟沙星(Ofloxacin,OFL)、左氧氟沙星(Levofloxacin,LEV)、恩諾沙星(Enrofloxacin,ENR)和洛美沙星(Lomefloxacin,LOM)等,已在國內(nèi)外多個水域的水體和沉積物中被檢測到[3,5]。QNs自身具有很強(qiáng)的穩(wěn)定性,同時因其較高的分配系數(shù)、較低的溶解度和生物降解率[6],在環(huán)境中的檢出率較高[7],且能夠通過浸透到達(dá)地下水層[8]。QNs的廣泛使用導(dǎo)致在水體中的濃度在ng·L-1~μg·L-1范圍內(nèi),土壤和沉積物中的QNs 含量在μg·kg-1~mg·kg-1 范圍內(nèi)[9-10]。據(jù)報道,印度制藥廠的廢水中環(huán)丙沙星的檢測濃度高達(dá)31 mg·L-1[11]。研究發(fā)現(xiàn),地表水中QNs對各種生物均有毒,能夠抑制微生物、魚類及植物的生長、代謝[12-14]。因此,殘留QNs 對生態(tài)環(huán)境產(chǎn)生了巨大的危害,關(guān)注QNs對環(huán)境的影響,具有非常重要的研究意義。植物作為主要的初級生產(chǎn)者,構(gòu)成了生態(tài)系統(tǒng)的重要組成部分,研究QNs的植物生態(tài)毒性具有重要意義。近年來,國內(nèi)外關(guān)于QNs生物毒性的研究不斷增多,但專門針對QNs脅迫對植物生長影響及毒性機(jī)制的綜述性總結(jié)研究鮮有報道。因此,本文對近年來關(guān)于QNs脅迫對陸生植物、水生大型植物及浮游植物生長的影響,及其所涉及的相關(guān)分子響應(yīng)等方面的研究進(jìn)行深入分析和全面總結(jié),以期為QNs的生態(tài)學(xué)效應(yīng)、植物毒性評價的研究提供科學(xué)參考。
1 QNs的來源及轉(zhuǎn)歸途徑
QNs進(jìn)入環(huán)境后,會經(jīng)歷吸附、遷移、轉(zhuǎn)化和降解等過程,在土壤、水、沉積物等環(huán)境介質(zhì)中重新分布,影響植物的生長,帶來生態(tài)毒性,并能夠危害取食植物的動物和人類的健康。
抗生素進(jìn)入水環(huán)境主要是通過城市生活及醫(yī)療垃圾,制藥企業(yè)、畜牧及水產(chǎn)養(yǎng)殖等污水排放,進(jìn)入土壤的途徑主要包括施用含有抗生素的糞肥、污泥和含抗生素的污水灌溉[15-16]。QNs 在土壤中吸附系數(shù)(Kd)較高(160.7~786.1 L·kg-1),吸附能力較強(qiáng),易在土壤中蓄積[17-18];QNs在河水沉積物中有機(jī)碳分配系數(shù)(Koc)為567~61 000 L·kg-1,在沉積物中表現(xiàn)出很強(qiáng)的吸附能力[19-20]。同時,QNs結(jié)構(gòu)中含有酮羰基和羧基,能和金屬離子(Ca2+、Mg2+、Fe3+或Al3+)形成穩(wěn)定的絡(luò)合物,使其在水和土壤中較穩(wěn)定存在[21]。環(huán)境中QNs的降解主要包括光解、水解和生物降解,但在環(huán)境介質(zhì)中很難發(fā)生水解作用[22-23]。QNs 對光較為敏感,光解是地表水中的QNs 抗生素的主要降解方式[3,24],但光解過程緩慢,環(huán)境中的殘留時間比較久。研究表明,常見幾種QNs在水環(huán)境中的半衰期為5~11 d,時長依次是OFL(10.6 d)[25] gt;ENR(8.78 d)[26] gt;NOR(5.64 d)[27]gt;CIP(5.33 d)[26],QNs在土壤和沉積物中的半衰期可長達(dá)580 d[28]。在光照條件下,QNs 可分解為10 多種有機(jī)物及F-和HCOO-等離子[29],LCMS/MS分析結(jié)果顯示QNs的植物及微生物降解途徑相似,主要包括結(jié)構(gòu)中氟原子的取代、哌嗪環(huán)的裂解、乙?;⒘u基化和脫羧[30-31]。研究表明,NOR脫氟、哌嗪環(huán)轉(zhuǎn)化、羥基取代和喹諾酮環(huán)氧化后的產(chǎn)物可能會產(chǎn)生比本身毒性大的產(chǎn)物,具有較高的環(huán)境風(fēng)險[32]。QNs具有土壤及沉積物顆粒吸附能力強(qiáng)和難降解等特點,使其及代謝物在環(huán)境中能夠長久存在,呈現(xiàn)持久性或者由于污染物的持續(xù)排放而呈現(xiàn)“偽持久性”[33-34]。進(jìn)入水和土壤環(huán)境中的抗生素經(jīng)過遷移轉(zhuǎn)化,對植物的生長發(fā)育和生理代謝造成了不同程度的影響[35-37]。
2 QNs的植物毒性效應(yīng)
植物自身不可移動,長期受到外界生物和非生物脅迫,這些不良影響會改變植物自身的活性氧(ROS)代謝,植物形成的形態(tài)調(diào)節(jié)、酶和非酶的抗氧化防御、滲透系統(tǒng)調(diào)節(jié)等機(jī)制來清除ROS 應(yīng)對輕度逆境[38]。QNs對植物的脅迫效應(yīng)因植物生長發(fā)育階段不同而有所差異,主要體現(xiàn)在對植物種子的萌發(fā)和營養(yǎng)生長的影響,同時可破壞植物地下根系、地上莖生長和葉細(xì)胞的超微結(jié)構(gòu),進(jìn)而影響正常的代謝[39-40]。
2.1 對種子萌發(fā)的影響
種子萌發(fā)是植物生長周期的起始和感知外界環(huán)境變化的最初階段,也是評價植物對抗生素耐受性的重要階段[41]。QNs 可對種子發(fā)芽率產(chǎn)生“低濃度促進(jìn),高濃度抑制”的雙重生物效應(yīng),也會抑制其他萌發(fā)指標(biāo)。Gomes 等[42-43]研究了玉米(Zea mays)種子在0.2~2 mg·L-1 CIP脅迫下的發(fā)芽情況,發(fā)現(xiàn)玉米發(fā)芽率沒有明顯變化,但平均發(fā)芽時間明顯縮短。類似的結(jié)果也在牧草研究中被證實,鄧世杰等[44]研究發(fā)現(xiàn)黑麥草(Lolium perenne)種子在1 mg·L-1 CIP處理下發(fā)芽率高于對照組,當(dāng)濃度達(dá)到5 mg·L-1和10 mg·L-1時,發(fā)芽率明顯降低,發(fā)芽勢和發(fā)芽指數(shù)相對于CK組分別下降50%和30%。高濃度的QNs可抑制種子的各種萌發(fā)指標(biāo)。研究發(fā)現(xiàn),12.5、25、50、100 mg·L-1 和200 mg·L-1 NOR處理對油菜(Brassica campestris)種子發(fā)芽均產(chǎn)生抑制作用,200 mg·L-1時其發(fā)芽率和發(fā)芽勢相較于對照組均下降了13%[45]。不同植物的萌發(fā)對同種抗生素的響應(yīng)也不同。鄭曦等[46]研究LEV對2種不同玉米鄭單958 和農(nóng)大108 的毒理效應(yīng)發(fā)現(xiàn),25~200 mg·L-1的LEV均可明顯促進(jìn)鄭單958玉米種子的萌發(fā),但25 mg·L-1 LEV 對農(nóng)大108 玉米種子的萌發(fā)并無促進(jìn)作用,而當(dāng)濃度大于25 mg·L-1時會抑制農(nóng)大108 玉米種子的萌發(fā)。由此可見,農(nóng)作物對QNs的敏感程度小于雜草,這可能與植物的體型和耐受性有關(guān)。QNs脅迫下,糞肥的使用可以提高種子的發(fā)芽率。范惠冬等[47]通過研究在土壤糞肥中添加不同濃度的NOR(0、10、30、50、70、100、150 mg·L-1 和200 mg·L-1)對蔬菜的發(fā)芽影響發(fā)現(xiàn),白菜(Chinesecabbage)、油菜(Brassica rapa)和蘿卜(Raphanus sati?vus)的種子發(fā)芽率總體上均隨NOR濃度的提高而增加,150 mg·L-1處理時油菜的發(fā)芽率達(dá)100%,各處理濃度下蘿卜的發(fā)芽率均在90%以上,200 mg·L-1處理時白菜發(fā)芽率較對照組僅降低了10%。近年來QNs對植物種子萌發(fā)影響的部分研究結(jié)果詳見表1?,F(xiàn)有研究表明,QNs對植物種子萌發(fā)既有促進(jìn)也有毒害作用,但仍缺少不同抗生素對植物種子萌發(fā)毒性效應(yīng)臨界值的研究。因此,在今后的QNs植物毒性效應(yīng)研究中可對上述問題進(jìn)一步探討。
植物種子培育過程中,QNs的脅迫濃度會對種子發(fā)芽率產(chǎn)生不同的效應(yīng)。萌發(fā)過程中,種子盡管會受到抗生素的影響,但其可以通過自身代謝,防止、降低或修復(fù)由逆境造成的傷害[48]。種子能夠保持正常的生理活動,其發(fā)芽率不會受到明顯的負(fù)面影響,甚至有時還會增加。在種子的萌發(fā)過程中,種皮發(fā)揮著重要的保護(hù)作用,減輕抗生素脅迫對種子發(fā)芽產(chǎn)生的不利影響。當(dāng)然,不同QNs因理化性質(zhì)的差異,種皮在種子萌發(fā)過程中對它們的阻礙作用也不同;此外,種皮的阻礙能力有限,不能完全阻礙抗生素對種子的毒性效應(yīng)[49]。當(dāng)外界污染物濃度過高時,植物種子的抗氧化酶系統(tǒng)會受到破壞,導(dǎo)致酶活力降低,從而抑制種子的萌發(fā)[44]。
2.2 對植物生長的影響
2.2.1 對植物地下部分生長的影響
QNs可能引起植物根長、芽長、葉片生長、葉片數(shù)量、葉片顏色和生物量等生長情況的變化[51]。植物根系直接接觸和吸收抗生素,是抗生素類藥物積累的主要場所,因而抗生素對根系的影響通常高于其他器官[52],且抗生素對植物根系生長也具有“低促高抑”的雙重效應(yīng)。Xu等[53]研究ENR對水稻(Oryza sativa L.)生長的影響發(fā)現(xiàn),在2 mg·L-1 ENR處理下根的長度高于對照組,但濃度大于2 mg·L-1時抑制了根的生長。QNs對不同種類植物根生長的抑制程度不同。Wang等[54] 通過研究OFL 和ENR 對黃瓜(Cucumis sativusL.)、油菜(Brassica campestris L.)和大白菜(Brassicarapa L. ssp. pekinensis)的影響發(fā)現(xiàn),OFL 和ENR 濃度的升高(0、20、40、80、160 mg·L-1和320 mg·L-1)對3種蔬菜根的抑制作用逐漸增強(qiáng),20 mg·L-1 OFL和ENR均明顯降低了根的長度,其中ENR 的抑制程度為油菜gt;大白菜gt;黃瓜,OFL的抑制程度為大白菜gt;黃瓜gt;油菜,2種抗生素的抑制程度不同:黃瓜中ENR
2.2.2 對植物地上部分生長的影響
QNs對植物地上部分具有與地下部分類似的生物效應(yīng)。低濃度的CIP(0.5 mg·L-1)處理時,水稻的生物量相較于對照組增加了84.0%;當(dāng)CIP 濃度達(dá)到8mg·L-1 處理,生物量下降了36.6%,幼苗生長受到嚴(yán)重抑制,葉片黃化,第二片葉子不再長出[30,57]。ENR也會影響水稻的生長,2 mg·L-1 ENR處理下水稻芽的長度和鮮質(zhì)量高于對照組,但濃度大于2 mg·L-1時抑制了芽的生長及鮮質(zhì)量的增加[53]。QNs 對植物根和芽生長的抑制程度不同。OFL和ENR濃度升高對黃瓜、油菜和大白菜根和芽的抑制作用逐漸增強(qiáng),且根對抗生素的敏感程度高于芽[54]。不同QNs 對植物生長的影響如表2所示,低濃度CIP(lt;1 mg·L-1)、ENR(lt;2 mg·L-1)和OFL(lt;0.5 mg·L-1)可促進(jìn)植物生長,超過該濃度可能會抑制根和芽的生長及鮮質(zhì)量的增加,使葉片發(fā)黃卷曲。
2.2.3 對浮游植物生長的影響
藻類生長也會受到QNs的影響。張曉晗等[58]研究了OFL對水生浮游植物普通小球藻(Chlorella vul?garis)和斜生柵藻(Tetradesmus obliquus)生長的影響,結(jié)果表明OFL 對兩種綠藻的生長均表現(xiàn)出“低促高抑”的效應(yīng),1~5 mg·L-1 OFL處理下細(xì)胞干質(zhì)量高于對照組,生長狀況良好,表現(xiàn)為促進(jìn)生長;當(dāng)OFL濃度超過5 mg·L-1時,細(xì)胞干質(zhì)量低于對照組,對綠藻的生長起抑制作用,且濃度越大,抑制作用越強(qiáng),隨著培養(yǎng)時間的延長,細(xì)胞干質(zhì)量抑制率越大。QNs濃度和培養(yǎng)時間均會不同程度地對藻產(chǎn)生毒害作用。LEV和NOR濃度(5~60 mg·L-1)的增加,對肋骨條藻(Skel?etonema costatum)的生長抑制率顯著提高,144 h 后60 mg·L-1 LEV 的抑制率高達(dá)96.6%[59]。不同QNs 對藻生長的抑制作用也不同。徐海紅等[60]研究表明,濃度為5、7.5、10、12.5 mg·L-1和15 mg·L-1的QNs對銅綠微囊藻細(xì)胞數(shù)目的抑制作用大小依次為CIPgt;NORgt;OFL。
QNs對植物有雙重作用,既促進(jìn)植物的生長,又對植物生長起抑制作用甚至產(chǎn)生不良影響。低濃度的QNs可促進(jìn)農(nóng)作物的生長,高濃度會抑制其生長。植物根和芽對QNs的敏感程度不同,其中,植物根系是感知污染物最敏感的器官,也是吸收和富集抗生素的主要場所。根系活力可以反映植物吸收養(yǎng)分的能力,是植物生長的重要指標(biāo)之一[61]。污染脅迫通常不利于植物幼根的伸長,降低植物根系活力。但是,抗生素對植物根系活力影響的差異,可能與抗生素的種類和濃度有關(guān)。現(xiàn)有研究表明,QNs對不同植物生長均具有毒性作用,但是不同種類植物對抗生素的響應(yīng)機(jī)制差異還有待進(jìn)一步研究。
3 QNs對植物的毒性機(jī)制
3.1 破壞植物組織細(xì)胞
QNs可能會影響根細(xì)胞和葉細(xì)胞的超微結(jié)構(gòu)而干擾細(xì)胞正常代謝,甚至可能進(jìn)入細(xì)胞作用于遺傳物質(zhì),造成遺傳毒性。Zhang 等[66]研究發(fā)現(xiàn)低濃度的QNs 也會影響大豆(Glycine max)細(xì)胞超微結(jié)構(gòu),0、0.01、0.1、0.5 mg·L-1和1 mg·L-1 ENR會抑制大豆的生長,1 mg·L-1 處理可使大豆葉片細(xì)胞腫脹,葉綠體變得不規(guī)則;類囊體的排列松散,層數(shù)減少變形;線粒體的雙層膜嚴(yán)重受損,內(nèi)部嵴變得模糊;線粒體基質(zhì)退化,部分線粒體出現(xiàn)中空氣泡或不規(guī)則形狀。Liu等[64]研究2 mg·L-1 OFL 對洋蔥葉片細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)的影響時發(fā)現(xiàn),洋蔥葉綠體也會發(fā)生嚴(yán)重變形和解體。Mukhtar等[55]研究水培條件下不同QNs對水稻的影響發(fā)現(xiàn),10 mg·L-1 的CIP、LEV 和OFL 處理時水稻根尖細(xì)胞DNA發(fā)生斷裂,并對根細(xì)胞造成了不可逆的損傷。由此可見,隨著濃度的增加,QNs對植物細(xì)胞結(jié)構(gòu)損傷逐漸增強(qiáng)甚至造成結(jié)構(gòu)不可逆的破壞。土培條件下,QNs 也會破壞植物細(xì)胞的超微結(jié)構(gòu)。Khan等[67]土壤培養(yǎng)小青菜(Brassica rapa ssp. chinensis)時添加100 mg·kg-1的NOR發(fā)現(xiàn),小青菜的葉綠體發(fā)生腫脹;與對照組相比,葉細(xì)胞中的淀粉粒變大,線粒體數(shù)量增加,整個細(xì)胞變得不規(guī)則。不同植物對同一抗生素的響應(yīng)也不相同。1 mg·L-1 CIP處理2種不同品種的菜苔(Brassica parachinensis)兩周后,高耐受型和敏感型品種之間根尖細(xì)胞的超微結(jié)構(gòu)變化不同,敏感型的根尖細(xì)胞的內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、線粒體逐漸變形,質(zhì)膜明顯分離,質(zhì)膜破裂;耐受型品種的根尖細(xì)胞雖然能保持膜和細(xì)胞壁的完整性,但可觀察到空泡和線粒體數(shù)量增加,細(xì)胞質(zhì)收縮[63]。
可見,在水培和土培條件下,QNs濃度大小成為破壞植物根和葉細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)的重要因素,組織細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)的改變會對植物的生理活動產(chǎn)生負(fù)面影響,但不同QNs對植物組織細(xì)胞影響的差異還需進(jìn)一步探究。
3.2 改變光合作用
光合作用是陸生植物、水生大型植物及浮游植物賴以生存的方式,QNs能夠影響植物的最大量子產(chǎn)率(Fv/Fm)、葉綠素a、葉綠素b 和類胡蘿卜素含量[68]。光合色素能夠吸收光能,是光合電子傳遞活動的主要指標(biāo)。類胡蘿卜素等輔助色素可以減輕對葉綠素刺激作用,最大程度地減少光合組織因暴露于污染物而產(chǎn)生的ROS[69]。Liu等[64]發(fā)現(xiàn)不同濃度OFL對威爾士洋蔥葉片色素含量影響不同,0.1 mg·L-1的OFL可使色素含量增加,0.5~2.0 mg·L-1 OFL 脅迫下色素含量以劑量依賴性方式下降,這可能是因為高濃度的OFL抑制了光合電子傳遞鏈,尤其是質(zhì)體醌QA和質(zhì)體醌QB 之間的光合電子傳遞鏈。Zhao 等[63]研究CIP 對2種卷心菜Sijiu 和Cutai葉綠素含量的影響發(fā)現(xiàn),0.1、0.5、1.0、2.0、3.0 mg·L-1和4.0 mg·L-1 CIP能降低卷心菜葉綠素a、葉綠素b 含量。Hu 等[30]發(fā)現(xiàn)0.5~8 mg·L-1 CIP也會降低水稻葉綠素a、葉綠素b和類胡蘿卜素含量。QNs 還會影響水生大型植物的光合作用。Kitamura等[70]研究發(fā)現(xiàn),人厭槐葉蘋(Salvinia molestaD.S. Mitchell)在100 μg·L-1的CIP脅迫168 h后,其光系統(tǒng)Ⅱ(photosystem Ⅱ complex,PS Ⅱ complex)的Fv/Fm 明顯少于對照組,可能是因為低濃度CIP暴露對葉綠素和類胡蘿卜素的含量基本無影響;水蘊(yùn)草(Egeria densa Planch.)在實驗濃度下,F(xiàn)v/Fm、葉綠素a、葉綠素b和類胡蘿卜素含量降低。Lu等[14]研究發(fā)現(xiàn)LEV 能影響8 種水生植物的葉綠素含量,燈心草(Juncus effusus)、海蔥(Drimia maritima)、美人蕉(Canna indica)、菖蒲(Acorus calamus)、黃菖蒲(Irispseudacorus)、水竹芋(Thalia dealbata)、水芹(Oe?nanthe javanica)、旱傘草(Cyperus involucratus)在水培條件下,添加低濃度(10 μg·L-1 和1 000 μg·L-1)的LEV后,植物葉綠體色素含量增加。QNs也能影響水生浮游植物的光合色素含量,從而影響其光合作用。Chen等[71]研究發(fā)現(xiàn),1、5、20 mg·L-1和50 mg·L-1 ENR和NOR 均能降低卵孢金孢藻(Chrysosporum ovalispo?rum)和小球藻(Chlorella vulgaris)的葉綠素a含量,且隨時間延長逐漸降低,抗生素濃度越高對葉綠素a含量的抑制程度越大;而40、60 mg·L-1 和100 mg·L-1CIP在提高墨西哥衣藻葉綠素含量的同時,還會提高其類胡蘿卜素的含量[72]。
上述結(jié)果表明,QNs脅迫下,植物光合色素含量隨著濃度的增加先升后降。當(dāng)脅迫濃度達(dá)到數(shù)十毫克每升時,類胡蘿卜素含量的增加有助于組織細(xì)胞對ROS的清除。轉(zhuǎn)錄組和代謝組分析顯示,光合作用的光反應(yīng)階段是植物受影響的主要過程,QNs能夠競爭與PS Ⅱ中心D2蛋白(psbD)結(jié)合,造成光系統(tǒng)Ⅱ(PSⅡ)對QNs脅迫的特殊脆弱性,光介導(dǎo)電子傳遞和O2產(chǎn)生的顯著中斷,光合作用受到抑制[73]。目前已有的QNs對植物光合作用影響的研究,主要是圍繞光合色素含量變化,而對其他類色素含量影響的研究較少,而且關(guān)于QNs導(dǎo)致葉綠素含量變化的機(jī)制研究仍不足。
3.3 造成氧化損傷
ROS在沒有任何環(huán)境壓力的情況下自行產(chǎn)生,許多酶可以共同作用來去除ROS,這有助于維持植物細(xì)胞中ROS的產(chǎn)生和清除之間的平衡[74]。然而,當(dāng)植物在有機(jī)污染物脅迫條件下生存時,細(xì)胞中會產(chǎn)生更多的ROS,甚至?xí)斐芍参锼劳鯷75-77]。為了將ROS水平控制在盡可能低的水平,避免在這種脅迫條件下發(fā)生膜脂質(zhì)過氧化(Lipid peroxidation,LPO),植物的清除系統(tǒng)可能會發(fā)生相應(yīng)的變化以降低體內(nèi)ROS 水平[78-79]。
植物根、莖和葉等器官的抗氧化系統(tǒng)在QNs的脅迫下響應(yīng)不同。CIP(0.5、1、2、4 mg·L-1和8 mg·L-1)可誘導(dǎo)水稻根、莖、葉細(xì)胞發(fā)生氧化應(yīng)激反應(yīng),產(chǎn)生的ROS可以誘導(dǎo)水稻體內(nèi)膜脂過氧化生成,使根中丙二醛(MDA)含量逐漸上升,隨著CIP 濃度的增加,根中超氧化歧化酶(SOD)和過氧化氫酶(CAT)活性先增后減,過氧化物酶(POD)活性逐漸增強(qiáng),且均高于對照組;莖中MDA含量和各抗氧化酶活性變化較小,葉中MDA含量逐漸上升[30]。較高濃度的CIP(5、10、25、50、100 mg·L-1 和200 mg·L-1)脅迫下小麥(Triticumaestivum)抗氧化系統(tǒng)發(fā)生明顯變化,隨著CIP濃度升高,POD活性降低而小于對照組(gt;10 mg·L-1時),CAT和SOD先升后降,MDA含量也呈現(xiàn)先上升后降低的趨勢[80]。可見,濃度低于10 mg·L-1 CIP脅迫下,植物MDA 含量、CAT、POD 和SOD 活性較對照組增加,當(dāng)CIP濃度過大,抗氧化酶活性下降甚至小于對照組。Zhang 等[62]還發(fā)現(xiàn),高濃度OFL(20 mg·L-1 和40 mg·L-1)會破壞番茄(Lycopersicon esculentum Mill.)葉片中的ROS平衡,增加超氧陰離子(O-2·)、H2O2和MDA的含量。類似的研究被Riaz等[81]等證實,ENR和LEV脅迫下,小麥幼苗可通過增加抗氧化酶活性,緩解氧化應(yīng)激效應(yīng)。谷胱甘肽過氧化物酶(GPX)是機(jī)體內(nèi)廣泛存在的一種重要的過氧化物分解酶,QNs 脅迫下GPX變化趨勢與其他抗氧化酶一致。Jin等[82]研究2~50 mg·L-1 ENR、NOR 和LEV 對擬南芥(Arabidopsisthaliana)生長影響發(fā)現(xiàn),低濃度(2 mg·L-1 和10 mg·L-1)可使GPX活性增加,高濃度(20 mg·L-1和50 mg·L-1)可使GPX 活性降低。QNs 還可以脅迫水生植物引起氧化酶活性變化。Singh等[83]研究發(fā)現(xiàn),低濃度(0~1 mg·L-1)OFL 可使紫萍(Spirodela polyrhiza)葉片的抗壞血酸過氧化物酶(APX)和SOD活性均逐漸增強(qiáng)。Gomes等[84]研究發(fā)現(xiàn)CIP處理下浮萍積累的過量H2O2破壞細(xì)胞代謝。Li等[85]研究低濃度NOR對藻的毒性大小,發(fā)現(xiàn)50、500 μg·L-1 和5 000 μg·L-1 NOR能夠使銅綠微囊藻(Microcystis aeruginosa)和四尾柵藻(Scenedesmus quadricauda)中O-2·濃度和SOD 活性先增后降,3 d后恢復(fù)正常水平。
綜上所述,QNs處理后,植物根、莖和葉片中ROS和抗氧化活性均會發(fā)生變化,細(xì)胞膜發(fā)生脂質(zhì)過氧化反應(yīng),這種氧化應(yīng)激也會特異性影響抗氧化酶活性。不同濃度QNs脅迫下,植物抗氧化酶活性的變化趨勢也不同。O-2·、H2O2、MDA 的含量會隨著QNs 濃度的增加而增加,抗氧化酶活性可隨著QNs濃度增加先升后降,微克級濃度脅迫下植物可通過自身調(diào)節(jié)而恢復(fù)正常水平??傊?,植物可通過SOD、POD和CAT這三種重要的抗氧化酶清除ROS,維持細(xì)胞的正常生理功能[86]。O-2·、H2O2、MDA等分子含量的升高,也會破壞細(xì)胞結(jié)構(gòu),對植物的組織細(xì)胞造成損傷,抑制其正常生長。
3.4 干擾細(xì)胞滲透調(diào)節(jié)
滲透調(diào)節(jié)是植物在外界環(huán)境因素脅迫下維持正常代謝過程的重要生理調(diào)節(jié)機(jī)制??股孛{迫下,大量ROS可能會破壞細(xì)胞膜結(jié)構(gòu),改變細(xì)胞滲透性[87]。植物可通過改變自身脯氨酸(Pro)、可溶性蛋白(SP)、可溶性糖(SS)等物質(zhì)的含量進(jìn)行滲透調(diào)節(jié),增加細(xì)胞液濃度,降低滲透勢,進(jìn)而緩解污染造成的傷害。植物滲透調(diào)節(jié)物含量可能與QNs的處理濃度有關(guān)。Fan等[88]研究發(fā)現(xiàn)0~10 mg·L-1 CIP脅迫下,沉水植物苦草(Vallisneria natans)體內(nèi)SP 和Pro 的含量隨CIP 濃度的增加而增加,并且與污染物接觸時間越長,含量增加幅度越大。沈洪艷等[89]通過水培試驗研究不同濃度NOR(5~80 mg·L-1)對黑麥草Pro含量的影響,發(fā)現(xiàn)濃度增加均誘導(dǎo)Pro的產(chǎn)生,20、40 mg·L-1和80 mg·L-1處理時黑麥草Pro含量明顯提高,并隨濃度提高逐漸增加。但不同植物滲透調(diào)節(jié)物對QNs的響應(yīng)也不同,萵苣(Lactuca sativa)在OFL 脅迫下,10 mg·L-1 處理下SP 含量低于5 mg·L-1 處理[90]。QNs也會影響浮游植物滲透調(diào)節(jié)物的含量。Du等[91]研究NOR對銅綠微囊藻(Microcystis aeruginosa)的毒性發(fā)現(xiàn),較高濃度的NOR(1~20 mg·L-1)脅迫下,其SP含量隨著污染物濃度增加而降低。植物滲透調(diào)節(jié)物含量可能因抗生素脅迫濃度的不同而產(chǎn)生不同的效應(yīng),當(dāng)QNs的濃度達(dá)毫克級,滲透調(diào)節(jié)物含量相較于對照組會降低。
3.5 影響次生代謝物產(chǎn)生及營養(yǎng)元素吸收
抗生素能影響作物正常的代謝,促進(jìn)植物具有更高的酶活性,產(chǎn)生特定的次生代謝產(chǎn)物維持ROS 動態(tài)平衡[92]。酚類代謝物可作為還原劑、淬滅1O2和提供氫來發(fā)揮抗氧化功能,ROS的產(chǎn)生可引起總酚含量的變化[93]。在非生物脅迫下,酚類次級代謝產(chǎn)物會增加,以應(yīng)對氧化應(yīng)激。Ramos等[94]研究低濃度CIP對帕??ɡ见湥–henopodium quinoa)毒性發(fā)現(xiàn),100μg·L-1處理下帕??ɡ见湻铀岷屯榇嫉漠a(chǎn)量分別是1 μg·L-1 處理時的1.6 倍和2.3 倍,芳香酸在100μg·L-1CIP 處理時的產(chǎn)率最高。Riaz 等[81]的研究發(fā)現(xiàn),CIP、ENR、LEV在影響小麥生長的同時,其體內(nèi)的次生代謝產(chǎn)物總酚含量隨著抗生素濃度的增加而增加。趙里曼等[80]研究CIP 脅迫對小麥生長的影響時發(fā)現(xiàn),CIP能誘導(dǎo)小麥體內(nèi)代謝物含量發(fā)生變化,檢測的55種代謝物中,其中10種的含量變化較大,分別是4種氨基酸、2種有機(jī)酸、2種糖和2種其他有機(jī)物。
碳元素和氮元素是植物生長所必需的營養(yǎng)元素,并參與了植物生命代謝物的合成。QNs會影響植物對碳素和氮素的吸收和代謝。Tong等[95]研究OFL對不同水生植物的碳素和氮素的吸收和代謝時發(fā)現(xiàn),10 μg·L-1 OFL脅迫下水燭(Typha angustifolia L.)和千屈菜(Lythrum salicaria L.)氮吸收下降,但菖蒲(Acorus calamus L.)的氮吸收上升;10 μg·L-1 OFL 脅迫提高了上述3種植物的根系分泌物總碳量和總氮量。由此可見,QNs影響植物對營養(yǎng)元素的吸收和代謝,但造成植物對碳素和氮素吸收和代謝的差異還有待進(jìn)一步研究。
4 結(jié)語及展望
喹諾酮類抗生素(QNs)影響陸生植物種子萌發(fā)和生長、水生大型植物和浮游植物正常生長代謝,且植物各形態(tài)及生理生化指標(biāo)變化因QNs濃度的差異而不同。針對某一特定植物,在QNs脅迫下以短期內(nèi)植物的生物量、根莖葉長勢、細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)、光合色素含量、滲透調(diào)節(jié)物含量、次級代謝產(chǎn)物含量、抗氧非酶化合物含量及抗氧化酶活性等參數(shù)為指標(biāo),可以很好地評價QNs的植物生態(tài)毒性。近幾年來國內(nèi)外有關(guān)QNs的植物生態(tài)毒性的研究已有很大進(jìn)展,但還存在一些問題需深入研究。
(1)現(xiàn)有研究中的QNs濃度通常遠(yuǎn)高于環(huán)境中檢測出的實際濃度,有必要開展QNs環(huán)境濃度下長時間暴露對不同種類植物的生態(tài)毒性研究。
(2)QNs可發(fā)生光解、水解及生物降解,其在培養(yǎng)過程中具體的降解機(jī)制還有待進(jìn)一步研究,且QNs植物生態(tài)毒性的主要來源是QNs自身還是其降解產(chǎn)物,仍需進(jìn)一步探討。
(3)目前的研究并未確定植物生長及生理生化指標(biāo)的變化與QNs潛在毒性之間的因果關(guān)系,同時缺乏全面評估QNs對植物毒性的方法。
(4)植物對于QNs脅迫的毒性響應(yīng)及機(jī)制研究有待進(jìn)一步深入,可利用LC-MS/MS聯(lián)合蛋白組、代謝組、轉(zhuǎn)錄組和靶向代謝組等多組學(xué)技術(shù)來揭秘。
參考文獻(xiàn):
[1] 史沉魚, 黃港平. 土霉素脅迫對黃瓜幼苗生理特性的影響[J]. 北方
園藝, 2023(6):1 - 11. SHI C Y, HUANG G P. Effects of
oxytetracycline stress on physiological characteristics of cucumber
seedlings[J]. Northern Horticulture, 2023(6):1-11.
[2] CHOE H, KANTHARAJ V, LEE K, et al. Morpho-physiological,
biochemical, and molecular responses of lettuce(Lactuca sativa L.)
seedlings to chlortetracycline stress[J]. Environmental and
Experimental Botany, 2024, 219:105615.
[3] YANG C, WU T. A comprehensive review on quinolone contamination
in environments:current research progress[J]. Environmental Science
and Pollution Research, 2023, 30(17):48778-48792.
[4] 孟磊, 楊兵, 薛南冬. 氟喹諾酮類抗生素環(huán)境行為及其生態(tài)毒理研
究進(jìn)展[J]. 生態(tài)毒理學(xué)報, 2015, 10(2):76-88. MENG L, YANG B,
XUE N D. A review on environmental behaviors and ecotoxicology of
fluoroquinolone antibiotics[J]. Asian Journal of Ecotoxicology, 2015, 10
(2):76-88.
[5] FALEYE A C, ADEGOKE A A, RAMLUCKAN K, et al. Concentration
and reduction of antibiotic residues in selected wastewater treatment
plants and receiving waterbodies in Durban, South Africa[J]. Science of
the Total Environment, 2019, 678:10-20.
[6] OHORE O E, ADDO F G, ZHANG S, et al. Distribution and
relationship between antimicrobial resistance genes and heavy metals
in surface sediments of Taihu Lake, China[J]. Journal of Environmental
Sciences, 2019, 77:323-335.
[7] HAN T, LIANG Y, WU Z, et al. Effects of tetracycline on growth,
oxidative stress response, and metabolite pattern of ryegrass[J]. Journal
of Hazardous Materials, 2019, 380:120885.
[8] PICó Y, ANDREU V. Fluoroquinolones in soil-risks and challenges
[J]. Analytical and Bioanalytical Chemistry, 2007, 387:1287-1299.
[9] 陶虎春, 宮一瑋, 張麗娟, 等. 城市剩余污泥基吸附劑對水中兩種喹
諾酮類抗生素的去除[J]. 北京大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版), 2021, 57
(4):765-772. TAO H C, GONG Y W, ZHANG L J, et al. Removal of
two quinolone antibiotics from aqueous solution by the municipal
sewage sludge - based adsorbent[J]. Acta Scientiarum Naturalium
Universitatis Pekinensis, 2021, 57(4):765-772.
[10] 周瑞飛, 王少坡, 常晶, 等. 水中抗生素污染現(xiàn)狀及高級氧化技術(shù)
研究進(jìn)展[J]. 天津城建大學(xué)學(xué)報, 2021, 27(5):356-362. ZHOU
R F, WANG S P, CHANG J, et al. Pollution status of antibiotics in
water and research progress of advanced oxidation technology[J].
Journal of Tianjin Chengjian University, 2021, 27(5):356-362.
[11] LARSSON D J, DE PEDRO C, PAXEUS N. Effluent from drug
manufactures contains extremely high levels of pharmaceuticals[J].
Journal of Hazardous Materials, 2007, 148(3):751-755.
[12] LIU K, YIN X, ZHANG D, et al. Distribution, sources, and ecological
risk assessment of quinotone antibiotics in the surface sediments from
Jiaozhou Bay wetland, China[J]. Marine Pollution Bulletin, 2018, 129
(2):859-865.
[13] 沈榮. 三種氟喹諾酮藥物的生物毒性研究[D]. 重慶:重慶大學(xué),
2019. SHEN R. Study on the biological toxicity of three
fluoroquinolones[D]. Chongqing:Chongqing University, 2019.
[14] LU H B, WANG H, LU S Y, et al. Response mechanism of typical
wetland plants and removal of water pollutants under different
levofloxacin concentration[J]. Ecological Engineering, 2020, 158:
106023.
[15] 于嬌, 金凱馨, 吳玲玲. 淺談抗生素在中國多介質(zhì)中污染現(xiàn)狀研究
進(jìn)展[J]. 應(yīng)用化工, 2024, 53(7):1635-1640. YU J, JIN K X, WU L
L. The status of antibiotic contamination in multiple media of China:a
review[J]. Applied Chemical Industry, 2024, 53(7):1635-1640.
[16] MAO H, YANG H, XU Z, et al. Responses of submerged macrophytes
to different particle size microplastics and tetracycline co-pollutants
at the community and population level[J]. Journal of Hazardous
Materials, 2024, 464:132994.
[17] 王曉潔, 趙蔚, 張志超, 等. 獸用抗生素在土壤中的環(huán)境行為、生態(tài)
毒性及危害調(diào)控[J]. 中國科學(xué):技術(shù)科學(xué), 2021, 51(6):615-636.
WANG X J, ZHAO W, ZHANG Z C, et al. Veterinary antibiotics in
soils:environmental processes, ecotoxicity, and risk mitigation[J].
Scientia Sinica(Technologica), 2021, 51(6):615-636.
[18] 趙鑫宇, 陳慧, 趙波, 等. 石家莊市土壤中喹諾酮類抗生素時空分
布及其風(fēng)險評估[J]. 環(huán)境科學(xué), 2023, 44(4):2223-2233. ZHAO
X Y, CHEN H, ZHAO B, et al. Spatial-temporal distribution and risk
assessment of quinolones antibiotics in soil of Shijiazhuang City[J].
Environmental Science, 2023, 44(4):2223-2233.
[19] RICO A, OLIVEIRA R, MCDONOUGH S, et al. Use, fate and
ecological risks of antibiotics applied in Tilapia cage farming in
Thailand[J]. Environmental Pollution, 2014, 191:8-16.
[20] MA Y, LI M, WU M, et al. Occurrences and regional distributions of
20 antibiotics in water bodies during groundwater recharge[J]. Science
of the Total Environment, 2015, 518:498-506.
[21] SEIFRTOVá M, NOVáKOVá L, LINO C, et al. An overview of
analytical methodologies for the determination of antibiotics in
environmental waters[J]. Analytica Chimica Acta, 2009, 649(2):158-
179.
[22] HALLING-S?RENSEN B. Algal toxicity of antibacterial agents used
in intensive farming[J]. Chemosphere, 2000, 40(7):731-739.
[23] KüMMERER K. Antibiotics in the aquatic environment-a reviewpart
I[J]. Chemosphere, 2009, 75(4):417-434.
[24] DU J, LIU Q, PAN Y, et al. The research status, potential hazards and
toxicological mechanisms of fluoroquinolone antibiotics in the
environment[J]. Antibiotics, 2023, 12(6):1058.
[25] ANDREOZZI R, RAFFAELE M, NICKLAS P. Pharmaceuticals in
STP effluents and their solar photodegradation in aquatic environment
[J]. Chemosphere, 2003, 50(10):1319-1330.
[26] XU N, SUN W, ZHANG H, et al. Plasma and tissue kinetics of
enrofloxacin and its metabolite, ciprofloxacin, in yellow catfish
(Pelteobagrus fulvidraco) after a single oral administration at
different temperatures[J]. Comparative Biochemistry and Physiology
Part C:Toxicology amp; Pharmacology, 2023, 266:109554.
[27] WANG F, GAO J, ZHAI W, et al. Effects of antibiotic norfloxacin on
the degradation and enantioselectivity of the herbicides in aquatic
environment[J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2021, 208:
111717.
[28] VAN DOORSLAER X, DEWULF J, VAN LANGENHOVE H, et al.
Fluoroquinolone antibiotics:an emerging class of environmental
micropollutants[J]. Science of the Total Environment, 2014, 500:250-
269.
[29] 劉明亮. 喹諾酮類抗菌藥在不同介質(zhì)中的理化性質(zhì)[J]. 國外醫(yī)藥
(抗生素分冊), 2006(1):22 - 34. LIU M L. Physicochemical
properties of quinolone antibiotics in different media[J]. World Notes
on Antibiotics, 2006(1):22-34.
[30] HU Y, HABIBUL N, HU Y, et al. Chemical speciation of
ciprofloxacin in aqueous solution regulates its phytotoxicity and
uptake by rice(Oryza sativa L.)[J]. Science of the Total Environment,
2021, 771:144787.
[31] ?VAN?AROVá M, MOEDER M, FILIPOVá A, et al.
Biotransformation of fluoroquinolone antibiotics by ligninolytic fungimetabolites,
enzymes and residual antibacterial activity[J].
Chemosphere, 2015, 136:311-320.
[32] 張靜, 于倩, 丁亮亮, 等. 基于密度泛函理論的微氣泡臭氧化諾氟
沙星降解途徑與毒性評估[J]. 環(huán)境化學(xué), doi:10.7524/j.issn.0254-
6108.2023122102. ZHANG J, YU Q, DING L L, et al. Degradation
pathway and toxicity assessment of microbubble ozonation of
norfloxacin based on density functional theory[J]. Environmental
Chemistry, doi:10.7524/j.issn.0254-6108.2023122102.
[33] 溫麗聯(lián), 宋金明, 李學(xué)剛, 等. 氟喹諾酮類合成藥物的生物地球化
學(xué)行為及生態(tài)環(huán)境效應(yīng)[J]. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報, 2023, 34(6):1680-
1692. WEN L L, SONG J M, LI X G, et al. Biogeochemical behavior
and ecological environmental effects of fluoroquinolones[J]. Chinese
Journal of Applied Ecology, 2023, 34(6):1680-1692.
[34] SU Z, WANG K, YANG F, et al. Antibiotic pollution of the Yellow
River in China and its relationship with dissolved organic matter:
distribution and source identification[J]. Water Research, 2023, 235:
119867.
[35] ZHAO L B, XU K, JUNEAU P, et al. Light modulates the effect of
antibiotic norfloxacin on photosynthetic processes of Microcystis
aeruginosa[J]. Aquatic Toxicology, 2021, 235:105826.
[36] PARK Y, SON J. Phytotoxicity and accumulation of antibiotics in
water lettuce(Pistia stratiotes) and parrot feather(Myriophyllum
aquaticum) plants under hydroponic culture conditions[J]. Applied
Sciences-Basel, 2022, 12(2):630.
[37] KHAN K Y, LI G, DU D, et al. Impact of polystyrene microplastics
with combined contamination of norfloxacin and sulfadiazine on
Chrysanthemum coronarium L. [J]. Environmental Pollution, 2023,
316:120522.
[38] MITTLER R, ZANDALINAS S I, FICHMAN Y, et al. Reactive
oxygen species signalling in plant stress responses[J]. Nature Reviews
Molecular Cell Biology, 2022, 23(10):663-679.
[39] KHAN K Y, ALI B, ZHANG S, et al. Phytotoxic effects on chloroplast
and UHPLC-HRMS based untargeted metabolomic responses in
Allium tuberosum Rottler ex Sprengel(Chinese leek) exposed to
antibiotics[J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2022, 234:
113418.
[40] LI N, WANG K, LV Y, et al. Silicon enhanced the resistance of
Chinese cabbage(Brassica rapa L. ssp. pekinensis)to ofloxacin on the
growth, photosynthetic characteristics and antioxidant system[J].
Plant Physiology and Biochemistry, 2022, 175:44-57.
[41] 孔佳茜, 趙銘森, 孟曉康, 等. PEG模擬干旱脅迫對大麻種子萌發(fā)
的影響[J]. 種子, 2020, 39(9):26-30. KONG J Q, ZHAO M S,
MENG X K, et al. Effects of PEG simulated drought stress on seed
germination of Cannabis sativa[J]. Seed, 2020, 39(9):26-30.
[42] GOMES M P, RICHARDI V S, BICALHO E M, et al. Effects of
ciprofloxacin and roundup on seed germination and root development
of maize[J]. Science of the Total Environment, 2019, 651:2671-2678.
[43] GOMES M P, ROCHA D C, MOREIRA DE BRITO J C, et al.
Emerging contaminants in water used for maize irrigation:economic
and food safety losses associated with ciprofloxacin and glyphosate[J].
Ecotoxicology and Environmental Safety, 2020, 196:110549.
[44] 鄧世杰, 馬辰宇, 嚴(yán)巖, 等. 3種抗生素對黑麥草種子萌發(fā)的生態(tài)毒
性效應(yīng)[J]. 生態(tài)毒理學(xué)報, 2019, 14(3):279-285. DENG S J, MA
C Y, YAN Y, et al. Ecotoxicological effects of three antibiotics on
seed germination of Lolium perenne[J]. Asian Journal of Ecotoxicology,
2019, 14(3):279-285.
[45] 范碩, 張小娜, 侯艷紅, 等. 抗生素對油菜種子及幼苗生物效應(yīng)研
究[J]. 種子, 2022, 41(4):86-90. FAN S, ZHANG X N, HOU Y H,
et al. Bioeffects of antibiotic treatments on seed and seedling of
Brassica campestris[J]. Seed, 2022, 41(4):86-90.
[46] 鄭曦, 張凱. 常見抗生素對玉米種子萌發(fā)和幼苗生長的影響[J]. 種
子, 2019, 38(11):51 - 56. ZHENG X, ZHANG K. Effects of
common antibiotics on the seed germination and the seedling growth
of maize[J]. Seed, 2019, 38(11):51-56.
[47] 范惠冬, 王厚繼, 李阿紅, 等. 糞肥中殘留抗生素對不同蔬菜種子
萌發(fā)過程中胚根伸長及子葉葉綠素合成的影響[J]. 黑龍江農(nóng)業(yè)科
學(xué), 2022(3):54-59. FAN H D, WANG H J, LI A H, et al. Effects
of antibiotics residues in manure on radicle elongation and
chlorophyll synthesis in cotyledon during vegetable seed germination
[J]. Heilongjiang Agricultural Sciences, 2022(3):54-59.
[48] BAO Y, PAN C, LI D, et al. Stress response to oxytetracycline and
microplastic-polyethylene in wheat(Triticum aestivum L.) during
seed germination and seedling growth stages[J]. Science of the Total
Environment, 2022, 806:150553.
[49] LUO Y, LIANG J, ZENG G, et al. Evaluation of tetracycline
phytotoxicity by seed germination stage and radicle elongation stage
tests: a comparison of two typical methods for analysis[J].
Environmental Pollution, 2019, 251:257-263.
[50] 鄭汝青, 楊劍, 周玲, 等. 抗菌藥對紫花苜蓿萌發(fā)的生態(tài)毒性作用
[J]. 南方農(nóng)業(yè)學(xué)報, 2021, 52(9):2457-2464. ZHENG R Q, YANG
J, ZHOU L, et al. Ecological toxicity of antibiotics on the germination
of Medicago sativa[J]. Journal of Southern Agriculture, 2021, 52(9):
2457-2464.
[51] 黃世聰, 陳麗珂, 張政杰, 等. 四環(huán)素對不同品種蔬菜毒性閾值及
其敏感性分布[J]. 生態(tài)環(huán)境學(xué)報, 2023, 32(11):1988-1995.
HUANG S C, CHEN L K, ZHANG Z J, et al. Toxicity thresholds of
tetracycline to varieties of vegetables and its species sensitivity
distributions[J]. Ecology and Environmental Sciences, 2023, 32(11):
1988-1995.
[52] 王磊, 王金花, 王軍, 等. 四種抗生素對小麥玉米高粱三種作物種
子芽與根伸長的影響[J]. 農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報, 2017, 36(2):216-
222. WANG L, WANG J H, WANG J, et al. Effects of four
antibiotics on seed germination and root elongation of wheat, maize
and sorghum[J]. Journal of Agro-Environment Science, 2017, 36(2):
216-222.
[53] XU L, LI Z, ZHUANG B, et al. Enrofloxacin perturbs nitrogen
transformation and assimilation in rice seedlings(Oryza sativa L.)[J].
Science of the Total Environment, 2022, 802:149900.
[54] WANG R, WANG J, WANG J, et al. Growth inhibiting effects of four
antibiotics on cucumber, rape and Chinese cabbage[J]. Bulletin of
Environmental Contamination and Toxicology, 2019, 103:187-192.
[55] MUKHTAR A, MANZOOR M, GUL I, et al. Phytotoxicity of different
antibiotics to rice and stress alleviation upon application of organic
amendments[J]. Chemosphere, 2020, 258:127353.
[56] DENG Y, QIAN X, WU Y, et al. Effects of ciprofloxacin on
Eichhornia crassipes phytoremediation performance and physiology
under hydroponic conditions[J]. Environmental Science and Pollution
Research, 2022, 29(31):47363-47372.
[57] JIN J J, XU L L, ZHANG S Y, et al. Oxidative response of rice(Oryza
sativa L.)seedlings to quinolone antibiotics and its correlation with
phyllosphere microbes and antibiotic resistance genes[J]. Science of
the Total Environment, 2023, 867:161544.
[58] 張曉晗, 萬甜, 程文, 等. 喹諾酮類和磺胺類抗生素對綠藻生長的
影響[J]. 水資源與水工程學(xué)報, 2018, 29(4):115-120. ZHANG X
H, WAN T, CHENG W, et al. Effects of quinolones and sulfonamides
on the growth of green algae[J]. Journal of Water Resources and Water
Engineering, 2018, 29(4):115-120.
[59] LIN Y, LI T, ZHANG Y. Effects of two typical quinolone antibiotics in
the marine environment on Skeletonema costatum[J]. Frontiers in
Marine Science, 2024, 11:11.
[60] 徐海紅, 王純, 張肇恒, 等. 氟喹諾酮類抗生素對淡水微藻的毒性
效應(yīng)研究[J]. 環(huán)境科學(xué)與技術(shù), 2024, 47(1):35-42. XU H H,
WANG C, ZHANG Z H, et al. Study on the toxic effect of three
fluoroquinolone antibiotics on freshwater microalgae[J].
Environmental Science amp; Technology, 2024, 47(1):35-42.
[61] LIU L, LIU Y, LIU C, et al. Potential effect and accumulation of
veterinary antibiotics in Phragmites australis under hydroponic
conditions[J]. Ecological Engineering, 2013, 53:138-143.
[62] ZHANG Z H, LIU X N, LV Y, et al. Grafting resulting in alleviating
tomato plant oxidative damage caused by high levels of ofloxacin[J].
Environmental Pollution, 2021, 286:117331.
[63] ZHAO H M, HUANG H B, DU H, et al. Intraspecific variability of
ciprofloxacin accumulation, tolerance, and metabolism in Chinese
flowering cabbage(Brassica parachinensis)[J]. Journal of Hazardous
Materials, 2018, 349:252-261.
[64] LIU X, LV Y, GAO S, et al. Ofloxacin induces etiolation in Welsh
onion leaves[J]. Chemosphere, 2021, 267:128918.
[65] ZHAO C, RU S, CUI P, et al. Multiple metabolic pathways of
enrofloxacin by Lolium perenne L. :ecotoxicity, biodegradation, and
key driven genes[J]. Water Research, 2021, 202:117413.
[66] ZHANG P, SHEN L Q, CHEN J Y, et al. Comparative study of the
toxicity mechanisms of quinolone antibiotics on soybean seedlings:
insights from molecular docking and transcriptomic analysis[J].
Science of the Total Environment, 2023, 896:165254.
[67] KHAN K Y, ALI B, ZHANG S, et al. Effects of antibiotics stress on
growth variables, ultrastructure, and metabolite pattern of Brassica
rapa ssp. chinensis[J]. Science of the Total Environment, 2021, 778:
146333.
[68] AGATHOKLEOUS E, KITAO M, CALABRESE E J. Human and
veterinary antibiotics induce hormesis in plants:scientific and
regulatory issues and an environmental perspective[J]. Environment
International, 2018, 120:489-495.
[69] CHEN J, XU H, SUN Y, et al. Interspecific differences in growth
response and tolerance to the antibiotic sulfadiazine in ten clonal
wetland plants in South China[J]. Science of the Total Environment,
2016, 543:197-205.
[70] KITAMURA R S A, BRITO J C M, SILVA DE ASSIS H C, et al.
Physiological responses and phytoremediation capacity of floating and
submerged aquatic macrophytes exposed to ciprofloxacin[J].
Environmental Science and Pollution Research, 2023, 30(1):622-
639.
[71] CHEN S, ZHANG W, LI J, et al. Ecotoxicological effects of
sulfonamides and fluoroquinolones and their removal by a green alga
(Chlorella vulgaris) and a cyanobacterium (Chrysosporum
ovalisporum)[J]. Environmental Pollution, 2020, 263:114554.
[72] XIONG J Q, KURADE M B, KIM J R, et al. Ciprofloxacin toxicity and
its co-metabolic removal by a freshwater microalga Chlamydomonas
mexicana[J]. Journal of Hazardous Materials, 2017, 323:212-219.
[73] LI Z, CHEN J, XU L, et al. Quinolone antibiotics inhibit the rice
photosynthesis by targeting photosystem Ⅱ center protein:
generational differences and mechanistic insights[J]. Environmental
Science amp; Technology, 2024, 58(26):11280-11291.
[74] YU J, HAN T, HOU Y, et al. Integrated transcriptomic, proteomic and
metabolomic analysis provides new insights into tetracycline stress
tolerance in pumpkin[J]. Environmental Pollution, 2024, 340:
122777.
[75] YAN C, SONG S, WANG W, et al. Screening diverse soybean
genotypes for drought tolerance by membership function value based
on multiple traits and drought-tolerant coefficient of yield[J]. BMC
Plant Biology, 2020, 20:1-15.
[76] LONG J, DONG M, WANG C, et al. Effects of drought and salt stress
on seed germination and seedling growth of Elymus nutans[J]. PeerJ,
2023, 11:e15968.
[77] BAKIROV A, ZHANG Y, ZHANG Q, et al. Screening of salt
tolerance traits and the salt tolerance evaluation method in Brassica
napus at the seed germination stage[J]. Italian Journal of Agronomy,
2022, 17(2):2011.
[78] KUMARI S, NAZIR F, MAHESHWARI C, et al. Plant hormones and
secondary metabolites under environmental stresses:shedding light
on defense molecules[J]. Plant Physiology and Biochemistry, 2023:
108238.
[79] 周恒, 謝彥杰. 植物氧化脅迫信號應(yīng)答的研究進(jìn)展[J]. 生物技術(shù)通
報, 2023, 39:1-8. ZHOU H, XIE Y J. Recent progress in oxidative
stress signaling and response in plants[J]. Biotechnology Bulletin,
2023, 39:1-8.
[80] 趙里曼, 牟美睿, 武麗娟, 等. 環(huán)丙沙星脅迫對小麥生理及代謝的
影響[J]. 西南農(nóng)業(yè)學(xué)報, 2022, 35(10):2311-2318. ZHAO L M,
MOU M R, WU L J, et al. Effects of ciprofloxacin stress on physiology
and metabolism of wheat[J]. Southwest China Journal of Agricultural
Sciences, 2022, 35(10):2311-2318.
[81] RIAZ L, MAHMOOD T, COYNE M S, et al. Physiological and
antioxidant response of wheat(Triticum aestivum) seedlings to
fluoroquinolone antibiotics[J]. Chemosphere, 2017, 177:250-257.
[82] JIN M, YANG Y, ZHAO C, et al. ROS as a key player in quinolone
antibiotic stress on Arabidopsis thaliana:from the perspective of
photosystem function, oxidative stress and phyllosphere microbiome
[J]. Science of the Total Environment, 2022, 848:157821.
[83] SINGH V, PANDEY B, SUTHAR S. Phytotoxicity and degradation of
antibiotic ofloxacin in duckweed(Spirodela polyrhiza) system[J].
Ecotoxicology and Environmental Safety, 2019, 179:88-95.
[84] GOMES M P, GON?ALVES C A, DE BRITO J C M, et al.
Ciprofloxacin induces oxidative stress in duckweed(Lemna minor L.):
implications for energy metabolism and antibiotic-uptake ability[J].
Journal of Hazardous Materials, 2017, 328:140-149.
[85] LI J J, CHAO J J, MCKAY R M L, et al. Antibiotic pollution promotes
dominance by harmful cyanobacteria:a case study examining
norfloxacin exposure in competition experiments[J]. Journal of
Phycology, 2021, 57(2):677-688.
[86] ROCHA D C, DA SILVA ROCHA C, TAVARES D S, et al.
Veterinary antibiotics and plant physiology:an overview[J]. Science of
the Total Environment, 2021, 767:144902.
[87] 付雨, 劇澤佳, 付耀萱, 等. 白洋淀優(yōu)勢水生植物中喹諾酮類抗生
素的生物富集特征及其與環(huán)境因子相關(guān)性研究[J]. 環(huán)境科學(xué)學(xué)
報, 2021, 41(9):3620-3630. FU Y, JU Z J, FU Y X, et al. The
bioaccumulation of quinolones(QNs) in the dominant macrophytes
and the correlation with environmental factors in Baiyangdian Lake[J].
Acta Scientiae Circumstantiae, 2021, 41(9):3620-3630.
[88] FAN P, LIU C, KE Z, et al. Growth and physiological responses in a
submerged clonal aquatic plant and multiple-endpoint assessment
under prolonged exposure to ciprofloxacin[J]. Ecotoxicology and
Environmental Safety, 2022, 239:113690.
[89] 沈洪艷, 王亞萌. 諾氟沙星對黑麥草的生物毒性效應(yīng)研究[J]. 安全
與環(huán)境學(xué)報, 2020, 20(3):1169-1175. SHEN H Y, WANG Y M.
Effect of norfloxacin on biological toxicity of ryegrass[J]. Journal of
Safety and Environment, 2020, 20(3):1169-1175.
[90] WAHID F, BAIG S, BHATTI M F, et al. Growth responses and
rubisco activity influenced by antibiotics and organic amendments
used for stress alleviation in Lactuca sativa[J]. Chemosphere, 2021,
264:128433.
[91] DU Y, WANG J, ZHU F, et al. Comprehensive assessment of three
typical antibiotics on cyanobacteria(Microcystis aeruginosa):the
impact and recovery capability[J]. Ecotoxicology and Environmental
Safety, 2018, 160:84-93.
[92] AQEEL U, AFTAB T, KHAN M M A, et al. Excessive copper induces
toxicity in Mentha arvensis L. by disturbing growth, photosynthetic
machinery, oxidative metabolism and essential oil constituents[J].
Plant Stress, 2023, 8:100161.
[93] SOHAIL, KAMRAN K, KEMMERLING B, et al. Nano zinc elicited
biochemical characterization, nutritional assessment, antioxidant
enzymes and fatty acid profiling of rapeseed[J]. PLoS One, 2020, 15
(11):e0241568.
[94] RAMOS A Q, RAMOS Y M, CAMATICONA N M Q, et al.
Deciphering ciprofloxacin′s impact on growth attributes and
antioxidant compounds in Pasankalla Quinoa[J]. Agronomy, 2023, 13
(7):1738.
[95] TONG X, WANG X, HE X, et al. Effects of antibiotics on nitrogen
uptake of four wetland plant species grown under hydroponic culture
[J]. Environmental Science and Pollution Research, 2019, 26:10621-
10630.
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