徐 鵬,張佑紅,楊 益,彭繼明,陳 龍,靖志強(qiáng),危 威,馬 靜,秦 琴
(武漢工程大學(xué)化工與制藥學(xué)院,湖北 武漢 430074)
桿狀病毒表達(dá)載體系統(tǒng)(Baculovirus expression vector system, BEVS)由于其表達(dá)的高效性、安全性等諸多優(yōu)點(diǎn),在重組蛋白生產(chǎn)、疫苗的研制以及生物殺蟲劑等方面具有很高的應(yīng)用前景[1].為了提高重組蛋白或病毒的產(chǎn)量,必須準(zhǔn)確測(cè)定桿狀病毒與細(xì)胞的濃度比,即感染復(fù)數(shù)(multiplicity of infection,MOI)[2-3].目前病毒滴度的測(cè)定方法主要是蝕斑法和終點(diǎn)稀釋法(EPDA)[4-5],兩種方法都是利用病毒去感染細(xì)胞而間接得到病毒的滴度,測(cè)量過(guò)程繁瑣,耗時(shí)長(zhǎng),且不同實(shí)驗(yàn)者之間測(cè)得的結(jié)果相差較大.
隨著近年來(lái)流式細(xì)胞術(shù)(FCM)的不斷發(fā)展,其檢測(cè)范圍不再局限于細(xì)胞,它已廣泛應(yīng)用于生物醫(yī)學(xué)的各個(gè)領(lǐng)域.Marie和Brussaard[6-7]等采用流式細(xì)胞儀通過(guò)特異性核酸熒光染料SYBR Green I染色成功地檢測(cè)并計(jì)數(shù)海洋病毒.在此基礎(chǔ)上,Shen[8]首次利用流式細(xì)胞術(shù)計(jì)數(shù)桿狀病毒,但染色效果不好.本實(shí)驗(yàn)針對(duì)染色過(guò)程中的主要影響因素進(jìn)行優(yōu)化,驗(yàn)證了改進(jìn)后方法的重復(fù)性和線性性,并對(duì)流式細(xì)胞術(shù)與終點(diǎn)稀釋法的計(jì)數(shù)結(jié)果進(jìn)行比較.
野生型的苜蓿銀紋夜蛾核型多角體病毒(wide type AcNPV)由武漢大學(xué)友好提供.
SYBR Green I(10 000×)和黃綠熒光微球(1μm)均購(gòu)于Molecular Probes公司;多聚甲醛購(gòu)于生工生物工程有限公司;Triton X-100購(gòu)于Amresco公司;FACSCalibur流式細(xì)胞儀,BD公司生產(chǎn).
病毒樣品制備的主要步驟可分為固定、破膜和染色.待測(cè)病毒經(jīng)磷酸鹽緩沖液(PBS,pH=8.0)稀釋后,加入一定量的多聚甲醛4 ℃下固定30 min,再放入-80 ℃超低溫冰箱15 min,然后置于室溫水浴中5 min,加入一定量的Triton X-100室溫放置5 min,最后加入SYBR Green I進(jìn)行染色,具體的影響因素及水平如表1所示.在上機(jī)檢測(cè)之前,加入已知濃度的黃綠熒光微球作為內(nèi)參.
表1 病毒染色過(guò)程的影響因素及水平
采用BD公司FACSCalibur流式細(xì)胞儀檢測(cè)病毒樣品.前向散射光(FSC-H)、側(cè)向散射光(SSC-H)和綠色熒光(FL1-H)均以對(duì)數(shù)模式獲取.以FL1-H設(shè)定閾值,減少背景干擾.CellQuest軟件分析數(shù)據(jù),在SSC-H和FL1-H的雙參數(shù)散點(diǎn)圖上確定病毒和微球的位置(圖1).
圖1 SSC-H vs. FL1-H雙參數(shù)散點(diǎn)圖
“門”R1內(nèi)為加入的微球,“門”R2內(nèi)為待測(cè)的病毒.根據(jù)R1/R2可以推算出樣品病毒的滴度(1).
(1)
將得到的樣品病毒滴度乘以稀釋倍數(shù)便是原病毒樣本中的病毒滴度.
線性性:PBS緩沖液稀釋桿狀病毒1000倍,取稀釋后不同體積(5~640 μL)的病毒測(cè)定其滴度,做3個(gè)重復(fù),計(jì)算相關(guān)系數(shù)R2.重復(fù)性:對(duì)同一個(gè)病毒樣本計(jì)數(shù)8次,計(jì)算變異系數(shù)CV.
為了比較改進(jìn)后的流式測(cè)量方法與傳統(tǒng)的病毒測(cè)定方法的準(zhǔn)確性,采用終點(diǎn)稀釋法[4]對(duì)同一病毒樣本進(jìn)行檢測(cè),具體如下:a.將處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的Sf9細(xì)胞接種于96孔板中(100 μL/孔),27 ℃下孵育24 h.b.以新鮮培養(yǎng)基連續(xù)10倍稀釋桿狀病毒(10-4~10-10).c.96孔板去上清,于每孔加入不同稀釋度的病毒100 μL,每稀釋度重復(fù)12孔,對(duì)照孔加入100 μL的新鮮培養(yǎng)基代替病毒液,27 ℃下孵育5~7 d.d.按Spearman-Karber法[9]計(jì)算病毒樣本的TCID50值.重復(fù)測(cè)量5次,計(jì)算變異系數(shù)CV.
圖2顯示了不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)的多聚甲醛固定對(duì)桿狀病毒計(jì)數(shù)的影響.采用多聚甲醛固定能夠維持病毒的原有形態(tài),提高病毒的計(jì)數(shù),但當(dāng)其質(zhì)量分?jǐn)?shù)大于0.1%后病毒的計(jì)數(shù)隨之減少.這主要是由于甲醛與DNA的相互作用,削弱了染料SYBR Green I與DNA的結(jié)合.病毒顆粒的熒光強(qiáng)度也會(huì)隨著多聚甲醛質(zhì)量分?jǐn)?shù)的增加而降低.
圖2 多聚甲醛固定的影響
注: 規(guī)定未經(jīng)固定處理的樣本熒光強(qiáng)度為1.
破膜的主要原理是利用驟冷驟熱或破膜劑的溶脂作用增強(qiáng)病毒顆粒的通透性,以便于染料的進(jìn)入.從圖3(a)可知,病毒樣本經(jīng)過(guò)凍融處理后,熒光強(qiáng)度逐漸增強(qiáng),但病毒計(jì)數(shù)卻隨之而減少,這可能是由于凍融導(dǎo)致一部分病毒的DNA與染料不能有效地結(jié)合.圖3(b)是Triton X-100終質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.2%的直方圖,與圖1相比較可知:經(jīng)破膜劑處理后,病毒的熒光信號(hào)分散,背景噪音增強(qiáng),導(dǎo)致兩峰交疊,不利于病毒的準(zhǔn)確計(jì)數(shù).
(a)凍融處理的影響
(b)破膜劑處理的影響
Fig.3 Effects of permeabilization on baculovirus counts
注: 規(guī)定未經(jīng)凍融處理的樣本熒光強(qiáng)度為1.
孵育過(guò)程對(duì)病毒計(jì)數(shù)的影響顯著(圖4).孵育溫度的提高,一方面可以使病毒外殼失活,增強(qiáng)其通透性,另一方可以增強(qiáng)染料的活性,增加計(jì)數(shù)結(jié)果(圖4a),但溫度過(guò)高對(duì)染色結(jié)果也不利.孵育時(shí)間不足,將導(dǎo)致染色不充分,病毒峰與背景峰交疊,不能準(zhǔn)確計(jì)數(shù),當(dāng)孵育時(shí)間大于10 min后,計(jì)數(shù)結(jié)果保持穩(wěn)定(圖4b).
(a)孵育溫度的影響
(b)孵育時(shí)間的影響
Fig.4 Effects of incubation process on baculovirus counts
對(duì)于重復(fù)性,8次實(shí)驗(yàn)結(jié)果的平均值為1.22×1010病毒顆粒/mL,最大值為1.43×1010病毒顆粒/mL,最小值為1.01×1010病毒顆粒/mL,CV值為2.4%,這表明該方法的重復(fù)性較好.對(duì)于線性性,從圖5可知,病毒滴度在106~107病毒顆粒/mL范圍內(nèi),線性性較好(R2=0.999 8).
圖5 不同加入體積的病毒計(jì)數(shù)
注:固定前所有樣本均加入PBS緩沖液稀釋至960 μL終體積.
分別采取流式細(xì)胞術(shù)和終點(diǎn)稀釋法測(cè)定同一批病毒的滴度,測(cè)量結(jié)果如表2所示.從表2可知,流式細(xì)胞術(shù)的重復(fù)性(CV=2.4%)明顯優(yōu)于終點(diǎn)稀釋法(CV=25.7%).表中流式細(xì)胞術(shù)的測(cè)量結(jié)果是終點(diǎn)稀釋法的13.7倍,這是因?yàn)榱魇郊?xì)胞術(shù)是直接計(jì)數(shù)病毒,而終點(diǎn)稀釋法測(cè)量的是感染單位.一個(gè)感染單位對(duì)應(yīng)多個(gè)病毒顆粒,所以流式測(cè)量結(jié)果大于終點(diǎn)稀釋法.
表2 終點(diǎn)稀釋法與流式細(xì)胞術(shù)測(cè)量結(jié)果的比較
病毒最佳染色條件:4 ℃下,0.1%的多聚甲醛固定病毒樣本30 min,然后加入SYBR Green I在80 ℃下避光染色10 min.經(jīng)改進(jìn)后的流式細(xì)胞術(shù)測(cè)定桿狀病毒的方法能夠快速而準(zhǔn)確的測(cè)定桿狀病毒的滴度.
參考文獻(xiàn):
[1]Thomas A K, Condreay J P, Donald L J. Baculovirus as versatile vectors for protein expression in insect and mammalian cells[J]. Nat Biotechnol, 2005, 23(5): 567-575.
[2]Radford K M, Cavegn C, Bertrand M, et al. The indirect effects of multiplicity of infection on baculovirus expressed proteins in insect cells secreted and non-secreted products[J]. Cytotechnology, 1997, 24: 73-81.
[3]Zhang Y H, Enden G, Merchuk J C. Insect cells-Baculovirus system: Factors affecting growth and low MOI infection[J]. Biochem Eng J, 2005, 27(1): 8-16.
[4]O'Reilly D R, Miller L K, Luckow V A. Baculovirus Expression Vectors: A Laboratory Manual[M]. New York: Oxford University Press, 1994: 132-134.
[5]Hink W F, Vail P V. A plaque assay for titration of Alfalfa looper nuclear polyhedrosis virus in cabbage looper (TN-368) cell line[J]. J Invertebr Pathol, 1973, 22: 168-174.
[6]Marie D, Brussaard C P D, Thyrhaug R, et al. Enumeration of marine viruses in culture and natural samples by flow cytometry[J]. Appl Environ Microbiol, 1999, 65(1): 45-52.
[7]Brussaard C P D. Optimization of procedures for counting viruses by flow cytometry[J]. Appl Environ Microbiol, 2004, 70(3): 1506-1513.
[8]Shen C F, Meghrous J, Kamen A. Quantitation of baculovirus particles by flow cytometry[J]. J Virol Methods, 2002, 105(2): 321-330.
[9]Fineey D J. Statistical Method in Biological Assay[M]. 3rd ed. London: Charles Griffin & Co., 1978: 394-401.