劉偉卿 周 靜
藥物生物轉(zhuǎn)化是指藥物在體內(nèi)經(jīng)歷的化學(xué)結(jié)構(gòu)的變化過程。大部分藥物經(jīng)生物轉(zhuǎn)化后藥理活性降低甚至消失,最終隨尿和糞便排除體外,但也有一些藥物通過生物轉(zhuǎn)化后藥理活性增強(qiáng)或毒性增加。因此,藥物生物轉(zhuǎn)化不僅影響藥物作用的強(qiáng)弱和持續(xù)時間的長短,而且還會影響藥物治療的安全性,具有重要的現(xiàn)實(shí)意義。對于創(chuàng)新藥物,需了解其在體內(nèi)的生物轉(zhuǎn)化情況。通過藥物生物轉(zhuǎn)化研究,發(fā)現(xiàn)并確定產(chǎn)生藥理作用的物質(zhì)基礎(chǔ),掌握藥物生物轉(zhuǎn)化規(guī)律,對于設(shè)計(jì)更合理的給藥途徑、給藥方法、給藥劑量,以及對制劑處方的設(shè)計(jì)、工藝改革和臨床都具有指導(dǎo)意義。
藥物生物轉(zhuǎn)化的主要部位在肝臟,肝外生物轉(zhuǎn)化場所有:消化道、肺、皮膚、腦、鼻黏膜、腎臟等,也可被腸內(nèi)細(xì)菌轉(zhuǎn)化。肝臟外器官的生物轉(zhuǎn)化活性比肝臟要低得多,所以至今為止對藥物生物轉(zhuǎn)化的研究大多以肝臟為主。
傳統(tǒng)體內(nèi)方法是指在動物或人服藥過后,經(jīng)過一段時間后收集血液、尿液和膽汁等生物樣品(動物還可以獲得組織器官等實(shí)驗(yàn)樣本)。然后用溶劑提取或采取柱色譜或薄層制備,有的經(jīng)HPLC制備得到較純品,再對原藥及生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物進(jìn)行紫外、紅外、質(zhì)譜、磁共振等光譜分析,推斷生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的結(jié)構(gòu),并用化學(xué)方法合成生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的對照品,進(jìn)一步驗(yàn)證其結(jié)構(gòu)。常用的動物有小鼠、大鼠、家兔和豚鼠等。
該方法可以綜合地考慮各種體內(nèi)因素對藥物的影響,能夠真實(shí)全面地反映藥物生物轉(zhuǎn)化的體內(nèi)整體特征。車慶明等[1]從口服黃芩苷的人尿液中,發(fā)現(xiàn)并鑒定了3個主要生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的化學(xué)結(jié)構(gòu),并確定了黃芩苷元是主要藥物生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的中間體,他們在體內(nèi)共存,構(gòu)成黃芩苷的藥效物質(zhì)基礎(chǔ)。
本法的缺點(diǎn)是難度比較大,許多藥物在生物體內(nèi)的分布都比較廣,加上生物轉(zhuǎn)化的器官和酶系的多樣性,使藥物及其生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物在體內(nèi)的濃度都比較低,檢測具有一定的難度。但是,現(xiàn)代分析技術(shù)的進(jìn)步和分析儀器靈敏度的提高將彌補(bǔ)傳統(tǒng)體內(nèi)方法的不足,充分體現(xiàn)此方法的優(yōu)越性。近年來不斷發(fā)展成熟的色譜-光譜聯(lián)用技術(shù)使得色譜分離和光譜鑒定成為一個連續(xù)的過程,它集色譜的高效分離與光譜的強(qiáng)鑒定能力于一體,分析快速方便,具有其他藥物生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物檢測及結(jié)構(gòu)分析方法所不可比擬的優(yōu)點(diǎn)。丁黎等[2]人通過收集給藥后大鼠膽汁,以液相/二級管陣列檢測器/質(zhì)譜檢測器聯(lián)用(LC/DAD/MSD)技術(shù)為基礎(chǔ),確定了鹽酸非洛普的Ⅱ相生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物。
微透析取樣研究法是20世紀(jì)60年代中期發(fā)展起來的在體藥物生物轉(zhuǎn)化研究方法,此后的20年間進(jìn)展不大,到80年代中期才有了長足的發(fā)展。微透析取樣法最初主要用于研究腦內(nèi)神經(jīng)遞質(zhì)的釋放。
微透析取樣裝置主要由微透析探針和微量取樣泵組成。長4~10mm的再生纖維透析膜固定在一根微徑導(dǎo)液管上構(gòu)成探針,外徑一般300μm左右,取樣窗口4~10mm;透析膜前有保護(hù)頭,可除去相對分子質(zhì)量>50×103的分子。其原理如下:微型泵將灌注液泵入探針,灌注液與細(xì)胞外液組成完全一致時,透析膜不再發(fā)生水和離子交換,只有小分子物質(zhì)按濃度剃度原理進(jìn)、出探針?biāo)袢氲纳憝h(huán)境。進(jìn)入膜內(nèi)腔的位灌注液,透出膜內(nèi)腔的為透析液。
微透析取樣研究法可在清醒、自由活動狀態(tài)下的動物體內(nèi)多個器官以及同一器官多個位點(diǎn)連續(xù)取樣的實(shí)時在線分析;可連續(xù)跟蹤體內(nèi)多種化合物隨時間的變化;取樣無需勻漿過程,可真實(shí)代表取樣點(diǎn)化合物的濃度,且樣品因不含蛋白質(zhì)、酶等大分子物質(zhì),可不經(jīng)預(yù)處理直接用于測定;用于研究藥物生物轉(zhuǎn)化,可維持實(shí)際生理?xiàng)l件,消除了傳統(tǒng)藥物生物轉(zhuǎn)化研究中因組織均勻化破壞細(xì)胞隔室造成對生物轉(zhuǎn)化研究結(jié)果的影響,并可獲得有關(guān)藥物生物轉(zhuǎn)化中間過程的信息,而傳統(tǒng)方法只能了解藥物的最終產(chǎn)物,不能反映其中間過程。此外,微透析取樣研究法還具有能埋入動物體液或組織中、對周圍環(huán)境損傷很小的特點(diǎn)。由于取樣少,不會造成小動物失血過多而死亡,因此實(shí)驗(yàn)可以在同一動物身上進(jìn)行,從而避免了個體差異對試驗(yàn)結(jié)論準(zhǔn)確性的影響。
隨著各種類型微透析探針出現(xiàn)和商品化,以及微量快速、靈敏的分析檢測手段的不斷完善,微透析取樣技術(shù)結(jié)合色譜分析已成為藥物生物轉(zhuǎn)化研究的強(qiáng)有力手段。
肝臟含有大部分的生物轉(zhuǎn)化活性酶,而且具有很高的血流量,是藥物生物轉(zhuǎn)化最重要的器官。目前,肝臟生物轉(zhuǎn)化的體外研究方法中有肝微粒體法、肝細(xì)胞體外溫孵法、肝臟灌流技術(shù)、肝組織切片法、基因組P-450酶系、微透析技術(shù)等。
肝微粒體法有在體和離體兩種方法。前者多首先用腹腔注射苯巴比妥鈉來誘導(dǎo)肝細(xì)胞色素P-450后再給予動物待研究藥物,通過測定原型藥物和其生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物在正常動物和給藥動物血清和組織中的分布來研究藥物,通過測定原型藥物和其生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物在正常動物和給藥動物血清和組織中的分布來研究藥物生物轉(zhuǎn)化。后者是由制備的肝微粒體輔以氧化還原型輔酶,在模擬生理溫度及生理環(huán)境條件下進(jìn)行生化反應(yīng)的體系。此法制備簡單,生物轉(zhuǎn)化時間短,易于重現(xiàn),方便大量操作以積累生物轉(zhuǎn)化樣品供結(jié)構(gòu)研究;同時,該方法可用于對藥酶的抑制及體外生物轉(zhuǎn)化清除等方面的研究,因而應(yīng)用較為普及。目前利用此法研究確定了抗焦慮新藥[5]AF-5的兩個主要生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物;結(jié)合整體動物實(shí)驗(yàn),還基本闡明一葉 堿[6]在大鼠體內(nèi)生物轉(zhuǎn)化的途徑。廣泛應(yīng)用的肝微粒體制備流程[3]如圖1所示。
肝細(xì)胞體外溫孵法同肝微粒體法相似,即以制備的肝細(xì)胞輔以氧化還原型輔酶,在模擬生理溫度及生理環(huán)境條件下進(jìn)行生化反應(yīng)的體系,適于研究蛋白及mRNA水平藥物代謝酶誘導(dǎo)及酶活性,在評估藥物生物轉(zhuǎn)化過程中藥物間的相互作用時,該方法得到廣泛的應(yīng)用。但肝細(xì)胞制備技術(shù)較復(fù)雜,目前以膠原酶灌注技術(shù)為主[7],且體外肝細(xì)胞活性僅能維持4h,不利于儲存和反復(fù)使用。
離體肝灌流法與肝微粒體法、肝細(xì)胞體外溫孵法相比,一方面保留著完整細(xì)胞的天然屏障和營養(yǎng)液的供給,因而能在一段時間內(nèi)保持肝臟的正常生理活性和生化功能;另一方面,具有離體系統(tǒng)的優(yōu)點(diǎn),能夠排除其他器官組織的干擾,可控制受試物質(zhì)的濃度,定量地觀察受試物質(zhì)對肝臟的作用。
Alexandra等[8]利用離體大鼠肝臟一過式灌流方法研究一種新的抗癌藥BR(苯甲酰胺核糖核苷)的體外代謝,分別以Wistar大鼠與TR2大鼠進(jìn)行實(shí)驗(yàn),灌流過程中每隔5rnin取樣1次,監(jiān)測BR及其代謝物,結(jié)果表明,Wistar大鼠灌流液中只有BR及其去氨基產(chǎn)物BR-COOH通過色譜檢測出來,而BAD(苯甲酰胺腺嘌呤雙核苷酸)未檢出TR2大鼠,灌流液的檢測結(jié)果與Wistar大鼠幾乎相同,但在BR與BR-COOH的檢出量上,TR2大鼠組低于Wistar大鼠組18%~23%。同時,應(yīng)用Wistar大鼠分離肝細(xì)胞,對不同濃度的BR(0~3mmol/L)進(jìn)行了溫孵實(shí)驗(yàn),通過檢測,BAD仍然無法檢出。通過對BR的離體肝灌流與肝細(xì)胞體外溫孵實(shí)驗(yàn)結(jié)果比較,均發(fā)現(xiàn)BAD低于檢測限,未檢出,這說明BAD這種活性的代謝產(chǎn)物在大鼠肝臟中代謝率很低,BR-COOH為其主要的代謝途徑,故可推測,BR在人體的癌癥治療中,主要代謝生成為BR-COOH。當(dāng)前,離體肝灌流亦應(yīng)用于對藥物的藥動學(xué)參數(shù)進(jìn)行考察。Christian等[9]運(yùn)用該方法考察了藥物CPT~11在膽汁中的排泄、清除速率及AUC等藥動學(xué)參數(shù),取得了較好的結(jié)果。離體肝灌流法具有器官水平的優(yōu)勢,兼?zhèn)潴w外實(shí)驗(yàn)和整體動物實(shí)驗(yàn)的優(yōu)點(diǎn),更適于定量研究藥物體外代謝行為和特點(diǎn),并能解決在其他的體外肝代謝模型和整體動物實(shí)驗(yàn)中不能得到滿意解決的難點(diǎn),在藥理學(xué)和毒理學(xué)的研究中已受到廣泛的重視,但其對實(shí)驗(yàn)設(shè)備及技術(shù)有一定的要求,一定程度上限制了其應(yīng)用。
該方法的優(yōu)點(diǎn)在于可以保留所有的肝藥酶及細(xì)胞器的活性,對于某些藥物生物轉(zhuǎn)化研究來說,有時采用肝組織切片技術(shù)比肝微粒體孵育更好.但由于該技術(shù)需要切片機(jī)等特殊的設(shè)備,因此近年來已經(jīng)很少被采用。Harris用肝切片技術(shù)研究了紫杉醇的生物轉(zhuǎn)化,得到了3個產(chǎn)物,且與紫杉醇的肝微粒生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物相同,說明了這一技術(shù)在藥物生物轉(zhuǎn)化研究上的可行性。
由于肝臟中藥物生物轉(zhuǎn)化主要是由P-450酶系統(tǒng)催化反應(yīng)的,故可以通過純化的P-450同工酶、P-450混合酶來模擬體內(nèi)肝臟中酶系統(tǒng),與藥物底物溫孵培養(yǎng),來進(jìn)行藥物生物轉(zhuǎn)化研究。
胃腸道是口服藥物的必經(jīng)通道,近來隨著人類對腸道菌不斷認(rèn)識,胃腸道作為藥物生物轉(zhuǎn)化的重要部位越來越引起研究者的重視。藥物在胃腸道各種酶的作用下可發(fā)生生物轉(zhuǎn)化,酶主要包括兩部分,一部分是消化道上皮細(xì)胞中產(chǎn)生的酶,主要是一些結(jié)合酶,另一部分就是消化道菌從產(chǎn)生的酶,主要以分解或還原反應(yīng)為主,其種類比肝臟還多。胃腸道的不同部位具有不同的菌群眾特點(diǎn),如消化道下部主要是厭氧菌,因而也就有不同生物轉(zhuǎn)化特征。
與肝臟相比,腸內(nèi)菌群在藥物生物轉(zhuǎn)化的類型及功能上均有其獨(dú)特之處。肝臟對藥物兼有分解與合成的功能,多數(shù)藥物經(jīng)肝臟生物轉(zhuǎn)化后相對分子質(zhì)量增大,極性增強(qiáng)而易于從體內(nèi)排除,主要表現(xiàn)為解毒作用;腸內(nèi)菌群則幾乎全為分解反應(yīng)使藥物相對分子質(zhì)量減小,極性減弱,脂溶性增強(qiáng),往往伴有藥效及毒性作用的增強(qiáng)。從某種意義上說,腸內(nèi)菌群對藥物的生物轉(zhuǎn)化可視為肝臟的補(bǔ)充或?qū)埂?/p>
在正常飼養(yǎng)條件下飼喂大鼠,絕食過夜,在厭氧條件下按35mg/mL劑量腹腔注射苯巴比妥鈉進(jìn)行麻醉。再開腹、取胃。將胃內(nèi)容物全部洗出,黏附在胃壁上的內(nèi)容物用生理鹽水洗下,與胃內(nèi)容物合并,放入溫孵培養(yǎng)管內(nèi),用厭氧稀釋液定容,37℃預(yù)溫卵培養(yǎng)一段時間(一般為30min)。然后再加入一定濃度的待研究轉(zhuǎn)化藥物,再在37℃培養(yǎng)一段時間或定時取樣分析。此法適合研究胃內(nèi)酶類的藥物結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)化。
在厭氧條件下按上述方法(胃液的生生轉(zhuǎn)化研究)處理大鼠或小鼠,取出腸液,用厭氧稀釋液稀釋后在厭氧培養(yǎng)基內(nèi)厭氧預(yù)溫孵培養(yǎng)一段時間(一般為30min)。然后再加入一定濃度的待研究轉(zhuǎn)化藥物,再在37℃培養(yǎng)一段時間或定時取樣分析。此法適合研究腸內(nèi)細(xì)菌的藥物生物轉(zhuǎn)化,適合大規(guī)模制備轉(zhuǎn)化產(chǎn)物。對研究多細(xì)菌或混僵細(xì)菌或腸內(nèi)菌叢的藥物轉(zhuǎn)化尤為合適。
4.3.1 全糞便溫孵法
該法目前應(yīng)用最廣泛的胃腸道生物轉(zhuǎn)化研究方法,由于腸道內(nèi)需氧菌只占腸道菌叢的極少部分,其絕大多數(shù)的厭氧菌是藥物生物轉(zhuǎn)化的主要角色,因此,糞便溫孵法主要就是制造適合厭氧菌生長的厭氧環(huán)境和營養(yǎng)條件,在此條件下,加入藥物與細(xì)菌混合、溫孵,然后檢測藥物原型成分和生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的種類和數(shù)量。使便出的厭氧菌存活下來的簡單而實(shí)用的方法[3]是:取一塑料袋,充滿二氧化碳?xì)猓ㄖ脫Q掉氧氣)。擠壓出來后,再次充滿二氧化碳?xì)猓磸?fù)數(shù)次,盡量將空氣排盡。然后裝入糞便(由于糞便部分不同,菌叢亦不同,因此要使用全便)。用手?jǐn)D壓使之均質(zhì)化。取均質(zhì)化的糞便2g,加入19mL厭氧菌稀釋液,培養(yǎng),作為糞便菌液。
4.3.2 單一菌種溫孵法[3]
即用單一菌種與藥物共同進(jìn)行厭氧培養(yǎng),然后檢查藥物生物轉(zhuǎn)化情況的方法。目前,公認(rèn)的、有代表性的腸道菌有20多種,利用它們與藥物一同進(jìn)行溫孵,結(jié)果發(fā)現(xiàn)不如腸道混僵菌降解藥物明顯,但利用單一菌種降解藥物的條件易于控制,有利于有用的藥物生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的工程化生產(chǎn)以及新的菌種的發(fā)現(xiàn)。
4.3.3 簡單的大腸菌叢培養(yǎng)法
此法操作同簡單的結(jié)腸菌群培養(yǎng)研究法,只是操作對象是大腸內(nèi)容物而已。
4.3.4 腸菌酶法
腸菌酶法即把由腸菌中分得的酶作用于藥物,間接地研究腸道菌對藥物作用的方法。
4.3.5 結(jié)腸菌叢研究法[3]
4.3.5.1 簡單的結(jié)腸菌群培養(yǎng)研究法
在正常飼養(yǎng)條件下飼喂大鼠,絕食過夜。在厭氧條件下按35mg/mL劑量腹腔注射苯巴比妥鈉進(jìn)行麻醉。再開腹、取結(jié)腸。將結(jié)腸內(nèi)容物全部洗出,黏附在結(jié)腸壁上的內(nèi)容物用厭氧菌稀釋液洗下,與結(jié)腸內(nèi)容物合并,放入溫孵培養(yǎng)管內(nèi),用厭氧稀釋液定容,37℃溫孵培養(yǎng)一段時間或定時取樣分析。
此法的結(jié)腸菌所致的藥物轉(zhuǎn)化接近于真實(shí)情況,在中藥成分的腸內(nèi)細(xì)菌代謝或生物轉(zhuǎn)化研究中被廣泛應(yīng)用。
4.3.5.2 人結(jié)腸菌群體外模型法
現(xiàn)已建立不受宿主影響、適合研究微生物相互作用、細(xì)菌對藥物轉(zhuǎn)化活性的厭氧性連續(xù)培養(yǎng)系統(tǒng)。該系統(tǒng)的細(xì)菌菌叢在主要菌種、菌種多樣性等方面與接種糞便菌叢類似。但目前關(guān)于此方法的報道較少,體外模型法雖具有可控性等特點(diǎn),但在研究哺乳動物及微生物等的酶所致外來化合物活化、毒性和藥效方面卻明顯不足。
4.3.5.3 人結(jié)腸菌叢在體模型法/無菌動物法
即取人糞便20%懸浮液1mL(相當(dāng)于細(xì)菌數(shù)為5×1010)給予健康成年無菌動物(一般采用大鼠),飼養(yǎng)在無菌隔離器內(nèi)。研究表明,人結(jié)腸菌叢酶的活性與定植在無菌大鼠的人腸內(nèi)菌叢酶的活性基本沒有區(qū)別。因此,此實(shí)驗(yàn)系統(tǒng)是一個相當(dāng)好的模型。口服或靜脈給予的藥物經(jīng)肝腸循環(huán)進(jìn)入腸道內(nèi)的藥物都有可能被腸內(nèi)細(xì)菌所轉(zhuǎn)化,從而在動物組織或整個動物內(nèi)分泌中發(fā)現(xiàn)的生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物實(shí)際上是藥物的腸內(nèi)細(xì)菌轉(zhuǎn)化產(chǎn)物。因此,利用無菌動物研究藥物的腸內(nèi)細(xì)菌生物轉(zhuǎn)化具有重要意義。
此外,將口服藥物給予無菌動物,然后測定動物組織或血中的藥物含量或生物轉(zhuǎn)化產(chǎn)物,可排除藥物經(jīng)腸內(nèi)細(xì)菌生物轉(zhuǎn)化的可能(對照組動物應(yīng)該是同種類的普通動物)。與同種類的悉生動物配合應(yīng)用可判斷腸內(nèi)細(xì)菌轉(zhuǎn)化藥物的種屬特異性或生物轉(zhuǎn)化的連鎖性。如兒茶酚類化合物由腸內(nèi)菌生物轉(zhuǎn)化是利用悉生動物得到證明的[3]。給普通大鼠服用多巴胺,尿中有3-對羥基苯乙酸和酷胺排出,在無菌大鼠尿內(nèi)未發(fā)現(xiàn)這兩種物質(zhì)。這一結(jié)果與給予患者服用L-多巴后在服用新霉素導(dǎo)致3-1對差基苯乙酸和酷胺在尿中排出降低的結(jié)果是一致的。柴胡皂苷-b1是中藥柴胡主要的抗炎有效成分之一,它的藥物作用機(jī)制是通過無菌動物、悉生動物、普通動物聯(lián)合應(yīng)用揭示的。
[1]車慶明,黃新立,李艷梅,等.黃芩苷的藥物代謝產(chǎn)物研究[J].中國中藥雜志,2001,26(11):768.
[2]丁黎,張正行,倪沛洲,等.LC/DAD/MSD技術(shù)研究大鼠膽汁中鹽酸非洛普的II相代謝產(chǎn)物[J].藥學(xué)學(xué)報,2001,36(6):40.
[3]楊秀偉,王多佳.中藥成分代謝分析[M].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2003:160.
[4]余自成,陳紅專.微透析技術(shù)在藥物代謝和藥代動力學(xué)研究中的應(yīng)用[J].中國臨床藥理學(xué)雜志,2001,17(1):76.
[5]張金蘭,劉穎,周同惠.微透析取樣技術(shù)在藥物代謝研究中的應(yīng)用及前景[J].藥學(xué)學(xué)報,2001,36(7):528.
[6]李曉海,張金蘭,周同惠.左旋一葉 堿的代謝轉(zhuǎn)化[J].藥學(xué)學(xué)報,2002,37(4):288.
[7]王楠.缺血后處理對大鼠移植肝臟缺血再灌注損傷和細(xì)胞凋亡的保護(hù)作用[J].中國藥理學(xué),2005,10(2):26-27.
[8]Alexandra S,Birgit H.Metabolism and disposition of the novel antileukaemic drug,benzamide riboside,in the isolated per fused rat liver[J].Life Sci,2001,69(21):2489-2502.
[9]Christian F,Marie-Christine H,Pierre G.Hepatic extraction,meta bolism,and biliary excretion of irinotecan in the isolated Per fused rat liver[J].J Pharmaceu Sci,2001,90(6):722.