吳濤，吳勝明，殷晴，戴紅梅，李樹龍，董芳庭，陳必鏈，方宏清

1 福建師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院，福州 350108

2 軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院 生物工程研究所，北京 100071

3 軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院 國(guó)家生物醫(yī)學(xué)分析中心，北京 100850

青蒿素 (Artemisinin)，一種倍半萜內(nèi)酯過氧化物，是我國(guó)科學(xué)工作者從植物黃花蒿 Artemisia annua L.中分離并鑒定的抗瘧有效單體[1]。青蒿素與一種或多種其他抗瘧藥物配伍后得到一種抗瘧特效藥——以青蒿素為基礎(chǔ)的聯(lián)合藥物療法(Artemisinin-based combination therapies，ACTs)。2005年世界衛(wèi)生組織 (WHO) 將ACTs推薦為治療非復(fù)雜惡性瘧疾的第一線用藥[2]。隨著 WHO的推薦，青蒿素的市場(chǎng)需求增大、價(jià)格迅速上漲，但青蒿素供應(yīng)不足，極大地限制了ACTs的廣泛使用[3]。目前，從植物中提取仍是獲得青蒿素的主要途徑。大量種植黃花蒿能提高青蒿素的產(chǎn)量，但這是與糧食種植爭(zhēng)奪有限的土地資源，且易受氣候等外界因素的影響?；瘜W(xué)方法合成青蒿素曾被寄予厚望，但青蒿素具有7個(gè)手性碳原子，存在128個(gè)異構(gòu)體，得率低難以產(chǎn)業(yè)化[3]。利用微生物細(xì)胞合成青蒿素是替代植物提取和化學(xué)合成的方法之一，具有很好的應(yīng)用前景。

2003年，Martin等[4]率先在大腸桿菌中引入人工合成的紫穗槐-4,11-二烯合酶基因 (ADS) 并重建釀酒酵母Saccharomyces cerevisiae H.來源的甲羥戊酸 (Mevalonate，MVA) 途徑，成功獲得了抗瘧藥青蒿素的前體——紫穗槐-4,11-二烯 (Amorpha-4,11-diene，AD)。之后，他們通過優(yōu)化代謝途徑酶基因的密碼子、增加限速酶的表達(dá)水平、消除有毒代謝中間物或副產(chǎn)物的積累以及優(yōu)化培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件等[5-8]，使紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量極大提高，搖瓶培養(yǎng)產(chǎn)量為275 mg/L，上罐發(fā)酵產(chǎn)量達(dá)到27.4 g/L。 2006年，Lindahl等[9]采用構(gòu)建質(zhì)粒表達(dá)載體和同源重組基因組兩種方法，在釀酒酵母中引入黃花蒿來源的紫穗槐-4,11-二烯合酶基因，結(jié)果都獲得了紫穗槐-4,11-二烯，且前者產(chǎn)量達(dá)到600 μg/L，是后者的6倍。同年，Ro等[10]通過改造釀酒酵母內(nèi)源的MVA途徑，并引入黃花蒿來源的紫穗槐-4,11-二烯合酶和細(xì)胞色素P450單加氧酶 (CYP71AV1) 基因，獲得了青蒿素的另一重要前體——青蒿酸 (Artemisinic acid)，產(chǎn)量為100 mg/L。2008年，Ro等[11]以釀酒酵母為宿主，通過單個(gè)質(zhì)粒表達(dá)紫穗槐-4,11-二烯合酶、紫穗槐-4,11-二烯氧化酶和細(xì)胞色素 P450還原酶等 3個(gè)植物來源酶的基因，使青蒿酸產(chǎn)量提高到1 g/L。這種微生物半合成青蒿素的方法——先通過改造微生物合成途徑獲得青蒿素的前體紫穗槐-4,11-二烯或青蒿酸等，再采用相對(duì)簡(jiǎn)單的化學(xué)催化步驟可將這些前體轉(zhuǎn)化成青蒿素[12-13]，可以大規(guī)模制備青蒿素，解決資源短缺問題。

大腸桿菌是應(yīng)用最廣泛的原核表達(dá)系統(tǒng)，它具有操作簡(jiǎn)單、周期短、成本低和產(chǎn)量高等優(yōu)點(diǎn)。且大腸桿菌遺傳背景清楚，次生代謝產(chǎn)物簡(jiǎn)單，目的代謝產(chǎn)物易于分離與純化。另外，大腸桿菌內(nèi)存在以脫氧木酮糖磷酸 (Deoxyxylulose-5-phosphate，DXP) 途徑為基礎(chǔ)的類異戊二烯代謝途徑，能合成少量的輔酶Q等。因此，大腸桿菌非常適合作為生物合成類異戊二烯化合物的宿主菌。

本研究在大腸桿菌中引入人工合成的紫穗槐-4,1 1-二烯合酶基因并構(gòu)建原核的糞腸球菌Enterococcus faecalis來源的MVA途徑，獲得了抗瘧藥青蒿素前體——紫穗槐-4,11-二烯的高表達(dá)。與文獻(xiàn)報(bào)道相比，本研究避開了眾所周知的真核生物來源的基因在原核細(xì)胞表達(dá)的各種難題。

圖1 本實(shí)驗(yàn)構(gòu)建的重組菌的紫穗槐-4,11-二烯合成途徑Fig. 1 Synthesis of amorpha-4,11-diene in recombination E. coli from the building blocks of IPP and DMAPP, which are synthesised using DXP and MVA pathways. The native pathways are in round frames, and the heterologous pathways reconstructed in this paper are in square frames. The abbreviations are used: G3P, glyceraldehyde 3-phosphate; DXP, 1-deoxy-D-xylulose 5-phosphate; MEP, 2-C-methyl-D-erythritol 4-phosphate; HMG-CoA, 3-hydroxy-3-methyl-glutaryl-CoA; IPP, isopentenyl pyrophosphate; DMAPP, dimethyl allyl pyrophosphate; GPP, geranyl pyrophosphate; FPP, farnesyl pyrophosphate; AD, amorpha-4,11-diene.

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

1.1.1 菌株、質(zhì)粒和培養(yǎng)基

宿主菌E. coli DHGT7為本室構(gòu)建，表達(dá)載體pAOC3ANL為本實(shí)驗(yàn)構(gòu)建；糞腸球菌與質(zhì)粒載體pET28a、pACYCDuet-1和pET3b由本室保存；菌株E. coli DH5α和BL21(DE3) 購(gòu)于北京全式金生物技術(shù)公司。

LB培養(yǎng)基 (10 g/L胰蛋白胨，5 g/L酵母提取物，10 g/L NaCl) 用于大腸桿菌普通培養(yǎng)；FM2G培養(yǎng)基 (15 g/L胰蛋白胨，12 g/L酵母提取物，3 g/L NaH2PO4·2H2O，7 g/L K2HPO4·3H2O，2.5 g/L NaCl，0.5 g/L MgSO4，0.2%葡萄糖，1.5%甘油) 用于搖瓶發(fā)酵。

1.1.2 主要試劑

Prime STARTMHS DNA聚合酶、限制性內(nèi)切酶和 T4 DNA連接酶購(gòu)于寶生物工程公司；質(zhì)粒提取試劑盒和DNA片段膠回收試劑盒購(gòu)于北京博大泰恒生物技術(shù)公司；IPTG購(gòu)于Promega公司；L-阿拉伯糖購(gòu)于 Merck公司；標(biāo)準(zhǔn)品石竹烯((-)-trans-Caryophyllene) 購(gòu)于Sigma-Aldrich公司。其他化學(xué)試劑均為國(guó)產(chǎn)或進(jìn)口分析純。

1.1.3 相關(guān)基因的獲得

ADS根據(jù)文獻(xiàn)[14]提供的基因序列進(jìn)行全基因合成。mvaE和 mvaS根據(jù)已公布的基因序列(GenBank Accession No. AF290092.1)，MD (包含連續(xù)排列在基因組上 4個(gè)酶的基因：idi、mvaK2、mvaD 和 mvaK1) 和 ispA根據(jù)已公布的基因序列(GenBank Accession No. AE016830.1) 分別設(shè)計(jì)引物 (表1)，以糞腸球菌的染色體 DNA為模板PCR擴(kuò)增獲得?；蚝鸵镉缮虾Ｉど锕こ坦竞铣?，基因測(cè)序由北京中科希林公司完成。

1.2 載體構(gòu)建、目的基因表達(dá)

采用常用分子克隆技術(shù)，如PCR擴(kuò)增、酶切、連接和轉(zhuǎn)化等構(gòu)建質(zhì)粒表達(dá)載體 (表 2)，具體方法參考文獻(xiàn)[15]。

將表達(dá)載體轉(zhuǎn)化宿主菌E. coli DHGT7，接入含相應(yīng)抗生素 (Kn、Cm均為25 μg/mL) 的液體LB培養(yǎng)基中，37 ℃培養(yǎng)至OD600=0.3~0.4，加入0.2% L-阿拉伯糖誘導(dǎo)，繼續(xù)培養(yǎng) 4~5 h。取菌體全蛋白作SDS-PADE分析，具體方法參考文獻(xiàn)[15]。

表1 本文使用的引物Table 1 Primers used in this study

表2 本文使用的菌株和質(zhì)粒Table 2 Strains and plasmids used in this study

1.3 搖瓶培養(yǎng)方法

挑取新轉(zhuǎn)化的單克隆，接入含相應(yīng)抗生素的液體 LB培養(yǎng)基中，37 ℃振蕩培養(yǎng)過夜。取過夜培養(yǎng)菌液轉(zhuǎn)接40 mL抗性FM2G培養(yǎng)基，使初始菌體濃度為OD600=0.05，37 ℃、220 r/min振蕩培養(yǎng)至OD600為0.3~0.4時(shí)，加入0.2% L-阿拉伯糖或0.5 mmol/L IPTG誘導(dǎo)，并加入20% (V/V) 無菌的十二烷覆蓋在培養(yǎng)基的表面[5]，隨后轉(zhuǎn)至30 ℃繼續(xù)培養(yǎng)48~60 h。選取不同時(shí)間點(diǎn)測(cè)定菌體濃度和紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量。

1.4 GC-MS法測(cè)定AD含量

1.4.1 儀器設(shè)備和樣品處理

氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀：HP6890氣相色譜和飛行時(shí)間質(zhì)譜 (Waters公司)；色譜柱：DB-5 (30 m× 250 μm×0.25 μm，Agilent公司)。

樣品處理方法：培養(yǎng)液離心分層，取10 μL十二烷層溶液加入到190 μL含10 μg/mL石竹烯為內(nèi)標(biāo)物的乙酸乙酯溶液中，渦旋混勻。

1.4.2 樣品檢測(cè)條件

氣相色譜條件：載氣：氦氣；流速：1.0 mL/min；程序升溫：70 ℃保持1 min，15 ℃/min升溫至285 ℃，保持2 min，30 ℃/min升溫至310 ℃；進(jìn)樣口溫度：150 ℃；進(jìn)樣方式：不分流進(jìn)樣；進(jìn)樣量：0.3 μL。

質(zhì)譜條件：電離方式：電子轟擊電離 (EI)；電離能量：70 eV；電子源溫度：220 ℃；掃描模式：全掃描。

2 結(jié)果與分析

2.1 表達(dá)ADS產(chǎn)紫穗槐-4,11-二烯

將全基因合成的 ADS克隆到質(zhì)粒載體 pET28a上，得到表達(dá)載體 pET28-ADS；轉(zhuǎn)化 E. coli DHGT7，以pET28a為對(duì)照，進(jìn)行SDS-PAGE分析，結(jié)果在約 56 kDa處有可見的紫穗槐-4,11-二烯合酶(ADS) 的條帶 (圖2)。

圖2 ADS誘導(dǎo)表達(dá)的菌體全蛋白SDS-PAGE分析結(jié)果Fig. 2 SDS-PAGE analysis showing the expressing of the synthetic ADS gene in DHGT7. M: protein marker; 1: pET28a/ DHGT7; 2: pET28-ADS/DHGT7.

新轉(zhuǎn)化的菌株pET28-ADS/DHGT7進(jìn)行搖瓶培養(yǎng)，采用GC-MS法測(cè)定紫穗槐-4,11-二烯的含量。通過GC檢測(cè)，分別在8.42 min和8.83 min出現(xiàn)內(nèi)標(biāo)物石竹烯 (IS) 和紫穗槐-4,11-二烯 (AD) 的保留峰 (圖3A)。對(duì)樣品AD作MS檢測(cè)，質(zhì)譜圖與紫穗槐-4,11-二烯的標(biāo)準(zhǔn)圖譜比對(duì)，二者一致 (圖3B、C)。根據(jù)內(nèi)標(biāo)石竹烯的濃度對(duì)樣品 AD含量進(jìn)行定量，結(jié)果搖瓶培養(yǎng)48 h的紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量?jī)H為11.3 mg石竹烯當(dāng)量/L。我們推測(cè)大腸桿菌內(nèi)源的FPP水平太低，限制了紫穗槐-4,11-二烯的產(chǎn)量。由于大腸桿菌僅存在 DXP途徑，為避免對(duì)內(nèi)源途徑的影響，后面引入了異源的MVA途徑來提高前體供給。

2.2 構(gòu)建異源MVA途徑

以低拷貝質(zhì)粒 pACYCDuet-1的骨架為基礎(chǔ)，PCR擴(kuò)增質(zhì)粒pET3b的多克隆位點(diǎn) (MCS)，并通過PCR引物引入NotⅠ和ApaⅠ限制性酶切位點(diǎn)，將PCR擴(kuò)增的MCS序列連接到pACYCDuet-1的SphⅠ和 EcoRⅠ之間，構(gòu)建了一個(gè)具有特殊 MCS的質(zhì)粒載體 pAOC3ANL，用于多基因合成途徑的構(gòu)建。

將糞腸球菌來源的 mvaE、mvaS、MD和 ispA與ADS分別構(gòu)建在質(zhì)粒載體pAOC3ANL和pET28a上，得到表達(dá)載體 pAOC3-ES-MD和 pET28-ispAADS，共轉(zhuǎn)化E. coli DHGT7，搖瓶培養(yǎng)48 h紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量達(dá)到 151 mg/L，是利用內(nèi)源 FPP的13.3倍。

圖3 紫穗槐-4,11-二烯的GC-MS測(cè)定結(jié)果Fig. 3 GC-MS analysis of amorpha-4,11-diene produced by pET28-ADS/DHGT7. (A) Total ion chromatogram of pET28-ADS/ DHGT7. (B) Mass spectrum of the peak of retention time at 8.83 min in A. (C) Mass spectrum of amorpha-4,11-diene[16].

2.3 優(yōu)化紫穗槐-4,11-二烯合成途徑

為進(jìn)一步提高紫穗槐-4,11-二烯的產(chǎn)量，必須消除代謝途徑的限制因素，如提高限制酶的水平、消除毒性中間物或副產(chǎn)物等，因此我們作了如下優(yōu)化。

將整個(gè)紫穗槐-4,11-二烯合成途徑的基因構(gòu)建到單個(gè)質(zhì)粒載體 pAOC3ANL上，得到表達(dá)載體pAOC3-ES-MD-ispA-ADS (圖 4)，轉(zhuǎn)化 E. coli DHGT7，紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量為32.5 mg/L，僅為使用 2個(gè)質(zhì)粒共表達(dá)時(shí)的 1/5，菌體的生長(zhǎng)也受到嚴(yán)重抑制 (圖5A)。我們推斷這是因?yàn)楫?dāng)使用2個(gè)質(zhì)粒共表達(dá)時(shí)ADS是構(gòu)建在高拷貝的pET28a上，而以單個(gè)質(zhì)粒表達(dá)時(shí) ADS是構(gòu)建在低拷貝的pAOC3ANL上，間接地降低了ADS的拷貝數(shù)，使得胞內(nèi)FPP累積，引起內(nèi)源FPP合成途徑的反饋調(diào)控作用，從而抑制菌體生長(zhǎng)。

因此，我們提高了ADS的拷貝數(shù)，將pET28-ADS與 pAOC3-ES-MD-ispA-ADS 共轉(zhuǎn)化 E. coli DHGT7，結(jié)果紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量提高了4.3倍，達(dá)到140 mg/L (圖5B)，菌體生長(zhǎng)抑制也得到一定程度的緩解。

圖4 表達(dá)載體pAOC3-ES-MD-ispA-ADS的示意圖Fig. 4 Map of plasmid pAOC3-ES-MD-ispA-ADS. T7P and T7t represent the T7 promoter and T7 terminator respectively.

圖5 菌體生長(zhǎng)曲線 (A) 和紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量測(cè)定曲線 (B)Fig. 5 Growth curves and amorpha-4,11-diene production analysis of engineered strains. (A) Growth curves of E. coli DHGT7 showing the inhibition effect was eliminated by increasing another high copy of limiting enzymes gene. (B) Amorpha-4,11-diene production was measured from E. coli DHGT7 containing different expressing vectors. The symbols represent host cell E. coli DHGT7 containing different expressing vectors: pAOC3-ES-MD-ispA-ADS (?); pET28-ADS and pAOC3-ES-MD-ispA-ADS (■); pET28-E-ADS and pAOC3-ES-MD-ispA-ADS (?); pET28-E-MK-ADS and pAOC3-ES-MD-ispA-ADS (▲); and pAOC3ANL (?).

據(jù)Pitera等[6]報(bào)道，HMG-CoA還原酶是類異戊二烯化合物生物合成過程中的關(guān)鍵酶，它催化HMG-CoA轉(zhuǎn)化為甲羥戊酸的反應(yīng)是不可逆的，HMG-CoA還原酶活性不足會(huì)導(dǎo)致HMG-CoA在胞內(nèi)累積產(chǎn)生毒性。因此，我們提高HMG-CoA還原酶水平，構(gòu)建了表達(dá)載體pET28-E-ADS，與pAOC3-ES-MD-ispA-ADS共轉(zhuǎn)化E. coli DHGT7，結(jié)果菌體生長(zhǎng)抑制得到進(jìn)一步緩解，紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量也再次提高。

另據(jù) Anthony等[7]報(bào)道，提高胞內(nèi)甲羥戊酸激酶 (MK) 的水平可以極大地提高紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量。因此我們構(gòu)建了表達(dá)載體pET28-E-MK-ADS，與pAOC3-ES-MD-ispA-ADS共轉(zhuǎn)化E. coli DHGT7，結(jié)果紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量達(dá)到235 mg/L，是優(yōu)化前的7.2倍，菌體生長(zhǎng)抑制基本消除。

2.4 不同宿主合成紫穗槐-4,11-二烯

為考察優(yōu)化過的紫穗槐-4,11-二烯合成途徑對(duì)不同宿主的影響，我們以菌株E. coli BL21(DE3) 為宿主，共轉(zhuǎn)化表達(dá)載體 pET28-E-MK-ADS和pAOC3-ES-MD-ispA-ADS，搖瓶培養(yǎng)60 h的紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量為201 mg/L，菌體生長(zhǎng)正常。說明我們構(gòu)建青蒿素前體的合成途徑對(duì)不同的大腸桿菌具有通用性。

3 討論

本研究以基因組改造過的菌株 E. coli DHGT7為宿主，構(gòu)建質(zhì)粒載體引入異源的類異戊二烯合成途徑，成功合成了目的產(chǎn)物青蒿素前體——紫穗槐-4,11-二烯，產(chǎn)量達(dá)到235 mg/L，是Kong等[17]報(bào)道的國(guó)內(nèi)最高產(chǎn)量的近2倍，稍低于2009年Tsuruta等[8]報(bào)道的最高產(chǎn)量275 mg/L。同時(shí)，我們以E. coli BL21(DE3) 為宿主，也獲得了紫穗槐-4,11-二烯。說明我們構(gòu)建的青蒿素前體的合成途徑對(duì)不同的大腸桿菌具有通用性。

大腸桿菌能通過內(nèi)源的DXP途徑合成FPP，但水平較低。我們?cè)诖竽c桿菌中引入人工合成的紫穗槐-4,11-二烯合酶基因，內(nèi)源的FPP不足限制了紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量，因此提高胞內(nèi)FPP水平是提高紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量的關(guān)鍵。為了避免對(duì)內(nèi)源 DXP途徑的干擾，我們引入了糞腸球菌來源的 MVA途徑，以提高胞內(nèi)FPP的水平，使紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量提高了13.3倍，達(dá)到151 mg/L。

在類異戊二烯合成途徑中，中間代謝產(chǎn)物如HMG-CoA、IPP、DMAPP和FPP等積累，會(huì)抑制菌體的生長(zhǎng)[6]。Anthony等[7]證明甲羥戊酸激酶是合成途徑的限速酶，提高胞內(nèi)甲羥戊酸激酶的水平可以極大地提高紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量；而當(dāng)甲羥戊酸激酶不足時(shí)，會(huì)導(dǎo)致甲羥戊酸的積累，但甲羥戊酸幾乎不影響菌體生長(zhǎng)。我們通過提高紫穗槐-4,11-二烯合酶、HMG-CoA還原酶和甲羥戊酸激酶等3個(gè)酶的水平，使紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量提高了7.2倍。

值得指出的是，在大腸桿菌中引入異源的MVA途徑合成類異戊二烯需要消耗大量的乙酰輔酶 A，但這并不會(huì)對(duì)菌體生長(zhǎng)產(chǎn)生不利影響，也不會(huì)因?yàn)橐阴］o酶A不足降低產(chǎn)物產(chǎn)量。Tabata等[18]在大腸桿菌中構(gòu)建甲羥戊酸合成途徑，以內(nèi)源的乙酰輔酶A為底物合成甲羥戊酸的產(chǎn)量達(dá)到47 g/L。Choi等[19]和 Kang等[20]也分別利用大腸桿菌內(nèi)源的乙酰輔酶 A合成 PHB達(dá)到 89.8 g/L和細(xì)胞干重的85.8%。

另外，我們以低拷貝的質(zhì)粒載體pACYCDuet-1為基礎(chǔ)，構(gòu)建了具有特殊多克隆位點(diǎn)的表達(dá)載體pAOC3ANL。采用單個(gè)低拷貝質(zhì)粒載體表達(dá)整個(gè)合成途徑的基因，用另一相容的高拷貝表達(dá)載體pET28a來增加限速酶基因的拷貝數(shù)，協(xié)調(diào)合成途徑的表達(dá)，避免了多質(zhì)粒載體的不相容性影響。

我們采用FM2G培養(yǎng)基搖瓶培養(yǎng)，在其表面覆蓋 20%的十二烷，這是因?yàn)槟康漠a(chǎn)物紫穗槐-4,11-二烯在水相中易揮發(fā)，超過97%的紫穗槐-4,11-二烯可被覆蓋在培養(yǎng)基表面的十二烷有機(jī)層“捕獲”[5]，而十二烷本身不會(huì)被菌體代謝，且對(duì)菌體的生長(zhǎng)無副作用[21]。Newman等[5]利用這種含十二烷的兩相分配封閉反應(yīng)器獲得紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量達(dá)到0.5 g/L。

本研究構(gòu)建的合成紫穗槐-4,11-二烯的工程菌以阿拉伯糖為誘導(dǎo)物，避免了文獻(xiàn)中大量采用的IPTG誘導(dǎo)的缺點(diǎn)。IPTG是有毒且有異味的物質(zhì)，不適宜在大規(guī)模工業(yè)化生產(chǎn)中應(yīng)用。而阿拉伯糖則不存在上述缺點(diǎn)，而且來源豐富，在規(guī)?；a(chǎn)上將具有明顯的優(yōu)勢(shì)。

本研究利用大腸桿菌為宿主，構(gòu)建異源紫穗槐-4,11-二烯從頭合成途徑，并對(duì)合成途徑進(jìn)行優(yōu)化，通過提高紫穗槐-4,11-二烯合酶、HMG-COA還原酶和甲羥戊酸激酶等3個(gè)酶的水平，消除了抑制菌體生長(zhǎng)的不利因素，使紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量達(dá)到235 mg/L。繼續(xù)對(duì)培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件等進(jìn)行優(yōu)化，或通過上罐發(fā)酵，將獲得更高的紫穗槐-4,11-二烯產(chǎn)量。這為高效生物合成抗瘧藥青蒿素前體——紫穗槐-4,11-二烯奠定了基礎(chǔ)。

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