莊哲煌,蔡漢權(quán),陳丹生
(韓山師范學(xué)院生物系,廣東潮州,521041)
茉莉花愈傷組織誘導(dǎo)及懸浮細(xì)胞培養(yǎng)
莊哲煌,蔡漢權(quán),陳丹生
(韓山師范學(xué)院生物系,廣東潮州,521041)
以茉莉花(Jasminum sambac)花瓣為外植體在不同培養(yǎng)基上誘導(dǎo)出愈傷組織,通過對(duì)其類型的篩選從中選擇疏松愈傷組織進(jìn)行懸浮培養(yǎng)后,初步建立懸浮細(xì)胞培養(yǎng)系。結(jié)果表明,不同激素可誘導(dǎo)出疏松型(CA)、泥狀型(CB)和綠色塊狀型(CC)愈傷組織,其分化方向也不同。用CA型和CB型愈傷組織均能建立懸浮細(xì)胞培養(yǎng)系,其中以泥狀愈傷組織為起始材料較佳,大約11 d可建立初步的懸浮細(xì)胞培養(yǎng)系。
茉莉花;愈傷組織;懸浮細(xì)胞培養(yǎng)
茉莉花 (Jasminum sambac)屬木犀科素馨屬植物,常綠攀緣灌木,茉莉鮮花瓣中含芳香油0.2%~0.3%,主要成分是苯甲醇及其酯類,可以制作香精并應(yīng)用于日?;瘖y品、洗滌用品和食用香精中[1]。因市場(chǎng)需求提高,從而帶動(dòng)了人們對(duì)茉莉花的栽培和香精油提取的研究,如《茉莉栽培淺談》[2]、《茉莉花的化學(xué)成分》[3],其產(chǎn)品市場(chǎng)已趨成熟。但是,目前各種提取方法都需將整朵花進(jìn)行破壞,茉莉花香精油提煉效率較低[1]并受季節(jié)限制,制約了茉莉香精提取業(yè)的發(fā)展。如果能運(yùn)用細(xì)胞工程手段,利用細(xì)胞大量培養(yǎng)及代謝產(chǎn)物分離,提高茉莉花香精油的提取效率,同時(shí)避免盛花季節(jié)對(duì)工業(yè)生產(chǎn)帶來的影響,那么將對(duì)今后茉莉花的生產(chǎn)與利用具有重要的意義。
通過懸浮細(xì)胞培養(yǎng)產(chǎn)生代謝產(chǎn)物以促進(jìn)工業(yè)化生產(chǎn),是現(xiàn)代生物工程技術(shù)迅速發(fā)展的一個(gè)方向。目前至少已在200種植物上生產(chǎn)500種以上的有用成分[4],如白雪芳等[5]、蔡漢權(quán)等[6]、林龍?jiān)频萚7]、李玲等[8]、Chen等[9]、Liang等[10]、Tang等[11]分別在三尖杉、羅勒、太子參、野葛、煙草(tobacoo)、苦楝樹(neem tree)、人參(panax ginseng)等植物的懸浮培養(yǎng)中闡述了愈傷組織的形成、懸浮培養(yǎng)系的建立及其產(chǎn)物的研究。茉莉花組織培養(yǎng)方面的研究很少,江明等[12]在1994年報(bào)道了《大花茉莉的組織培養(yǎng)和植株再生》,而茉莉花瓣誘導(dǎo)愈傷組織及其懸浮細(xì)胞培養(yǎng)則未見報(bào)道。因此本文通過研究茉莉花花瓣誘導(dǎo)愈傷組織和建立茉莉花懸浮細(xì)胞培養(yǎng)系的方法,為進(jìn)一步應(yīng)用于原生質(zhì)體分離、細(xì)胞培養(yǎng)、次級(jí)代謝產(chǎn)物生產(chǎn)等研究打下基礎(chǔ)。
1.1 試驗(yàn)材料
茉莉花(Jasminum sambac)花苞內(nèi)層的花瓣。
1.2 試驗(yàn)方法
①取材和消毒 從校園花圃采集茉莉花花苞,將整個(gè)花苞連同花托、花柄一起剪下,于肥皂水中浸泡30 min。接種前將花托去掉、整個(gè)花苞置于0.1%的HgCl2溶液中浸泡8 min,后將花苞撈出,用無菌水清洗3~4次,置于無菌吸水紙上。接種時(shí)將花苞切開,除去外2層花瓣,取內(nèi)部花瓣平貼于培養(yǎng)基上,每瓶接種3~4個(gè)花瓣。
②愈傷組織的誘導(dǎo) 將花瓣接入誘導(dǎo)培養(yǎng)基(BK1、BK2、BK3、BK4、BK5、BK6),誘導(dǎo)出愈傷組織后選擇BK5培養(yǎng)基繼代培養(yǎng)2 w。調(diào)整激素配比,用分化培養(yǎng)基(F1、F2、F3、F4、Y1、Y2、Y3、Y4)誘導(dǎo)并篩選各種類型的愈傷組織。
誘導(dǎo)培養(yǎng)基BK1:MS+6-BA 0 g/L+NAA 0 g/L;BK2:MS+6-BA 0.2 g/L+NAA 0.2 g/L;BK3:MS+6-BA 0.5 g/L+NAA 0.2 g/L;BK4:MS+6-BA 1 g/L+NAA 0.2 g/L;BK5:MS+KT 1 g/L+2,4-D 1 g/L;BK6:MS+KT 1 g/L+2,4-D 2 g/L。繼代培養(yǎng)基BK5:MS+KT 1 g/L+2,4-D 1 g/L。分化培養(yǎng)基F1:MS+KT 0.5 g/L+2,4-D 0.2 g/L;F2:MS+ KT 0.5 g/L+2,4-D 0.5 g/L;F3:MS+KT 0.5 g/L+2,4-D1 g/L;F4:MS+KT 0.5 g/L+2,4-D 2 g/L。Y1:MS+6-BA 0.2 g/L+NAA 0.2 g/L;Y2:MS+6-BA 0.5 g/L+NAA 0.2 g/L;Y3:MS+6-BA 1 g/L+NAA 0.2 g/L;Y4:MS+6-BA 2 g/L+ NAA 0.2 g/L。
表1 誘導(dǎo)培養(yǎng)基上愈傷組織的誘導(dǎo)情況
培養(yǎng)基配制條件:附加蔗糖30 g,瓊脂9.2 g/L,pH值5.8~6.0,121℃高壓滅菌20 min。
外植體培養(yǎng)條件:溫度23~27℃,光照強(qiáng)度1 500 lx,光周期12 h/d。
③茉莉花花瓣懸浮細(xì)胞系的建立 經(jīng)過分化培養(yǎng)基的培養(yǎng),愈傷組織出現(xiàn)了不同的生長、分化情況,其中F3培養(yǎng)基能誘導(dǎo)出泥狀愈傷組織。將F3培養(yǎng)基去除瓊脂,其液體培養(yǎng)基F5作為懸浮細(xì)胞的培養(yǎng)基。
F5:MS+KT 0.5 g/L+2,4-D 1 g/L的液體培養(yǎng)基,其蔗糖濃度為30 g/L,pH值5.8~6.0,配制后分裝于100 mL三角錐形瓶中,每瓶裝培養(yǎng)基20 mL,121℃滅菌20 min,備用。
將CA、CB和CC 3種類型的愈傷組織分別接入F5培養(yǎng)基,接種量為每瓶0.3~0.5 g,每種材料接種8瓶。將其在超凈工作臺(tái)上無菌接種后置于搖床上進(jìn)行液體振蕩培養(yǎng),培養(yǎng)條件為溫度28℃,弱光150 lx,光周期12 h/d,振蕩速度為120 r/min。接種5 d后第一次鏡檢,并進(jìn)行繼代,即吸取渾濁但無較大組織塊的液體培養(yǎng)基接入新鮮F5培養(yǎng)基繼代培養(yǎng),直至形成分散、快速生長的懸浮細(xì)胞系。
2.1 愈傷組織的誘導(dǎo)與分化結(jié)果
①不同誘導(dǎo)培養(yǎng)基上愈傷組織的誘導(dǎo)茉莉花瓣在BK1~BK66種培養(yǎng)基的誘導(dǎo)下,開始出現(xiàn)變化,20 d后統(tǒng)計(jì)其愈傷組織的誘導(dǎo)數(shù),結(jié)果見表1。
BK1~BK4這4種培養(yǎng)基中的花瓣于12 d后開始出現(xiàn)膨大,瓣沿出現(xiàn)顆粒狀鼓起,后顏色由白轉(zhuǎn)黃,停止變化,最終啟動(dòng)失敗,無愈傷組織出現(xiàn)。
表1中BK5于10~12 d后開始出現(xiàn)乳白色愈傷組織,且細(xì)胞擴(kuò)展迅速。BK6于15 d后開始出現(xiàn)白色愈傷組織,擴(kuò)展速度一般。而將BK5繼代10~12 d后接入8種分化培養(yǎng)基進(jìn)行誘導(dǎo),愈傷組織出現(xiàn)綠色、黃綠色、淺綠色、乳白色、黃白色和褐色;塊狀、泥狀、粒狀等不同分化類型(表2)。在繼代過程中,CA型與CB型部分出現(xiàn)黃色分泌物(圖1),初步推測(cè)為其代謝產(chǎn)物,這與本試驗(yàn)的研究目的與方向相符。也由此說明,激素類型的選擇與搭配對(duì)愈傷組織的誘導(dǎo)有顯著影響,KT與2,4-D的組合明顯優(yōu)于6-BA與NAA的組合。BK5:MS+KT 1 g/L+2,4-D 1 g/L是茉莉花瓣愈傷組織誘導(dǎo)的適宜培養(yǎng)基。
圖1 愈傷組織產(chǎn)生的黃色代謝產(chǎn)物
表2 不同培養(yǎng)基下愈傷組織的分化情況
圖2 CB型愈傷組織涂片:分散的單細(xì)胞及小細(xì)胞團(tuán)
圖3 CB型懸浮細(xì)胞:分散性良好
圖4 CB型懸浮細(xì)胞:分散性好,分裂快
②愈傷組織類型的分化。選擇BK5培養(yǎng)出的愈傷組織,接入8種分化培養(yǎng)基中進(jìn)行誘導(dǎo),經(jīng)過30 d進(jìn)行統(tǒng)計(jì),結(jié)果出現(xiàn)CA型、CB型和CC型3種具有代表性的愈傷組織(表2)。
CA型為疏松型愈傷組織,以黃色為主,少數(shù)淺綠色、松散易夾碎,含有一定水分,亦稱沙狀。
CB型為泥狀愈傷組織,以乳白色為主,表面濕潤。其細(xì)胞活力強(qiáng)、生長迅速,非常松散,含水分最多。繼代培養(yǎng)時(shí)在固體培養(yǎng)基上將其平鋪攤開,再挑去大塊的愈傷組織,經(jīng)過2~3次繼代后就能得到微粒狀愈傷組織,即是泥狀。將此愈傷組織在玻片上作涂片,可見單細(xì)胞及小細(xì)胞團(tuán)(圖2)。
CC型為塊狀愈傷組織,綠色或黃綠色,難夾碎需用刀切開,水分很少,表面有綠色顆粒狀突起,有誘導(dǎo)芽的能力,試驗(yàn)過程中已從CC型愈傷組織誘導(dǎo)出根。
3種愈傷組織相比,CB型愈傷組織最為松散,適合作為建立懸浮細(xì)胞系的起始材料,CA型和CC型則作為對(duì)比材料。
由此可見,激素類型和濃度對(duì)愈傷組織的生長、分化有明顯影響,低濃度(F1,Y1)下愈傷組織生長慢,繼代周期較長,狀態(tài)為粒狀和塊狀;高濃度(F4,Y4)下愈傷組織易出現(xiàn)變褐、變硬等老化現(xiàn)象。說明F3:MS+KT 0.5 mg/L+2,4-D 1 mg/L適宜愈傷組織培養(yǎng)及分化。
2.2 茉莉花愈傷組織類型對(duì)懸浮細(xì)胞系建立的影響
分別將已繼代的CA型、CB型和CC型愈傷組織接入20 mL的F5培養(yǎng)液,每瓶0.3~0.5 g,比較愈傷組織類型對(duì)懸浮細(xì)胞建立的影響。
結(jié)果表明,在接入CB型愈傷組織5 d后,懸浮液中有較多的單細(xì)胞和小細(xì)胞團(tuán)出現(xiàn)。此時(shí),盡量避免大塊愈傷組織,吸取部分渾濁液接入相同的新鮮培養(yǎng)液繼續(xù)振蕩培養(yǎng),6 d后可獲得分散性良好的懸浮細(xì)胞系(圖3)。鏡檢表明,CB型愈傷組織所建立的懸浮細(xì)胞系需時(shí)較短,大概11 d,細(xì)胞分裂快、分散性好,整體生長迅速(圖4)。相比較之下,接入CA型愈傷組織振蕩培養(yǎng)5 d后,懸浮液的主要組成還是細(xì)胞團(tuán),繼代5 d后再鏡檢,才看到少數(shù)的單細(xì)胞和較多的小細(xì)胞團(tuán)。而CC型愈傷組織是塊狀愈傷組織,只能切取其表面的顆粒狀愈傷組織接入,培養(yǎng)10 d后鏡檢,只出現(xiàn)極少的小細(xì)胞團(tuán),再經(jīng)過10 d的培養(yǎng),也只能得到少數(shù)的幾個(gè)單細(xì)胞,培養(yǎng)液中依舊為大塊培養(yǎng)物,懸浮培養(yǎng)失敗。
由此可見,愈傷組織類型對(duì)建立懸浮細(xì)胞系有明顯影響,CA型和CB型愈傷組織均可建立懸浮培養(yǎng)系,以CB型培養(yǎng)基為佳,而CC型為塊狀愈傷組織,不適合作為懸浮培養(yǎng)的起始材料。
3.1 影響愈傷組織成功誘導(dǎo)的因素
本試驗(yàn)?zāi)艹晒φT導(dǎo)出愈傷組織,進(jìn)而完成后邊一系列試驗(yàn),與培養(yǎng)基激素密切相關(guān),同時(shí)外植體的取材和消毒也十分重要。
①培養(yǎng)基激素類型 呂冬霞等[13]認(rèn)為,多數(shù)情況下,單獨(dú)使用2,4-D就可以成功誘導(dǎo)愈傷組織的發(fā)生,但容易受濃度高低的影響。生長素和細(xì)胞分裂素對(duì)保持愈傷組織的快速生長是非常必要的,特別是二者有效結(jié)合時(shí),能更強(qiáng)烈地刺激愈傷組織的形成。本試驗(yàn)證明,激素類型的選擇與搭配對(duì)愈傷組織的誘導(dǎo)有顯著影響,KT與2,4-D的組合是成功誘導(dǎo)愈傷組織形成的關(guān)鍵。而從2,4-D濃度的選擇及結(jié)果來看,與張素勤等[14]對(duì)非洲菊葉片愈傷組織的誘導(dǎo)試驗(yàn)結(jié)果相同,誘導(dǎo)愈傷組織因生長素種類不同,所需濃度也不同。2,4-D以1.0 mg/L誘導(dǎo)效果最好,濃度升高,產(chǎn)生的愈傷組織量減少,而濃度降低,誘導(dǎo)率則下降。
②取材與消毒 在采集茉莉花花苞時(shí),應(yīng)盡量選擇膨大的即將開放的色澤乳白或米黃,無破損或裂縫的花苞,若破損或裂縫易受到污染或因消毒而被破壞。幼小花苞的花瓣容易枯萎或褐變,不宜作為外植體。消毒過后要用無菌水沖洗徹底,避免切開花苞后殘余消毒液對(duì)內(nèi)層花瓣的傷害,導(dǎo)致外植體褐變或枯萎。
3.2 茉莉花懸浮細(xì)胞系建立的關(guān)鍵因素
本試驗(yàn)?zāi)茉?0~11 d成功建立茉莉花懸浮細(xì)胞系,原因在于誘導(dǎo)出了CB型泥狀愈傷組織。CB型愈傷組織松散度高,細(xì)胞分裂快、生長快,是建立懸浮細(xì)胞系的較佳材料。另一個(gè)成功因素則是選擇了合適的培養(yǎng)基。液體培養(yǎng)基F5是從F3培養(yǎng)基去掉瓊脂而來,而F3培養(yǎng)基培養(yǎng)出了泥狀愈傷組織,說明其成分適合泥狀愈傷組織的生長,因此,F(xiàn)5也適用于懸浮培養(yǎng)中繼續(xù)培養(yǎng)泥狀愈傷組織,讓其更松散地生長和分裂。
3.3 CA型、CB型產(chǎn)生的黃色物質(zhì)
在CA型、CB型愈傷組織的繼代、培養(yǎng)過程中,部分組織塊切口出現(xiàn)黃色物質(zhì),經(jīng)鏡檢并非外侵細(xì)菌,因此初步推測(cè)為其次生代謝產(chǎn)物,由細(xì)胞分泌出來。當(dāng)然,在建立懸浮細(xì)胞系的過程中,液體培養(yǎng)基本是無色透明的,在接入愈傷組織5~6 d后亦會(huì)變渾濁同時(shí)淡黃化。這種現(xiàn)象除細(xì)胞團(tuán)的增多外,也與分泌出的黃色物質(zhì)融于培養(yǎng)基中有關(guān)。這些次生代謝物是不是試驗(yàn)最終想得到的茉莉花油,其含量又如何,有待進(jìn)一步的研究和檢驗(yàn)。
[1]張新發(fā),肖希和,丁冬.茉莉花香料的提取及其應(yīng)用的研究[J].武漢工業(yè)學(xué)院學(xué)報(bào),2000(1):18-20.
[2]房兆軍.茉莉栽培淺談[J].農(nóng)業(yè)知識(shí),2004(2):33.
[3]劉海洋,倪偉,袁敏惠,陳昌祥.茉莉花的化學(xué)成分[J].云南植物研究,2004(6):687-690.
[4]曹有龍,許興,趙軍,等.麻黃愈傷組織細(xì)胞的懸浮培養(yǎng)[J].應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報(bào),2000,6(1):36-38.
[5]白雪芳,王靖楣,卜宗式,等.三尖杉懸浮細(xì)胞的培養(yǎng)及抗癌生物堿的產(chǎn)生[J].中國生化藥物雜志,1999,20(3):139-142.
[6]蔡漢權(quán),賴鐘雄,林珊珊,等.羅勒(Ocimum basilicum)懸浮細(xì)胞系的建立與保持[J].熱帶作物學(xué)報(bào),2006,27(1):44-48.
[7]林云龍,周以飛,潘大仁.太子參細(xì)胞懸浮培養(yǎng)及其皂苷含量分析[J].熱帶亞熱帶植物學(xué)報(bào),2005,13(6):499-504.
[8]張春榮,李玲.野葛幼葉細(xì)胞懸浮培養(yǎng)生產(chǎn)葛根素等異黃酮類化合物的研究[J].中草藥,2003(7):653-657.
[9]Chen H M,Yan C H,Jiang X F,et al.Apoptosis in suspension culture of tobacco cells induced by heat shock[J].Chinese Science Bulletin,1999,12:1 101-1 106.
[10]Liang J,Wei G,Lv Q,et al.Cell suspension culture of neem tree[J].Chinese Forestry Science and Technology, 2003,2:16-21.
[11]Tang W,Wu J Y,Zhang L M.Influences of plant growth regulators,basal media and carbohydrate levels on cell suspension culture of panax ginseng [J].Journal of Northeast Agricuitural University,1995,1:62-65.
[12]江明,謝文申.大花茉莉的組織培養(yǎng)和植株再生[J].植物生理學(xué)通訊,1994,30(6):436-437.
[13]呂冬霞,曲長福.植物生長調(diào)節(jié)劑對(duì)愈傷組織培養(yǎng)的影響[J].北方園藝,2004(5):68.
[14]張素勤,鄒志榮,耿廣東,等.培養(yǎng)基和植物激素對(duì)非洲菊葉片愈傷組織誘導(dǎo)的研究[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2004,32(10):29-32.
Jasminum sambacCallus Induction and Suspension Cell Culture
ZHUANG Zhehuang,CAI Hanquan,CHEN Dansheng
(Department of Biology,Hanshan Normal University,Chaozhou,Guangdong 521041)
Petals of Jasminum sambacwere induced and cultured callus on the media with different phytohormones concentration.The preliminary stable suspension culture system was established after choosing the loose callus from different types for cell suspension culture.The results indicated that different phytohormones could form three types of callus,CA, CB and CC which had diverse polarization direction.Both the CA and CB callus could be used as initial materials for establishing suspensions,and it took about 11 days to establish cell suspensions from the better callus,CB callus.
Jasminum sambac;Callus;Cell suspension culture
10.3865/j.issn.1001-3547.2011.08.007
韓山師范學(xué)院重點(diǎn)科研項(xiàng)目(2005-413545)
莊哲煌(1984-),男,助教,本科,從事植物組織培養(yǎng)的教學(xué)與研究工作,電話:0768-2317422,E-mail:zzh@hstc.edu.cn
2011-03-15