鄧同興 王志新 王敏麗 高曉群
神經(jīng)鞘脂類是重要的細胞活性調(diào)節(jié)劑,尤其是神經(jīng)酰胺被認為是多細胞有機體內(nèi)重要的脂類細胞信號之一,它參與多種細胞信號轉(zhuǎn)導途徑,具有調(diào)節(jié)細胞生長、分化及增殖,調(diào)控細胞的凋亡(包括自噬),參與應激、免疫、炎癥等生理功能。本文綜述了神經(jīng)酰胺誘導神經(jīng)細胞增殖的信號通路及機制方面的研究,以更全面地理解神經(jīng)酰胺及其產(chǎn)物在神經(jīng)元中的生理功能及意義,有助于對神經(jīng)損傷后再生及神經(jīng)生發(fā)機制更進一步的研究,為治療和預防神經(jīng)系統(tǒng)疾病引起的神經(jīng)損傷提供新的治療方略及方法。
1.神經(jīng)酰胺的生成:神經(jīng)酰胺(ceramide,Cer)由各種脂肪酸經(jīng)N-?;纬傻那拾被奸L鏈(通常是鞘胺醇,二氫鞘胺醇或4-羥雙氫鞘胺醇)構成的(圖1)[1]。神經(jīng)酰胺作為所有神經(jīng)鞘脂類的骨架結構,它的產(chǎn)生涉及多種介質(zhì),包括致炎因子、氧化應激、游離脂肪酸水平的增加及肥胖狀態(tài)下的脂肪組織等[2]。機體內(nèi)游離的神經(jīng)酰胺含量很少,它們主要以鞘脂的形式存在于細胞內(nèi),神經(jīng)酰胺的分類是由其結構中脂肪酸的碳原子數(shù)目而定,在動物體內(nèi)只含有偶數(shù)碳原子的神經(jīng)酰胺(C2~28);Seumois等認為C16、C18和C24神經(jīng)酰胺與動物脂質(zhì)代謝和信號轉(zhuǎn)導關系最為密切,其中C16和C24神經(jīng)酰胺參與調(diào)節(jié)機體內(nèi)細胞增殖和凋亡,而C18神經(jīng)酰胺則抑制細胞的生長[3]。
圖1 神經(jīng)酰胺的生成與代謝(Reynolds C P,2004)
神經(jīng)酰胺可以由從頭合成或神經(jīng)鞘磷脂酶反應產(chǎn)生,也可以由神經(jīng)酰胺-1-磷酸(C1P)生成,其中從頭合成是以絲氨酸和軟脂酰為原料,經(jīng)過縮合反應生成3-酮二氫鞘氨醇,再通過一系列的酶促反應生成神經(jīng)酰胺,然后參與神經(jīng)鞘磷脂循環(huán)(圖1)[4]。神經(jīng)酰胺合成神經(jīng)鞘磷脂需要神經(jīng)鞘磷脂合成酶(sphingomyelin synthase,SMS)參與,SMS催化神經(jīng)酰胺和卵磷脂生成甘油二酯和神經(jīng)鞘磷脂(SM),因此,SMS的活性與神經(jīng)鞘磷脂合成以及神經(jīng)酰胺代謝、蓄積等密切相關[5]。
2.神經(jīng)酰胺在神經(jīng)元增殖中的作用:神經(jīng)元對神經(jīng)酰胺生成的生理反應取決于下游信號對神經(jīng)酰胺調(diào)節(jié)作用的識別,這些下游信號包括JNK and p38,ERK,MAPK,轉(zhuǎn)錄因子如caspase和NF-κB等,其中有些在神經(jīng)酰胺介導神經(jīng)元增殖中起著重要作用[1]。在神經(jīng)細胞中,JNK和p38MAPK與細胞凋亡有關,而細胞外信號調(diào)節(jié)激酶(ERK)參與細胞的增殖與分化[6]。
在哺乳動物體內(nèi)存在著與神經(jīng)細胞生長、發(fā)育有關的神經(jīng)營養(yǎng)因子即β-神經(jīng)生長因子(β-NGF),腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(BDNF),神經(jīng)營養(yǎng)因子-3(NT-3),神經(jīng)營養(yǎng)因子-4(NT-4)和睫狀神經(jīng)營養(yǎng)因子(CNTF),其中β-NGF在神經(jīng)發(fā)育過程中起著重要作用,它能通過p75NGF受體誘導神經(jīng)鞘磷脂水解,增加神經(jīng)酰胺的生成[1,7]。
在海馬神經(jīng)元,神經(jīng)酰胺是通過中性神經(jīng)鞘磷脂酶(N-SMase)對神經(jīng)生長因子(NGF)的反應生成的,而不是通過酸性神經(jīng)鞘磷脂(A-SMase)酶;由中性神經(jīng)鞘磷脂酶(N-SMase)作用生成的神經(jīng)酰胺能激活神經(jīng)酰胺激活的蛋白激酶(CAPK),進而啟動絲裂原活化蛋白激酶-細胞外信號調(diào)節(jié)激酶(MAPKERK)的級聯(lián)反應,誘導細胞的增殖[1]。海馬神經(jīng)元在后有絲分裂從海馬遷移時,神經(jīng)酰胺并沒有阻止增殖,但是在神經(jīng)細胞形成的進程中,一定程度的刺激會繼續(xù)導致軸突的形成,促使神經(jīng)細胞的代償增殖[8]。
神經(jīng)酰胺信號通路參與多種細胞信號轉(zhuǎn)導通路,在不同的細胞中調(diào)控不同的細胞效應,其中介導細胞增殖效應的通路包括絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)信號通路和神經(jīng)酰胺-1-磷酸(C1P)循環(huán)通路。
1.MAPK通路:絲裂原活化蛋白激酶屬于細胞內(nèi)的一類絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,其中MAPK信號通路是真核細胞中的一個重要信號系統(tǒng),能將多種細胞外刺激產(chǎn)生的信號從細胞膜傳遞到細胞核內(nèi),在細胞的增殖、分化、發(fā)育、轉(zhuǎn)化和凋亡過程中起著重要作用[9]。在多細胞組織中,細胞增殖的調(diào)節(jié)是一個復雜的過程,主要是由周圍細胞產(chǎn)生的外部生長因子的調(diào)節(jié),而MAPK通路涉及一系列的蛋白激酶的級聯(lián)反應,在調(diào)節(jié)細胞增殖過程中起著至關重要的作用[10]。該通路主要有3條通路組成,包括 ERK通路、JNK/SAPK通路、p38MAPK通路;這些通路在細胞信號轉(zhuǎn)導過程中獨立存在,在不同細胞中產(chǎn)生不同的細胞效應。
ERK通路中Raf-MEK-ERK通路反應是經(jīng)典的MAPK信號通路之一,受體酪氨酸激酶、G蛋白偶聯(lián)受體和某些細胞因子受體都能激活ERK信號轉(zhuǎn)導途徑;ERK既能磷酸化胞質(zhì)蛋白,又能使一些核轉(zhuǎn)錄因子如 c-fos、c-Jun、Elk-1、Ets1/2 和 p53 等磷酸化,參與細胞增殖與分化的調(diào)控[11]。另外,ERK也能磷酸化ERK信號通路的上游蛋白如NGF受體、SOS、Raf-1、MEK等,進而對該通路進行負反饋調(diào)節(jié)[12];磷酸化的ERK有p44MAPK和p42MAPK,也被稱為ERK1和ERK2,它們能調(diào)控細胞周期,促進細胞增殖、有絲分裂及分化,參與GAP交聯(lián)、肌動蛋白和微管蛋白網(wǎng)及軸突的延伸,增加酶的活性[12]。經(jīng)典的ERK家族(p44/42MAPK)是細胞有絲分裂的胞內(nèi)檢測點,生長因子等激活p44/42MAPK后啟動有絲分裂,促使細胞向G1/S期分裂[13]。激活的Ras或MEK通過cyclin DI(一種G1/S期特異表達蛋白)啟動因子誘導受體基因的表達,同時,Raf-MEK-ERK級聯(lián)反應調(diào)控Cyclin D-Cdk4/6復合物的翻譯后修飾。因此,Raf-MEK-ERK信號通路主要負責調(diào)控G1/S期的進程,促進細胞的增殖[14]。
JNK/SAPK通路涉及多種生理過程,但主要參與caspase-3通路誘導的細胞凋亡過程,Pedram等學者研究發(fā)現(xiàn)ERK與JNK交叉反應和JNK反應產(chǎn)物能促進內(nèi)皮細胞生長因子誘導G1/S期的進展和增加細胞的增殖,JNK最終調(diào)節(jié)ERK刺激細胞的增殖[15];而p38MAPK通路主要是調(diào)控細胞周期,參與細胞的凋亡過程[16]。
2.神經(jīng)酰胺-1-磷酸循環(huán)通路:神經(jīng)酰胺-1-磷酸(C1P)是神經(jīng)酰胺在神經(jīng)酰胺激酶作用下經(jīng)磷酸化生成的一類有生物活性的神經(jīng)鞘脂類,參與調(diào)控應急狀態(tài)下的生理功能,包括抑制細胞凋亡,調(diào)控細胞自噬,控制炎癥及促進細胞增殖等[17]。在不同的細胞中,C1P能夠促進有絲分裂而抑制細胞凋亡。研究證實,C1P在巨噬細胞中的主要作用是促進細胞分裂,其中涉及磷酸肌醇3激酶(PI3K)/蛋白激酶B(PKB,也被稱為Akt)的激活,蛋白激酶Ca,以及絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)/細胞外調(diào)節(jié)激酶1/2(ERK1/2)和 C-Jun-氨基末端激酶(JNK)通路[18]。
C1P抑制細胞凋亡,促進細胞有絲分裂包括兩個主要機制[17]:①直接抑制酸性神經(jīng)鞘磷脂酶,該酶是水解鞘磷脂生成神經(jīng)酰胺的信號激活酶;②抑制絲氨酸棕櫚酰轉(zhuǎn)移酶,這是神經(jīng)酰胺從頭合成途徑的關鍵調(diào)節(jié)酶。這些酶中的任何一種酶被抑制都會引起促凋亡水平的神經(jīng)酰胺含量減少,進而阻止凋亡;此外,C1P能通過促進存活PI3K/PKB通路的刺激作用而抑制細胞凋亡;C1P的其他反應可能對控制細胞增殖或凋亡有重要影響,如細胞鈣內(nèi)流或外流的啟動[19]。最近有研究發(fā)現(xiàn),C1P能有效地刺激細胞的遷移;C1P刺激細胞的增殖不依賴受體的相互作用,而是取決于細胞內(nèi)C1P的濃度[17]。哺乳動物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)是C1P調(diào)控細胞增殖的關鍵酶之一,它的激活需要先啟動RhoA/ROCK通路,該反應在C1P的促有絲分裂效應中起著重要作用[20]。
蛋白激酶 Cα(protein kinase Cα,PKCα)是蛋白激酶C家族成員之一,屬于經(jīng)典Ca2+依賴型蛋白激酶C。PKCα是一種絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,在不同的刺激作用下,參與調(diào)控細胞增殖、分化和凋亡等多種生物學功能[21]。PKCα需要激活才能調(diào)節(jié)細胞功能,其活化機制[22]包括:①磷酸化(Thr-497,Thr-638,Ser-657);②與輔助因子結合[磷酸肌醇特異性磷脂酶C(PLC),磷脂酰肌醇-4,5-二磷酸(PIP2),肌醇三磷酸(IP3),甘油二酯(DAG),Ca2+等];③細胞內(nèi)定位(與胞內(nèi)蛋白結合)。
在不同的細胞類型中,如內(nèi)皮細胞、癌細胞等,PKCα激活Ras-1蛋白激酶的磷酸化,導致細胞外調(diào)節(jié)激酶-絲裂原活化蛋白激酶(ERK-MAPK)的級聯(lián)反應,進而促進細胞的增殖;同時,進一步活化激活蛋白1(AP1)的轉(zhuǎn)錄活性,通過低分子GTP酶Rho激酶與ERK-MAPK級聯(lián)反應的相互作用,引導細胞的遷移[23]。激活的 PKCα還能增加細胞周期蛋白D1(cyclin D1)的表達,促進細胞周期的進程[24]。
蛋白激酶Cα在神經(jīng)酰胺信號通路中也發(fā)揮著重要作用,主要參與神經(jīng)酰胺-1-磷酸(C1P)循環(huán)通路。在該通路中,PKCα的激活不依賴磷脂酰肌醇或磷酸卵磷脂依賴性磷脂酶C前刺激物,但需要神經(jīng)鞘磷脂合成酶(SMS)的刺激[17]。抑制PKCα的活性會阻斷C1P誘導細胞的有絲分裂,阻止細胞的增殖[17]。C1P能促進PKCα在Ser-657殘基位點的磷酸化,活化的 PKCα是誘導細胞增殖的主要刺激物[25]。PKCα經(jīng)SMS激活后,進一步通過 C1P激活DNA的合成,同時,激活MAPK下游信號ERK1/2以及PKB,共同促進細胞的有絲分裂,誘導細胞增殖[17]。
神經(jīng)鞘磷脂合成酶是神經(jīng)鞘磷脂合成的關鍵酶,它參與催化磷酸膽堿由磷酸卵磷酯(PC)轉(zhuǎn)移到神經(jīng)酰胺,生成鞘磷脂和甘油二酯[26]。SMS在鞘脂和磷脂代謝過程中處于中心地位,參與調(diào)節(jié)細胞內(nèi)甘油二酯和神經(jīng)酰胺的水平。在哺乳動物基因組中,SMS有兩種同工酶即SMS1和SMS2,其中SMS1主要集中在高爾基體,而SMS2主要分布于細胞膜與高爾基體上[27]。SMS1主要調(diào)節(jié)細胞內(nèi)SM的水平,參與神經(jīng)酰胺調(diào)控不同細胞功能,以及Fas誘導的細胞凋亡;而SMS2主要參與細胞膜及脂筏SM水平及細胞外信號的傳遞,調(diào)節(jié) NFB的活性[28]。RNA干擾誘導的SMS1或SMS2的缺失會引起SM的合成減少,神經(jīng)酰胺大量蓄積,增強神經(jīng)酰胺的細胞效應[29]。有研究發(fā)現(xiàn),SMS2-/-基因敲除小鼠血液SM水平降低,患動脈粥樣硬化的風險也降低[30]。
美國紐約州立大學蔣憲成教授以C57BL/6小鼠為背景,將SMS2基因1.1kb的內(nèi)含子1、0.7kb的外顯子2和6.2kb的內(nèi)含子2敲除,再通過與C57BL/6J小鼠的雜交而得到SMS2+/-小鼠,然后將收獲的SMS2+/-小鼠進行互交、回交,最終成功地克隆出神經(jīng)鞘磷脂合成酶2基因敲除鼠(SMS2-/-)[30]。該系小鼠SMS2-/-基因的缺失,造成神經(jīng)酰胺在體內(nèi)蓄積,引起神經(jīng)酰胺下游信號級聯(lián)反應的激活,產(chǎn)生不同的細胞效應。該模型的建立不僅有利于研究神經(jīng)鞘磷脂代謝所致動脈粥樣硬化的作用,也為神經(jīng)酰胺相關的神經(jīng)細胞增殖與凋亡的研究提供了一個重要的動物模型基礎[30]。
總之,神經(jīng)酰胺作為重要的第二信使,在不同細胞中產(chǎn)生不同的細胞效應,在細胞的增殖、分化及凋亡過程中起著至關重要的作用,并參與某些疾病如腫瘤、白血病等疾病發(fā)生發(fā)展的病理生理過程。因此,闡明神經(jīng)酰胺在細胞尤其是神經(jīng)細胞中的作用機制,有利于完善細胞增殖分化及凋亡等機制的研究,尤其是神經(jīng)損傷后再生及神經(jīng)生發(fā)機制方面的研究,對于某些疾病的治療和預防有著重要意義。神經(jīng)酰胺在誘導一些細胞凋亡的同時,也參與了細胞的增殖、分化過程,但它在神經(jīng)細胞中的生物效應尚有待進一步的實驗論證。
1 Buccoliero R,F(xiàn)uterman AH.The roles of ceramide and complex sphingolipids in neuronal cell function.Pharmacological Research,2003,47(5):409-419
2 Yang G,Badeanlou L,Bielawski J,et al.Central role of ceramide biosynthesis in body weight regulation,energy metabolism,and the metabolic syndrome.Am J Physiol Endocrinol Metab,2009,297(1):E211-E224
3 Seumois G,F(xiàn)illet M,Gillet L,et al.De novo C16-and C24-ceramide generation contributes to spontaneous neutrophil apoptosis.J Leukoc Biol,2007,81(6):1477-1486
4 Reynolds CP,Maurer BJ,Kolesnick RN.Ceramide synthesis and metabolism as a target for cancer therapy.Cancer Lett,2004,206(2):169-180
5 Li Z,Hailemariam TK,Zhou H,et al.Inhibition of sphingomyelin synthase(SMS)affects intracellular sphingomyelin accumulation and plasma membrane lipid organization.Biochim Biophys Acta,2007,1771(9):1186-1194
6 Grewal SS,York RD,Stork JS.Extracellular-signal-regulated kinase signalling in neurons.Current Opinion in Neurobiology,1999,9(5):544-553
7 Kalish H,Phillips TM.Analysis of neurotrophins in human serum by immunoaffinity capillary electrophoresis(ICE)following traumatic head injury.J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci,2010,878(2):194-200
8 Yang H,Cong R,Na L,et al.Long-term primary culture of highly-pure rat embryonic hippocampal neurons of low-density.Neurochem Res,2010,35(9):1333-1342
9 Zhang W,Liu HT.MAPK signal pathways in the regulation of cell proliferation in mammalian cell.Cell Research,2002,12(1):9-18
10 Mutalik VK,Venkatesh KV.Effect of the MAPK cascade structure,nuclear translocation and regulation of transcription factors on gene expression.Biosystems,2006,85(2):144-157
11 Shaul YD,Seger R.The MEK/ERK cascade:From signaling specificity to diverse functions.Biochimica et Biophysica Acta(BBA)-Molecular Cell Research,2007,1773(8):1213-1226
12 Ramos JW.The regulation of extracellular signal-regulated kinase(ERK)in mammalian cells.The International Journal of Biochemistry & Cell Biology,2008,40(12):2707-2719
13 Ussar S,Voss T.MEK1 and MEK2,different regulators of the G1/S transition.J Biol Chem,2004,279(42):43861-43869
14 Chambard JClaude,Lefloch R,Pouysségur J,et al.ERK implication in cell cycle.regulationBiochimica et Biophysica Acta(BBA)-Molecular Cell Research,2007,1773(8):1299-1310
15 Pedram A,Razandi M,Levin ER.Extracellular signalregulated proten kinase/Jun kinase cross-talk underlies vascular endothelial cell growth factor-induced endothelial cell proliferation.J Biol Chem,1998,273:26722-26728
16 Wang Y,Sun LG,Xia CH,et al.P38MAPK regulates caspase-3 by binding to caspase-3 in nucleus of human hepatoma Bel-7402 cells during anti-Fas antibody-and actinomycin D-induced apoptosis.Biomedicine & Pharmacotherapy,2009,63(5):343-350
17 Gangoiti P,Granado MH,Arana L,et al.Activation of protein kinase C-a is essential for stimulation of cell proliferation by ceramide 1-phosphate.FEBS Letters,2010,584(3):517-524
18 Gangoiti P,Granado MH,Wang SW,et al.Ceramide 1-phosphate stimulates macrophage proliferation through activation of the PI3-kinase/PKB,JNK and ERK1/2 pathways.Cellular Signalling,2008,20(4):726-736
19 Gómez-Mu?oz A,Kong JY,Parhar K,et al.Ceramide-1-phosphate promotes cell survival through activation of the phosphatidylinositol 3-kinase/protein kinase B pathway.FEBS Letters,2005,579(17):3744-3750
20 Gangoiti P,Ouro A,Arana L,et al.Involvement of the RhoA/ROCK pathway in the stimulation of cell proliferation by ceramide 1 phosphate.Chemistry and Physics of Lipids,2010,163(Supplement 1):S38
21 Michie AM,Nakagawa R.The link between PKCα regulation and cellular transformation.Immunology Letters,2005,96(2):155-162
22 Newton AC.Protein kinase C structural and spatial regulation by phosphorylation,cofactors,and macromolecular interactions.Chem Rev,2001,101(8):2353-2364
23 Buitrago CG,Pardo VG,de Boland AR,et al.Activation of RAF-1 through Ras and protein kinase Ca mediates 1α,25(OH)2-vitamin D3 regulation of the mitogen-activated protein kinase pathway in muscle cells.J Biol Chem,2003,278(4):2199-2205
24 Soh JW,Weinstein IB.Roles of speci?c isoforms of protein kinase C in the transcriptional control of cyclin D1 and related genes.J Biol Chem,2003,278(36):34709-34716
25 Bornancin F,Parker PJ.Phosphorylation of protein kinase C-alpha on serine 657 controls the accumulation of active enzyme and contributes to its phosphatase-resistant state.J Biol Chem,1997,272(6):3544-3549
26 Holthuis J,Vacaru A,Tafesse FG,et al.Sphingomyelin synthases:double trouble in the family.Chemistry and Physics of Lipids,2007,149(Supplement 1):S8
27 Huitema K,Dikkenberg van den,Brouwers HM,et al.Identification of a family of animal sphingomyelin synthases.EMBO J,2004,23(1):33-44
28 Hailemariam TK,Huan C,Liu J,et al.Sphingomyelin synthase 2 deficiency attenuates NFkappaB activation.Arterioscler Thromb Vasc Biol,2008,28(8):1519-1526
29 Tafesse FG,Huitema K,Hermansson M,et al.Both sphingomyelin synthases SMS1 and SMS2 are required for sphingomyelin homeostasis and growth in human HeLa cells.J Biol Chem,2007,282(24):17537-17547
30 秦睿,陳明亮,朱珂,等.神經(jīng)鞘磷脂合成酶2基因的缺失有抗動脈粥樣硬化及抗炎作用.生理學報,2010,64(4):333-338