田鶴,王旭,李曉明,郭敏
(1.遼寧醫(yī)學(xué)院組織學(xué)與胚胎學(xué)教研室,遼寧 錦州 121001;2.遼寧中醫(yī)藥大學(xué)組織學(xué)與胚胎學(xué)教研室,沈陽(yáng) 110032)
機(jī)體從胚胎到發(fā)育成熟不僅經(jīng)歷細(xì)胞增殖的過(guò)程,同時(shí)也伴隨著細(xì)胞凋亡。細(xì)胞凋亡又稱(chēng)程序性細(xì)胞死亡,在胚胎器官發(fā)育中起著重要作用[1]。在細(xì)胞凋亡過(guò)程中,多種基因家族及其產(chǎn)物起著關(guān)鍵性的作用。研究報(bào)道,水的轉(zhuǎn)運(yùn)在細(xì)胞凋亡過(guò)程中發(fā)揮一定的作用,在集合管中水的轉(zhuǎn)運(yùn)主要是通過(guò)水通道蛋白 2(aquaporin-2,AQP-2)來(lái)完成的[2]。為了進(jìn)一步探討AQP-2與細(xì)胞凋亡及集合管發(fā)育的關(guān)系,本研究通過(guò)免疫組織化學(xué)、體視學(xué)、電鏡和TUNEL染色法觀察小鼠腎集合管發(fā)育過(guò)程中AQP-2的表達(dá)和細(xì)胞凋亡情況,探討兩者的關(guān)系及在腎集合管發(fā)育過(guò)程中的作用。
昆明小鼠,按雌雄比例1∶1同窩飼養(yǎng),采用檢查陰道栓脫落的方法確定雌鼠受孕時(shí)間,以觀察到陰道栓脫落的最早時(shí)間計(jì)為胚齡(embryonic,E)0 d。記錄受孕時(shí)間,然后將孕鼠分籠飼養(yǎng),每日早8:00和晚5:00觀察生產(chǎn)情況,以觀察到仔鼠出生的最早時(shí)間計(jì)為生后日齡(neonatal,N)0 d,記錄出生日期。選取 E16、17、18 d 的胎鼠和 N1、3、7、14、21、40 d 的仔鼠,每組取5只鼠。將孕鼠用乙醚麻醉后剖腹取胎鼠,E16,E17,E18 d 的胎鼠剖腹取腎,N1,N3,N7,N14,N21,N40 d仔鼠處死后取腎。左腎入10%中性甲醛固定,常規(guī)石蠟包埋切片,厚5μm,用作免疫組化和TUNEL染色。右腎以2.5﹪戊二醛固定,仔鼠腎臟的髓質(zhì)、胚胎全腎進(jìn)行樹(shù)脂包埋,取樹(shù)脂包埋塊,LKB-V型超薄切片機(jī)先切半薄切片,經(jīng)光鏡觀察選擇后進(jìn)行超薄切片,厚度為50~70 nm。醋酸鈾、枸櫞酸鉛染色,1200EX(JEOL)透射電鏡觀察。
石蠟切片脫蠟后,經(jīng)微波修復(fù)10 min后滴加3%H2O2室溫孵育10 min,滴加山羊血清封閉液室溫孵育 5 min,加一抗(濃度 1∶100)37℃孵育 1 h,滴加生物素標(biāo)記的二抗37℃孵育30 min,滴加SABC 37℃孵育30 min,DAB顯色5 min,蘇木精復(fù)染、脫水、透明、封片,光鏡下觀察。用PBS代替一抗作陰性對(duì)照。抗體稀釋均用pH7.4的PBS。
石蠟切片脫蠟后,滴加蛋白酶K(20 mg/L溶于三羥甲基氨基甲烷/鹽酸中)室溫孵育15 min,滴加TUNEL混合溶液(50μL/片),37℃孵育 60 min,滴加轉(zhuǎn)化劑 POD(50μL/片),37℃孵育 30 min,DAB顯色,蘇木精復(fù)染、脫水、透明、封片,光鏡下觀察。用不含末端脫氧核苷酸轉(zhuǎn)移酶的液體代替TUNEL混合溶液作陰性對(duì)照。
用SABC法染色的切片每個(gè)動(dòng)物的腎隨機(jī)取5張,切片在油鏡下按“S”形選取視野,采用方格測(cè)試系統(tǒng),交點(diǎn)計(jì)數(shù)法測(cè)算AQP-2在集合管管腔膜陽(yáng)性表達(dá)的面密度值,公式為:Sv=2Ll=2 Ix/Lc(Lc=ΣPc·a),式中Ix為陽(yáng)性表達(dá)的細(xì)胞膜與測(cè)試方格的交點(diǎn)數(shù),Pc為落在參照系的測(cè)試點(diǎn)數(shù),a為方格的兩點(diǎn)間距離,相當(dāng)于實(shí)際長(zhǎng)度的0.1 mm。用TUNEL法染色的切片每個(gè)動(dòng)物的腎隨機(jī)取5張,切片在400倍光鏡下按“S”形選取視野,采用方格測(cè)試系統(tǒng),至少計(jì)數(shù)1 000個(gè)細(xì)胞,計(jì)算陽(yáng)性細(xì)胞所占的百分比。細(xì)胞凋亡指數(shù)=凋亡陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)/細(xì)胞總數(shù)×100%。
數(shù)據(jù)以x±s表示,采用單因素方差分析。統(tǒng)計(jì)分析用SPSS16.0軟件完成,P<0.05認(rèn)為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
細(xì)胞核中有棕色顆粒者為陽(yáng)性細(xì)胞。N1 d小鼠的集合管上皮中可見(jiàn)陽(yáng)性細(xì)胞(圖1),N7 d時(shí)陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)最多(圖2)。N14 d開(kāi)始,陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)量逐漸減少。
圖1 N1 d小鼠腎集合管,可見(jiàn)少量凋亡細(xì)胞 TUNEL染色×1 000Fig.1 The apoptotic cells in collecting ducts of mice at N1 d TUNELstaining×1 000
圖2 N7 d小鼠腎集合管,可見(jiàn)大量凋亡細(xì)胞 TUNEL染色×1 000Fig.2 The apoptotic cells in collecting ducts of mice at N7 d TUNELstaining×1 000
圖3 N7 d小鼠腎集合管中的凋亡細(xì)胞 電鏡×6 500Fig.3 The apoptotic cells in collecting ducts of mice at N7 d Electron microscope×6 500
圖4 N7 d小鼠腎集合管中的凋亡細(xì)胞 電鏡×10 000Fig.4 The apoptotic cells in collecting ducts of mice at N7 d Electron microscope×10 000
N1 d即可見(jiàn)到凋亡細(xì)胞,N7 d的集合管中凋亡細(xì)胞明顯,凋亡細(xì)胞的主要表現(xiàn)為細(xì)胞體積縮小,核固縮,染色質(zhì)凝聚成球形、半月?tīng)睢⒃卵罓睢?/p>
免疫組織化學(xué)染色顯示,E17 d小鼠腎中出現(xiàn)集合管,此時(shí)可見(jiàn)AQP-2微弱表達(dá),表達(dá)部位為集合管的管腔膜和胞質(zhì)內(nèi),呈棕褐色(圖5)。隨后,在E18 d以及N1,3,7 d的集合管管腔膜和胞質(zhì)內(nèi)均有陽(yáng)性表達(dá)的AQP-2,表達(dá)強(qiáng)度逐漸增強(qiáng)(圖6)。N14 d至N40 d的集合管中均可見(jiàn)陽(yáng)性表達(dá)的AQP-2,但是表達(dá)強(qiáng)度無(wú)明顯變化。
圖5 E17 d小鼠腎集合管,AQP-2弱表達(dá) 免疫組化×1 000Fig.5 The expression of AQP-2 in collecting ducts was faint at E17 d Immunohistochemistry staining×1 000
圖6 N7 d小鼠腎集合管,AQP-2強(qiáng)表達(dá) 免疫組化×650Fig.6 The expression of AQP-2 in collecting ducts was strong at N7 d Immunohistochemistry staining×650
對(duì)TUNEL染色陽(yáng)性的細(xì)胞進(jìn)行凋亡指數(shù)測(cè)量,結(jié)果顯示N1 d,集合管中細(xì)胞凋亡指數(shù)為(32.46±3.69)%,到N7 d達(dá)到高峰,細(xì)胞凋亡指數(shù)為(45.36±4.35)%,以后隨著日齡增加凋亡細(xì)胞逐漸減少。面密度值測(cè)量結(jié)果顯示,AQP-2從E17 d的胎鼠開(kāi)始表達(dá),至N7 d其表達(dá)量達(dá)最高峰,N7 d至N40 d,AQP-2的面密度值與前一時(shí)間點(diǎn)測(cè)量值比較無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(表1)。
表1 小鼠腎集合管不同發(fā)育階段細(xì)胞凋亡指數(shù)以及AQP-2在集合管表達(dá)的面密度值(x±s)Tab.1 The apoptosis index and surface area density of AQP-2 in the collecting ducts during development(x±s)
細(xì)胞凋亡是機(jī)體為了維持內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)定,由基因控制的一種自主有序的生理性死亡[3]。在組織、器官的發(fā)育過(guò)程中,細(xì)胞凋亡具有控制細(xì)胞數(shù)量,消除多余、衰老、異常細(xì)胞的作用[4]。凋亡的形態(tài)學(xué)特征之一是水的流失和細(xì)胞體積縮小,細(xì)胞體積的縮小會(huì)改變細(xì)胞內(nèi)外的滲透梯度,使水通過(guò)單純擴(kuò)散和借助水通道蛋白(如AQP-2)流出細(xì)胞,繼之啟動(dòng)細(xì)胞凋亡過(guò)程[5,6]。
TUNEL是目前比較常用的探討細(xì)胞凋亡的形態(tài)學(xué)手段,本研究結(jié)果顯示,在N1 d的小鼠腎集合管中可見(jiàn)TUNEL陽(yáng)性細(xì)胞,N7 d陽(yáng)性細(xì)胞染色最強(qiáng),凋亡指數(shù)最高,N7 d至N40 d凋亡細(xì)胞數(shù)量逐漸減少。這表明集合管在N1 d至N7 d是發(fā)育的主要階段,雖然細(xì)胞數(shù)量已夠,但是集合管需要通過(guò)細(xì)胞凋亡來(lái)不斷清除因增生而過(guò)剩的細(xì)胞,以利于管腔的形成及調(diào)控自身的發(fā)育速度。N7 d至N40 d,生長(zhǎng)和成熟是集合管的主要特點(diǎn),此期的集合管不再分支,進(jìn)入發(fā)育完善時(shí)期[7]。為了鑒別TUNEL陽(yáng)性細(xì)胞是否由于細(xì)胞自身分裂形成,本研究應(yīng)用電鏡技術(shù)觀察了集合管中的細(xì)胞凋亡現(xiàn)象,結(jié)果與TUNEL染色一致。本研究結(jié)果顯示AQP-2在E17 d時(shí)開(kāi)始出現(xiàn)表達(dá),部位是集合管主細(xì)胞的管腔膜和細(xì)胞胞質(zhì)內(nèi),至N7 d表達(dá)強(qiáng)度最強(qiáng),隨后表達(dá)強(qiáng)度無(wú)明顯改變。對(duì)在主細(xì)胞管腔膜表達(dá)的AQP-2進(jìn)行的面密度值測(cè)量顯示AQP-2表達(dá)的面密度值在N7 d達(dá)到最大值,之后無(wú)明顯變化。這些結(jié)果提示在集合管發(fā)育過(guò)程中,細(xì)胞凋亡與AQP-2有一定的相關(guān)性。Ma等[8]發(fā)現(xiàn)過(guò)度表達(dá)AQP-2促進(jìn)細(xì)胞體積的縮小和凋亡過(guò)程的啟動(dòng)。Jablonski等[9]也證實(shí)在細(xì)胞凋亡過(guò)程中,過(guò)度表達(dá)的AQP-2失去活性,喪失對(duì)水的轉(zhuǎn)運(yùn)能力,使細(xì)胞內(nèi)的離子環(huán)境有利于激活caspase等內(nèi)切酶,進(jìn)而啟動(dòng)細(xì)胞凋亡,證實(shí)了AQP-2與細(xì)胞凋亡關(guān)系密切,與前人的結(jié)果相一致[10,11]。本研究認(rèn)為N1 d至N7 d是集合管快速發(fā)育的時(shí)期,此期集合管的細(xì)胞數(shù)量已足夠其生長(zhǎng)需要,為了適應(yīng)自身的形態(tài)變化及有利于管腔的形成,需要以凋亡的形式來(lái)清除過(guò)剩的細(xì)胞。AQP-2的表達(dá)與此過(guò)程一致,即N1 d表達(dá)較強(qiáng),至N7d達(dá)到最高峰,因此,我們推測(cè)小鼠腎集合管N1 d至N7 d快速發(fā)育期的細(xì)胞凋亡是由AQP-2介導(dǎo)的,AQP-2影響集合管的發(fā)育過(guò)程,關(guān)于此過(guò)程的分子機(jī)制還有待于進(jìn)一步研究。
[1]Gumbiner BM.Cell adhesion:the molecular basis of tissue architectureand morphogenesis[J].Cell,1996,84(3):345-357.
[2]鞠曉靜,朱振龍,魏守禮.水通道蛋白對(duì)凋亡的影響[J].河北醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2008,29(1):118-120.
[3]Wyllie AH,Kerr JF,Currie AR.Cell death:thesignificanceof apoptosis[J].Int Revcytol,1980,68(6):251-306.
[4]Fierlbeck W,Liu A,Coyle R,et al.Endothelial cell apoptosis during glomerular capillary lumen formation in vivo[J].Soc Nephrol,2003,14(5):1349-1354.
[5]劉美菊,孫愛(ài)剛,郭敏.水通道蛋白-2、4在小鼠集合管發(fā)生發(fā)育中的表達(dá)[J].解剖學(xué)報(bào),2006,37(5):588-591.
[6]Agre P,Sasaki S,Chrispeels MJ.Aquaporins:a family of water channel proteins[J].Physiol,1993,265(2):463-476.
[7]朱平,姜敘誠(chéng).人胚胎腎小體和腎小管的發(fā)育[J].解剖學(xué)報(bào),1995,26(4):414.
[8]Ma T,Yang B,Verkman AS.Cloningof anovel water and ureapermeable aquaporin from mouse exprssed strongly in colon,placenta,liver,and heart[J].Biochem Biophys Res Commun,1997,240(2):324-328.
[9]Jablonski EM,Hughes FM.The potential role of caveolin-1 in inhibition of aquaporinsduringthe AVD[J].Biol Cell,2006,98(1):33-42.
[10]Flamenco P,Galizia L,Rivarola V,et al.Roll of AQP2 during apoptosisin cortical collectingduct cells[J].Biol Cell,2009,101(40):237-250.
[11]Rivarola V,F(xiàn)lamenco P,Melamud L,et al.Adaptation to alkalosis ind-uces cell cycledelay and apoptosis in cortical collecting cells:roleof Aquaporin-2[J].Cell Physicol,2010,224(20):405-413.
中國(guó)醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào)2011年7期