侯金才,張 鵬,劉建勛,韓 笑,李 丹,王秀輝
(中國(guó)中醫(yī)科學(xué)院西苑醫(yī)院實(shí)驗(yàn)中心,北京 100091)
缺血缺氧是腦缺血重要的病理進(jìn)程,預(yù)防和治療腦缺血時(shí)的炎癥反應(yīng)是治療腦缺血的關(guān)鍵。TLR4已被證明在腦缺血時(shí)引起局部組織炎性反應(yīng)的重要受體,它介導(dǎo)細(xì)胞的天然免疫過程[1]。小膠質(zhì)細(xì)胞是腦組織只中的免疫細(xì)胞,它的活化使局部組織產(chǎn)生一系列的級(jí)聯(lián)反應(yīng)。因此,本實(shí)驗(yàn)對(duì)原代培養(yǎng)的小膠質(zhì)細(xì)胞進(jìn)行缺氧/復(fù)氧,模擬腦缺血時(shí)腦組織內(nèi)缺血缺氧微環(huán)境,借以激活TLR4通路,然后用清熱解毒中藥梔子的有效提取物梔子苷(geniposide)進(jìn)行干預(yù),從TLR4信號(hào)通路探討梔子苷治療腦缺血的機(jī)制。
1.1動(dòng)物和主要試劑新生SD大鼠(出生24 h內(nèi)),級(jí)別 SPF/VAF,動(dòng)物合格證號(hào):SCXK-(京)2006-0009,購自北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司。
DMEM/F12培養(yǎng)基:Gibco公司;胰蛋白酶:Sig-ma公司;CD11b抗體:Chemicon公司,羊抗小鼠IGFITC與羊抗兔IG-TexRed均購于北京博奧森生物公司。TLR4、MyD88、pI-κB、NF-κBp65、p38 和 p-ERK1/2抗體均購于Abcam公司。梔子苷(純度95.2%,批號(hào)110715-200212,中國(guó)藥品生物制品檢定所)。
1.2大鼠小膠質(zhì)細(xì)胞的培養(yǎng)無菌條件下取出新生大鼠雙側(cè)大腦半球,置于預(yù)冷的解剖液中,迅速剝除腦膜,剔除髓質(zhì)的大部分,置于添加了5%胎牛血清的DMEM/F12中,剪碎成1 mm3的組織塊,1 000×g離心10 min,棄去上清,用0.25%胰酶+1 mmol·L-1EDTA的消化液于37℃中消化組織塊25 min,期間反復(fù)振搖兩次,以血清中止消化,之后反復(fù)吹打使之成為單細(xì)胞懸液,1 000×g離心10 min,棄去上清,D-hank's洗兩次,過200目的尼龍濾網(wǎng),收集懸液1 000×g離心10 min,棄去上清,用添加了10%胎牛血清和青霉素1×105U·L-1、鏈霉素1×105U·L-1的DMEM/F12培養(yǎng)液重懸細(xì)胞,接種至4 個(gè)75 cm2培養(yǎng)瓶中,15 ml/瓶,37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng),3 d后換液去除死亡的細(xì)胞碎片,10 d左右混合膠質(zhì)細(xì)胞鋪滿瓶底時(shí),旋緊瓶蓋,石蠟?zāi)し饪冢?7℃的恒溫?fù)u床中以200 r·min-1的速度振搖約12 h,收集細(xì)胞懸液,置于新培養(yǎng)瓶(板)中繼續(xù)培養(yǎng)4 h,輕輕振搖培養(yǎng)瓶5 min,棄上清,所剩為小膠質(zhì)細(xì)胞,換上新鮮含10%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)液。
1.3小膠質(zhì)細(xì)胞鑒定將小膠質(zhì)細(xì)胞接種到覆蓋玻片的培養(yǎng)孔內(nèi),待細(xì)胞貼壁后,取出細(xì)胞,PBS沖洗,4%聚甲醛固定,一抗用CD11b(1∶100),二抗為羊抗兔IG-FITC(1∶100),0.01%的DAPI復(fù)染細(xì)胞核,1∶9甘油緩沖液封閉,熒光顯微鏡下觀察。
1.4缺氧/復(fù)氧模型的制備和實(shí)驗(yàn)分組取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的小膠質(zhì)細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞濃度為1×109·L-1,接種到24孔培養(yǎng)板內(nèi),每孔1 ml,待細(xì)胞生長(zhǎng)至80%匯合狀態(tài)后,用PBS清洗兩次,更換培養(yǎng)液無糖DMEM培養(yǎng)液。缺氧在厭氧培養(yǎng)盒進(jìn)行,將培養(yǎng)板放入缺氧盒內(nèi),向盒內(nèi)通入含95%N2和5%CO2的混合氣體,20 min(流量 1.5 L·min-1),夾閉盒的出口與入口,37℃培養(yǎng)4 h,換成正常培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)12 h即為缺氧/復(fù)氧模型。實(shí)驗(yàn)分組:①對(duì)照組:用正常培養(yǎng)液培養(yǎng);② 模型組:缺氧4 h,復(fù)氧12 h;③梔子苷低劑量組、中劑量組、高劑量組分別在缺氧時(shí)加入用無糖DMEM配制的終濃度分別為 125 μmol·L-1(低劑量組)、250 μmol·L-1(中劑量組)和 500 μmol·L-1(高劑量組)梔子苷,在復(fù)氧時(shí)加入由正常培養(yǎng)液配制的相應(yīng)濃度的藥物。梔子苷藥物濃度的選定是根據(jù)前期MTT的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,在 125 μmol·L-1梔子苷對(duì)正常和缺氧/復(fù)氧小膠質(zhì)細(xì)胞的活性沒有影響,250 和 500 μmol·L-1梔子苷能夠不同程度地促進(jìn)正常和缺氧/復(fù)氧小膠質(zhì)細(xì)胞的增殖。
1.5逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)檢測(cè)小膠質(zhì)細(xì)胞TLR4 mRNA的表達(dá)用TRIzol法提取細(xì)胞總RNA,紫外分光光度計(jì)測(cè)定A260/A280為1.8~2.0,證實(shí)RNA純度符合RT-PCR反應(yīng)要求。以總RNA為模板,用Oligo-d(T)18為引物逆轉(zhuǎn)錄合成第一鏈cDNA,特異性引物分別擴(kuò)增TLR4和β-actin。TLR4引物序列為上游5'-GCACTGTTCTTCTCCTGCC-3',下游5'-GTTTCCTGTCAGTATCAAG-3'(250 bp)。β-actin引物序列:上游 5'-TGTGCTATGTTGCCCTAGACT-3',下游 5'-TCGTACTCCTGCTTGCTGAT-3'(442 bp)。PCR條件為94℃預(yù)變性5 min,95℃變性30 s,54℃退火30 s,72℃ 延伸 30 s,TLR4 循環(huán) 35 次,β-actin循環(huán)30次,最后72℃延伸7 min,1.5%瓊脂糖凝膠電泳PCR產(chǎn)物。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,用Qautity One軟件分析TLR4與β-actin的PCR產(chǎn)物灰度值,以二者比值來表示TLR4 mRNA的相對(duì)表達(dá)量。
1.6Western blot檢測(cè)TLR4、p-IκBα、p38、p-ERK1/2蛋白將缺氧/復(fù)氧和LPS刺激后的小膠質(zhì)細(xì)胞以冰冷的PBS終止,洗兩次,提取細(xì)胞總蛋白,BCA法測(cè)定蛋白濃度。取50 μg樣品煮沸變性后進(jìn)行SDS-PAGE電泳(5%的濃縮膠和10%的分離膠),轉(zhuǎn)膜,5%的脫脂奶粉37℃封閉1 h,加抗體TLR4、p-IκB、p38、p-ERK1/2,陽性對(duì)照用 β-actin 單克隆抗體,4℃孵育過夜,洗膜,加辣根過氧化物酶標(biāo)記的相應(yīng)二抗稀釋液(1∶3 000)37℃孵育1 h,ECL法顯影,分析條帶灰度值。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,以目的條帶與β-actin條帶的灰度比值來表示蛋白相對(duì)表達(dá)量。
1.7MyD88和NF-κB免疫熒光雙染將小膠質(zhì)細(xì)胞接種到覆蓋玻片的培養(yǎng)孔內(nèi),貼壁生長(zhǎng)48 h后,進(jìn)行缺氧/復(fù)氧和梔子苷干預(yù)后,取出細(xì)胞,PBS沖洗,4%多聚甲醛固定,一抗分別為MyD88(小鼠抗大鼠)和 NF-κBp65(兔抗大鼠),抗體濃度為1∶200;二抗為羊抗小鼠 IG-TexRed和羊抗兔 IGFITC(1∶200),0.01%的DAPI復(fù)染細(xì)胞核,1∶9甘油緩沖液封閉,熒光顯微鏡下觀察。
2.1小膠質(zhì)細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察和鑒定培養(yǎng)3 d時(shí)首次換液倒置顯微鏡下觀察分離出的細(xì)胞呈團(tuán)狀聚集,均勻鋪于瓶底;6 d后可見大量的星形膠質(zhì)細(xì)胞從細(xì)胞團(tuán)中爬出伸展,鋪于星形膠質(zhì)細(xì)胞之上的胞體較小而發(fā)亮、折光性強(qiáng)、突起短小彎曲而密集、形如蜘蛛腿的則是小膠質(zhì)細(xì)胞,另外有少數(shù)圓形或者橢圓形的小膠質(zhì)細(xì)胞呈一定程度活化狀態(tài);10 d后小膠質(zhì)細(xì)胞基本匯合,此時(shí)可以振搖純化小膠質(zhì)細(xì)胞。純化后的小膠質(zhì)細(xì)胞牢牢地貼附于瓶底生長(zhǎng),大部分小膠質(zhì)細(xì)胞胞體較小,折光性強(qiáng)而發(fā)亮,突起短小彎曲,形似蜘蛛腿,少數(shù)可見細(xì)長(zhǎng)突起;還有一部分小膠質(zhì)細(xì)胞呈圓形、扁圓形、或棒狀,這樣的小膠質(zhì)細(xì)胞顯示出一定程度的活化狀態(tài)。
Tab 1 Effect of geniposide on the hypoxia/reoxygenation induced microglia(±s,n=3)
Tab 1 Effect of geniposide on the hypoxia/reoxygenation induced microglia(±s,n=3)
*P<0.01 vs model
Group Control Model Geniposide/μmol·L -1 125 μmol·L -1 250 μmol·L -1 500 μmol·L -1 TLR4 0.3019 ±0.012* 0.4527 ±0.028 0.4319 ±0.022 0.4401 ±0.035 0.2857 ±0.016*p-ERK1/2 0.2964 ±0.035* 0.5361 ±0.051 0.5085 ±0.043 0.2894 ±0.015* 0.3018 ±0.016*p-IκB 0.3545 ±0.041* 0.4908 ±0.042 0.3853 ±0.031 0.3038 ±0.037* 0.3116 ±0.024*p38 0.2737 ±0.016* 0.4426 ±0.039 0.4318 ±0.033 0.3179 ±0.028* 0.2824 ±0.019*
小膠質(zhì)細(xì)胞的鑒定用CD11b抗體,細(xì)胞膜上有明顯的綠色熒光染色,胞核空泡樣,符合細(xì)胞膜分布的特點(diǎn),證實(shí)為小膠質(zhì)細(xì)胞。
2.2 TLR4mRNA的PCR結(jié)果TLR4mRNA的表達(dá)(Fig 1,2)和TLR4蛋白的表達(dá)(Tab 1)在趨勢(shì)上基本一致,對(duì)照組和高劑組與模型組比差異有顯著性,低劑量組和中劑量組差異無顯著性。缺氧/復(fù)氧激活了TLR4受體,梔子苷高劑組通過對(duì)TLR4受體的抑制發(fā)揮抗炎作用。
2.3TLR4、p-ERK1/2、p-IκB、p38的Western blot結(jié)果p-ERK1/2、p-IκB和 p38蛋白的表達(dá)對(duì)照組在梔子苷中劑組和高劑組與模型組比較差異均有顯著性(P<0.01)。說明梔子苷中劑組和高劑組是通過抑制ERK1/2、IκB和p38蛋白磷酸化激活而發(fā)揮作用的。
Fig 1 The expression of TLR4Mrna in microglia
Fig 2The expression of TLR4mRNA in microglia(±s,n=3)*P<0.05 vs model
Fig 3 The expression of TLR4,p-ERK1/2,p-IκB、p38
2.4MyD88和NF-κB的免疫熒光雙染結(jié)果NF-κB p65的核移位是NF-κB活化的標(biāo)志,也是有關(guān)NF-κB生理病理變化的開始。從Fig 4中可以看出模型組和梔子苷低劑組的NF-κB p65在細(xì)胞核表達(dá)較高,對(duì)照組、梔子苷中劑組和高劑組與模型組比較主要表達(dá)在胞質(zhì)中,細(xì)胞核中較少。說明缺氧/復(fù)氧促使NF-κB p65磷酸化并進(jìn)入核中,啟動(dòng)轉(zhuǎn)錄活性。MyD88主要表達(dá)在胞質(zhì)中,模型組和梔子苷低劑組表達(dá)較高,對(duì)照組、梔子苷中劑組和高劑組與模型組比較較少,表達(dá)趨勢(shì)與NF-κB p65核轉(zhuǎn)位趨勢(shì)一致。
Toll樣受體(toll-like receptors,TLRs)是天然免疫受體家族,目前發(fā)現(xiàn)的TLR家族蛋白有13種,其中Toll樣受體4(toll-likereceptor4,TLR4)是研究較為深入的受體,已證實(shí)TLRs在星形膠質(zhì)細(xì)胞和小膠質(zhì)細(xì)胞均有表達(dá),且其表達(dá)程度受到缺氧、炎癥因子等一系列內(nèi)源性或外源性因素刺激的調(diào)節(jié)[2],提示TLRs在中樞神經(jīng)系統(tǒng)炎癥免疫反應(yīng)中起著重要的調(diào)控作用。TLR4受體在腦缺血/再灌注過程中被激活[3],在缺血/缺氧狀態(tài)下,腦組織中的一些內(nèi)源性介質(zhì)可以作為配體激活TLR4受體,例如熱休克蛋白(heat-shock proteins,HSP),其中HSP70可以通過CD-14依賴方式激活TLR4受體來傳導(dǎo)促炎癥反應(yīng)信號(hào),經(jīng)MyD88信號(hào)傳導(dǎo)途徑來誘導(dǎo)促炎癥反應(yīng)細(xì)胞因子的分泌[4]。MyD88的啟動(dòng)使其下游的I-κB迅速磷酸化激活,與NF-κB解離,NF-κB進(jìn)入細(xì)胞核,與p38、ERK1/2磷酸化后激活的激活蛋白1(AP-1)共同作用促使細(xì)胞因子TNF-α、IL-6和IL-8等的分泌,形成組織周圍的炎性反應(yīng)。本實(shí)驗(yàn)通過對(duì)原代培養(yǎng)的小膠質(zhì)細(xì)胞的缺氧/復(fù)氧實(shí)驗(yàn)也證實(shí)缺氧/復(fù)氧激活了TLR4通路,模型組TLR4mRNA和蛋白較對(duì)照組均表達(dá)上調(diào),通路下游 MyD88、p-IκB、p38 和 p-ERK1/2 磷酸化蛋白表達(dá)增多,NF-κBp65入核率增加,提示缺氧/復(fù)氧使小膠質(zhì)細(xì)胞活化,通過MyD88的依賴TLR4通路發(fā)揮免疫作用。
Fig 4 The immunofluorescence double staining of MyD88 and NF-κBp65(×100)
梔子是藥食兩用傳統(tǒng)中藥,藥用梔子是茜草科植物梔子的干燥成熟果實(shí),性寒味苦,歸心、肺、三焦經(jīng),具有瀉火除煩、清熱利尿、涼血解毒之功效。梔子苷是從梔子中提取的環(huán)烯醚萜苷類化合物。國(guó)內(nèi)外研究顯示,梔子苷具有抗炎[5]、抗腫瘤、鎮(zhèn)痛、降壓、保肝利膽、抑制胃液分泌和降低胰淀粉酶、保護(hù)缺血性腦神經(jīng)損傷等作用[6]。在對(duì)小膠質(zhì)細(xì)胞進(jìn)行缺氧/復(fù)氧時(shí),我們加入了終濃度分別為125、250和 500 μmol·L-1梔子苷,發(fā)現(xiàn)對(duì)于 TLR4mRNA 和TLR4蛋白只有 500 μmol·L-1與模型組比較差異有顯著性,而對(duì)于 MyD88、p-IκB 、NF-κB、p-ERK1/2和 p38 蛋白,梔子苷250 和500 μmol·L-1均表現(xiàn)出了抑制作用。其機(jī)制可能是缺氧/復(fù)氧使小膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)一些內(nèi)源性配體活化,在激活TLR4通路的同時(shí)也激活了TLRs的其他通路,如TLR2或TLR6等,這些通路也可依賴MyD88途徑激活下游蛋白(我們后期的實(shí)驗(yàn)也證明了這一點(diǎn),缺氧/復(fù)氧后TLR2和TLR6的mRNA和蛋白的表達(dá)增加)。因此,梔子苷抑制了缺氧/復(fù)氧引起的TLR4mRNA和通路蛋白的表達(dá),進(jìn)而抑制了一系列瀑布式級(jí)聯(lián)反應(yīng)發(fā)揮抗炎效應(yīng)。但通路之間的交叉串流使梔子苷治療腦缺血的機(jī)制更加復(fù)雜,有待于我們進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)證實(shí)。
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