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乳品真蛋白率的提出及測(cè)定

2011-10-19 03:21侯彩云趙靜劉瑩王旭黃昕
中國(guó)乳品工業(yè) 2011年2期
關(guān)鍵詞:氯乙酸乳清乳粉

侯彩云,趙靜,劉瑩,王旭,黃昕

(中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)功能乳品教育部北京市共建重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京100083)

乳品真蛋白率的提出及測(cè)定

侯彩云,趙靜,劉瑩,王旭,黃昕

(中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)功能乳品教育部北京市共建重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京100083)

利用三氯乙酸-雙縮脲比色法對(duì)添加乳清蛋白乳粉的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)進(jìn)行測(cè)定。結(jié)果表明,乳清蛋白的加標(biāo)回收率在89.2%~99%之間,重現(xiàn)性在0.26%~0.98%之間,表明三氯乙酸-雙縮脲比色法可以較好地檢測(cè)出乳中的真蛋白。提出了真蛋白率的概念,并測(cè)定出乳粉的真蛋白率范圍在78.06%~89.90%之間;液態(tài)乳的真蛋白率范圍在90.03%~96.25%之間。

三氯乙酸-雙縮脲比色法;凱氏定氮法;蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù);真蛋白率

0 引言

蛋白質(zhì)是乳品質(zhì)量?jī)?yōu)劣的重要指標(biāo)[1]。我國(guó)現(xiàn)行國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定乳制品中蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測(cè)定方法為凱氏定氮法(簡(jiǎn)稱K法)[2]。根據(jù)其測(cè)定原理,K法的測(cè)定值為樣品中粗蛋白的質(zhì)量分?jǐn)?shù)[3]。正常情況下,乳粉中的非蛋白氮質(zhì)量分?jǐn)?shù)在總氮中所占比例是基本穩(wěn)定的[4,5]。然而,一旦在樣品中添加了非蛋白含氮物,就會(huì)對(duì)K法的測(cè)定結(jié)果產(chǎn)生影響。K法的這一漏洞曾經(jīng)給一些不法廠商的制假售劣提供了可乘之機(jī)。

與粗蛋白相對(duì),真蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)可以較好地反映乳的真實(shí)營(yíng)養(yǎng)價(jià)值[6]。為此,本研究室提出了一種三氯乙酸-雙縮脲比色法(簡(jiǎn)稱T+B法)[7],在此基礎(chǔ)上,提出了真蛋白率的概念,以期找到一種可以較為有效地排除包括尿素、三聚氰胺和水解蛋白在內(nèi)的多種非蛋白含氮物對(duì)乳品中蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)測(cè)定影響的方法,為鑒別非蛋白含氮物的非法添加提供必要的技術(shù)依據(jù)。

1 實(shí)驗(yàn)

1.1 材料

12種市購(gòu)液態(tài)乳;15種市購(gòu)乳粉。

酪蛋白標(biāo)準(zhǔn)品,牛血清蛋白(Bovine Serum Albumin,BSA)標(biāo)準(zhǔn)品,乳清蛋白(質(zhì)量分?jǐn)?shù)為60%),雙縮脲試劑,四氯化碳,三氯乙酸,體積分?jǐn)?shù)為95%乙醇。

雙縮脲試劑:將濃度為10 mol/L氫氧化鉀10 mL和質(zhì)量濃度為250 g/L酒石酸鉀鈉溶液20 mL加到約800 mL蒸餾水中,劇烈攪拌,同時(shí)緩慢加入質(zhì)量濃度為40 g/L的硫酸銅溶液30 mL,定容至1 000 mL。

硼酸-指示劑混合液:溴甲酚綠0.5 g,甲基紅0.1 g溶解于體積分?jǐn)?shù)為95%乙醇中,稀釋至100 mL即為硼酸指示劑混合液。

催化劑:五水合硫酸銅10 g,硫酸鉀100 g,在研缽中研磨,過(guò)40目篩。

濃度為0.01 mol/L鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液,質(zhì)量分?jǐn)?shù)為2%硼酸,質(zhì)量分?jǐn)?shù)為35%氫氧化鈉,濃硫酸,亞甲基蘭-甲基紅指示劑。

1.2 儀器

分析天平,電子天平,752型分光光度計(jì),高速冷凍離心機(jī)(GL220G2Ⅱ),超聲波清洗器(KQ1002DB),消煮爐(KXL-1010),定氮儀(KDY-9820)。

1.3 方法

1.3.1 現(xiàn)行國(guó)標(biāo)蛋白質(zhì)測(cè)定方法

分別精確稱取15種乳粉0.2000 g,編號(hào)為1~16,順序加入0.5~0.55 g的催化劑,5 mL的濃硫酸,放在消煮爐上消化;消化完全并待樣品冷卻后,用凱氏定氮儀蒸餾,并用已標(biāo)定的濃度為0.1 mol/L的鹽酸滴定,計(jì)算得到樣品蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)。樣品平行測(cè)定3次[8]。

分別精確稱取12種液態(tài)乳1.5000 g,編號(hào)為1~12,順序加入0.5~0.55 g的催化劑,5 mL的濃硫酸,放在消煮爐上消化;消化完全并待樣品冷卻后,用凱氏定氮儀蒸餾,并用已標(biāo)定的濃度為0.2 mol/L的鹽酸滴定,計(jì)算得到樣品蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù),記為Pk。樣品平行測(cè)定3次[8]。

1.3.2 T+B法測(cè)定各種乳的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)

1.3.2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

按表1加入酪蛋白標(biāo)準(zhǔn)品和雙縮脲試劑,充分混勻。繪制酪蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線。樣品平行測(cè)定3次。

表1 酪蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作

1.3.2.2 樣品蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測(cè)定

精確稱取乳粉0.2000 g,置于50 mL離心管中,加入2 mL水溶解均勻。加入15%三氯乙酸溶液5 mL混勻,靜置10 min,10 000 r/min下離心10 min。棄去上清液,加入體積分?jǐn)?shù)為95%無(wú)水乙醇10 mL混勻,10 000 r/min下離心5 min。棄去上清液,加入四氯化碳2 mL和雙縮脲試劑20 mL,用超聲波清洗器震蕩均勻,使蛋白溶解,靜置顯色10 min,10 000 r/min下離心20 min。以0管調(diào)零,540 nm下測(cè)定表1配制的標(biāo)準(zhǔn)溶液的吸光度值。以各管真蛋白濃度為縱坐標(biāo),吸光度值為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。同時(shí)測(cè)定上述提取蛋白液的吸光度值,并根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性回歸方程讀取試液的真蛋白質(zhì)量濃度c。樣品平行測(cè)定3次。

精確稱取液態(tài)乳1.5000 g,置于50 mL離心管中。加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)為15%三氯乙酸溶液5 mL混勻,靜置10 min,10 000 r/min下離心10 min。棄去上清液,加入體積分?jǐn)?shù)為95%無(wú)水乙醇10 mL混勻,10 000 r/min下離心5 min。棄去上清液,加入四氯化碳2 mL和雙縮脲試劑20 mL,用超聲波清洗器震蕩均勻,使蛋白溶解,靜置顯色10 min,10 000 r/min下離心20 min。以0管調(diào)零,540 nm下測(cè)定表1配制的標(biāo)準(zhǔn)溶液的吸光度值。以各管真蛋白濃度為縱坐標(biāo),吸光度值為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。同時(shí)測(cè)定上述提取蛋白液的吸光度值,并根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性回歸方程讀取試液的真蛋白質(zhì)量濃度c。樣品平行測(cè)定3次[7]。

按下式計(jì)算乳品試樣的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)P0:

式中:P0為乳品中真蛋白的質(zhì)量分?jǐn)?shù);c為試液蛋白質(zhì)量濃度;m0為取樣量。

1.3.2.3 乳清蛋白的添加對(duì)T+B法測(cè)定結(jié)果的影響

精確稱取乳粉0.2000 g 7份,編號(hào)為1-7;按照表2所示分別向其中7份添加乳清蛋白,置于50 mL離心管中,加入2 mL水溶解均勻。加入15%三氯乙酸溶液5 mL混勻,靜置10 min,10000 r/min下離心10 min。棄去上清液,加入95%無(wú)水乙醇10 mL混勻,10000 r/min下離心5 min。棄去上清液,加入四氯化碳2 mL和雙縮脲試劑20 mL,用超聲波清洗器震蕩均勻,使蛋白溶解,靜置顯色10 min,10 000 r/min下離心20 min。以0管調(diào)零,540 nm下測(cè)定表1配制的標(biāo)準(zhǔn)溶液的吸光度值。以各管真蛋白濃度為縱坐標(biāo),吸光度值為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。同時(shí)測(cè)定上述提取蛋白液的吸光度值,并根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性回歸方程讀取試液的真蛋白質(zhì)量濃度c。樣品平行測(cè)定3次。按1.3.2.2中的公式計(jì)算P0。

表2 乳粉中添加乳清蛋白的配制

1.3.3 乳品真蛋白率的提出與計(jì)算

按下式計(jì)算三氯乙酸-雙縮脲法(T+B法)和凱氏定氮法所測(cè)定乳品蛋白質(zhì)量濃度的比率,記為δP,該值稱為真蛋白率,表示乳品中真實(shí)的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)在粗蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)中所占的比率。

式中:δP為真蛋白率;P0為真蛋白的質(zhì)量分?jǐn)?shù);Pk為樣品中粗蛋白的質(zhì)量分?jǐn)?shù)。

2 結(jié)果與討論

2.1 T+B法測(cè)定樣品蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)

2.1.1 乳清蛋白的添加對(duì)T+B法測(cè)定乳粉蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響

圖1是不同添加量的乳清蛋白對(duì)乳粉的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響??梢钥闯觯S著乳清蛋白添加量的增加,乳粉的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)也相應(yīng)增加,表明T+B法測(cè)定乳粉的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)時(shí),乳清蛋白被三氯乙酸沉淀了,并且乳清蛋白和酪蛋白一起與雙縮脲試劑發(fā)生顯色反應(yīng)。

圖1 乳粉的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)

2.1.2T+B法測(cè)定乳粉蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)時(shí)乳清蛋白的回收率和重現(xiàn)性

通過(guò)加入乳清蛋白進(jìn)行定性,可以檢測(cè)到乳清蛋白的加標(biāo)回收率在89.2%~99%之間,重現(xiàn)性在0.26%~0.98%之間。說(shuō)明T+B法測(cè)定添加乳清蛋白的乳粉的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)時(shí),乳清蛋白可以被較好的定量檢測(cè)出來(lái)。

2.2 兩種方法測(cè)定結(jié)果的比較

表3和表4為凱氏定氮法和T+B法分別測(cè)定的12種液態(tài)乳和15種乳粉的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)。

表3 12種液態(tài)乳的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)%

表4 15種乳粉的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)%

由表3和表4可以看出,凱氏定氮法和T+B法測(cè)定的乳粉和液態(tài)乳的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)具有一致性。通過(guò)成對(duì)t檢驗(yàn),|t|<t(0.05,n)(n=12,15),說(shuō)明T+B法與凱氏定氮法測(cè)定乳粉和液態(tài)乳蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)時(shí),兩者不存在顯著性的差異。

2.3 乳品真蛋白率的測(cè)定與分析

圖2和圖3分別是液態(tài)乳和乳粉的真蛋白率測(cè)定結(jié)果。由圖2可以看出,液態(tài)乳的真蛋白率范圍在90.03%~96.25%之間,表明液態(tài)乳中非蛋白含氮物在粗蛋白中所占的比例并非定值,可能會(huì)因各種因素的影響,在一定的范圍內(nèi)有所波動(dòng)。由圖3可以看出,乳粉的真蛋白率范圍在78.06%~89.90%之間,表明乳粉的真蛋白率普遍低于液態(tài)乳。之所以如此,一方面可能是因?yàn)榧庸すに嚨男枰?,另一方面也可能是存在人為添加非蛋白含氮物的結(jié)果。與粗蛋白相比,真蛋白可以更加直觀地反映乳品的真實(shí)營(yíng)養(yǎng)價(jià)值。對(duì)于市售乳品而言,真蛋白率應(yīng)該穩(wěn)定在一定的范圍內(nèi)。如果某種乳品的真蛋白率過(guò)低,表明有可能存在人為添加外源含氮物質(zhì)的情況,應(yīng)通過(guò)對(duì)其中的乳蛋白甚至氨基酸的構(gòu)成進(jìn)行進(jìn)一步分析的方式,以確認(rèn)其質(zhì)量是否名實(shí)相符。

圖2 液態(tài)乳的真蛋白率

圖3 乳粉的真蛋白率

3 結(jié)論

利用T+B法對(duì)添加乳清蛋白乳粉的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)進(jìn)行測(cè)定時(shí),乳清蛋白的加標(biāo)回收率在89.2%~99%之間,重現(xiàn)性在0.26%~0.98%之間,重現(xiàn)性較好,表明T+B法可以較好地檢測(cè)出乳中的真蛋白。

凱氏定氮法和T+B法測(cè)定乳品的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)具有一致性。提出了真蛋白率的概念,對(duì)于不同乳品而言,真蛋白率應(yīng)穩(wěn)定在一定的范圍內(nèi),如果某種乳品的真蛋白率測(cè)定值與其合理的范圍偏差過(guò)大,則說(shuō)明該乳品可能存在人為添加非蛋白含氮物的情況。對(duì)所收集樣品的測(cè)定,表明乳粉的真蛋白率在78.06%~89.90%之間;液態(tài)乳的真蛋白率在90.03%~96.25%之間。

[1] 程濤,孫艷波,李健.雙縮脲法測(cè)定乳中酪蛋白含量[J].中國(guó)乳品工業(yè),2000,28(3):33-35.

[2] 食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn).GB 5009.5-2010,食品中蛋白質(zhì)的測(cè)定[S].北京:中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社,2010.

[3] 盛成樂(lè).關(guān)于凱氏定氮法測(cè)定蛋白質(zhì)的幾個(gè)問(wèn)題[J].中國(guó)釀造,2002(2):43-44.

[4]武健新.牛乳蛋白質(zhì)的性質(zhì)及應(yīng)用[J].中國(guó)乳品工業(yè),1997,25(2):18-21.

[5] 陳靖,侯彩云,牛巍,等.乳粉蛋白氮數(shù)字圖像檢測(cè)方法的研究[J].食品科技,2007(9):210-212.

[6] 劉東紅,唐佳妮,呂元,等.乳品真蛋白—定義、分析方法、計(jì)價(jià)及影響因素[J].中國(guó)食品學(xué)報(bào),2008,8(5):115-119.

[7] 侯彩云,王加啟,劉鳳巖,等.NY/T1678-2008,乳與乳制品中蛋白質(zhì)的測(cè)定雙縮脲比色法[S].北京:中國(guó)標(biāo)準(zhǔn)出版社,2008.

Determination on the ratio of true protein in milk products

HOU Cai-yun,ZHAO Jing,LIU Ying,WANG Xu,HUANG Xin
(College of Food Science and Nutritional Engineering,China Agricultural University,Beijing 100083,China)

The protein content is determined by trichloroacetic acid-biuret method in milk powder.The recovery of whey protein is 89.2%~99%and the detection limit is 0.26%~0.98%,which shows the true protein can be well determined by trichloroacetic acid-biuret method.The concept of true protein ratio is proposed,and the true protein ratio in the milk powder and raw milk is 78.06%~89.90%and 90.03%~96.25%respectively.

trichloroacetic acid-biuret method;Kjeldahl nitrogen method;the protein content;true protein ratio

TS252.1,TS252.7

A

1001-2230(2011)02-0056-03

2010-11-15

農(nóng)業(yè)科技成果轉(zhuǎn)化資金項(xiàng)目(2009GB23600525)。

侯彩云(1963-),女,教授,從事食品質(zhì)量安全方面的研究。

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