李倩倩 許文萍 綜述 謝渭芬 審校
第二軍醫(yī)大學(xué)附屬長征醫(yī)院消化內(nèi)科(200003)
肝細(xì)胞核因子(hepatocyte nuclear factors,HNFs)是一類在肝臟優(yōu)勢表達(dá)的轉(zhuǎn)錄因子,包括HNF1、HNF3、HNF4、HNF6以及CCAAT/增強(qiáng)子結(jié)合蛋白(C/EBP)。通過調(diào)控下游多種重要肝細(xì)胞功能基因表達(dá),HNFs在肝臟發(fā)育以及肝細(xì)胞分化、功能維持中起關(guān)鍵作用。近年來,越來越多的證據(jù)顯示HNFs家族成員與肝細(xì)胞癌(HCC)的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)[1,2]。本文就HNFs家族成員與HCC的關(guān)系作一綜述。
HNF1包括 HNF1α、HNF1β兩個成員,主要表達(dá)于肝臟、腎臟、小腸、胰腺β細(xì)胞。HNF1α在肝臟中表達(dá)水平最高,調(diào)控白蛋白、α1-抗胰蛋白酶、α、β-纖維蛋白原等諸多重要基因表達(dá),參與調(diào)節(jié)肝臟糖代謝、脂代謝、蛋白質(zhì)合成等眾多生理過程。HNF1β主要調(diào)節(jié)內(nèi)臟內(nèi)胚層的分化,參與器官的早期發(fā)育。
目前關(guān)于HNF1與HCC之間關(guān)系的研究主要集中于HNF1α。Pelletier等[3]發(fā)現(xiàn)下調(diào)肝癌細(xì)胞株 HepG2、Hep3B中的HNF1α表達(dá)可使細(xì)胞表型發(fā)生顯著變化,細(xì)胞間連接結(jié)構(gòu)減少,上皮標(biāo)記物如上皮細(xì)胞鈣黏蛋白(E-cadherin)、閉鎖小帶蛋白1(ZO-1)等表達(dá)降低,間質(zhì)標(biāo)記物如波形蛋白(vimentin)、纖維連接蛋白(fibronectin)等表達(dá)增高,同時上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子如SNAIL、SLUG等和EMT啟動因子轉(zhuǎn)化生長因子-β1(TGF-β1)表達(dá)亦增高,表明HNF1α表達(dá)下調(diào)可促進(jìn)上皮來源的HCC細(xì)胞發(fā)生EMT,從而具有更強(qiáng)的遷移和侵襲能力。Hellerbrand等[4]發(fā)現(xiàn)HNF1在HCC細(xì)胞和組織中表達(dá)下調(diào),并與抑癌基因MIA2表達(dá)下調(diào)顯著相關(guān),恢復(fù)HNF1表達(dá)可重新誘導(dǎo)MIA2表達(dá),而MIA2表達(dá)可顯著抑制HCC細(xì)胞的增殖、侵襲能力以及移植瘤的生長、侵襲,表明HNF1表達(dá)缺失可通過下調(diào)MIA2引發(fā)HCC。Zeng等[5]發(fā)現(xiàn)在二乙基亞硝胺(DEN)誘導(dǎo)大鼠HCC發(fā)生的過程中,HNF1α表達(dá)逐漸下調(diào)。肝癌細(xì)胞株Hep3B、Huh7轉(zhuǎn)染表達(dá)HNF1α基因的重組腺病毒AdHNF1α后,肝細(xì)胞功能基因如葡萄糖-6-磷酸酶(G-6-P)、細(xì)胞色素P4507A1(CYP7A1)、載脂蛋白CⅢ(ApoCⅢ)等表達(dá)增高,腫瘤干細(xì)胞(cancer stem cells,CSCs)標(biāo)記物CD133以及上皮細(xì)胞黏附分子(EpCAM)表達(dá)降低,腫瘤細(xì)胞增殖減少,發(fā)生G2/M期阻滯。在體內(nèi)實驗中,AdHNF1α幾乎可完全抑制肝癌細(xì)胞株Hep3B、Huh7在裸鼠體內(nèi)的成瘤性;瘤內(nèi)和靜脈注射AdHNF1α可分別顯著抑制皮下移植瘤和肝臟原位種植瘤生長。上述結(jié)果表明HNF1α對HCC的抑制作用與誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞分化為成熟肝細(xì)胞以及發(fā)生G2/M 期阻滯有關(guān)。最近 Krützfeldt等[6]發(fā)現(xiàn),在 HNF1α基因敲除小鼠中,肝組織miR-192/194表達(dá)顯著下調(diào),其下游靶基因Fzd6表達(dá)顯著上調(diào),提示HNF1α可能通過調(diào)控miR-194及其靶基因Fzd6表達(dá)而抑制HCC發(fā)生。
上述研究表明HNF1α表達(dá)下調(diào)與HCC的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān),上調(diào)HNF1α表達(dá)可抑制HCC細(xì)胞的體內(nèi)外增殖能力,誘導(dǎo)其向成熟肝細(xì)胞分化,有望成為新的HCC治療靶點。
HNF3包括 HNF3α(FOXA1)、HNF3β(FOXA2)、HNF3γ(FOXA3)三個成員,高表達(dá)于肝臟和胰島。HNF3α為胰高血糖素基因活化所必須;HNF3β可調(diào)節(jié)胰腺β細(xì)胞的胰島素分泌,在肝細(xì)胞分化和肝臟發(fā)育中亦發(fā)揮重要作用,將HNF3β基因轉(zhuǎn)染入胚胎干細(xì)胞,可誘導(dǎo)其向肝細(xì)胞分化[7];HNF3γ可維持葡萄糖代謝平衡,調(diào)節(jié)肝細(xì)胞葡萄糖轉(zhuǎn)運蛋白GLUT表達(dá)。
近年來HNF3與HCC的關(guān)系日益受到關(guān)注,相關(guān)研究主要集中于HNF3β,但結(jié)果并不完全一致。Vavricka等[8]發(fā)現(xiàn)HNF3β在HCC組織中表達(dá)上調(diào),推測其高表達(dá)可能通過對有機(jī)陰離子轉(zhuǎn)運多肽8(OATP8)的轉(zhuǎn)錄抑制參與HCC的發(fā)生。NOTCH信號通路已被證實與腫瘤增殖和轉(zhuǎn)移密切相關(guān)。Liu等[9]的研究表明,腫瘤壞死因子-α(TNF-α)激活下游NF-κB抑制因子激酶 α(IKKα),IKKα 與 HNF3β 相互作用并使之磷酸化,由此抑制其轉(zhuǎn)錄激活能力,導(dǎo)致NUMB表達(dá)下調(diào),激活下游NOTCH信號通路,從而促進(jìn)HCC細(xì)胞增殖。上述發(fā)現(xiàn)提示HNF3β失活參與了炎癥相關(guān)HCC的發(fā)生。人類和嚙齒類的HCC均存在性別差異,雄性HCC發(fā)生率更高。然而Li等[10]的研究顯示,在HNF3α/3β基因缺失小鼠中,DEN誘發(fā)HCC的性別差異被逆轉(zhuǎn),雌性小鼠更易發(fā)生HCC,提示正常小鼠中雌激素對HCC的預(yù)防作用和雄激素對HCC的促進(jìn)作用均依賴于HNF3α/3β,HNF3α/3β及其靶基因參與了HCC性別差異的決定。
盡管不同學(xué)者對HNF3β在HCC中作用的認(rèn)識存在分歧,但目前主流觀點認(rèn)為HNF3β對HCC的發(fā)生、發(fā)展起抑制作用。
HNF4包括 HNF4α、HNF4β、HNF4γ 三個成員,主要表達(dá)于肝臟、腎臟、腸道,參與糖、脂、蛋白質(zhì)和膽汁酸代謝以及解毒、血清蛋白合成等生理過程。HNF4α在分化成熟的肝細(xì)胞中呈高表達(dá),對肝細(xì)胞形態(tài)和功能分化、糖原蓄積、上皮形成具有重要作用,是肝細(xì)胞分化和功能維持的關(guān)鍵調(diào)控因子。HNF4α與HCC的關(guān)系是目前HCC發(fā)生、發(fā)展以及治療研究領(lǐng)域的熱點,而HNF4β、HNF4γ與HCC關(guān)系的研究甚少。
腫瘤的誘導(dǎo)分化治療系指應(yīng)用分化誘導(dǎo)劑促進(jìn)惡性腫瘤細(xì)胞向成熟細(xì)胞分化,從而抑制其異常增殖,逆轉(zhuǎn)其惡性表型,最終達(dá)到治愈腫瘤的目的。作為肝細(xì)胞分化的關(guān)鍵調(diào)控因子,HNF4α可能通過調(diào)節(jié)分化過程中的重要信號通路或下游因子促進(jìn)HCC細(xì)胞向低侵襲性表型逆轉(zhuǎn)或分化為成熟肝細(xì)胞。Yin等[11]發(fā)現(xiàn)肝癌細(xì)胞株HepG2、Hep3B轉(zhuǎn)染表達(dá)HNF4α基因的重組腺病毒AdHNF4α后,肝細(xì)胞功能基因表達(dá)增高,CSCs相關(guān)基因表達(dá)以及CD133+CD90+CSCs比例降低,腫瘤細(xì)胞增殖受抑,出現(xiàn)細(xì)胞周期阻滯,衰老、凋亡增加。在體內(nèi)實驗中,AdHNF4α可使HepG2、Hep3B細(xì)胞在裸鼠體內(nèi)的成瘤性完全喪失;裸鼠移植瘤內(nèi)注射AdHNF4α表現(xiàn)出顯著抗腫瘤效應(yīng),靜脈注射則可預(yù)防肝轉(zhuǎn)移瘤形成。該實驗結(jié)果初步證實利用基因工程手段上調(diào)HNF4α表達(dá)可誘導(dǎo)HCC細(xì)胞尤其是CSCs向成熟肝細(xì)胞分化,從而強(qiáng)烈抑制HCC發(fā)生,HNF4α誘導(dǎo)分化治療可能成為HCC的有效治療方法。Ning等[12]發(fā)現(xiàn),在DEN誘導(dǎo)大鼠發(fā)生HCC的過程中,HNF4α表達(dá)伴隨著 EMT的發(fā)生而逐漸降低;以AdHNF4α上調(diào)HNF4α表達(dá)可抑制HCC發(fā)生過程中的肝細(xì)胞EMT,減輕肝纖維化,同時抑制CSCs標(biāo)記物表達(dá),抑制與EMT和HCC發(fā)生密切相關(guān)的β-連環(huán)蛋白(β-catenin)激活,表明HNF4α系通過抑制 β-catenin信號通路抑制肝細(xì)胞發(fā)生EMT和CSCs形成,從而抑制 HCC發(fā)生。Yue等[13]以AdHNF4α治療兩種大鼠肝纖維化模型,均取得良好效果,模型大鼠肝纖維化顯著減輕,肝功能改善,EMT受抑。鑒于HCC患者多伴有肝硬化,HNF4α在治療HCC的同時可減輕肝硬化,顯示出更廣泛的臨床應(yīng)用前景。
新近HNF4α與miRNAs的關(guān)系成為HNF4α治療HCC相關(guān)機(jī)制研究的熱點。Hatziapostolou等[14]的研究顯示,一過性抑制HNF4α可觸發(fā)由 HNF4α、miR-124、白細(xì)胞介素-6受體(IL-6R)、STAT3、miR-24、miR-629 構(gòu)成的 HNF4α-炎癥反饋回路,此回路一旦激活,HNF4α表達(dá)將持續(xù)受抑,從而促進(jìn)HCC發(fā)生,針對這一炎癥反饋回路的手段將可能用于HCC的治療。Ramamoorthy等[15]的研究發(fā)現(xiàn),一些miRNAs參與了HNF4α的表達(dá)調(diào)控。對這些可能對HNF4α具有靶向調(diào)節(jié)作用的miRNAs進(jìn)行驗證,發(fā)現(xiàn)miR-34a、miR-449a可直接作用于 HNF4α的3’-非翻譯區(qū)(3’-UTR)而抑制其表達(dá),并進(jìn)一步下調(diào)HNF4α下游PXR表達(dá)。let-7 miRNAs家族[16]、miR-21[17]等亦參與了 HNF4α 的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)。miR-122是一種肝臟特異性miRNA,在HCC中表達(dá)下調(diào),可促進(jìn)腫瘤細(xì)胞遷移、侵襲[18,19]。研究[20]顯示 HNF4α 是 miR-122 的關(guān)鍵調(diào)控因子,可通過保守的DR-I元件結(jié)合至miR-122啟動子區(qū),正向調(diào)控其表達(dá)。另有研究[18]發(fā)現(xiàn),miR-122亦受HNF1α、HNF3α、HNF3β 轉(zhuǎn)錄調(diào)控。
綜合上述研究結(jié)果,HNF4α可能通過誘導(dǎo)HCC細(xì)胞尤其是CSCs向成熟肝細(xì)胞分化、抑制肝細(xì)胞EMT的發(fā)生、調(diào)控HCC相關(guān)miRNAs表達(dá)而起到抑制HCC發(fā)生、發(fā)展的作用。同時,HNF4α的表達(dá)受一些miRNAs調(diào)控。因此,利用安全、有效的基因工程手段上調(diào)HNF4α表達(dá)可能成為HCC治療的新策略。
HNF6屬于ONECUT蛋白家族(又稱OC-1),主要表達(dá)于肝臟和胰島,參與調(diào)節(jié)葡萄糖水平、膽固醇代謝以及膽汁酸的合成、轉(zhuǎn)運。目前研究認(rèn)為HNF6與肝細(xì)胞分化和肝臟發(fā)育密切相關(guān),關(guān)于HNF6在HCC發(fā)生、發(fā)展中作用的研究相對較少。Tan等[21]予部分肝切除小鼠靜脈注射表達(dá)HNF6基因的重組腺病毒AdHNF6,發(fā)現(xiàn)進(jìn)入DNA復(fù)制期(S期)的肝細(xì)胞數(shù)量顯著增加,同時腫瘤生長因子α、細(xì)胞周期調(diào)節(jié)因子cyclin D1、轉(zhuǎn)錄因子Foxm1表達(dá)上調(diào),提示在肝臟再生時,上調(diào)HNF6表達(dá)可通過轉(zhuǎn)錄激活細(xì)胞周期調(diào)節(jié)基因刺激肝細(xì)胞增殖。Margagliotti等[22]對 HNF6、OC-2基因敲除小鼠的研究顯示,在肝臟發(fā)育早期,由 HNF6、OC-2、E-cadherin等組成的基因網(wǎng)絡(luò)可刺激肝芽周圍基底膜降解,促進(jìn)成肝細(xì)胞向原始橫隔遷移,通過調(diào)控成肝細(xì)胞的遷移和黏附而調(diào)節(jié)肝芽發(fā)育。Laudadio等[23]發(fā)現(xiàn)一定水平的miR-122為肝細(xì)胞分化所必須;HNF6可直接結(jié)合miR-122的轉(zhuǎn)錄啟動區(qū)以調(diào)控其表達(dá),而miR-122可刺激肝細(xì)胞特異性基因以及包括HNF6在內(nèi)的多數(shù)肝臟特異性轉(zhuǎn)錄因子表達(dá),表明HNF6與miR-122之間存在正反饋回路,這一回路在肝細(xì)胞分化中發(fā)揮關(guān)鍵作用。Lehner等[24]發(fā)現(xiàn)HNF6在結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移標(biāo)本中表達(dá)上調(diào),而正常結(jié)腸和原發(fā)性結(jié)腸癌中均無HNF6表達(dá),由此推測HNF6可能為結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移的重要調(diào)控因子。
上述研究表明HNF6在肝細(xì)胞的增殖、遷移、分化和肝臟發(fā)育中起重要作用,在HCC發(fā)生、發(fā)展中的作用尚不清楚,有待進(jìn)一步研究。
C/EBP 家族包括 C/EBPα、C/EBPβ、C/EBPγ、C/EBPδ、C/EBPε、C/EBPζ六個成員,各成員羧基末端均含有一個保守的堿性-亮氨酸拉鏈域,羧基末端55~65個氨基酸有明顯的序列同源性,在細(xì)胞增殖、分化、腫瘤發(fā)生以及機(jī)體的免疫、應(yīng)激反應(yīng)、能量代謝、血液生成等方面發(fā)揮重要作用。其中C/EBPα在成熟肝細(xì)胞中表達(dá)水平最高,參與調(diào)控肝糖原合成、糖異生、脂質(zhì)代謝等相關(guān)基因表達(dá),以維持成熟肝細(xì)胞的生物學(xué)功能。目前關(guān)于C/EBP與HCC關(guān)系的研究主要集中于C/EBPα。
Tomizawa等[25]發(fā)現(xiàn) HCC組織中 C/EBPα表達(dá)顯著下調(diào),予C/EBPα陰性HCC細(xì)胞轉(zhuǎn)染C/EBPα基因,細(xì)胞增殖和細(xì)胞周期均不受影響,表明C/EBPα表達(dá)與HCC細(xì)胞的增殖活性之間無直接關(guān)系。Tseng等[26]發(fā)現(xiàn)HCC組織中C/EBPα表達(dá)下調(diào)與腫瘤進(jìn)展和預(yù)后不良有關(guān)。Tan等[27]在C/EBPα基因敲入小鼠和野生型小鼠中以DEN誘導(dǎo)HCC,C/EBPα基因敲入小鼠C/EBPα表達(dá)顯著上調(diào),HCC結(jié)節(jié)數(shù)量僅為野生型小鼠的50%且體積較小,表明C/EBPα可在體內(nèi)發(fā)揮抑制HCC生長的作用。Zeng等 發(fā)現(xiàn)C/EBPα可直接作用于miR-122的啟動子區(qū)以激活其轉(zhuǎn)錄,miR-122可抑制下游胰島素樣生長因子1受體(IGF-1R)翻譯以維持糖原合成酶激酶-3β(GSK-3β)活化;GSK-3β活化不僅能抑制細(xì)胞增殖,還能激活C/EBPα,從而形成反饋回路;HCC組織中常可觀察到miR-122、C/EBPα表達(dá)下調(diào)和IFG-1R表達(dá)上調(diào),且miR-122表達(dá)下調(diào)與預(yù)后不良相關(guān)。上述結(jié)果表明GSK-3β-C/EBPα-miR-122-IGF-1R調(diào)節(jié)回路障礙參與了HCC的發(fā)生。雖然多數(shù)研究提示C/EBPα對HCC具有抑制作用,但亦存在不同觀點。Lu等[29]發(fā)現(xiàn)部分HCC組織中C/EBPα表達(dá)明顯上調(diào),其來源病例HCV均陰性;肝癌細(xì)胞株Hep3B、Huh7中 C/EBPα高表達(dá),以siRNA或shRNA下調(diào)其表達(dá)后,腫瘤細(xì)胞生長和克隆形成均受抑。該研究結(jié)果提示C/EBPα在HCV陰性HCC中可能是一個致癌因子。
綜合上述研究結(jié)果,C/EBPα與HCC的關(guān)系仍存在爭議,這可能與所檢測標(biāo)本的病毒背景、種族等特性不同有關(guān)。
綜上所述,HNFs家族成員作為肝細(xì)胞分化和功能維持的重要調(diào)控因子,可能在各種肝臟致癌因素的作用下出現(xiàn)表達(dá)異常,觸發(fā)下游復(fù)雜調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中的重要抑癌因子表達(dá)失調(diào),從而促進(jìn)HCC發(fā)生、發(fā)展。利用基因工程手段上調(diào)HCC細(xì)胞中的特定HNF表達(dá),可抑制腫瘤細(xì)胞增殖,誘導(dǎo)其向成熟肝細(xì)胞分化,為HCC的治療提供了新的思路。
1 Lazarevich NL,Cheremnova OA,Varga EV,et al.Progression of HCC in mice is associated with a downregulation in the expression of hepatocyte nuclear factors[J].Hepatology,2004,39(4):1038-1047.
2 Ishiyama T,Kano J,Minami Y,et al.Expression of HNFs and C/EBP alpha is correlated with immunocytochemical differentiation of cell lines derived from human hepatocellular carcinomas,hepatoblastomasand immortalized hepatocytes[J].Cancer Sci,2003,94(9):757-763.
3 Pelletier L,Rebouissou S,Vignjevic D,et al.HNF1α inhibition triggers epithelial-mesenchymal transition in human liver cancer cell lines[J].BMC Cancer,2011,11:427.
4 Hellerbrand C,Amann T,Schlegel J,et al.The novel gene MIA2 acts as a tumour suppressor in hepatocellular carcinoma[J].Gut,2008,57(2):243-251.
5 Zeng X,Lin Y,Yin C,et al.Recombinant adenovirus carrying the hepatocyte nuclear factor-1alpha gene inhibits hepatocellular carcinoma xenograft growth in mice[J].Hepatology,2011,54(6):2036-2047.
6 Krützfeldt J,R?sch N,Hausser J,et al.MicroRNA-194 is a target of transcription factor1(Tcf1,HNF1α)in adult liver and controls expression of frizzled-6[J].Hepatology,2012,55(1):98-107.
7 Ishizaka S,Shiroi A,Kanda S,et al.Development of hepatocytes from ES cells after transfection with the HNF-3beta gene[J].FASEB J,2002,16(11):1444-1446.
8 Vavricka SR,Jung D,F(xiàn)ried M,et al.The human organic anion transporting polypeptide 8(SLCO1B3)gene is transcriptionally repressed by hepatocyte nuclear factor 3beta in hepatocellular carcinoma[J].J Hepatol,2004,40(2):212-218.
9 Liu M,Lee DF,Chen CT,et al.IKKα activation of NOTCH links tumorigenesis via FOXA2 suppression[J].Mol Cell,2012,45(2):171-184.
10 Li Z,Tuteja G,Schug J,et al.Foxa1 and Foxa2 are essential for sexual dimorphism in liver cancer[J].Cell,2012,148(1-2):72-83.
11 Yin C,Lin Y,Zhang X,et al.Differentiation therapy of hepatocellular carcinoma in mice with recombinant adenovirus carrying hepatocyte nuclear factor-4alpha gene[J].Hepatology,2008,48(5):1528-1539.
12 Ning BF,Ding J,Yin C,et al.Hepatocyte nuclear factor 4 alpha suppressesthedevelopmentofhepatocellular carcinoma[J].Cancer Res,2010,70(19):7640-7651.
13 Yue HY,Yin C,Hou JL,et al.Hepatocyte nuclear factor 4alpha attenuates hepatic fibrosis in rats[J].Gut,2010,59(2):236-246.
14 Hatziapostolou M,Polytarchou C,Aggelidou E,et al.An HNF4α-miRNA inflammatory feedback circuit regulates hepatocellular oncogenesis[J].Cell,2011,147(6):1233-1247.
15 Ramamoorthy A,Li L,Gaedigk A,et al.In silico and in vitro identification of microRNAs that regulate hepatic nuclear factor 4α expression[J].Drug Metab Dispos,2012,40(4):726-733.
16 Koh W,Sheng CT,Tan B,et al.Analysis of deep sequencingmicroRNA expression profile from human embryonic stem cells derived mesenchymal stem cells reveals possible role oflet-7 microRNA family in downstream targeting of hepatic nuclear factor 4 alpha[J].BMC Genomics,2010,11 Suppl 1:S6.
17 Wirsing A,Senkel S,Klein-Hitpass L,et al.A systematic analysis of the 3’UTR of HNF4A mRNA reveals an interplay of regulatory elements including miRNA target sites[J].PLoS One,2011,6(11):e27438.
18 Coulouarn C,F(xiàn)actor VM,Andersen JB,et al.Loss of miR-122 expression in liver cancer correlates with suppression of the hepatic phenotype and gain of metastatic properties[J].Oncogene,2009,28(40):3526-3536.
19 Kutay H,Bai S,Datta J,et al.Downregulation of miR-122 in the rodent and human hepatocellular carcinomas[J].J Cell Biochem,2006,99(3):671-678.
20 Li ZY,Xi Y,Zhu WN,et al.Positive regulation of hepatic miR-122 expression by HNF4α[J].J Hepatol,2011,55(3):602-611.
21 Tan Y,Yoshida Y,Hughes DE,et al.Increased expression ofhepatocyte nuclearfactor6 stimulates hepatocyte proliferation during mouse liver regeneration[J].Gastroenterology,2006,130(4):1283-1300.
22 Margagliotti S,Clotman F,Pierreux CE,et al.The Onecut transcription factors HNF-6/OC-1 and OC-2 regulate early liver expansion by controlling hepatoblast migration[J].Dev Biol,2007,311(2):579-589.
23 Laudadio I,Manfroid I,Achouri Y,et al.A feedback loop between the liver-enriched transcription factor network and miR-122 controls hepatocyte differentiation[J].Gastroenterology,2012,142(1):119-129.
24 Lehner F,Kulik U,Klempnauer J,et al.The hepatocyte nuclear factor 6(HNF6)and FOXA2 are key regulators in colorectal liver metastases[J].FASEB J,2007,21(7):1445-1462.
25 Tomizawa M,Wang YQ,Ebara M,et al.Decreased expression of the CCAAT/enhancer binding protein alpha gene involved in hepatocyte proliferation in human hepatocellular carcinomas[J].Int J Mol Med,2002,9(6):597-600.
26 Tseng HH,Hwang YH,Yeh KT,et al.Reduced expression of C/EBP alpha protein in hepatocellular carcinoma is associated with advanced tumor stage and shortened patient survival[J].J Cancer Res Clin Oncol,2009,135(2):241-247.
27 Tan EH,Hooi SC,Laban M,et al.CCAAT/enhancer binding protein alpha knock-in mice exhibit early liver glycogen storage and reduced susceptibility to hepatocellular carcinoma[J].Cancer Res,2005,65(22):10330-10337.
28 Zeng C,Wang R,Li D,et al.A novel GSK-3 beta-C/EBP alpha-miR-122-insulin-like growth factor 1 receptor regulatory circuitry in human hepatocellular carcinoma[J].Hepatology,2010,52(5):1702-1712.
29 Lu GD,Leung CH,Yan B,et al.C/EBPalpha is upregulated in a subset of hepatocellular carcinomas and plays a role in cell growth and proliferation[J].Gastroenterology,2010,139(2):632-643,643.e1-e4.