張 睿 綜述,周建中 審校
(重慶醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院心內(nèi)科 400016)
MicroRNA(簡稱miRNA)是一類生物進化過程中高度保守的非編碼小分子RNA,其并不編碼蛋白質(zhì),但通過對基因表達、蛋白質(zhì)翻譯及靶RNA的穩(wěn)定性的調(diào)控,參與到許多重要的生物過程中。自2006年以來,有研究發(fā)現(xiàn)miRNA在心血管疾病發(fā)生、發(fā)展過程中起到重要作用,使miRNA成為心血管研究領域的熱點。其中,miRNA與心肌梗死關系的研究特別引人注目,現(xiàn)就近年來與心肌梗死相關的miRNA進行綜述,探討其在心肌梗死發(fā)生、發(fā)展過程中的作用機制及應用展望。
1993年,有學者在線蟲發(fā)育調(diào)控研究中發(fā)現(xiàn)了第1個miRNA,并命名為Lin-4,但直到7年后let-7的發(fā)現(xiàn),才拉開了miRNA研究序幕。成熟miRNA長度約22nt左右,通過與靶mRNA的3′非翻譯區(qū)(3′UTR)特異性結(jié)合,切割或促進mRNA降解,或者抑制其翻譯,降低編碼蛋白質(zhì)水平,實現(xiàn)對基因轉(zhuǎn)錄后的調(diào)控,從而參與許多重要的生物進程。
編碼miRNA的基因有的位于功能基因編碼區(qū),有的則位于非編碼區(qū),其可能成簇表達或獨立表達。miRNA的生成開始于細胞核內(nèi),編碼miRNA的基因經(jīng)RNA聚合酶Ⅱ(或聚合酶Ⅲ)作用產(chǎn)生初級miRNA(pri-miRNA),再經(jīng)Drosha-DGCR8復合體剪切為70~100bp的具有發(fā)夾結(jié)構(gòu)的前體miRNA(pre-miRNA)。這些發(fā)夾結(jié)構(gòu)的RNA被核輸出蛋白Exportin5轉(zhuǎn)運至細胞質(zhì)后,Dicer酶將其剪切成21~25bp的雙鏈miRNA。其中一條鏈與RNA誘導的沉默復合物(RNA-induced silencing complex,RISC)相結(jié)合,成為成熟 miRNA,發(fā)揮miRNA的功能,另一條則被降解。
miRNA調(diào)控基因是通過降解或沉默特定基因來實現(xiàn)的。這種負性調(diào)控靶基因的表達取決于miRNA與靶mRNA的3′UTRs互補的程度。若RISC中miRNAs與靶mRNA匹配完全,形成的復合體可利用AgO2蛋白降解靶mRNA;反之,若兩者序列呈部分匹配,尤其是miRNAs的5′端2~8個被稱為種子序列的核苷酸與靶mRNA匹配完好,可通過抑制靶mRNA翻譯來沉默特定基因,此時相應靶mRNA的水平不受影響,但不能翻譯為蛋白質(zhì)[1]。
2.1 miRNA作為心肌梗死生物學標志物相關研究
2.1.1 miRNA-1 miRNA-1是肌肉及心肌組織中富含的一種 miRNA。Cheng等[2]在Triton X-100體外誘導的心肌壞死模型中發(fā)現(xiàn),miRNA-1能釋放入培養(yǎng)液中,且能穩(wěn)定存在至少24h。在大鼠心肌梗死模型中,miRNA-1在心肌梗死后迅速表達,并在梗死后6h達到高峰,3d后降至基線水平。此研究進一步發(fā)現(xiàn),血液中miRNA-1水平在心肌梗死患者中獲得相似的結(jié)果,并與CK-MB成正相關。同樣地,D′Alessandra等[3]的研究發(fā)現(xiàn)心肌梗死患者循環(huán)中的miRNA-1的上調(diào)與cTnI水平相關,具有相同的峰值時間。以上研究均提示miRNA-1可能作為急性心肌梗死(acute myocardial infarction,AMI)新的生化標記物。
2.1.2 miRNA-499 Adachi等[4]研究了 miRNA在急性冠脈綜合征和充血性心衰時的變化規(guī)律,期望找到新的可用于診斷心肌損傷的標記物。該研究發(fā)現(xiàn),miRNA-499對心肌有高度的特異性,并僅在AMI后表達明顯升高,而在充血性心衰和正常心臟中幾乎不表達。這意味著miRNA-499可預期同cTnI、CK-MB一樣可對AMI做出診斷。
2.1.3 miRNA-208 Ji等[5]在異丙腎上腺素誘導的 AMI大鼠中發(fā)現(xiàn),AMI后miRNA-208在心臟中明顯升高,且升高的時間變化規(guī)律與cTnI相似。Wang等[6]通過對AMI模型大鼠和AMI患者心肌內(nèi)miRNA表達規(guī)律的研究,發(fā)現(xiàn)相較miRNA-1、-133、-499,miRNA-208具有更高的心臟特異性,其在正常心肌中無表達。在AMI模型大鼠中,miRNA-208在1h內(nèi)即可有高表達,3h時出現(xiàn)峰值,6~12h后逐漸下降,24h后消失。同樣在AMI患者中,miRNA-208具有90.9%敏感性及100.0%特異性,且在癥狀出現(xiàn)的最初4h內(nèi)敏感性更高。上述研究均提示miRNA-208可作為更具敏感性及特異性AMI的早期診斷的生物學指標。
2.1.4 miRNA-133和 miRNA-328 Wang和 Li[7]對心肌梗死患者的研究發(fā)現(xiàn),miRNA-133及miRNA-328表達較對照組明顯增高。且在心肌梗死后7d降至正常水平。并且上述2種miRNAs在快速型心律失常、緩慢型心律失常及無心律失常的心肌梗死患者中沒有明顯差異。因此,他們亦可能成為心肌梗死新的標記物。雖然,上述指標之間存在一定差異,但是,miRNA作為心肌梗死的標志物具有相當強的潛力。
2.2 miRNA與心肌梗死后心律失常 心律失常是心肌梗死的主要臨床并發(fā)癥,發(fā)生率幾乎達到100%,但是目前關于miRNA與心肌梗死后心律失常的研究仍主要集中在miRNA-1上。
心肌梗死后,miRNA-1表達明顯增高,其作用靶點為間隙連接蛋白43(connexion 43,GJA1)及鉀離子通道亞基 Kir2.1(KCNJ2),通過增強對其轉(zhuǎn)錄后抑制作用,減慢電傳導促進細胞膜電位去極化,最終增加了心肌梗死后心律失常的易感性[8]。Lu等[9]進一步證明在心肌梗死后心律失常發(fā)生過程中,miRNA-1過表達與β腎上腺素能受體-cAMP-蛋白激酶A(PKA)信號通路及血清反應因子(SRF)過表達相關。該信號通路及SRF活性增加,促使miRNA-1表達增多;而β受體阻斷劑普萘洛爾能阻斷此信號通路并抑制SRF的表達來下調(diào)miRNA-1。從而減少心肌梗死后心律失常的發(fā)生。Terentyev等[10]也在研究中發(fā)現(xiàn)心室肌細胞過表達miRNA-l可增加內(nèi)向鈣電流活動,促進肌漿網(wǎng)鈣離子釋放,細胞內(nèi)鈣穩(wěn)態(tài)環(huán)境被破壞,可觸發(fā)心律失常。Shan等[11]則從臨床中藥入手,發(fā)現(xiàn)丹參酮通過抑制SRF的表達,間接抑制miRNA-1的表達,維持了內(nèi)向整流鉀電流密度和Kir2.1蛋白的濃度,從而降低了缺血性心律失常的發(fā)生率。因此,miRNA-1有望成為心肌梗死后抗心律失常的治療新靶點。
2.3 miRNA與心肌梗死后心室重構(gòu)
2.3.1 miRNA-29 van Rooij等[12]最早報道 miRNA-29參與心肌梗死后纖維化的過程,研究發(fā)現(xiàn)小鼠左冠脈閉塞后,在梗死邊緣區(qū)miRNA-29表達下調(diào),較正常心肌低2倍左右。利用miRNA-29b寡核苷酸體內(nèi)沉默miRNA-29后,多種膠原、原纖維蛋白和彈性蛋白表達明顯增高,促進心肌纖維化;反之,體外轉(zhuǎn)染miRNA-29b類似物后則明顯抑制心肌纖維母細胞中的mRNA水平,從而抑制心肌纖維化。
2.3.2 miRNA-21 Roy等[13]研究發(fā)現(xiàn),同源重失性磷酸張力蛋白基因(phosphatase and tensin homologue,PTEN)是在小鼠缺血/再灌注誘導的心臟重構(gòu)的心臟成纖維細胞上的miRNA-21的靶基因,通過抑制PTEN的表達,促進Akt磷酸化,上調(diào)基質(zhì)金屬蛋白酶-2(MMP-2)的表達,從而促進心肌纖維化,心室重構(gòu)。
2.4 miRNA與心肌梗死后血運重建
2.4.1 miRNA-126 Wang等[14]研究表明內(nèi)皮細胞特異性的miRNA-126通過增加血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)等血管生長因子信號,抑制 Spred-1表達而促進血管形成。若敲除miRNA-126基因,新生小鼠血管內(nèi)皮細胞增殖、遷移受限,導致血管內(nèi)膜不完整、血管形成障礙。van Solingen等[15]的主動脈移植實驗進一步驗證了miRNA-126對缺血誘導下血管新生的重要調(diào)控作用。
2.4.2 miRNA-92 Bonauer等[16]研究發(fā)現(xiàn),在小鼠心肌梗死及后肢缺血的模型中,miRNA-92抑制血管形成的作用明顯,若抑制其表達則能增加血管形成,改善左室功能、減少梗死面積、減少凋亡細胞數(shù),促進缺血受損組織的功能恢復。
2.4.3 miRNA-21 Ji等[17]研究了大鼠頸動脈球囊血管成形術后miRNAs的基因表達譜,發(fā)現(xiàn)miRNA-21明顯上調(diào),在培養(yǎng)的平滑肌細胞中敲除miRNA-21,細胞增殖減少、細胞凋亡增加。表明在平滑肌細胞中miRNA-21具有促增殖和抗凋亡的作用。他們進一步證明在血管成形術后,miRNA-21是通過PTEN、Bcl-2介導細胞增殖和凋亡,從而促進和抑制血管壁新生內(nèi)膜形成。由此可見,miRNA-21可能會在未來成為抗支架內(nèi)再狹窄的新靶點。
2.5 miRNA與缺血再灌注
2.5.1 miRNA-1、miRNA-21和 miRNA-24 冠脈閉塞再通后,會引起缺血-再灌注損傷。Yin等[18]證實了在心肌梗死后,miRNA-1、miRNA-21和 miRNA-24表達上調(diào),并有減少梗死灶范圍的作用。這種現(xiàn)象可能是通過上調(diào)內(nèi)皮一氧化氮合酶、HSP 70以及熱休克基因轉(zhuǎn)錄因子1發(fā)揮作用[19]。也有研究發(fā)現(xiàn)miRNA-21可通過其作用靶點PDCD4發(fā)揮抗細胞凋亡作用從而保護心臟免于缺血-再灌注損傷[20]。
2.5.2 miRNA-320 近來在體內(nèi)外活體研究中發(fā)現(xiàn)過表達miRNA-320可增強心肌細胞死亡和凋亡,增加梗死面積,缺血再灌注后其表達降低可以通過調(diào)控HSP320的合成保護受損心肌細胞的作用,包括抑制血小板聚集、釋放血管活性物質(zhì)以及加強心肌收縮功能等[21]。
2.5.3 miRNA-499 在缺血再灌注損傷模型中,Wang等[22]發(fā)現(xiàn)miRNA-499表達是下調(diào)的,calcineurin催化亞基的α、β亞型是miRNA-499的直接靶目標。miRNA-499通過抑制calcineurin介導的Drp1去磷酸化,抑制心肌細胞凋亡。
2.5.4 miRNA-204 Xiao等[23]發(fā)現(xiàn),在缺血再灌注模型中,miRNA-204表達下調(diào),而LC3-Ⅱ表達則明顯增高。miRNA-204可能通過調(diào)控LC3-Ⅱ蛋白的表達實現(xiàn)對心肌細胞自噬作用的調(diào)節(jié),以保護心肌避免缺血再灌注損傷。
2.5.5 miRNA-133 He等[24]研究中發(fā)現(xiàn)缺血再灌注導致miRNA-133在心肌細胞中低表達,但經(jīng)缺血后處理后則表達增加,減少了缺血再灌注損傷所致的左室心肌梗死面積,同時降低了CK和LDH的水平。將miRNA-133類似物或者AMO-133a在缺血再灌注之前轉(zhuǎn)入心肌中,前者使CASP9表達增加,抑制心肌凋亡的發(fā)生;后者反之。研究提示CASP9可能是miRNA-133在缺血再灌注調(diào)控中的潛在靶點。
3.1 miRNA作為診斷和預后的生物學指標 在AMI時心肌特異性的miRNA出現(xiàn)升高或者降低,因此其可以作為心肌損傷新的標志物。如miRNA-1,-499,-208,-133,-328等。其中最值得注意的是miRNA-208,在眾多潛在的心肌損傷標志物中,其僅在心肌中表達,具有高度的特異性,和cTnI相比,能更快地反應AMI的發(fā)生,且不受其他非特異性損傷的干擾,也不受腎功能的影響[5],擁有巨大的應用前景。
3.2 miRNAs作為新的治療靶點 miRNAs作為心肌梗死新的治療靶點,主要是通過上調(diào)或者下調(diào)miRNAs的表達,調(diào)節(jié)相應靶基因和蛋白質(zhì)的表達,減輕缺血性心肌損害,達到治療目的。上調(diào)miRNA表達,主要通過miRNA模擬技術,采用人工合成的基因特異性miRNA(miRNA mimics,擬 miRNA),模擬體內(nèi)miRNA的作用方式,對目的基因或信號通路進行封閉抑制,具有較高特異性。如Roy等[13]利用miRNA-21模擬技術有效抑制了PTEN-P13K-Akt-MMP2信號通路的表達,明顯減少了缺血再灌注后心肌梗死的梗死面積。而下調(diào)miRNA表達,主要通過antagomirs技術。其將antagomirs(與膽固醇偶聯(lián)的AMOs)注入小鼠體內(nèi),可有效而特異地沉默內(nèi)源性miRNA。如antagomirs技術通過對miRNA-29的干預作用,能明顯抑制心肌纖維化。近年來miRNA海綿、miRNA橡皮擦及miRNA面紗等新技術的相繼出現(xiàn),部分研究已證實其能有效地降低心肌梗死后相關miRNA的表達水平,具有良好的臨床應用前景[25]。
[1]Fasanaro P,Greco S,Ivan M,et al.MicroRNA:emerging therapeutic targets in acute ischemic diseases[J].Pharmacol Ther,2010,125(1):92-104.
[2]Cheng Y,Tan N,Yang J,et al.A translational study of circulating cell-free microRNA-1in acutemyocardial infarction[J].Clin Sci(Lond),2010,119:87-95.
[3]D′Alessandra Y,Devanna P,Limana F,et al.Circulating microRNAs are new and sensitive biomarkers of myocardial infarction[J].Eur Heart J,2010,31:2765-2773.
[4]Adachi T,Nakanishi M,Otsuka Y,et al.Plasma microRNA-499as a biomarker of acute myocardial infarction[J].Clin Chem,2010,56(7):1183-1185.
[5]Ji X,Takahashi R,Hiura Y,et al.Plasma miR-208as a biomarker of myocardial injury[J].Clin Chem,2009,55(11):1944-1949.
[6]Wang GK,Zhu JQ,Zhang JT,et al.Circulating microRNA:a novel potential biomarker for early diagnosis of acute myocardial infarction in humans[J].Eur Heart J,2010,31(6):659-666.
[7]Wang RR,Li N.Circulating microRNAs are promising novel biomarkers of acute myocardial infarction[J].Internal Medicine,2011,50:1789-1795.
[8]Zhao Y,Ransom JF,Li A,et al.Dysregulation of cardiogenesis,cardiac conduction,and cell cycle in mice lacking miRNA-1-2[J].Cell,2007,129(2):303-317.
[9]Lu YJ,Zhang Y,Shan HL,et al.MicroRNA-1down regulation by propranol in a rat model of myocardial infarction:a new mechanism for ischaemic cardioprotection[J].Cardiovasc Res,2009,84(3):434-441.
[10]Terentyev D,Belevych AE,Terentyeva R,et al.MiR-l overexpression enhances Ca2+release and promotes cardiac arrhythmogensis by targeting PP2Aregulatory subunit B56α and causing CaMKⅡ dependent hyperphosphorylation of RyR2[J].Circ Res,2009,104(4):514-516.
[11]Shan HL,Li XL,Pan ZW,et al.Tanshinone IIA protects against sudden cardiac death induced by lethal arrhythmias via repression of microRNA-1[J].Br J Pharmacol,2009,158(5):1227-1235.
[12]van Rooij E,Sutherland LB,Thatcher JE,et al.Dysregulation of miRNAs after myocardial infarction reveals a role of miR-29in cardiac fibrosis[J].Proc Natl Acad Sci USA,2008,105(35):13027-13032.
[13]Roy S,Khanna S,Hussain SR,et al.MicroRNA expression in response to murine myocardial infarction:miR-21 regulates fibroblast metalloprotease-2via phosphatase and tensin homologue[J].Cardiovas Res,2009,82(1):21-29.
[14]Wang S,Aurora AB,Johnson BA,et al.Theendothelial-speciifc microRNA miR-126governs vascular integrity and angiogenesis[J].Dev Cell,2008,1(2):261-271.
[15]van Solingen C,Seghers L,Bijkerk R,et al.Antago miR-mediated silencing of endothelial cell specific microRNA-126impairs ischemia-induced angiogenesis[J].J Cell Mol Med,2009,13:1577-1585.
[16]Bonauer A,Carmona G,Iwasaki M,et al.MicroRNA-92a controls angiogenesis and functional recovery of ischemic tissues in mice[J]Sci,2009,324:1710-1713.
[17]Ji R,Cheng Y,Rue J,et al.miRNA expression signature and anti-sense-mediated depletion reveal an essential role of miRNA in vascular neointimal lesion formation[J].Ciro Res,2007,100:1579-1588.
[18]Yin C,Wang X,Kukreja RC.Endogenous microRNAs induced by heat-shock reduce myocardial infarction following ischemia-reperfusion in mice[J].FEBS Lett,2008,582(30):4137-4142.
[19]Yin C,Salloum FN,Kukreja RC.A novel role of microRNA in late preconditioning:upregulation of endothelial nitricoxide synthase and heat shock protein 70[J].Cire Res,2009,104(5):572-575.
[20]Cheng YH,Zhu P,Yang J.Ischaemic preconditioning-regulated miR-21protects heart against ischaemia/reperfusion injury via anti-apoptsis through its target PDCD4[J].Cardio Res,2010,87(3):431-439.
[21]Ren XP,Wu JH,Wang XH,et al.MicroRNA-320is involved in the regulation of cardiac ischemia/reperfusion injury by targeting heat-shock protein 20[J].Circulation,2009,119:2357-2366.
[22]Wang JX,Jiao JQ,Li Q,et al,miR-499regulates mitochondrial dynamic by targeting calcineurin and dynaminrelated protein-1[J].Nature Medicine,2011,23(1):71-78.
[23]Xiao J,Zhu XY,He B,et al.MiR-204regulates cardiomyocyte autophagy induced by ischemia-reperfusion though LC3-Ⅱ[J].J Biomed Sci,2011,18(1):35-37.
[24]He B,Xiao J,Ren AJ,et al.Role of miR-1and miR-133a in myocardial ischemic postconfitioning[J].J Biomed Sci,2011,18(1):22-25.
[25]Fasanaro P,Greco S,Ivan M,et al.microRNA:emerging therapeutic targets in acute ischemic diseases[J].Pharmacol Ther,2010,125(1):92-104.