吳 喬,薛亞平,鄭裕國
(浙江工業(yè)大學(xué)生物工程研究所,浙江 杭州 310014)
腈水解酶是一類能選擇性催化腈化合物生成酸和氨的蛋白酶[1,2],具有來源廣泛、反應(yīng)條件溫和、高效專一等特點,常用于工農(nóng)業(yè)生產(chǎn)[3,4]。
R-(-)-扁桃酸是一種重要的手性中間體,具有很好的生物分解性,是目前最受矚目的酸性光學(xué)拆分劑,廣泛應(yīng)用于多種光學(xué)活性醫(yī)藥、農(nóng)藥的合成和手性化合物的光學(xué)拆分[3]。此外,R-(-)-扁桃酸的新的用途正不斷被發(fā)掘,市場需求日益增大[5],其制備越來越受到重視。
R-(-)-扁桃酸的生產(chǎn)方法主要有化學(xué)法和生物法,其中生物法中的腈水解酶催化法由于底物價廉、反應(yīng)條件溫和、環(huán)境污染小、轉(zhuǎn)化率高、產(chǎn)物光學(xué)純度高,具有良好的工業(yè)化前景[1,5]。目前已報道的腈水解酶菌株主要有AlcaligenesfaecalisATCC 8750[6,7]、PseudomonasputidaMTCC 5110[8,9]、Alcaligenessp.ECU0401[10,11]等。構(gòu)建腈水解酶基因工程菌并進(jìn)行發(fā)酵產(chǎn)酶已成為工業(yè)化生產(chǎn)R-(-)-扁桃酸的重要手段。Banerjee等[12]對P.putidaMTCC 5110的腈水解酶基因進(jìn)行克隆,構(gòu)建了重組菌E.colipET21b(+)-PspNit,但其搖瓶發(fā)酵的生物量較低,單位體積產(chǎn)酶不高。張志鈞等利用來自Alcaligenessp.ECU0401的腈水解酶基因重組得到E.coliJM109,優(yōu)化后,搖瓶生物量為3.13 gdcw·L-1,產(chǎn)酶量達(dá)到4760 U·L-1,e.e.值大于95%[13,14]。
Xue等[15,16]通過大規(guī)模的篩選和育種,獲得一株高活性的立體選擇性腈水解酶菌株A.faecalisZJUTB10,并利用該腈水解酶進(jìn)行了生物催化外消旋扁桃腈生產(chǎn)R-(-)-扁桃酸的研究。用PCR方法擴增出A.faecalisZJUTB10腈水解酶基因,并將其插入到表達(dá)載體pET28b(+)中,IPTG誘導(dǎo)后,腈水解酶在大腸桿菌胞內(nèi)進(jìn)行了活性表達(dá),具有較高的活性[17]。
作者在此優(yōu)化了含有A.faecalisZJUTB10腈水解酶基因的工程菌E.coliBL21(DE3)/pET28b(+)-NIT的培養(yǎng)基組分以及誘導(dǎo)產(chǎn)酶條件,擬為生物法工業(yè)化催化扁桃腈生產(chǎn)R-(-)-扁桃酸提供參考。
產(chǎn)腈水解酶基因工程菌E.coliBL21(DE3)/pET28b(+)-NIT,目的基因源于A.faecalisZJUTB10,該基因序列全長1068 bp,編碼372個氨基酸,預(yù)測其分子量為41 548 Da,該序列已提交到GenBank數(shù)據(jù)庫,數(shù)據(jù)庫登記號為HQ407378,自行構(gòu)建。
扁桃腈(Acros)、扁桃酸(J&K),其余試劑均為市售分析純,實驗用水為蒸餾水。
高速離心機,美國Beckman Coulter;FA2004型電子分析天平,上海精密儀器儀表有限公司;SPD-20A型高效液相色譜儀,日本島津公司;Sky-110WX型水浴搖床,上海蘇坤有限公司。
種子培養(yǎng)基:蛋白胨10 g·L-1,酵母浸出汁5 g·L-1,NaCl 10 g·L-1,卡那霉素50 mg·L-1,121 ℃滅菌20 min。
初始發(fā)酵培養(yǎng)基:蛋白胨10 g·L-1,酵母浸出汁5 g·L-1,NaCl 10 g·L-1,pH值7.5,121 ℃滅菌20 min。
初始培養(yǎng)方法:從甘油管或斜面挑取重組工程菌至裝液量為50 mL (250 mL三角瓶)的種子培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng)12 h后,取1 mL種子液于裝液量為100 mL(500 mL三角瓶)的發(fā)酵培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng)4 h后加誘導(dǎo)劑乳糖2.0 g·L-1,轉(zhuǎn)入28 ℃誘導(dǎo)培養(yǎng)16 h后離心收集菌體。
轉(zhuǎn)化方法:將菌體用生理鹽水(0.85%)洗滌,稱取0.05 g菌體懸浮于10 mL(pH值8.5)Tris-HCl緩沖溶液中(測產(chǎn)酶時取1 mL發(fā)酵液離心,收集菌體,生理鹽水洗滌后懸浮于5 mL緩沖溶液中),加入底物R,S-扁桃腈(終濃度50 mmol·L-1),35 ℃、180 r·min-1下反應(yīng)20 min,立即取樣1 mL,12 000 r·min-1離心6 min終止反應(yīng),取上清液,檢測產(chǎn)物和底物的濃度。
1.4.1 生物量的測定
取30 mL發(fā)酵液離心收集菌體,并用生理鹽水(0.85%)洗滌,90 ℃烘干至恒重,即為發(fā)酵液的生物量,以gdcw·L-1計。
1.4.2 酶活的測定
產(chǎn)物和底物濃度的檢測:色譜柱為Hypersil ODS(250 mm×4.6 mm,填料粒徑5 μm),流動相為甲醇∶NH4H2PO4(50 mmol·L-1)=35∶65 (體積比),柱溫 35 ℃,流速1 mL·min-1,檢測波長228 nm。
酶活力定義為:每分鐘催化生成1 μmolR-(-)-扁桃酸所需的酶量為1個酶活力單位(U)。
1.4.3 產(chǎn)物對映體過量值的測定
將轉(zhuǎn)化樣品用濃鹽酸調(diào)pH值至1.5,加入等體積乙酸乙酯萃取,收集有機相,風(fēng)干,干燥后將白色晶體溶解于流動相正己烷∶異丙醇∶三氟乙酸(90∶10∶0.1),用于色譜分析。色譜柱為CHIRALEL-OD-H手性柱 (250 mm×4.6 mm,5 μm;Daicel Chemical Industries,Japan),柱溫40 ℃,流速0.8 mL·min-1,檢測波長228 nm。R-(-)-扁桃酸的光學(xué)純度通過計算對映體過量值(e.e.值)來評價。
式中:cR和cS分別為R型和S型異構(gòu)體的濃度。
以初始發(fā)酵培養(yǎng)基為基礎(chǔ),考察不同碳源對菌株生長和產(chǎn)酶的影響,結(jié)果見表1。
表1 碳源對菌株生長和產(chǎn)酶的影響
由表1可知,碳源為甘油、葡萄糖、麥芽糖和甘露醇時,在乳糖誘導(dǎo)下,酶活很低或者沒有;碳源為玉米漿粉時比酶活和產(chǎn)酶量最高,分別達(dá)到約209.19 U·g-1、2275.99 U·g-1,生物量較高,約為2.72 gdcw·L-1。綜合考慮,選擇最佳碳源為玉米漿粉。
玉米漿粉濃度對菌株生長和產(chǎn)酶的影響見圖1。
圖1 玉米漿粉濃度對菌株生長和產(chǎn)酶的影響
由圖1可知,玉米漿濃度為10 g·L-1時比酶活最高,但生物量不高;玉米漿粉濃度為25 g·L-1時,產(chǎn)酶量最高,達(dá)2505.39 U·L-1;考慮到產(chǎn)酶,選擇最佳玉米漿粉濃度為25 g·L-1。
以初始發(fā)酵培養(yǎng)基為基礎(chǔ),考察不同氮源對菌株生長和產(chǎn)酶的影響,結(jié)果見表2。
表2 氮源對菌株生長和產(chǎn)酶的影響
由表2可知,氮源為酵母浸出汁時,比酶活有明顯優(yōu)勢,產(chǎn)酶量也最高。因此,選擇最佳氮源為酵母浸出汁。
酵母浸出汁濃度對菌株生長和產(chǎn)酶的影響見圖2。
圖2 酵母浸出汁濃度對菌株生長和產(chǎn)酶的影響
由圖2可知,選擇最佳酵母浸出汁濃度為5 g·L-1,比酶活和產(chǎn)酶量均最高,分別為210.29 U·g-1和2458.76 U·L-1。
以初始發(fā)酵培養(yǎng)基為基礎(chǔ),考察不同磷酸鹽對菌株生長和產(chǎn)酶的影響,結(jié)果見圖3。
1.K2HPO4 2.KH2PO4 3.Na2HPO4 4.NaH2PO4 5.(NH4)2HPO4 6.NH4H2PO4 7.Control
由圖3可知,KH2PO4、NaH2PO4、NH4H2PO43種磷酸鹽對比酶活有促進(jìn)作用,分別為262.67 U·g-1、245.27 U·g-1、244.60 U·g-1(對照樣比酶活為234.15 U·g-1),說明含2個氫離子的磷酸鹽利于腈水解酶的表達(dá),但是磷酸鹽的加入減少了生物量,抑制了產(chǎn)酶。
至此,我終于明白了。她所謂的“怕”,其實是面對弱者的遭遇無力提供幫助而產(chǎn)生的自責(zé),繼而形成的逃避行為。
表3 金屬離子對菌株生長和產(chǎn)酶的影響
由表3可知,Cu+、Mg2+(MgCl2·6H2O)、Fe3+、Fe2+、Al3+、Ca2+對相對酶活有促進(jìn)作用,對生物量影響不一,F(xiàn)e3+、Fe2+有利于菌株產(chǎn)酶(分別提高3.71%和2.45%),由于Fe2+在空氣中容易被氧化成Fe3+,可認(rèn)為Fe3+促進(jìn)了菌株產(chǎn)酶。
Fe3+濃度對菌株生長和產(chǎn)酶的影響見圖4。
圖4 Fe3+濃度對菌株生長和產(chǎn)酶的影響
由圖4可知,選擇最佳Fe3+濃度為0.5 mmol·L-1,比酶活和產(chǎn)酶量最高,分別為252.49 U·g-1和2502.89 U·L-1。
圖5 乳糖濃度對菌株生長和產(chǎn)酶的影響
由圖5可知,隨著乳糖濃度的增大,菌株生物量上升,比酶活和產(chǎn)酶量呈現(xiàn)先升后降的趨勢。選擇最佳乳糖濃度為0.5 g·L-1,比酶活和產(chǎn)酶量最高,分別為340.91 U·g-1和3262.84 U·L-1。
圖6 誘導(dǎo)溫度對菌株生長和產(chǎn)酶的影響
由圖6可知,隨著誘導(dǎo)溫度的升高,比酶活和產(chǎn)酶量呈現(xiàn)先升后降的趨勢,在30 ℃時最高,分別為352.06 U·g-1和3791.12 U·L-1;菌株生物量呈現(xiàn)先升后降再升的趨勢,在30 ℃時最高,而后下降,超過35 ℃時,又緩慢回升。綜合考慮,選擇最佳誘導(dǎo)溫度為30 ℃。
圖7 乳糖加入時間對菌株生長和產(chǎn)酶的影響
由圖7可知,隨著乳糖加入時間的延后,比酶活和產(chǎn)酶呈現(xiàn)先升后降的趨勢,在乳糖加入時間為6 h時最高,分別為368.04 U·g-1和3880.50 U·L-1;菌株生物量呈現(xiàn)先降后升再降的趨勢。綜合考慮,選擇最佳乳糖加入時間為6 h。
自誘導(dǎo)劑加入后開始計時,不同時間取樣分析檢測誘導(dǎo)過程中pH值、比酶活、生物量以及產(chǎn)酶量的變化,見圖8。
圖8 加入乳糖后發(fā)酵過程中菌株生長和產(chǎn)酶的變化
由圖8可知,隨著誘導(dǎo)時間的延長,pH值沒有明顯變化,生物量一直呈上升趨勢,比酶活在16 h時達(dá)到最高368.92 U·g-1,其后急劇下降。從產(chǎn)酶出發(fā)考慮,選擇最佳誘導(dǎo)時間為28 h,其生物量、比酶活以及產(chǎn)酶量分別為5.27 gdcw·L-1、297.15 U·g-1和6161.46 U·L-1。
以最優(yōu)培養(yǎng)條件下獲得的菌體催化外消旋型扁桃腈生成R-(-)-扁桃酸,結(jié)果見圖9。
圖9 菌體催化扁桃腈生成R-(-)-扁桃酸的過程
由圖9可知,初始底物濃度為47.77 mmol·L-1,轉(zhuǎn)化50 min后產(chǎn)物濃度為43.96 mmol·L-1,轉(zhuǎn)化率達(dá)92.02%,產(chǎn)物e.e.值達(dá)99%以上,表明該酶的立體選擇性很嚴(yán)格。
對于重組菌E.coliBL21 (DE3)/pET28b(+)-NIT產(chǎn)腈水解酶,最適發(fā)酵培養(yǎng)基為:玉米漿粉25 g·L-1,酵母浸出汁5 g·L-1,NaCl 10 g·L-1,F(xiàn)e3+0.5 mmol·L-1,初始pH值7.5;最適誘導(dǎo)產(chǎn)酶條件為:誘導(dǎo)劑乳糖0.5 g·L-1,誘導(dǎo)劑加入時間為接種6 h后,誘導(dǎo)溫度30 ℃,誘導(dǎo)時間28 h。在該條件下,產(chǎn)酶量達(dá)到6161.46 U·L-1,所得菌體用于不對稱轉(zhuǎn)化R,S-扁桃腈生成R-(-)-扁桃酸,轉(zhuǎn)化率達(dá)92.02%,產(chǎn)物e.e.值達(dá)99%以上。該菌株十分有潛力作為R-(-)-扁桃酸工業(yè)生產(chǎn)的生物催化劑。
參考文獻(xiàn):
[1] 徐賽珍,鄭裕國.選擇性腈水解酶在生物催化中的應(yīng)用[J].浙江化工,2009,40(5):13-18.
[2] Singh R,Sharma R,Tewari N,et al.Nitrilase and its application as a ′green′ catalyst[J].Chem Biodivers,2006,3(12):1279-1287.
[3] 鄭裕國,薛亞平,沈寅初,等.腈轉(zhuǎn)化酶在精細(xì)化學(xué)品生產(chǎn)中的應(yīng)用[J].生物工程學(xué)報,2009,25(12):1795-1807.
[4] 徐建妙,鄭裕國,沈寅初.腈水解酶的來源、結(jié)構(gòu)、作用機制及其應(yīng)用[J].微生物學(xué)通報,2005,32(5):141-146.
[5] 陳艷,薛亞平,鄭裕國.生物催化法合成R-扁桃酸的研究進(jìn)展[J].精細(xì)與專用化學(xué)品,2010,18(2):55-60.
[6] Yamamoto K,F(xiàn)ujimatsu I,Komatsu K I.Purification and characterization of the nitrilase fromAlcaligenesfaecalisATCC 8750 responsible for enantioselective hydrolysis of mandelonitrile[J].J Ferment Bioeng,1992,73(6):425-430.
[7] Yamamoto K,Kazuhiko O,Isao F,et al.Production ofR-(-)-mandelic acid from mandelonitrile byAlcaligenesfaecalisATCC 8750[J].Appl Environ Microbiol,1997,57(10):3028-3032.
[8] Kaul P,Banerjee A,Mayilraj S,et al.Screening for enantioselective nitrilases:Kinetic resolution of racemic mandelonitrile to (R)-(-)-mandelic acid by new bacterial isolates[J].Tetrahedron:Asymmetry,2004,15(2):207-211.
[9] Naik S C,Kaul P,Banerjee A,et al.Studies on the production of enantioselective nitrilase in a stirred tank bioreactor byPseudomonasputidaMTCC 5110[J].Bioresource Technology,2008,99(1):26-31.
[10] He Y C,Xu J H,Xu Y,et al.Biocatalytic synthesis of (R)-(-)-mandelic acid from racemic mandelonitrile by a newly isolated nitrilase-producerAlcaligenessp.ECU0401[J].Chinese Chemical Letters,2007,18(6):677-680.
[11] Zhang Z J,Xu J H,He Y C,et al.Cloning and biochemical properties of a highly thermostable and enantioselective nitrilase fromAlcaligenessp. ECU0401 and its potential for (R)-(-)-mandelic acid production[J].Bioprocess and Biosystems Engineering,2011:34(3):315-322.
[12] Banerjee A,Dubey S,Kaul P,et al.Enantioselective nitrilase fr-omPseudomonasputida:Cloning,heterologous expression,and bioreactor studies[J].Mol Biotechnol,2009,41(1):35-41.
[13] Liu J F,Liu Z J,Xu J H,et al.Significantly enhanced production of recombinant nitrilase by optimization of culture conditions and glycerol feeding[J].Appl Microbiol Biotechnol,2010,89(3):665-672.
[14] Zhang Z J,Xu J H,He Y C,et al.Efficient production of (R)-(-)-mandelic acid with highly substrate/product tolerant and enantioselective nitrilase of recombinantAlcaligenessp.process[J].Biochemistry,2010,45(6):887-891.
[15] Xue Y P,Xu S Z,Liu Z Q,et al.Enantioselective biocatalytic hydrolysis of (R,S)-mandelonitrile for production of (R)-(-)-mandelic acid by a newly isolated mutant strain[J].J Ind Microbiol Biotechnol,2011,38(2):337-345.
[16] Xue Y P,Liu Z Q,Xu M,et al.Enhanced biotransformation of (R,S)-mandelonitrile to (R)-(-)-mandelic acid with in situ production removal by addition of resin[J].Biochem Eng J,2011,53(1):143-149.
[17] Liu Z Q,Dong L Z,Cheng F,et al.Gene cloning,expression,and characterization of a nitrilase fromAlcaligenesfaecalisZJUTB10[J].J Agr Food Chem,2011,59(21):11560-11570.