鐘國成,李小紅 綜述,朱 波校審
(第三軍醫(yī)大學(xué)新橋醫(yī)院全軍腫瘤研究所,重慶 400037)
隨著現(xiàn)代免疫學(xué)向分子水平的研究不斷深入,T淋巴細胞(T-lymphocyte,簡稱T細胞)在免疫系統(tǒng)中發(fā)揮的作用也越來越受到重視。T細胞是淋巴細胞的主要組分,在抗感染、抗腫瘤及自身免疫應(yīng)答中均發(fā)揮著關(guān)鍵作用。T細胞的發(fā)育成熟是一個反復(fù)篩選與淘汰的復(fù)雜過程,受到多種因素的精細調(diào)控。近年來,微RNA(microRNA,miRNA)的功能和作用正逐漸成為學(xué)者們關(guān)注的重點。借助對miRNA基因水平的研究,將有力地促進闡明T細胞發(fā)育的調(diào)控機制[1]。本文就miRNA調(diào)控T細胞發(fā)育的相關(guān)研究進展做一綜述,并探討miRNA對T細胞發(fā)育調(diào)控的特點和應(yīng)用前景。
T細胞源于骨髓造血干細胞(hematopoietic stem cells,HSCs)。HSCs首先分化為多能祖細胞,然后經(jīng)淋巴途徑向淋巴祖細胞分化。淋巴祖細胞中T細胞祖細胞(Pro-T)經(jīng)血循環(huán)進入胸腺發(fā)育成T細胞前體細胞(Pre-T),隨后發(fā)育成胸腺細胞。胸腺是T細胞主要的發(fā)育器官,摘除胸腺將導(dǎo)致嚴重的免疫缺陷。T細胞發(fā)育的胸腺依賴性提示胸腺為T細胞提供了適宜的微環(huán)境和發(fā)育信號[2]。
胸腺細胞始于CD4-CD8-雙陰性T細胞(double negative,DN),此時細胞表面已表達CD3和T細胞受體(T cell receptor,TCR),然后經(jīng)CD4+CD8+雙陽性細胞(double positive,DP)發(fā)育為成熟的 CD4+或 CD8+單陽性(single-positive,SP)細胞。發(fā)育過程中不能與自身主要組織細胞相容性復(fù)合體(major histocompatibility complex,MHC)結(jié)石的T細胞將被誘導(dǎo)凋亡,即陽性選擇,它賦予T細胞MHC限制性(識別由自身MHC呈遞的抗原而不識別其他MHC呈遞的抗原);而與自身MHC或自身抗原結(jié)合過強的T細胞也會被誘導(dǎo)凋亡,即陰性選擇,它賦予T細胞對自身抗原的耐受性[3]。胸腺每天能產(chǎn)生約1×107個胸腺細胞,最終僅有1%~3%的胸腺細胞能發(fā)育成SP細胞。
由此可見,T細胞發(fā)育是一個十分復(fù)雜的過程,需要一個龐大的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)參與,以確保成熟T細胞在數(shù)量上保持動態(tài)平衡,同時正確執(zhí)行免疫功能,不會忽視抗原或是攻擊自身組織,維持適宜的免疫強度。miRNA是調(diào)控T細胞發(fā)育的一個重要因素,其調(diào)控作用已引起了研究者的濃厚興趣。
miRNA是一組進化保守的調(diào)控性小分子RNA,無編碼蛋白質(zhì)作用,能通過干擾靶向信使RNA(messenger RNA,mRNA)的穩(wěn)定或翻譯而調(diào)節(jié)基因表達。miRNA先由RNA聚合酶Ⅱ轉(zhuǎn)錄成含帽子結(jié)構(gòu)和多聚腺苷酸尾巴的初始RNA(primiRNA)。pri-miRNA經(jīng)胞核內(nèi) RNA聚合酶Ⅲ(RNaseⅢ)Drosha在雙鏈RNA-結(jié)合蛋白DGCR8/Paha的作用下加工成長約70核苷酸(nt)的pre-miRNA。轉(zhuǎn)運蛋白Exportin5依賴Ran-GTP將pre-miRNA從細胞核轉(zhuǎn)運至細胞質(zhì),RNaseⅢ酶Dicer將pre-miRNA剪切成約22nt的雙鏈miRNA。兩條鏈迅速解螺旋,其中一條很快降解,而另一條鏈作為成熟miRNA形成RNA誘導(dǎo)沉默復(fù)合物(RNA-induced silencing complex,RISC)而發(fā)揮調(diào)節(jié)作用。當miRNA與靶向mRNA的3′UTR完全互補時,RISC中的Argonaute2會降解mRNA而起到調(diào)節(jié)作用;如果部分互補將通過抑制mRNA翻譯來發(fā)揮調(diào)節(jié)功能[4]。
近年來,通過基因芯片和深度測序技術(shù)對T細胞成熟過程中不同階段miRNA的鑒定表明:確實有部分miRNA在T細胞發(fā)育過程中出現(xiàn)顯著的變化,這種特定miRNA豐度的動態(tài)變化可以作為界定各個發(fā)育階段的特異性指標。
miRNA對T細胞發(fā)育的調(diào)控可大致分為胸腺內(nèi)調(diào)控和胸腺外調(diào)控,其中前者是主要調(diào)控場所,是調(diào)控的上游,決定T細胞發(fā)育的命運。在胸腺內(nèi),參與T細胞發(fā)育調(diào)控的miRNA構(gòu)成了一個復(fù)雜的調(diào)控網(wǎng)絡(luò),彼此調(diào)節(jié)與制約,與胸腺內(nèi)環(huán)境形成緊密聯(lián)系,在適當?shù)臅r間精確控制T細胞的發(fā)育過程。miRNA在胸腺內(nèi)的調(diào)控將參與產(chǎn)生SP細胞的數(shù)目,T細胞的MHC限制性、自身抗原耐受性、對抗原的親和力、存活時間以及增殖和應(yīng)答潛能;而miRNA在胸腺外的調(diào)控相對于胸腺內(nèi)簡單,影響因素較少,可視為對胸腺內(nèi)調(diào)控的補充或細化,主要參與調(diào)控外周T細胞的增殖、分化方向以及執(zhí)行免疫功能的強弱。
3.1 Dicer酶 Dicer酶是一種類似RNaseⅢ的生成關(guān)鍵酶,它對于小分子干擾RNA和miRNA的產(chǎn)生是不可或缺的,Dicer酶能將miRNA前體(發(fā)夾RNA)加工為成熟的miRNA。缺乏Dicer酶將導(dǎo)致miRNA銳減(包括miRNA-150、miRNA-21、miRNA-103、miRNA-29、miRNA-155等)。研究發(fā)現(xiàn) T 細胞特異性Dicer酶的缺乏會顯著減少T細胞數(shù)量,盡管CD4+與CD8+T細胞的比例變化不大;Muljo等[5]發(fā)現(xiàn),在小鼠的胸腺組織中去掉Dicer酶,將導(dǎo)致外周血T細胞發(fā)育嚴重障礙,細胞內(nèi)miRNA加工缺陷,面對抗原的刺激難以正常增殖,而且會迅速凋亡。缺乏Dicer酶的Th細胞會偏向分泌IFN-γ,傾向Th1方向分化,這提示Dicer對于抑制Th1細胞的分化是必需的。Dicer酶能夠有效誘導(dǎo)Foxp3(forkhead box P3)轉(zhuǎn)錄因子的生成,對于胸腺中調(diào)節(jié)性T細胞(regulatory T cells,Treg)的發(fā)育具有重要作用。缺乏Dicer酶將因為無法正常產(chǎn)生Foxp3而抑制轉(zhuǎn)化生長因子(transforming growth factor,TGF)-β介導(dǎo)的Treg的產(chǎn)生,喪失抑制性調(diào)控功能,促使Treg高表達效應(yīng)性T細胞的表面分子,最終誘發(fā)致死性的自身免疫[6]。在這個過程中,具體有哪些miRNA參與的機制還不清楚,但可以明確miRNA-155和miRNA-27b在其中發(fā)揮了主要作用。此外,缺乏Dicer酶還會導(dǎo)致Th17(一種不同于Th1、Th2和Treg的CD4+亞群細胞,主要分泌IL-17,參與自身免疫性腦脊髓炎的發(fā)生)無法誘導(dǎo)產(chǎn)生[7]。
3.2 miRNA-17~92簇 miRNA-17~92簇由一組多順反子性miRNA組成,位于人類染色體13q31,包括 miRNA-17,miRNA-18a、miRNA-19a、miRNA-20a、miRNA-196-1和 miRNA-92這6個miRNA,在組織結(jié)構(gòu)中高度保守。miRNA-17~92已被證實在腫瘤發(fā)生中發(fā)揮重要作用。在淋巴細胞系中,miRNA-17~92于前體T細胞高表達,成熟之后表達減少。實驗發(fā)現(xiàn),miRNA-17~92轉(zhuǎn)基因小鼠外周幾乎所有的淋巴細胞亞群都有擴增,其中以CD4+T細胞增生最為顯著[8]。miRNA-17~92高表達轉(zhuǎn)基因小鼠的T細胞在體外的增殖和存活能力都明顯提高,敲除miRNA-17~92將導(dǎo)致嚴重的T細胞發(fā)育障礙和迅速凋亡。進一步研究發(fā)現(xiàn),miRNA-17~92作用的靶點(負調(diào)控)可能是PTEN(一種腫瘤抑制基因)和Bim(促凋亡因子),在miRNA-17~92高表達的T細胞中Bim明顯下調(diào),但是聯(lián)合PTEN和Bim還不足以完全模擬miRNA-17~92過表達的實驗?zāi)P?,因此分析在調(diào)控T細胞發(fā)育過程中可能有其他不同的靶位參與[9]。另外,miRNA-17~92對CD8T細胞的具體調(diào)控機制目前尚不清楚。
3.3 miRNA-142和 miRNA-223 miRNA-142定位于17號染色體中一個和侵襲性B淋巴細胞白血病相關(guān)的位點。Ramkissoon等[10]研究發(fā)現(xiàn),miRNA-142在胸腺、脾臟及骨髓中高表達,而在其他組織中表達很低,其調(diào)控作用似乎僅限于造血細胞。目前研究認為,miRNA-142對T細胞發(fā)育的調(diào)控主要發(fā)生在SP階段向初始T細胞發(fā)育的過程中,而在其他階段未發(fā)現(xiàn)有調(diào)控作用。過量表達的miRNA-142能顯著改變T細胞的分化發(fā)育,促進初始T細胞增殖30%~40%以上,而對B淋巴細胞則無明顯影響[11]。miRNA-223主要表達于骨髓,單核細胞、粒細胞,在T細胞中低表達,它主要參與調(diào)控粒細胞的發(fā)育,但過表達的miRNA-223也能促進T細胞的發(fā)育和增殖[12]。
3.4 miRNA-181a miRNA-181a在調(diào)控B淋巴細胞方面發(fā)揮重要作用,同時也參與T細胞的發(fā)育。研究發(fā)現(xiàn),miRNA-181a在骨髓、胸腺以及富含T細胞的一級淋巴組織中高表達。如果造血干細胞和祖細胞中高表達miRNA-181a,將導(dǎo)致外周CD8+T細胞的明顯下降。在小鼠移植模型中,高表達的miRNA-181a將導(dǎo)致外周T細胞減少50%以上,其中CD8+T細胞減少88%,這提示miRNA-181a對T細胞發(fā)育發(fā)揮重要作用。
Neilson等[13]系統(tǒng)研究了 T 細胞在 DN1、DN2、DN3、DN4、DP、SP等不同發(fā)育階段miRNA-181a的表達情況,結(jié)果發(fā)現(xiàn)miRNA-181a在DN和DP階段表達量最高,而在之后其他階段逐漸下調(diào)。miRNA-181a在胸腺細胞DP階段的豐度,是成熟T細胞中的10倍以上。高表達的miRNA-181a能增強TCR的信號轉(zhuǎn)導(dǎo),促進DN,DP階段不成熟T細胞與胸腺MHC分子結(jié)合,保證陽性選擇和陰性選擇的順利完成。熒光素酶實驗顯示,在DP階段,miRNA-181a能夠抑制一些淋巴細胞成熟過程中參與陽性選擇的基因表達,比如bcl-2、CD69和TCR。Li等[14]發(fā)現(xiàn),在成熟T細胞高表達 miRNA-181a會提高TCR與抗原的親和力,如果抑制未成熟T細胞miRNA-181a的表達將降低T細胞對抗原肽的敏感性,并破壞T細胞陽性選擇和陰性選擇,這與miRNA-181a在DN和DP高表達,而在T細胞成熟過程中下調(diào)一致。事實上,miRNA-181a對TCR與抗原的親和力具有重要的調(diào)節(jié)作用,它能調(diào)控多個靶標,主要包括抑制TCR信號通路中在下游起負性調(diào)節(jié)作用中的酪氨酸蛋白磷酸酯酶(如SHP-2,PTPN22,DUSP5和DUSP6),通過磷酸化作用激活兩個TCR信號通路分子,即淋巴細胞特異性蛋白酪氨酸激酶(lymphocyte-specific tyrosine kinase,LCK)和細胞外信號調(diào)控激酶(extracellular signal regulated kinase,ERK)進而增強TCR的信號強度。另一方面,TCR的信號通路能負反饋抑制miRNA-181a的表達,TCR與抗原結(jié)合后1h內(nèi),miRNA-181a的表達會迅速下調(diào)。通過miRNA-181a對胸腺T細胞發(fā)育的這種精細調(diào)控機制,使成熟初始T細胞的TCR針對不同抗原具有適宜的親和力[15]。
3.5 miRNA-155 miRNA-155具有類似癌基因的特性,與腫瘤發(fā)生關(guān)系密切,是目前人類淋巴瘤中發(fā)現(xiàn)的惟一獨立致癌miRNA,最初被命名為B細胞整合簇。Georgantas等[16]發(fā)現(xiàn),miRNA-155在造血干細胞中有一定的表達,而成熟造血細胞的miRNA-155卻明顯下降,但在一些血液系統(tǒng)惡性腫瘤中高表達。研究證實,miRNA-155高表達能使T細胞在小鼠骨髓內(nèi)的增殖紊亂,而敲除miRNA-155的CD4+T細胞雖然在增殖方面沒有明顯變化,但發(fā)育的T細胞識別抗原后無法分泌正常的IL-2和IFN-γ,而且容易發(fā)生凋亡,嚴重削弱Treg維持自身動態(tài)平衡的能力和增殖潛能。FOXP3是Treg發(fā)育和功能所必需的轉(zhuǎn)錄因子,可以直接控制miRNA-155的表達。miRNA-155在Treg中的表達水平要高于其他T細胞亞群,一般認為,miRNA-155對于維持Treg存活、分泌抑制性細胞因子是非常重要的,它通過作用靶點細胞因子信號抑制物1(suppressor of cytokine signalling 1,SOCS1。該通路能通過IL-2、信號轉(zhuǎn)導(dǎo)、轉(zhuǎn)尿激活因子5,STAT5信號傳導(dǎo)通路促進細胞增殖)發(fā)揮作用[17-18]。
3.6 其他miRNA的調(diào)控作用 與miRNA-181a相似,miRNA-350在T細胞發(fā)育的DP階段高表達,而在之后的發(fā)育過程中急劇下降。miRNA-16在單核細胞、中性粒細胞和CD8+T、CD4+T等多數(shù)細胞和組織中高表達,推測其在調(diào)控細胞周期上具有重要的作用。miRNA-150可能通過作用靶位轉(zhuǎn)錄因子c-Myb,而參與調(diào)控 T細胞發(fā)育。另外,miRNA-669c和miRNA-297在CD4+T細胞階段特異性高表達;miRNA-15b、miRNA-150、miRNA-24和 miRNA-27在 CD8+T 細胞特異性高表達[19];而 miRNA-223和 miRNA-146在 Treg高表達[20],考慮這些miRNA更多地參與T細胞分化的調(diào)控,其具體的作用機制尚需要進一步探討。
miRNA對T細胞發(fā)育過程的調(diào)控機制非常復(fù)雜。每一種miRNA具有多個潛在的作用靶點(如miRNA-17~92可以達到上百種),在適宜的時間發(fā)揮不同的作用;同時miRNA還受到其他多種分子的調(diào)控和反饋,在完成某一階段的調(diào)控任務(wù)后會及時停止。T細胞的發(fā)育需要多種miRNA在不同時間共同作用,單一miRNA很難與T細胞發(fā)育的特定階段嚴格對應(yīng),參與調(diào)控的miRNA之間并非獨立工作,而是互相影響,既可以發(fā)揮疊加作用,也可以彼此拮抗。正是由于這種多元化調(diào)控機制,才能實現(xiàn)T細胞發(fā)育的精細與準確,保證發(fā)育成熟的T細胞不會攻擊自身組織,而是正確識別感染和腫瘤抗原后予以消滅,并在清除抗原后及時控制免疫強度,避免免疫升級而傷害自身組織,最終保持整個免疫系統(tǒng)的穩(wěn)定和平衡。
T細胞發(fā)育過程中獲得的MHC限制性與自身耐受、自身免疫疾病、過敏性疾病、免疫缺陷病以及腫瘤發(fā)生密切相關(guān),深入研究miRNA對于T細胞發(fā)育的調(diào)控并進行干預(yù)將為這些疾病的防治提供良好的應(yīng)用前景,如改變miRNA-181a的表達而調(diào)控TCR的親和力,將有助于加強T細胞對自身抗原的耐受,有利于自身免疫病的治療。當前,針對miRNA的研究需要人們了解其確切的信號通路,找到特定miRNA具體作用的上下游靶分子,包括不同組織不同階段的多個靶位,各自的生物學(xué)功能并加以證實[21]。此外,鑒于miRNA網(wǎng)絡(luò)調(diào)控的特點,嘗試有效進行多個miRNA基因操作,并建立進行體內(nèi)實驗的技術(shù)方法也是今后研究的重點。
目前,miRNA的研究還處于理論和基礎(chǔ)水平上,迄今所知miRNA對T細胞發(fā)育的調(diào)控很可能只是miRNA網(wǎng)絡(luò)中的滄海一粟,而miRNA在調(diào)控過程中的具體分子作用機制,也有待于進一步探索[22]。這些miRNA的研究將是對T細胞發(fā)育調(diào)控理論的創(chuàng)新,也將為與T細胞發(fā)育有關(guān)的臨床疾病提供新的治療方向。
[1]Liston A,Linterman M,Lu LF.MicroRNA in the adaptive immune system,in sickness and in health[J].J Clin Immunol,2010,30(3):339-346.
[2]Koelsch U,Schraven B,Simeoni L,et al.SIT and TRIM determine T cell fate in the thymus[J].J Immunol,2008,181(9):5930-5939.
[3]Ashton-Rickardt PG.Studying T-cell repertoire selection using fetal thymus organ culture[J].Methods Mol Biol,2007(380):171-184.
[4]Anglicheau D,Muthukumar T,Suthanthiran M.MicroRNAs:small RNAs with big effects[J].Transplantation,2010,90(2):105-112.
[5]Muljo SA,Ansel KM,Kanellopoulou C,et al.Aberrant T cell differentiation in the absence of Dicer[J].J Exp Med,2005,202(2):261-269.
[6]Zhou X,Jeker LT,F(xiàn)ife BT,et al.Selective mRNA disruption in T reg cells leads to uncontrolled autoimmunity[J].J Exp Med,2008,205(9):1983-1991.
[7]Liston A,Lu LF,O′Carroll D,et al.Dicer-dependent microRNA pathway safeguards regulatory T cell function[J].J Exp Med,2008,205(9):1993-2004.
[8]Lu LF,Liston A.MicroRNA in the immune system,microRNA as an immune system[J].Immunology,2009,127(3):291-298.
[9]Lykken EA,Li QJ.microRNAs at the regulatory frontier:an investigation into how microRNAs impact the development and effector functions of CD4Tcells[J].Immunol Res,2011,49(1/3):87-96.
[10]Ramkissoon SH,Mainwaring LA,Ogasawara Y,et al.Hema-topoietic-specific microRNA expression in human cells[J].Leuk Res,2006,30(5):643-647.
[11]Shivdasani RA.MicroRNAs:regulators of gene expression and cell differentiation[J].Blood,2006,108(12):3646-3653.
[12]Merkerova M,Vasikova A,Belickova M,et al.MicroRNA expression profiles in umbilical cord blood cell lineages[J].Stem Cells Dev,2010,19(1):17-26.
[13]Neilson JR,Zheng GX,Burge CB,et al.Dynamic regulation of miRNA expression in ordered stages of cellular development[J].Genes Dev,2007,21(5):578-589.
[14]Li QJ,Chau J,Ebert PJ,et al.miR-181ais an intrinsic modulator of T cell sensitivity and selection[J].Cell,2007,129(1):147-161.
[15]Tsitsiou E,Lindsay MA.microRNAs and the immune response[J].Curr Opin Pharmacol,2009,9(4):514-520.
[16]Georgantas RW,Hildreth R,Morisot S,et al.CD34+hematopoietic stem-progenitor cell microRNA expression and function:a circuit diagram of differentiation control[J].Proc Natl Acad Sci USA,2007,104(8):2750-2755.
[17]Rodriguez A,Vigorito E,Clare S,et al.Requirement of bic/microRNA-155for normal immune function[J].Science,2007,316(5824):608-611.
[18]O′Connell RM,Kahn D,Gibson WS,et al.microRNA-155promotes autoimmune inflammation by enhancing inflammatory T cell development[J].Immunity,2010,33(4):607-619.
[19]Merkerova M,Belickova M,Bruchova H.Differential expression of microRNAs in hematopoietic cell lineages[J].Eur J Haematol,2008,81(4):304-310.
[20]Cobb BS,Hertweck A,Smith J,et al.A role for Dicer in immune regulation[J].J Exp Med,2006,203(11):2519-2527.
[21]Pauley KM,Chan EK.MicroRNAs and their emerging roles in immunology[J].Ann N Y Acad Sci,2008,1143(1):226-239.
[22]Baltimore D,Boldin MP,O′Connell RM,et al.MicroRNAs:new regulators of immune cell development and function[J].Nat Immunol,2008,9(8):839-845.