陳 忻,陳曉剛,陳杰文,孫恢禮
(1.佛山科學(xué)技術(shù)學(xué)院理學(xué)院,廣東 佛山 528000;2.中國(guó)科學(xué)院南海海洋研究所,廣東 廣州 510301;3.中國(guó)科學(xué)院研究生院,北京 100049)
波紋巴非蛤酶解過(guò)程的肽譜變化
陳 忻1,2,3,陳曉剛1,陳杰文1,孫恢禮2,3
(1.佛山科學(xué)技術(shù)學(xué)院理學(xué)院,廣東 佛山 528000;2.中國(guó)科學(xué)院南海海洋研究所,廣東 廣州 510301;3.中國(guó)科學(xué)院研究生院,北京 100049)
以波紋巴非蛤?yàn)樵希附?~6h制備酶解液。在SDS-PAGE電泳法測(cè)定肽譜的基礎(chǔ)上,再利用液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用測(cè)定波紋巴非蛤酶解的肽譜變化。結(jié)果表明:酶解前3h時(shí)酶解液的肽分子的分子質(zhì)量大概主要集中在100、50、2kD,酶解液大都是大分子肽或者中分子肽;酶解4、5、6h時(shí)酶解液的肽分子的分子質(zhì)量基本沒(méi)變化,其分子質(zhì)量主要集中在400~600D,即為小分子肽,酶解4h時(shí)為酶解終點(diǎn)。
波紋巴非蛤;活性肽;SDS-PAGE電泳法;液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用
21世紀(jì)是海洋經(jīng)濟(jì)可持續(xù)發(fā)展的世紀(jì),海洋天然活性物質(zhì)是現(xiàn)代生物學(xué)研究熱點(diǎn),而天然海洋活性肽是海洋活性物質(zhì)研究的重要組成部分。海洋生物體內(nèi)的各種活性物質(zhì),是開(kāi)發(fā)研究海洋生化藥物與功能性保健食品的原料寶庫(kù)[1],海洋豐富的生物資源為肽的制備提供了充足的物種資源與蛋白質(zhì)資源。其中,運(yùn)用酶工程技術(shù),是開(kāi)發(fā)利用海洋生物蛋白資源的重要途徑。海洋貝類(lèi)蛋白酶解物含有大量的短肽、多肽、氨基酸等營(yíng)養(yǎng)功能成分,并產(chǎn)生了一些具有特殊生理功能的生物活性肽,具有調(diào)節(jié)腸胃運(yùn)動(dòng)、調(diào)節(jié)免疫系統(tǒng)、抗菌、抗血栓、抗病毒、抗癌、抗氧化、清除自由基、促進(jìn)礦物質(zhì)元素吸收等一方面或者多方面的重要生理功效,可以被開(kāi)發(fā)為飼料蛋白源、海鮮調(diào)味料、保健食品、營(yíng)養(yǎng)食品、天然藥物、功能化妝品等,具有廣泛的應(yīng)用前景[2-5]。
目前,人們已經(jīng)對(duì)寡肽在動(dòng)物體內(nèi)的轉(zhuǎn)運(yùn)機(jī)制進(jìn)行了大量的研究,表明動(dòng)物體內(nèi)可能存在多種寡肽的轉(zhuǎn)運(yùn)體系。研究認(rèn)為,在蛋白質(zhì)的多肽鏈內(nèi)部普遍存在著功能區(qū),這些功能區(qū)是生物活性肽的可能前體。選擇合適的蛋白酶水解這些多肽鏈,把具有生物活性的肽片段釋放出來(lái),可制備出具有各種生理功能的生物活性肽[6]。在營(yíng)養(yǎng)學(xué)上肽類(lèi)物質(zhì)的理化特性和營(yíng)養(yǎng)功能比蛋白質(zhì)和氨基酸有更多的優(yōu)點(diǎn),應(yīng)用到各類(lèi)功能性食品、化妝品、保健品、醫(yī)療藥品等中,能增加其附加值和活性[7-10]。然而膠原多肽的許多的功能特性僅有其中一小部分已被實(shí)際應(yīng)用,有待深入研究和進(jìn)一步開(kāi)發(fā)利用。因此,酶解制備小分子肽的研究有重要的社會(huì)和經(jīng)濟(jì)意義。
波紋巴非蛤(Paphia undulata),又名花甲螺,主要分布在廣東、廣西及海南沿海。目前,波紋巴非蛤養(yǎng)殖“工業(yè)化”,產(chǎn)量逐年遞增,但是國(guó)內(nèi)對(duì)波紋巴非蛤的利用仍主要以直接食用為主。隨著對(duì)波紋巴非蛤的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值的全面研究,以波紋巴非蛤?yàn)樵希a(chǎn)貝類(lèi)提取物,研制以貝類(lèi)為原料的保健食品、藥品、化妝品已成為發(fā)展趨勢(shì)[11-13]。本實(shí)驗(yàn)研究酶解波紋巴非蛤過(guò)程中肽譜的變化,為其進(jìn)一步開(kāi)發(fā)應(yīng)用提供參考。
1.1 材料與試劑
新鮮波紋巴非蛤,購(gòu)于佛山山紫市場(chǎng),由中國(guó)科學(xué)院南海海洋研究所孫恢禮研究員鑒定。
木瓜蛋白酶(2×106U/g,食品級(jí)) 廣州威佳科技有限公司;丙烯酰胺、甲叉雙丙烯酰胺、Tris 美國(guó)Bio Basic 公司。
1.2 儀器與設(shè)備
Agilent6120型液相色譜質(zhì)譜聯(lián)用儀 美國(guó)Agilent公司;BP252AG攪拌機(jī) 廣東美的生活電器制備有限公司;SHZ-82A恒溫振蕩器 江蘇金壇市富華儀器有限公司;FA2004N電子分析天平 上海精密儀器有限公司;PHS-3C型酸度計(jì) 上海雷磁儀器廠;800型離心沉淀器上海手術(shù)器械廠;電爐(800W) 高勝五金電器廠;DYY-8C電泳儀、DYY-24A電泳槽 北京市六一儀器廠。
1.3 方法
1.3.1 酶解液制備的流程
新鮮波紋巴非蛤去殼取肉→取60g肉洗凈攪拌勻漿(料水比1∶3(m/V))→加入占蛤肉質(zhì)量1%的木瓜蛋白酶,充分?jǐn)嚢?,再平均分?份于pH值6.3條件下分別恒溫酶解1、2、3、4、5、6h→水浴加熱滅酶→離心分離提取上層清液,制得酶解液4℃保存?zhèn)溆?/p>
根據(jù)前期工作已發(fā)表文獻(xiàn)[11],以木瓜蛋白酶制備得到的海洋生物活性肽水解度及平均肽鏈長(zhǎng)度最優(yōu)。
1.3.2 酶解液中分子肽分子質(zhì)量的測(cè)定[14]
采用SDS-PAGE電泳法對(duì)酶解液中的小分子肽進(jìn)行分析。
1.3.3 液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用測(cè)定酶解液肽譜的變化[15-16]
Agilent6120型液相色譜質(zhì)譜聯(lián)用儀;柱子Agilent:TC-C18液相色譜柱(4.6mm×250mm,5μm);流動(dòng)相:甲醇、水體積比為20∶80;流速:0.5mL/min;相檢測(cè)器 DAD 波長(zhǎng):215nm;時(shí)間:60min。
2.1 SDS-PAGE電泳法對(duì)分子肽的分子質(zhì)量測(cè)定結(jié)果
圖1 樣品的SDS-PAGE電泳圖Fig.1 SDS-PAGE of Paphia undulate muscle hydrolysates
由圖1可知,酶解1h時(shí),酶解液中主要是大分子肽,其主要分子質(zhì)量在50~75kD,但在電泳帶25、35kD處也出現(xiàn)了小部分的分子肽;酶解2h時(shí),50~75kD的大分子肽開(kāi)始減少,25~35kD 范圍內(nèi)的分子肽明顯增加,并在1.5kD開(kāi)始有分子肽出現(xiàn);酶解3h時(shí),分子質(zhì)量為1.5kD以下的分子肽明顯增多,其他分子質(zhì)量的分子肽則相應(yīng)減少;酶解4h時(shí),分子質(zhì)量為1.5kD以下的分子肽繼續(xù)增多,此時(shí)酶解差不多達(dá)到終點(diǎn);酶解5、6h時(shí),各分子質(zhì)量的分子肽的分布情況跟酶解4h時(shí)相似。經(jīng)分析可知,酶解的前4h,酶解液中的分子肽分子質(zhì)量有明顯的變化,大分子肽不斷酶解成更小的分子肽,酶解4h后的肽譜沒(méi)有明顯的變化。
2.2 液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用測(cè)定酶解液肽譜的結(jié)果
2.2.1 酶解1h時(shí)酶解液高效液相色譜圖結(jié)果
圖2 酶解1h時(shí)酶解液高效液相色譜圖Fig.2 HPLC chromatogram of 1 h Paphia undulate muscle hydrolysate
圖3 酶解1h時(shí)酶解液的陽(yáng)離子質(zhì)譜圖Fig.3 Mass spectra of 1 h Paphia undulate muscle hydrolysate
由圖2可知,酶解液入柱后,在酶解1h的第6、9、21、37分鐘附近處出現(xiàn)峰值。其中在第6分鐘附近,質(zhì)荷比為98×103的碎片離子豐度最高,表示這個(gè)碎片離子很穩(wěn)定(圖3A);在第9分鐘附近,質(zhì)荷比為103.2×103的碎片離子豐度最高,另一較高豐度的負(fù)荷比是86.2×103(圖3B);在第21分鐘附近,質(zhì)荷比為99.4×103的碎片離子豐度最高(圖3C);在37min附近,負(fù)荷比為87.5×103和107.5×103的碎片離子豐度都較高(圖 3D)。
2.2.2 酶解2h時(shí)酶解液高效液相色譜圖結(jié)果
圖4 酶解2h時(shí)酶解液高效液相色譜圖Fig.4 HPLC chromatogram of 2 h Paphia undulate muscle hydrolysate
由圖4可知,酶解液入柱后,在酶解2h的第11、20、27、45分鐘附近處出現(xiàn)峰值。由圖5可知,在第11分鐘附近,質(zhì)荷比為52.3×103的碎片離子豐度最高,表示這個(gè)碎片離子很穩(wěn)定,其他的碎片離子的質(zhì)荷比分別為37.2×103、73.8×103也較高,與酶解液1h比較,酶解2h時(shí)酶解液的大分子肽100×103附近的豐度降低了,質(zhì)荷比為23.4×103的碎片離子豐度增大;在第20、37、45分鐘附近,碎片離子豐度最高的質(zhì)荷比分別為為37.4×103、64.8×103、42.5×103的,碎片離子的質(zhì)荷比在100×103附近也同樣明顯降低了,質(zhì)荷比在20×103附近的的分度也都增大。
2.2.3 酶解3h時(shí)酶解液高效液相色譜圖結(jié)果
圖6 酶解3h時(shí)酶解液高效液相色譜圖Fig.6 HPLC chromatogram of 3 h Paphia undulate muscle hydrolysate
圖7 酶解3h時(shí)酶解液中陽(yáng)離子質(zhì)譜圖Fig.7 Mass spectra of 3 h Paphia undulate muscle hydrolysate
由圖6可知,酶解液入柱后,在酶解3h的第6、8、21、36分鐘附近處出現(xiàn)峰值。由圖7可知,這4個(gè)峰值當(dāng)碎片離子豐度最高時(shí)的質(zhì)荷比分別為2.31×103、1.78×103、1.68×103和2.1×103,且在這幾個(gè)質(zhì)荷比值的附近也存在其他豐度較高的數(shù)值,與酶解1、2h酶解液譜圖相比較,此時(shí)的質(zhì)荷比為10×103附近的豐度大大降低。
2.2.4 酶解4h時(shí)酶解液高效液相色譜圖結(jié)果
圖8 酶解4h時(shí)酶解液高效液相色譜圖Fig.8 HPLC chromatogram of 4 h Paphia undulate muscle hydrolysate
圖9 酶解4h時(shí)酶解液中陽(yáng)離子質(zhì)譜圖Fig.9 Mass spectra of 4 h Paphia undulate muscle hydrolysate
由圖8可知,酶解液入柱后,在酶解4h的第6、10、20、36分鐘附近處出現(xiàn)峰值。由圖9可知,這4個(gè)峰值當(dāng)碎片離子豐度最高時(shí)的質(zhì)荷比分別為411.2、413.2、474.5和516.3,且在這幾個(gè)質(zhì)荷比值的附近也存在其他豐度較高的數(shù)值,與酶解1、2、3h時(shí)酶解液譜圖相比較,此時(shí)的質(zhì)荷比的數(shù)值大大降低,都是在600以下,由此可知酶解4h時(shí)的酶解液絕大部分是小分子肽。2.2.5 酶解5h時(shí)酶解液高效液相色譜圖結(jié)果
圖10 酶解5h時(shí)酶解液高效液相色譜圖Fig.10 HPLC chromatogram of 5 h Paphia undulate muscle hydrolysate
A、B、C、D.保留時(shí)間分別為11、20、36、45min。
由圖10可知,酶解液入柱后,在酶解5h的第11、20、36、45分鐘附近處出現(xiàn)峰值。由圖11可知,這4個(gè)峰值當(dāng)碎片離子豐度最高時(shí)的質(zhì)荷比分別為520.3、437.8、463.2、618.5,且在這幾個(gè)質(zhì)荷比值的附近也存在其他豐度較高的數(shù)值,與酶解4h時(shí)酶解液譜圖相比較,此時(shí)的質(zhì)荷比的數(shù)值差別很小,由此可知酶解5h時(shí)的酶解液絕大部分也是小分子肽。
2.2.6 酶解6h時(shí)酶解液高效液相色譜圖結(jié)果
圖12 酶解6h時(shí)酶解液高效液相色譜圖Fig.12 HPLC chromatogram of 6 h Paphia undulate muscle hydrolysate
圖13 酶解6h時(shí)酶解液中陽(yáng)離子質(zhì)譜圖Fig.13 Mass spectra of 6 h Paphia undulate muscle hydrolysate
由圖12可知,酶解液入柱后,在酶解6h的第10、20、27、45分鐘附近處出現(xiàn)峰值。由圖13可知,這4個(gè)峰值當(dāng)碎片離子豐度最高時(shí)的質(zhì)荷比分別為502.2、480.5、488.3、509.2,與酶解4、5h時(shí)的酶解液譜圖相比較,此時(shí)的質(zhì)荷比的數(shù)值差別很小,由此可知酶解4h時(shí)是酶解的終點(diǎn)。
通過(guò)木瓜蛋白酶在 50℃、分別酶解時(shí)間1~6h、pH 6.3、加酶量1%、料水比1∶3的條件下酶解波紋巴非蛤肉漿,在SDS-PAGE電泳法測(cè)定的基礎(chǔ)上,利用液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用測(cè)定波紋巴非蛤酶解的肽譜變化,可得酶解1h時(shí)酶解液的肽分子的分子質(zhì)量主要集中大概在100kD;酶解2h時(shí)酶解液的肽分子的分子質(zhì)量主要集中在40~65kD;酶解3h時(shí)分子質(zhì)量主要集中1.6~2.3kD;酶解4、5、6h時(shí)酶解液的肽分子的分子質(zhì)量基本沒(méi)變化,其分子質(zhì)量主要集中在400~600D,酶解4h時(shí)為酶解終點(diǎn)。
[1] 何海倫, 陳秀蘭, 張玉忠. 海洋生物蛋白資源酶解利用研究進(jìn)展[J].中國(guó)生物工程雜志, 2003, 23(9)∶ 70-74.
[2] 吳園濤, 孫恢禮. 海洋貝類(lèi)蛋白資源酶解利用[J]. 中國(guó)生物工程雜志, 2007, 27(9)∶ 120-125.
[3] 繆輝南, 方旭東. 海洋生物資源開(kāi)發(fā)慨況與展望[J]. 氨基酸和生物資源, 1999, 21(4)∶ 12-18.
[4] 趙二勞, 蓋青青, 張海容. 微波萃取沙棘黃酮的研究[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè), 2004, 30(12)∶ 148-150.
[5] INFANTE J Z, ROUANET J M, CAPORICCIO B, et al. Nutritional rehabilitation of malnourished rats by di-and tripeptides∶ nitrogen metabolism and intestinal response[J]. Journal of Nutritional Biochemistry,1992, 3(6)∶ 285-290.
[6] 曹文紅, 章超樺, 吳紅棉, 等. 幾種南海貝類(lèi)酶解產(chǎn)物的生物活性及其分子質(zhì)量分布研究[J]. 提取與活性, 2009, 25(2)∶ 52-57.
[7] 王遠(yuǎn)亮, 魏小婭. 膠原和明膠在化妝品中的應(yīng)用[J]. 明膠科學(xué)與技術(shù), 1987, 7(3)∶ 103-106.
[8] 宇晨. 酶制劑研究與應(yīng)用進(jìn)展[J]. 醫(yī)藥化工, 2006(5)∶ 8-15.
[9] 唐忠海, 饒力群. 酶工程技術(shù)在食品工業(yè)中的應(yīng)用[J]. 食品研究與開(kāi)發(fā), 2004, 25(4)∶ 10-13.
[10] 段鋼, 趙振鋒, 錢(qián)瑩. 酶制劑在蛋白質(zhì)加工行業(yè)的應(yīng)用[J]. 食品與生物技術(shù)學(xué)報(bào), 2005, 24(4)∶ 104-110.
[11] 陳忻, 梁海鷹, 劉愛(ài)文, 等. 以波紋巴非蛤?yàn)樵现苽浜Q笊锘钚噪腫J]. 食品科學(xué), 2008, 29(11)∶ 35-37.
[12] 陳忻, 孫恢禮, 黃漢文, 等. 基于人工神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)的酶解波紋巴非蛤制備小分子肽的研究[J]. 食品科學(xué), 2009, 30(22)∶ 54-57.
[13] 陳忻, 張俊敏, 孫恢禮, 等. 柔性固定化木瓜蛋白酶的制備及在酶解波紋巴非蛤中的應(yīng)用[J]. 食品科學(xué), 2010, 31(22)∶ 500-503.
[14] 隋秀芝, 陳育暉, 劉俊用. SDS-PAGE電泳法測(cè)定小分子多肽分子質(zhì)量的研究[J]. 絲綢, 2001(12)∶ 23-28.
[15] 邱春江, 陳慧. 高效液相色譜法和液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)在食品工業(yè)上的應(yīng)用[J]. 南京工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2004, 26(2)∶ 99-100.
[16] 付金香, 霍建麗, 田壘, 等. LC-MS分析艾塞那肽的肽圖[J]. 華西藥學(xué)雜志, 2009, 24(5)∶ 544-545.
Variations in Peptide Mass Fingerprints ofPaphia undulataMuscle Hdyrolysates during Enzymatic Hydrolysis
CHEN Xin1,2,3,CHEN Xiao-gang1,CHEN Jie-wen1,SUN Hui-li2,3
(1. College of Chemistry and Chemical Engineering, Foshan University, Foshan 528000, China;2. South China Sea Institute of Oceanlogy, Chinese Academy of Sciences, Guangzhou 510301, China;3. Graduate University of Chinese Academy of Sciences, Beijing 100049, China)
Paphia undulatemuscles were hydrolyzed with papain and the hydrolysates after hydrolysis for 1, 2, 3, 4, 5 h and 6 h were analyzed by SDS-PAEG and LC-MS/MS. The results revealed that the molecular mass distribution of peptides inPaphia undulatemuscle hydrolysates was mostly concentrated on 100, 50 kD and 2 kD during the first 3 hours of the hydrolysis,most of them large or small peptides. No substantial difference in the molecular mass distribution of peptides, which was mostly between 400 D and 600 D, was observed among the 4 h, 5 h and 6 h hydrolysates, suggesting that 4 h was the end point of the hydrolysis.
Paphia undulate;bioactive peptide;SDS-PAGE;LC-MS
Q556.3
A
1002-6630(2012)03-0048-06
2011-06-23
“十一五”國(guó)家科技支撐計(jì)劃項(xiàng)目(2008BAD94B08);廣東省2009院省合作項(xiàng)目(2009B091300018);廣東省2010院省合作項(xiàng)目(2010B090900027)
陳忻(1968—),女,副教授,碩士,研究方向?yàn)楹Q蠡瘜W(xué)。E-mail:fschenxin@tom.com