白守民 薛衛(wèi)平 劉宜敏 畢卓菲 梁碧玲
神經(jīng)干細(xì)胞(neural stem cells,NSCs)是目前治療放射性腦損傷最有希望的方法之一。很多學(xué)者報(bào)道了用NSCs治療腦缺血、腦梗塞等,取得了一定的療效。NSCs治療放射性腦損傷是個(gè)復(fù)雜的過程,很多機(jī)理尚不清楚。其中,NSCs進(jìn)入腦組織后在腦內(nèi)的遷移,定向到達(dá)損傷部位,是干細(xì)胞治療腦損傷的基礎(chǔ)。本研究用SPIO標(biāo)記NSCs,磁共振(magnetic resonance,MR)活體示蹤干細(xì)胞在大鼠腦內(nèi)的遷移。
雄性健康(Sprague Dawley,SD)大鼠 30只,體重200 g。超順磁性氧化鐵納米顆粒SPIO(德國(guó) Schering 公司,1.4 ml /支,含鐵濃度0.5 mmol/ml,鐵顆粒直徑60 nm);立體定位儀(深圳瑞沃德公司68001單臂型);模擬定位機(jī)(東芝公司);Siemens Primus直線加速器(西門子公司);CO2培養(yǎng)箱(德國(guó)賀利氏公司);倒置相差顯微鏡;Philips Intera 1.5T MR掃描儀;大鼠專用線圈(上海辰光公司);NSCs完全培養(yǎng)基(廣州金葉公司)。
斷頸處死SD母鼠,75﹪酒精浸泡數(shù)分鐘,用眼科剪在腹部的中間位置橫切,剪開腹部皮膚,充分暴露母鼠的腹膜,剪開腹膜,可見胎鼠。將胎鼠逐個(gè)分離出來,并轉(zhuǎn)移到另外一個(gè)裝有磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer,PBS)的培養(yǎng)皿中,在解剖顯微鏡下無菌去除腦膜,分離胎腦,將分離出來的胎腦移入裝有NSCs完全培養(yǎng)基的離心管中,吹打,直至胎腦解離成單細(xì)胞懸液。將解離好的單細(xì)胞懸液移入T25培養(yǎng)瓶中,一個(gè)胎腦接種一個(gè)T25培養(yǎng)瓶,將T25培養(yǎng)瓶放回37℃?CO2培養(yǎng)箱中。當(dāng)NSCs出現(xiàn)神經(jīng)球較大和NSCs出現(xiàn)貼壁分化的情況后,再對(duì)NSCs進(jìn)行傳代培養(yǎng)。
NSCs?nestin抗原表達(dá)鑒定:吸取少量細(xì)胞懸液滴于晶多聚賴氨酸包被的載玻片上,培養(yǎng)2 h,使細(xì)胞黏附于載玻片上。用4﹪多聚甲醛+ 0.3﹪戊二醛固定15 min,計(jì)2次,5﹪正常山羊血清的PBS(含0.1﹪?Triton X-100)在37℃孵育30 min進(jìn)行封閉,吸去封閉液,加抗nestin多克隆抗體(1:200),4℃過夜。PBS漂洗3次,各 10 min,加二抗(1:500,山羊抗兔),37℃孵育45 min,吸去二抗反應(yīng)液,PBS漂洗3次,加染核試劑 Hochest,室溫孵育 30 min,PBS 洗 3次,熒光顯微鏡下觀測(cè)結(jié)果[1]。
在模擬定位機(jī)下拍攝大鼠正位及側(cè)位照片,用不規(guī)則低熔點(diǎn)鉛制作右半腦照射的電子線擋塊及后半腦照射的光子線擋塊。電子線半腦模型采用6 Mev電子線垂直照射,源皮距100 cm,劑量率為300 Mu/min,照射深度為1.5 cm。光子線后半腦模型采用6 MV光子線側(cè)位照射,源皮距60 cm,照射深度為2.5 cm,體表加1 cm補(bǔ)償。取體重200 g的SD大鼠30只分為3組,10﹪的水合氯醛0.37 ml/100g麻醉大鼠,固定后行放療,第1組12只行電子線半腦照射,劑量為30 Gy;第2組12只行光子線后半腦照射,劑量為45Gy;第3組6只行光子線后半腦照射,劑量為55 Gy。
硫酸魚精蛋白(PRO)為10 mg/ml,用蒸餾水稀釋為1 mg/ml備用。抽取30 μl的SPIO原液加入無血清培養(yǎng)液里,稀釋后備用,在24孔板中,取5孔先加入無血清培養(yǎng)液0.5 ml,按終體積為2 ml,預(yù)先加入總量PRO及不同體積的SPIO,使PRO 的終濃度為 4 μg/ml,在 37℃、5﹪CO2及飽和濕度的CO2培養(yǎng)箱中共同孵化過夜。12 h后,分別消化、離心各孔細(xì)胞備用。
同時(shí)獲取6瓶2代NSCs,計(jì)數(shù)后備用。按總體積5 ml在24孔板中,加入PRO及SPIO,使終濃度達(dá)到 PRO 為 4 μg/ml,SPIO 為 100 μg/ml。12 h后,分別消化、離心各瓶細(xì)胞,最后收集細(xì)胞,按5 × 105/10 μl備用。在放射性大鼠半腦損傷模型制作后7 h,各組大鼠麻醉后固定于大鼠立體定位儀上。根據(jù)大鼠腦立體定位圖譜,以雙耳間線中點(diǎn)為0位。第1組,6只用右半腦照射大鼠,行左半腦移植,在大鼠左側(cè)半腦鉆孔(向前8.5 mm,左3 mm,深度5 mm),微量注射器注入細(xì)胞。第2組6只用后半腦45 Gy照射大鼠,在左前腦定位注入細(xì)胞。第3組6只用后半腦55 Gy照射大鼠,在左前腦定位。第4組6只用右半腦照射大鼠,為第1組對(duì)照組,植入未標(biāo)記SPIO的NSCs。第5組6只用后半腦45 Gy放射大鼠,為第2、3組對(duì)照組,注射未標(biāo)記SPIO的NSCs,每個(gè)大鼠植入的細(xì)胞數(shù)為5×105個(gè)細(xì)胞,體積為10 μl,用微量注射器抽取細(xì)胞后,按定位儀位置進(jìn)針,緩慢注入細(xì)胞,注射時(shí)間> 5 min,注射后留針5 min,緩慢拔針。
在移植后第 0、3、7、14、21和 27天進(jìn)行大鼠腦MR掃描。MR檢查序列:SE T1WI橫斷位、TSE T2WI橫斷位及矢狀位成像。T1WI的參數(shù):TR/TE/采集次數(shù)(NSA):300 ms/15 ms/1,層厚:2.0 mm;Vox 0.3 × 0.5。T2WI:TR/TE/采集次數(shù)(NSA):1600 ms/50 ms/1,層 厚:2.0 mm;Vox:0.4 × 0.4;矩陣:512 × 512。
分別在MR成像各時(shí)間點(diǎn),各組取1只大鼠,取全腦行病理檢查。大鼠過量麻醉后,開胸,將灌洗針頭通過左心室插入升主動(dòng)脈,用500 ml生理鹽水、500 ml中性甲醛灌注后開顱取腦,石蠟包埋、切片,左半腦移植采用失狀位切片,后半腦移植采用冠狀位切片。常規(guī)蘇木精—伊紅染色及普魯士藍(lán)染色,光鏡下觀察標(biāo)記細(xì)胞的分布。
最初培養(yǎng)的原代細(xì)胞大部分細(xì)胞呈球形聚集生長(zhǎng),但細(xì)胞不均一,有較多單個(gè)散在細(xì)胞及絮狀組織。
傳代后的NSCs仍呈球形懸浮生長(zhǎng),但雜細(xì)胞較少,背景較純,細(xì)胞球光亮透明,一般細(xì)胞傳至第二代即可用于實(shí)驗(yàn)研究。
NSCs?nestin抗原表達(dá)鑒定結(jié)果顯示,nestin表達(dá)陽性,說明該細(xì)胞符合NSCs的抗原特性。
成功構(gòu)建大鼠左半腦及后半腦放射性腦損傷模型,30只大鼠無1例死亡。全部大鼠均順利移植,其中2只第2天出現(xiàn)腦膜炎癥狀死亡。全部大鼠在移植當(dāng)天開始使用頭孢呋辛鈉100 mg/只腹腔注射,連用3 d。
在移植術(shù)后不同時(shí)間MR檢查的結(jié)果如下圖,1.5T MR可以清晰顯示大鼠腦內(nèi)植入的干細(xì)胞范圍,成像可以持續(xù)1個(gè)月以上。后半腦放射大鼠模型中,55 Gy放療組移植術(shù)后7 d就看到針孔局部向后突出的低信號(hào)影,移植術(shù)后14 d仍比較明顯(圖1 )。右半腦放射大鼠模型中,移植術(shù)后27 d可以看到針孔局部向左側(cè)突出的低信號(hào)影(圖2)。
圖1 光子線劑量為55Gy,前半腦移植后第0、7、14天情況
圖2 光子線劑量為30Gy,右半腦照射移植后第1、12、27天照射情況
不同時(shí)間大鼠經(jīng)組織切片及普魯士藍(lán)染色后,圖3顯示移植第14天,鐵標(biāo)記的細(xì)胞在腦組織內(nèi)存活,部分細(xì)胞向周邊擴(kuò)散。圖4顯示移植后第27天,在疏松的組織間隙可以看到少量分布的鐵標(biāo)記細(xì)胞。
圖3 光子線劑量為55Gy大鼠移植后第14天(×200)?
圖4 光子線劑量為55Gy大鼠第27天組織間隙標(biāo)記(×200)
將SPIO標(biāo)記的干細(xì)胞移植到活體內(nèi),觀察干細(xì)胞在體內(nèi)的遷移已進(jìn)行了很多研究。正常情況下,干細(xì)胞移植到大鼠腦皮質(zhì),細(xì)胞遷移很少或不遷移,Zhang等[2]將細(xì)胞注入到正常大鼠紋狀體后28 d,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞僅移動(dòng)1~1.5 mm。Jendelova等[3]沒發(fā)現(xiàn)移植的細(xì)胞在正常大鼠腦內(nèi)的遷移,但在腦損傷發(fā)生時(shí),移植的干細(xì)胞會(huì)表現(xiàn)出向損傷部位移動(dòng)的趨化性。腦缺血實(shí)驗(yàn)中,Hoehn等[4]以SPIO標(biāo)記的胚胎干細(xì)胞移植入大鼠腦缺血對(duì)側(cè)半球的皮質(zhì)下區(qū)和紋狀體,移植部位最初在MRI上是1個(gè)圓形的低信號(hào)區(qū),數(shù)天后移植區(qū)內(nèi)側(cè)的胼胝體出現(xiàn)了線狀的低信號(hào)影,表明干細(xì)胞在向損傷側(cè)遷徙。在另一只鼠腦的3DMRI重建圖象上,明顯的看出干細(xì)胞于胼胝體內(nèi)由移植區(qū)向缺血半球遷徙。進(jìn)一步的研究現(xiàn),干細(xì)胞的低密度影沿腦室壁呈線狀環(huán)繞,并向缺血半球側(cè)腦室的脈絡(luò)叢聚集,經(jīng)過紋狀體,最后到達(dá)缺血半球的皮層。本研究中,建立左右半腦及前后半腦的放射損傷模型,結(jié)果發(fā)現(xiàn),移植后4周,移植入未放射左半腦的NSCs有向經(jīng)過放射的右半腦遷移的趨勢(shì),注射針孔局部出現(xiàn)向右的低信號(hào)影。后半腦放射模型中,在前半腦注射干細(xì)胞后,MR也可以顯示注射部位局部有向后的低信號(hào)影,說明干細(xì)胞也有向后移動(dòng)的趨勢(shì)。55 Gy放射大鼠在移植后7 d就發(fā)現(xiàn)向后的低信號(hào)影,而45 Gy放射大鼠在27 d才發(fā)現(xiàn)向后的低信號(hào)影,似乎向后移動(dòng)的趨勢(shì)出現(xiàn)的時(shí)間與放射劑量相關(guān),但還需要更多例數(shù)進(jìn)一步證明。本研究病理結(jié)果也發(fā)現(xiàn)干細(xì)胞向組織遷移的趨勢(shì),在針孔附近,靠近放射區(qū)域的疏松組織間隙可以發(fā)現(xiàn)少量的標(biāo)記細(xì)胞,但由于本單位實(shí)驗(yàn)條件限制,實(shí)驗(yàn)中很難將MR顯示遷移的部位在病理組織中準(zhǔn)確切片。另外,干細(xì)胞在腦內(nèi)移動(dòng)細(xì)胞的數(shù)量及距離,以及干細(xì)胞在腦組織內(nèi)的分化,還有待進(jìn)一步更精確的研究。SPIO示蹤NSCs在活體的遷移,為進(jìn)一步研究干細(xì)胞在微環(huán)境下的存活分化及治療機(jī)理提供了有益的幫助。
干細(xì)胞在體內(nèi)的趨化性及干細(xì)胞治療組織損傷的機(jī)制尚不完全清楚。大鼠放射性腦損傷模型的建立,目前沒有標(biāo)準(zhǔn)的方法,主要原因是大鼠腦對(duì)放射線耐受性較高,多數(shù)研究表明,25~30 Gy單次全腦大劑量放療后,一個(gè)月內(nèi),大鼠基本無明顯放射性腦病的癥狀,病理檢查也沒有明顯的炎性改變[5]。但MRS可以在早期發(fā)現(xiàn)腦內(nèi)代謝的改變,Movsas和官健等[6-7]的研究表明,放療后2周,MRS N-乙酰天門冬氨酸就出現(xiàn)了明顯的降低,說明在放射治療后,在腦超微結(jié)構(gòu)發(fā)生變化之前,腦內(nèi)的代謝已經(jīng)出現(xiàn)異常改變。本研究在放療后1周植入干細(xì)胞,高劑量組植入1周時(shí)就發(fā)現(xiàn)干細(xì)胞的遷移,證明在放療后早期,大鼠腦內(nèi)就出現(xiàn)了炎性因子,引起干細(xì)胞的趨化作用,結(jié)果同MRS的研究基本一致。干細(xì)胞治療損傷的主要機(jī)理在于減少炎性因子分泌,穩(wěn)定溶酶體膜及減少凋亡等,如果損傷早期應(yīng)用干細(xì)胞治療是否能減少炎性因子分泌從而可以減少損傷程度,延長(zhǎng)出現(xiàn)損傷的時(shí)間,將是我們進(jìn)一步研究的內(nèi)容。
1 Pluchino S, Zanotti L, Rossi B, et al. Neurospherederived multipotent precursors promote neuroprotection by an immunomodulatory mechanism[J]. Nature, 2005,436(7048):266-271.
2 Zhang RL, Zhang L, Zhang ZG, et al. Migration and differentiation of adult rat subventricular zone progenitor cells transplanted into the adult rat striatum[J].Neuroscience, 2003, 116(2):373-382.
3 Jendelova P, Herynek V, DeCroos J, et al. Imaging the fate of implanted bone marrow stromal cells labeled with superparamagnetic nanoparticles[J]. Magn Reson Med,2003, 50(4):767-776.
4 Hoehn M, Kustermann E, Blank J, et al. Monitoring of implanted stem cellmigration in vivo:a highly resolved in vivo magnetic resonance imaging investigation of experimental stroke in rat[J]. Proc Natl Acad Sci 2002,99(25):16267-16272.
5 Chiang CS, McBride WH, Wither HR. Radiation-induced astrocytic and microglial responses in mouse brain[J].Radiother Oncol, 1993, 29(1):60-68.
6 Movsas B, Li BS, Babb JS. Quantifying radiation therapyinduced brain injury with whole-brain proton MR spectro scopy:initialobservations[J]. Radiology, 2001, 221(2):327-331.
7 官鍵,陳龍華,李志勇. 單次大劑量照射活體動(dòng)物腦的放射區(qū)域代謝和超微結(jié)構(gòu)的研究[J]. 實(shí)用放射學(xué)雜志 ,?2007, 23(1):115-118.
中華細(xì)胞與干細(xì)胞雜志(電子版)2012年1期