楊珂 鄭建明
·綜述與講座·
MicroRNA-150在腫瘤發(fā)生發(fā)展中作用的研究進展
楊珂 鄭建明
MicroRNAs(miRNAs)是一類長約18~22個核苷酸的小分子單鏈非編碼RNA分子(non-coding RNA,ncRNA),它通過破壞靶mRNA的穩(wěn)定性或者抑制其翻譯的方式對基因的表達進行調(diào)控[1]。目前的研究認為,miRNA作為轉(zhuǎn)錄后調(diào)控分子,參與了人類癌癥的發(fā)生和發(fā)展過程。通過分析miRNA表達譜有助于對人類腫瘤的診斷、分期、預后及治療效果等方面進行評估[2-3]。自1993年首次在秀麗新小桿線蟲中發(fā)現(xiàn)了lin-4 RNA以來,越來越多的miRNAs和它們各自的作用靶點及相應功能被人們發(fā)現(xiàn)并研究[4]。miR-150作為miRNAs家族中的一員,在腫瘤性疾病和非腫瘤性疾病中均具有重要的作用。現(xiàn)就miR-150在腫瘤發(fā)生發(fā)展中的作用研究進展作一綜述。
一、miR-150的特征
miR-150是一種在成熟的淋巴細胞中特異性表達的miRNA[5],主要表達于淋巴結和脾臟,并且在成熟的T細胞和B細胞發(fā)展過程中明顯高表達,在不成熟B細胞階段表達也急劇上調(diào)。miR-150在造血干細胞中的過表達對CD8+T細胞、CD4+T細胞、粒細胞和巨噬細胞的形成均沒有影響,但對成熟B細胞的形成卻有巨大的破壞作用,阻礙從祖B細胞階段到前B細胞階段的轉(zhuǎn)變[6]。miR-150還可以通過作用于轉(zhuǎn)錄因子c-myb來促進NK細胞的成熟及發(fā)揮作用。與之相比,miR-150的過表達則可導致胸腺和外周淋巴器官中的NK/T細胞大量減少[7-8]。miR-150在巨核細胞的生成和血小板的產(chǎn)生中也發(fā)揮著重要作用[9]。
二、miR-150與腫瘤
miR-150在多種腫瘤中存在異常表達,既有上調(diào)發(fā)揮癌基因作用的報道,也有下調(diào)發(fā)揮抑癌基因作用的報道。分析其作用機制,有研究顯示c-myb是miR-150的一個進化保守的作用靶點,miR-150和c-myb的相互作用在腫瘤形成過程中可能發(fā)揮重要的作用。乳腺癌細胞和白血病細胞中miR-150的異常表達在mRNA和蛋白水平上均可抑制內(nèi)生性的c-myb,在一些白血病細胞系、原發(fā)性白血病細胞和正常淋巴細胞中miR-150的表達水平均與c-myb呈負相關關系[10]。Zhang等[11]證實miR-150與c-myb mRNA的3′UTR相互作用,miR-150的過表達可下調(diào)c-myb的蛋白水平,并且可導致細胞周期調(diào)節(jié)因子cyclin D1和細胞生成調(diào)節(jié)因子Bcl-2的減少。另有研究顯示[12],在胰腺癌組織中miR-150表達與MUC4的表達呈負相關性。Watanabe等[13]則證實在NK/T細胞淋巴瘤中,miR-150可直接下調(diào)DKC1和AKT2的表達,降低AKT磷酸化,增加Bim和p53等腫瘤抑制物的水平。
1.miR-150作為癌基因:Wu等[14]研究發(fā)現(xiàn),miR-150在胃癌細胞株和組織中均過表達,異常表達的miR-150可通過直接作用于EGR2,促進胃癌的發(fā)生以及癌細胞的生長和增殖。Lulla等[15]則通過real-time PCR的方法分析得出在骨肉瘤組織中miR-150表達較正常成骨細胞增加,推測miR-150對于骨肉瘤的發(fā)生也起一定的作用。Lin等[16]通過對miRNA微陣列和qRT-PCR進一步證實miR-150在結直腸癌伴肝轉(zhuǎn)移中表達上調(diào),表明miRNAs不僅參與結直腸癌的發(fā)生,而且參與結直腸癌肝臟轉(zhuǎn)移的過程。
顱咽管瘤起源于垂體胚胎發(fā)生過程中殘存的扁平上皮細胞,是一種常見的先天性顱內(nèi)良性腫瘤,其發(fā)病機制目前尚不十分清楚。Campanini等[17]報道,miR-150在顱咽管瘤中過表達,但其表達水平與腫瘤大小和是否復發(fā)均無明顯的相關性。
肝母細胞瘤是兒童時期最常見的肝臟腫瘤,屬于惡性胚胎性腫瘤。Magrelli等[18]采用微陣列和qRT-PCR的方法檢測到miRNA在肝母細胞瘤和非腫瘤組織中的表達存在差異,而且與肝細胞癌相比,miR-150在肝母細胞瘤中表達上調(diào)。近期Di Masi等[19]對多種肝癌細胞株進行研究后發(fā)現(xiàn),miR-150可以用來區(qū)分人類正常的肝細胞和肝癌細胞。
Wang等[20]收集了33例慢性淋巴細胞性白血病患者的淋巴結標本以及37例慢性淋巴細胞性白血病患者的外周血標本,采用qRT-PCR方法檢測15種miRNAs的表達,其中miR-150在兩種標本均呈高表達,并且與免疫球蛋白重鏈(IgH)是否突變和ZAP-70表達是否陽性均無明顯關系;通過RNA原位雜交也顯示miR-150在增殖中心以外的腫瘤細胞中呈強陽性,且與BIC/miR-155的表達呈負相關。Fulci等[21]采用成熟miRNAs的qRT-PCR和miRNA克隆兩種獨立的方法檢測原發(fā)性慢性淋巴細胞白血病細胞miRNAs的表達,發(fā)現(xiàn)miR-150在慢性淋巴細胞白血病患者中表達明顯異常。Cai等[22]采用miRNA微陣列的方法檢測結膜黏膜相關淋巴瘤及正常鄰近組織中的miRNAs表達譜,并通過qRT-PCR進一步確認后得出miR-150的表達水平在眼結膜黏膜相關淋巴瘤中較正常組織升高。
2.miR-150作為抑癌基因:白血病是一類造血干細胞異常的惡性克隆性疾病,是兒童和青年中最常見的一種惡性腫瘤,病死率較高。Agirre等[23]報道,miR-150在慢性髓細胞性白血病患者的單核細胞和CD34+細胞中的表達水平較正常對照組均下調(diào)。Machova等[24]也報道,miR-150在慢性粒細胞白血病確診患者及急變期患者中表達水平降低,在67%的復發(fā)患者中水平降低,并且與已知靶蛋白c-myb和BCR-ABL轉(zhuǎn)錄水平呈負相關。Flamant等[25]則發(fā)現(xiàn),用甲磺酸伊馬替尼治療兩周后的慢性粒細胞白血病患者血液標本中miR-150的表達升高,在慢性期和急變期患者的外周血細胞中miR-150的表達量較正常血細胞降低了約30倍,提示miRNAs可能作為該病的一個新的臨床有用的生物標記。Xu等[26]研究發(fā)現(xiàn),在兒童急性淋巴母細胞性白血病的早期復發(fā)病例,miR-150的表達下調(diào)。
Gibcus等[27]采用qRT-PCR和miRNA微陣列的方法檢測霍奇金淋巴瘤及B細胞非霍奇金淋巴瘤的miRNA 表達譜,發(fā)現(xiàn)只有miR-150在霍奇金淋巴瘤的表達較非霍奇金淋巴瘤中表達明顯下調(diào)。Zhao等[28]報道,miR-150在套細胞淋巴瘤的表達較正常B淋巴細胞明顯下調(diào)。
胰腺癌是一種惡性程度很高的腫瘤。Srivastava等[12]研究發(fā)現(xiàn),胰腺癌組織miR-150表達下調(diào),并且與MUC4的表達呈負相關性。研究還顯示,miR-150與MUC4的3′UTR結合可抑制它的翻譯,從而抑制MUC4蛋白的表達,并伴隨人表皮生長因子受體HER2表達下調(diào)。進一步的研究發(fā)現(xiàn),miR-150過表達可抑制胰腺癌細胞的生長、集落生成、遷移和侵襲。我們初步的實驗結果也證實,miR-150、c-myb及MUC4的表達在胰腺癌及癌旁組織中存在差異,miR-150還可影響胰腺癌細胞的凋亡。
三、展望
作為一類在轉(zhuǎn)錄后基因調(diào)控中發(fā)揮功能的非編碼小RNAs,由于它強大且廣泛的調(diào)控作用,miRNAs已經(jīng)成為了目前的研究熱點之一。它通過與靶基因mRNA(通常與mRNA非翻譯區(qū)結合)的堿基互補配對來影響mRNA的穩(wěn)定性或抑制其翻譯,參與包括細胞分化、發(fā)育和細胞增殖、凋亡等多種生物學過程。目前研究認為,miRNAs可通過類似癌基因、抑癌基因或其他方式調(diào)控腫瘤的發(fā)生、發(fā)展和轉(zhuǎn)歸過程。腫瘤細胞與正常組織細胞miRNA 表達譜具有明顯差異,且多數(shù) miRNA 基因都位于腫瘤形成相關的脆弱基因位點,miRNA 基因高頻率地出現(xiàn)在這些與腫瘤密切相關的易變基因組中,提示miRNA在腫瘤形成過程中可能扮演著重要的角色。
miR-150作為眾多miRNAs的一員,在血細胞生成、腫瘤及多種非腫瘤性疾病中起著重要的調(diào)控作用。但其在腫瘤發(fā)生、發(fā)展過程中的精細調(diào)控機制以及miR-150表達和腫瘤生物學特性變化之間的關系等方面都還有待進一步研究。目前國內(nèi)外尚未見到從作用靶點c-myb的角度探討miR-150對胰腺癌的發(fā)生、發(fā)展和生物學特征影響,以及miR-150及靶基因表達與胰腺癌臨床病理參數(shù)和預后間相關性的報道。因此,隨著生物信息學及基因芯片技術的發(fā)展,對包括miR-150在內(nèi)的眾多miRNAs的研究將會不斷深入,有望為預防、診斷及治療包括腫瘤在內(nèi)的各種疾病提供新的思路及廣闊的應用前景。
[1] Zhao Y, Srivastava D. A developmental view of microRNA function. Trends Biochem Sci, 2007, 32:189-197.
[2] Calin GA, Croce CM. MicroRNA signatures in human cancers. Nat Rev Cancer, 2006, 6:857-866.
[3] Jeffrey SS. Cancer biomarker profiling with microRNAs. Nat Biotechnol, 2008, 26:400-401.
[4] Bartel DP. MicroRNAs:genomics,biogenesis,mechanism,and function. Cell, 2004, 116:281-297.
[5] Xiao C, Calado DP, Galler G, et al. MiR-150 controls B cell differentiation by targeting the transcription factor c-Myb. Cell, 2007, 131:146-159.
[6] Zhou B, Wang S, Mayr C, et al. miR-150, a microRNA expressed in mature B and T cells, blocks early B cell development when expressed prematurely. Proc Natl Acad Sci USA, 2007,104:7080-7085.
[7] Bezman NA, Chakraborty T, Bender T, et al. miR-150 regulates the development of NK and iNKT cells. J Exp Med, 2011, 208: 2717-2731.
[8] Zheng Q, Zhou L, Mi QS, et al. MicroRNA miR-150 is involved in Vα14 invariant NKT cell development and function. J Immunol, 2012, 188: 2118-2126.
[9] Edelstein LC, Bray PF. MicroRNAs in platelet production and activation. Blood, 2011,117:5289-5296.
[10] Lin YC, Kuo MW, Yu J, et al. c-Myb is an evolutionary conserved miR-150 target and miR-150/c-Myb interaction is important for embryonic development. Mol Biol Evol, 2008, 25:2189-2198.
[11] Zhang J, Luo N, Luo Y, et al. microRNA-150 inhibits human CD133-positive liver cancer stem cells through negative regulation of the transcription factor c-Myb. Int J Oncol, 2012, 40:747-756.
[12] Srivastava SK,Bhardwaj A,Singh S,et al.MicroRNA-150 directly targets MUC4 and suppresses growth and malignant behavior of pancreatic cancer cells. Carcinogenesis, 2011, 32:1832-1839.
[13] Watanabe A, Tagawa H, Yamashita J, et al.The role of microRNA-150 as a tumor suppressor in malignant lymphoma. Leukemia, 2011, 25:1324-1334.
[14] Wu Q, Jin H, Yang Z, et al. MiR-150 promotes gastric cancer proliferation by negatively regulating the pro-apoptotic gene EGR2. Biochem Biophys Res Commun, 2010, 392:340-345.
[15] Lulla RR, Costa FF, Bischof JM, et al. Identification of Differentially Expressed MicroRNAs in Osteosarcoma. Sarcoma, 2011, 2011:732690.
[16] Lin M, Chen W, Huang J, et al. MicroRNA expression profiles in human colorectal cancers with liver metastases.Oncol Rep, 2011, 25:739-747.
[17] Campanini ML, Colli LM, Paixao BM, et al. CTNNB1 gene mutations, pituitary transcription factors, and MicroRNA expression involvement in the pathogenesis of adamantinomatous craniopharyngiomas. Horm Cancer, 2010, 1:187-196.
[18] Magrelli A, Azzalin G, Salvatore M, et al. Altered microRNA Expression Patterns in Hepatoblastoma Patients. Transl Oncol, 2009, 2:157-163.
[19] Di Masi A, Viganotti M, Antoccia A, et al. Characterization of HuH6, Hep3B, HepG2 and HLE liver cancer cell lines by WNT/β-catenin pathway, microRNA expression and protein expression profile. Cell Mol Biol, 2010, 56:1299-1317.
[20] Wang M, Tan LP, Dijkstra MK, et al. miRNA analysis in B-cell chronic lymphocytic leukaemia: proliferation centres characterized by low miR-150 and high BIC/miR-155 expression. J Pathol, 2008, 215:13-20.
[21] Fulci V, Chiaretti S, Goldoni M, et al. Quantitative technologies establish a novel microRNA profile of chronic lymphocytic leukemia. Blood, 2007, 109:4944-4951.
[22] Cai J, Liu X, Cheng J, et al. MicroRNA-200 is commonly repressed in conjunctival MALT lymphoma, and targets cyclin E2. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol, 2011, 250:523-531.
[23] Agirre X, Jiménez-Velasco A, San José-Enériz E, et al. Down-regulation of hsa-miR-10a in chronic myeloid leukemia CD34+ cells increases USF2-mediated cell growth. Mol Cancer Res, 2008, 6:1830-1840.
[24] Machová Poláková K, Lopotová T, Klamová H,et al. Expression patterns of microRNAs associated with CML phases and their disease related targets. Mol Cancer, 2011, 10:41.
[25] Flamant S, Ritchie W, Guilhot J, et al. Micro-RNA response to imatinib mesylate in patients with chronic myeloid leukemia. Haematologica, 2010, 95:1325-1333.
[26] Xu L, Liang YN, Luo XQ, et al. Association of miRNAs expression profiles with prognosis and relapse in childhood acute lymphoblastic leukemia. Zhonghua Xue Ye Xue Za Zhi, 2011, 32:178-181.
[27] Gibcus JH, Tan LP, Harms G, et al. Hodgkin lymphoma cell lines are characterized by a specific miRNA expression profile. Neoplasia, 2009, 11:167-176.
[28] Zhao JJ, Lin J, Lwin T, et al. microRNA expression profile and identification of miR-29 as a prognostic marker and pathogenetic factor by targeting CDK6 in mantle cell lymphoma. Blood, 2010, 115:2630-2639.
(本文編輯:屠振興)
10.3760/cma.j.issn.1674-1935.2013.01.019
200433 上海,第二軍醫(yī)大學長海醫(yī)院病理科
鄭建明,Email:jmzheng1962@163.com
2012-07-05)