国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的制備及其性質(zhì)

2013-03-07 08:28林日輝黃文勤李香香何美卿鄭元博
食品科學(xué) 2013年1期
關(guān)鍵詞:草酸鹽脫羧酶聚集體

梁 躍,林日輝,*,黃文勤,秦 夢,李香香,何美卿,鄭元博

(1.廣西民族大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,化學(xué)與生物轉(zhuǎn)化過程新技術(shù)廣西高校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣西 南寧 530006;2.南寧奕德環(huán)境科技有限公司,廣西 南寧 530003;3.東北大學(xué)理學(xué)院,遼寧 沈陽 110819)

交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的制備及其性質(zhì)

梁 躍1,林日輝1,*,黃文勤2,秦 夢1,李香香1,何美卿1,鄭元博3

(1.廣西民族大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,化學(xué)與生物轉(zhuǎn)化過程新技術(shù)廣西高校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣西 南寧 530006;2.南寧奕德環(huán)境科技有限公司,廣西 南寧 530003;3.東北大學(xué)理學(xué)院,遼寧 沈陽 110819)

為了獲得緩解泌尿系統(tǒng)草酸鹽結(jié)石病癥的酶制劑,用無載體固定化方法üü交聯(lián)酶聚集體(CLEAs)制備交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體。使用基因工程菌E.coli BL21(DE3)/pET32a/YvrK誘導(dǎo)表達(dá)制備草酸脫羧酶粗酶液,用30%的乙醇進(jìn)行沉淀分離提純,純化倍數(shù)為2.7倍,酶活回收率91.2%;在戊二醛添加量為0.06%、pH5、牛血清白蛋白添加量0.5g/L、4℃的條件下處理該酶2h,得到交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體(oxdc-CLEAs),酶活回收率達(dá)95.4%;酶學(xué)性質(zhì)研究表明,相對游離草酸脫羧酶,交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的耐酸性、耐熱性、耐胰蛋白酶降解能力均有提高。

草酸脫羧酶;交聯(lián)酶聚集體(CLEAs);制備;性質(zhì)

草酸(HOOCüCOOH)是自然界中酸性最強(qiáng)的有機(jī)二元酸,它以草酸鹽的形式廣泛的存在于植物、微生物和包括人在內(nèi)的動物體內(nèi)[1]。人體內(nèi)沒有降解草酸鹽的相關(guān)酶,人們食用一些高草酸含量的食物后容易的造成草酸在人體內(nèi)的積累,進(jìn)而引發(fā)多種病理狀態(tài),如尿結(jié)石、腎結(jié)石、高草酸尿、低血鈣癥、VB6缺乏等[2-3],對結(jié)石主要成分的分析表明,80%為難溶的草酸鈣[3]。在西方國家中,12%的人患有結(jié)石相關(guān)的疾病,而且泌尿系統(tǒng)結(jié)石病人經(jīng)排石治療后易復(fù)發(fā),在中國復(fù)發(fā)率高達(dá)60%~80%[4]。目前對草酸水平升高的治療方法都不是非常有效,主要通過限制草酸的攝入量來預(yù)防結(jié)石,而且許多原發(fā)性的高草酸尿患者需要密集的透析和器官移植,這大大增加了患者的痛苦和經(jīng)濟(jì)壓力,因此需要尋求一種安全的從體內(nèi)去除草酸鹽的方法。通過服用某種酶制劑降解攝入體內(nèi)的草酸鹽,是緩解泌尿系統(tǒng)草酸鹽結(jié)石病癥,降低患者痛苦的有效方法[5]。

草酸脫羧酶(EC 4.1.1.2)是一種含錳的金屬酶,它可以催化草酸脫羧為甲酸和CO2,是植物、微生物中草酸代謝降解的主要催化酶之一[6]。它主要來源于木材腐朽真菌,尤其是白腐菌,在動物中只有天竺鼠的肝臟中有發(fā)現(xiàn)該酶[7]。草酸脫羧酶在醫(yī)療、食品、工業(yè)生產(chǎn)和生物監(jiān)測等領(lǐng)域都有非常大的應(yīng)用潛力[8-9]。目前已有交聯(lián)酶晶體法(CLECs)制成草酸脫羧酶酶制劑用于治療草酸鹽結(jié)石癥的報(bào)道[10],但交聯(lián)草酸脫羧酶晶體(oxdc-CLECs)的制備必須首先經(jīng)過酶分子的結(jié)晶,所需的酶純化程度和結(jié)晶條件都很高,操作困難,費(fèi)用較高。2000年,荷蘭Delft大學(xué)的Sheldon小組提出了交聯(lián)酶聚集體(CLEAs)的固定化酶技術(shù),該方法經(jīng)過聚集和交聯(lián)兩個過程,聚集過程并沒有造成蛋白質(zhì)的失活[11-12]。與交聯(lián)酶晶體法固定化技術(shù)相比,交聯(lián)酶聚集體(CLEAs)方法具有對酶的純化度要求不高、操作簡單、成本低廉、設(shè)備簡單、單位體積活性大、空間效率高的優(yōu)點(diǎn)[11,13]。本實(shí)驗(yàn)對Bacillus subtilis來源的草酸脫羧酶進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),制取草酸脫羧酶粗酶液,研究交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體(oxdc-CLEAs)制備的最適條件,并對交聯(lián)草酸脫羧酶的性質(zhì)進(jìn)行研究,為草酸脫羧酶進(jìn)一步的開發(fā)應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 菌種與培養(yǎng)基

基因工程菌E.coli BL21(DE3)/pET32a/YvrK 本實(shí)驗(yàn)室保存。

LB培養(yǎng)基組成(g/L):培養(yǎng)基含蛋白胨 10、酵母提取物5、氯化鈉10g,pH7.0。LB固體培養(yǎng)基添加18g瓊脂粉。

1.2 試劑與儀器

草酸鉀、甲酸脫氫酶 美國Sigma公司;氨芐青霉素、異丙基硫代-β-D-半乳糖苷(IPTG)、煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NAD)、牛血清白蛋白(BSA)、胰蛋白酶生工生物工程(上海)有限公司;無水乙醇、丙酮、戊二醛、甲酸鈉、硫酸銨、檸檬酸、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鉀、MnCl2均為國產(chǎn)分析純。

TU-1901紫外-可見分光光度計(jì) 北京普析通用儀器;CR-22G高速冷凍離心機(jī) 日本日立公司; 1-13高速臺式離心機(jī) 美國Sigma公司;超低溫冰箱 美國Beckman公司;冰箱 中國海爾公司;JY92-Ⅱ超聲波細(xì)胞粉碎機(jī) 寧波新芝公司;KJMR-Ⅳ血液混勻器、HH-2數(shù)顯恒溫水浴鍋 國華電器公司。

1.3 方法

1.3.1 草酸脫羧酶的誘導(dǎo)表達(dá)

[14]方法,發(fā)酵培養(yǎng)基因工程菌E.coli BL21(DE3)/pET32a/YvrK,加入0.4mmol/L IPTG誘導(dǎo)表達(dá)草酸脫羧酶,收獲菌體以50mmol/L pH8.0磷酸鹽緩沖液提取獲得粗酶液。

1.3.2 草酸脫羧酶的純化

草酸脫羧酶粗酶液分別加入不同添加量的硫酸銨,無水乙醇和丙酮,4℃冰箱中過夜沉淀,10000r/min離心5min,收集沉淀,用50mmol/L pH8.0磷酸鹽緩沖液重新溶解,分析酶活力回收及純化效果。

1.3.3 草酸脫羧酶聚集體的制備與交聯(lián)

取純化酶液加入適量沉淀劑,4℃冰箱沉淀過夜,得到草酸脫羧酶聚集體懸浮液。添加戊二醛溶液至一定添加量,置于血液混合器進(jìn)行振蕩反應(yīng),10000r/min離心5min,棄上清液,用50mmol/L pH8.0磷酸鹽緩沖液沖洗沉淀數(shù)次,獲得交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體,4℃保存待用。

1.3.4 游離草酸脫羧酶和交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的活性測定

草酸脫羧酶活力測定采用終止反應(yīng)法[15]。反應(yīng)液含76mmol/L草酸鉀,50mmol/L pH 4.0 檸檬酸緩沖液,37℃水浴2min,加入草酸脫羧酶液開始反應(yīng),10min后加入等體積的0.2mol/L磷酸氫二鉀使體系pH值上升至中性終止反應(yīng)。反應(yīng)液加入輔酶NAD以及甲酸脫氫酶,分光光度法檢測分析,計(jì)算甲酸的量。酶活力單位定義為:每分鐘催化轉(zhuǎn)化草酸產(chǎn)生1μmol甲酸的酶量。

蛋白含量采用考馬斯亮藍(lán)法測定,以BSA作為標(biāo)準(zhǔn)品。

1.3.5 交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的制備與條件優(yōu)化

在不同戊二醛添加量、交聯(lián)pH值、交聯(lián)時間、BSA添加量條件下,比較制備交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的酶活回收率,以初始草酸脫羧酶酶活力為100%。

1.3.6 游離草酸脫羧酶與交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的性質(zhì)

1.3.6.1 最適pH值

在pH2.5~7.0的不同檸檬酸緩沖液反應(yīng)體系中分別測定酶活力,以酶活力最高數(shù)據(jù)為100%,計(jì)算相對酶活力,觀察pH值對游離酶和交聯(lián)酶聚集體活性的影響。

1.3.6.2 最適反應(yīng)溫度

反應(yīng)檸檬酸緩沖液pH 4.0,在不同溫度條件下分別測定酶活力,以酶活力最高數(shù)據(jù)為100%,計(jì)算不同溫度條件下的相對酶活力,觀察游離酶和交聯(lián)酶聚集體反應(yīng)的最適溫度。

1.3.6.3 耐熱性

游離酶與交聯(lián)酶聚集體在不同溫度條件下熱處理30min后測殘余酶活力,以初始酶活力為100%,觀察處理后酶活力的變化。將游離酶和交聯(lián)酶聚集體置于65℃水浴,每30min取樣檢測殘余酶活力,以初始時間的酶活力為100%。

1.3.6.4 對胰蛋白酶的耐受性

分別取4.5mL游離酶和交聯(lián)酶聚集體,加入2.5g/L的胰蛋白酶溶液0.5mL,37℃水浴,定時取樣檢測剩余酶活力,以原始活性數(shù)據(jù)為100%酶活力,觀察游離酶和交聯(lián)酶聚集體對抗胰蛋白酶消化的能力。

2 結(jié)果與分析

2.1 草酸脫羧酶的表達(dá)

基因工程菌E.coli BL21(DE3)/pET32a/YvrK經(jīng)IPTG誘導(dǎo)及超聲破碎細(xì)胞提取后得到草酸脫羧酶粗酶液,酶活力為7.078U/mL,蛋白含量為1.12mg/mL,酶比活力為6.315U/mg。

2.2 草酸脫羧酶的分離純化

圖 1 沉淀草酸脫羧酶SDS-PAGE結(jié)果Fig.1 SDS-PAGE of crude enzyme solution and different solvent precipitates

用不同質(zhì)量分?jǐn)?shù)的硫酸銨、丙酮和乙醇對草酸脫羧酶進(jìn)行沉淀分離,重溶沉淀SDS-PAGE結(jié)果如圖1所示。草酸脫羧酶易于被實(shí)驗(yàn)所用3種沉淀劑沉淀釋出,但丙酮和乙醇對草酸脫羧酶沉淀的選擇性優(yōu)于硫酸銨。其中,使用30%乙醇分離純化草酸脫羧酶效果良好,可去除粗酶液中66.2%的蛋白,酶活回收率達(dá)91.2%,純化倍數(shù)為2.7倍,比30%丙酮純化倍數(shù)提高了17.4%,因此后續(xù)實(shí)驗(yàn)選擇30%乙醇做為沉淀劑。

2.3 交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的制備與條件優(yōu)化

2.3.1 酶聚集體的制備

取適量純化酶液于2mL離心管緩慢滴加無水乙醇至乙醇體積分?jǐn)?shù)30%,4℃冰箱沉淀過夜得到草酸脫羧酶聚集體懸浮液。

2.3.2 交聯(lián)劑添加量的確定

圖 2 戊二醛添加量對交聯(lián)反應(yīng)的影響Fig.2 Effect of glutaraldehyde concentration on activity recovery

由圖2可知,當(dāng)戊二醛添加量低于0.06%,交聯(lián)酶聚集體活力回收隨戊二醛添加量的增加而增加,但當(dāng)戊二醛添加量到達(dá)0.06%之后,酶活回收率隨戊二醛添加量的增加而顯著降低。推測是由于戊二醛添加量過高時,會造成一定的空間范圍內(nèi)酶分子的交聯(lián)過于緊密,產(chǎn)生空間位阻而影響酶的活性[16],而且過高添加量戊二醛對酶分子的變性失活也是影響因素之一,因此0.06%的戊二醛是進(jìn)行交聯(lián)反應(yīng)的適宜添加量。

2.3.3 交聯(lián)反應(yīng)pH值的確定

圖 3 不同交聯(lián)pH值對交聯(lián)反應(yīng)的影響Fig.3 Effect of cross-linking pH on activity recovery

由圖3可知,在磷酸鹽緩沖液pH5條件下獲得交聯(lián)酶聚集體的酶活回收率最高。這是由于草酸脫羧酶的等電點(diǎn)在5附近[17],在此pH值條件下草酸脫羧酶聚集體沉淀較完全,經(jīng)交聯(lián)反應(yīng)后酶活回收率也較高,因此選擇交聯(lián)反應(yīng)pH值為5。

2.3.4 交聯(lián)時間的確定

圖 4 不同交聯(lián)時間對交聯(lián)反應(yīng)的影響Fig.4 Effect of cross-linking time on activity recovery

由圖4可知,在2h反應(yīng)時間內(nèi),交聯(lián)酶聚集體的酶活回收率隨著交聯(lián)時間的增加而增加,2h后,隨著時間的延長,酶活回收率反而不斷下降,該結(jié)果與董曉毅等[18]在制備交聯(lián)脲酶聚集體研究相似,可見,交聯(lián)反應(yīng)過度反而會降低交聯(lián)酶聚集體的酶活回收率,因此確定2h為適宜的交聯(lián)反應(yīng)時間。

陶行知先生說:“先生的責(zé)任不在教,而在教學(xué),而在教學(xué)生學(xué)。”在“學(xué)為中心”的課堂中,教師要設(shè)法將如何“教”的預(yù)設(shè),轉(zhuǎn)化成學(xué)生的“學(xué)”的引導(dǎo),以極大地激發(fā)學(xué)生的學(xué)習(xí)興趣。

2.3.5 添加BSA對交聯(lián)效果的影響

圖 5 BSA添加量對交聯(lián)反應(yīng)的影響Fig.5 Effect of BSA concentration on activity recovery

Shah等[19]研究表明,對于酶蛋白濃度較低或戊二醛對酶活力影響比較大的酶,在制備交聯(lián)酶聚集體的反應(yīng)中加入適量的BSA,可以顯著提高交聯(lián)酶聚集體的酶活回收率。由圖5可知,添加到終質(zhì)量濃度為0.5g/L的效果最佳,過量添加BSA可能會影響酶活性中心與底物的接觸,而降低交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體活性。

2.4 游離酶與交聯(lián)酶聚集體的性質(zhì)比較

圖 6 游離草酸脫羧酶與交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的最適pH值Fig.6 Optimal reaction pH for oxdc-CLEAs and free oxdc

2.4.1 交聯(lián)酶聚集體的最適反應(yīng)pH值由圖6可知,交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的反應(yīng)pH值范圍比游離草酸脫羧酶寬泛,在pH2.5時交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體還有80%的相對酶活力,而游離草酸脫羧酶只剩10%不到,這與潘延芳等[20]在交聯(lián)重組枯草桿菌纖溶酶聚集體的制備及其性質(zhì)研究中的結(jié)果相似,說明交聯(lián)聚集后的酶對酸性環(huán)境耐受能力更強(qiáng)。

2.4.2 交聯(lián)酶聚集體的最適反應(yīng)溫度

圖 7 游離草酸脫羧酶與交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的最適反應(yīng)溫度Fig.7 Optimal reaction temperature for oxdc-CLEAs and free oxdc

由圖7可知,游離草酸脫羧酶和交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的最適反應(yīng)溫度均在47℃左右。

2.4.3 交聯(lián)酶聚集體的耐熱性

分別在45、50、55、60、65、70、75℃條件下處理游離草酸脫羧酶與交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體30min,檢測殘余酶活力,結(jié)果如圖8所示,交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體比游離草酸脫羧酶更耐熱。在實(shí)驗(yàn)條件下,游離草酸脫羧酶的變性失活溫度低于65℃,交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的變性失活溫度高于70℃;其中,在75℃處理30min,游離草酸脫羧酶的殘余酶活力僅為13.4%,而交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的殘余酶活力高達(dá)77.1%。將游離草酸脫羧酶與交聯(lián)酶聚集體分別置于65℃水浴,每隔30min測酶活力,結(jié)果如圖9所示。3.5h內(nèi),交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體酶活力基本無損失,游離草酸脫羧酶在65℃溫浴酶活逐漸發(fā)生變性失活,半衰期t1/2為2h。推測是由于酶交聯(lián)后分子質(zhì)量變大,剛性增強(qiáng)進(jìn)而可以耐受較高的溫度。此結(jié)論與交聯(lián)脲酶優(yōu)良的耐熱性有相似之處[18]。

圖 8 游離草酸脫羧酶與交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的耐熱性Fig.8 Heat tolerance of free oxdc and oxdc-CLEAs

圖 9 65℃游離草酸脫羧酶與交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的熱穩(wěn)定性Fig.9 Thermal stability of free oxdc and oxdc-CLEAs at 65 ℃

圖 10 游離草酸脫羧酶與交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體對胰蛋白酶的耐受性Fig.10 Tripsin resistance of free oxdc and oxdc-CLEAs

由圖10可知,交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體對胰蛋白酶消化的耐受能力顯著高于游離草酸脫羧酶,其中,使用胰蛋白酶處理48h后,交聯(lián)草酸脫羧酶殘余酶活力大于80%,而游離草酸脫羧酶殘余酶活力低于50%。這是由于交聯(lián)草酸脫羧酶具有相對有序的蛋白質(zhì)三維結(jié)構(gòu),大分子的蛋白水解酶被排斥在外而降低了它對酶的水解作用。交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體要做成酶制劑藥物作用于人體內(nèi)就必須能夠通過胃酸屏障并對胃腸道內(nèi)的蛋白水解酶如胰蛋白酶等有一定耐受性,使其藥效不至于損失過快。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,通過制備交聯(lián)酶聚集體,可體提高草酸脫羧酶抵抗胰蛋白酶消化的能力,適用于開發(fā)藥用酶制劑。

3 結(jié) 論

草酸鹽在人體內(nèi)的積累是形成泌尿系統(tǒng)結(jié)石的主要因素,現(xiàn)有的治療草酸鹽升高的方法如食用高劑量藥物,調(diào)節(jié)飲食和透析等僅僅是部分或暫時有效的,而且它們還可能產(chǎn)生不利的副作用,因此需要一種安全的從人體去除草酸鹽的方法。草酸脫羧酶是一種極具開發(fā)潛力的酶,它可以高效專一的分解草酸鹽生成無害的甲酸。為了探索利用草酸脫羧酶制成酶制劑以緩解泌尿系統(tǒng)結(jié)石病患者的痛苦,國外已有學(xué)者對高純度的草酸脫羧酶進(jìn)行結(jié)晶處理并進(jìn)行交聯(lián)固定制成CLECs酶制劑,此種方法需要高純度的酶和結(jié)晶處理,操作難度大,制作成本高。為了降低獲得草酸脫羧酶酶制劑的成本,本實(shí)驗(yàn)研究了無載體固定化方法制備交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的方法,用30%乙醇對草酸脫羧酶粗酶液進(jìn)行沉淀分離,操作簡單,費(fèi)用低廉,純化效果好;用0.06%戊二醛添加量在pH5的磷酸鹽緩沖液中添加0.5g/L的BSA交聯(lián)2h得到交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體,酶活回收率達(dá)95.4%。對其性質(zhì)進(jìn)一步研究表明交聯(lián)草酸脫羧酶聚集體的耐酸性、耐熱性、對胰蛋白酶的耐受性均比游離草酸脫羧酶穩(wěn)定。本研究為草酸脫羧酶作為預(yù)防、治療結(jié)石的酶制劑的開發(fā)應(yīng)用提供一定的參考。

CLEAs技術(shù)是一種新的無載體技術(shù),它不需要純度較高的酶就能用于交聯(lián),操作簡便,在一般實(shí)驗(yàn)室就能完成,而且成本低廉,不需要復(fù)雜的酶純化結(jié)晶處理,是一種非常有前景的固定化技術(shù),本研究考察了用草酸脫羧酶粗酶液經(jīng)一步沉淀分離后進(jìn)行無載體交聯(lián)固定化的方法,為交聯(lián)酶聚集體技術(shù)的進(jìn)一步運(yùn)用提供了理論依據(jù)。

參考文獻(xiàn):

[1] JUST V J, STEVENSON C E M, BOWATER L, et al. A Closed conformation of Bacillus subtilis oxalate decarboxylase oxdc provides evidence for the true identity of the active site[J]. The Journal of Biological Chemistry, 2004, 279(19): 19867-19874.

[2] 董婷婷, 袁杰利. 利用乳酸菌降解草酸預(yù)防結(jié)石的研究進(jìn)展[J]. 中國微生態(tài)學(xué)雜志, 2011, 23(3): 266.

[3] COE F L, EVAN A, WORCESTER E. Kidney stone disease[J]. The Journal of Clinical Investigation, 2005, 115(10): 2598-2608.

[4] 代海濤, 陳志強(qiáng), 葉章群. 草酸、草酸鈣晶體-上皮細(xì)胞相互作用與腎結(jié)石[J]. 國際泌尿系統(tǒng)雜志, 2006, 26(2): 254.

[5] GRUJIC D, SALIDO E C, SHENOY B C, et al. Hyperoxaluria is reduced and nephrocalcinosis prevented with an oxalate-degrading enzyme in mice with hyperoxaluria[J]. Am J Nephrol, 2009, 29(2): 86-93.

[6] 趙樹田, 張士青. 草酸代謝酶的研究進(jìn)展[J]. 上海交通大學(xué)學(xué)報(bào): 醫(yī)學(xué)版, 2007, 27(10): 1274-1277.

[7] TALWAR H S, MURTHY M S R, NATH R, et al. Oxalate decarboxylase from guinea-pig liver[J]. Biochem Biophys, 1981, 18: 105-109.

[8] 曹茂新, 洪楓, 朱利民. 草酸脫羧酶及其應(yīng)用[J]. 中國生物工程雜志, 2005(增刊1): 170-175.

[9] SJODE A, WINESTRAND S, NILVEBRANT N O, et al. Enzymebased control of oxalic acid in the pulp and paper industry[J]. Enzyme and Microbial Technology, 2008, 43(4): 78-83.

[10] 阿爾特斯制藥公司. 結(jié)晶化的草酸脫羧酶和使用方法: 中國, 200780035792[P]. 2009-11-18.

[11] 張茜, 王家東. 交聯(lián)糖化酶聚集體的制備[J]. 中國釀造, 2008(23): 67-69.

[12] AYTAR B S, BAKIR U. Preparation of cross-linked tyrosinase aggregates[J]. Proeess Biochemistry, 2008, 43: 125-131.

[13] 武仙山, 何立千, 葉磊. 交聯(lián)酶聚集體: 一種無載體固定化方法[J].生物技術(shù), 2005, 15(2): 90-92.

[14] 林日輝, 許麗莉, 農(nóng)勉, 等. 重組草酸脫羧酶的表達(dá)及酶學(xué)性質(zhì)研究[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè), 2011, 37(2): 57-61.

[15] SVEDRUZI? D, LIU Y, REINHARDT L A, et al. Investigating the roles of putative active site residues in the oxalate decarboxylase from Bacillus subtilis[J]. Arch Biochem Biophys, 2007, 464(1): 36-47.

[16] MONTORO-GARCíA S, GIL-ORTIZ F, NAVARRO-FERNáNDEZ J, et al. Improved cross-linked enzyme aggregates for the production of desacetyl β-lactam antibiotics intermediates[J]. Bioresource Technology, 2010, 101(1): 331-336.

[17] ANAND R, DORRESTEIN P C, KINSLAND C, et al. Structure of oxalate decarboxylase from Bacillus subtilis at 1.75 ? resolution[J]. Biochemistry, 2002, 41(24): 7659-7669.

[18] 董曉毅, 夏仕文. 交聯(lián)脲酶聚集體的制備和初步應(yīng)用[J]. 生物工程學(xué)報(bào), 2003, 19(3): 332-336.

[19] SHAH S, SHARMA A, GUPTA M N. Preparation of cross-linked enzyme aggregates by using bovine serum albumin as a proteic feeder[J]. Analytical Biochemistry, 2006, 351: 207-213.

[20] 潘延芳, 孔珊珊, 陳怡倩, 等. 交聯(lián)重組枯草桿菌纖溶酶聚集體的制備及其性質(zhì)研究[J]. 中國生化藥物雜志, 2007, 28(5): 318-321.

Preparation and Properties of Cross-Linked Oxalate Decarboxylase Aggregates

LIANG Yue1,LIN Ri-hui1,*,HUANG Wen-qin2,QIN Meng1,LI Xiang-xiang1,HE Mei-qing1,ZHENG Yuan-bo3
(1. Key Laboratory of New Techniques for Chemical and Biological Conversion Process, College of Chemistry and Chemical Engineering, Guangxi University for Nationalities, Nanning 530006, China;2. Nanning Yide Environment Technology Co. Ltd., Nanning 530003, China;3. College of Sciences, Northeastern University, Shenyang 110819, China)

Cross-linked oxalate decarboxylase aggregates (oxdc-CLEAs) for use as an enzyme preparation to relieve urinary oxalate stone disease were prepared by a carrier-free immobilization method. Crude enzyme solution was obtained from the induced expression of the genetically engineered strain E.coli BL21(DE3)/pET32a/YvrK, and oxalate decarboxylase was separated by adding 30% ethanol with a purification factor of 2.7 and an activity recovery of 91.2%. Cross-linked oxdc-CLEAs were further obtained after 2 h of cold treatment at 4 ℃ in the presence of 0.5 g/L bovine serum albumin (BSA) and 0.06% glutaraldehyde at pH 5, resulting in an activity recovery of 95.4%. Enzymatic characterization showed that cross-linked oxdc-CLEAs had improved tolerance to acid, heat and trypsin degradation when compared to free oxalate decarboxylase.

oxalate decarboxylase;cross-linked enzyme aggregates;preparation;properties

Q814.4

A

1002-6630(2013)01-0215-05

2011-11-11

廣西化工過程創(chuàng)新技術(shù)研發(fā)平臺建設(shè)項(xiàng)目(桂科能0992028-13);廣西自然科學(xué)基金項(xiàng)目(2011GXNSFC018015)

梁躍(1985ü),男,碩士研究生,主要從事化學(xué)與生物轉(zhuǎn)化研究。E-mail:lyyue1013@126.com.cn

*通信作者:林日輝(1972ü),男,副教授,博士,主要從事發(fā)酵工程、酶工程研究。E-mail:linrihui_0@yahoo.com.cn

猜你喜歡
草酸鹽脫羧酶聚集體
草酸鹽法制取摻鈷氧化鋅的熱分解過程分析
類胡蘿卜素聚集體的研究進(jìn)展
聚酰胺-胺與十二烷基硫酸鈉相互作用及體系的聚集行為對溶液性質(zhì)的影響*
蝦青素聚集體的研究進(jìn)展
提高振動篩排除草酸鹽產(chǎn)量生產(chǎn)實(shí)踐
乳酸菌降解草酸鹽活性及機(jī)制研究進(jìn)展
水合物聚集體受力分析及臨界聚集體粒徑的計(jì)算
飼料中草酸鹽對反芻動物的危害及其預(yù)防
右旋糖酐對草酸脫羧酶的修飾研究
磁性殼聚糖微球固定化米糠內(nèi)源酶的研究