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抗水稻條紋病毒安全表達(dá)載體的構(gòu)建及遺傳轉(zhuǎn)化

2013-09-11 07:23:16李紅偉王錫鋒
植物保護(hù) 2013年6期
關(guān)鍵詞:抗性轉(zhuǎn)基因轉(zhuǎn)化率

雷 陽, 李 羽, 王 彪, 李紅偉, 李 莉, 王錫鋒

(中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所,植物病蟲害生物學(xué)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100193)

由水稻條紋病毒(Rice stripe virus,RSV)引起的水稻條紋葉枯病是東亞稻區(qū),尤其是中國(guó)、日本、韓國(guó)等的重要病毒病害,造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失[1]。曾經(jīng)于2001、2003、2004、2006和2008年在江蘇、山東、安徽、河南和上海等省份的粳稻種植區(qū)大規(guī)模暴發(fā),2004年僅江蘇省的發(fā)病面積就達(dá)157萬hm2,占全省水稻種植面積的79%。流行年份,一般田塊減產(chǎn)20%~30%,嚴(yán)重田塊達(dá)到80%以上,甚至顆粒無收[2]。采取傳統(tǒng)治蟲防病策略對(duì)水稻條紋葉枯病有一定的防效,但大量使用化學(xué)農(nóng)藥既污染環(huán)境,也易使害蟲產(chǎn)生抗藥性,而且介體灰飛虱(Laodelphax striatellus Fallén)傳毒具有瞬時(shí)性和持久性,使得防病效果欠佳,因此防治病毒病最有效的途徑是通過增強(qiáng)品種自身的抗性,達(dá)到主動(dòng)預(yù)防病毒病害的目的。

RNA干擾(RNA interference,RNAi)機(jī)制的發(fā)現(xiàn)為植物抗病毒基因工程提供了一條全新的思路。RNAi是一種重要的基因沉默現(xiàn)象,可以通過雙鏈RNA(dsRNA)特異性降解對(duì)應(yīng)序列的 mRNA,從而特異性地抑制相應(yīng)基因的表達(dá)[3]。RNAi是一種古老的且進(jìn)化上高度保守的防御機(jī)制,但是通過長(zhǎng)期的共進(jìn)化,病毒已經(jīng)能夠從RNAi中逃逸,甚至產(chǎn)生抑制子來與之抗衡,植物體內(nèi)天然的RNAi系統(tǒng)不能起到完全或較高水平地抵御某種病毒侵染的作用。利用基因工程手段將病毒的某一序列設(shè)計(jì)成雙鏈發(fā)夾結(jié)構(gòu),導(dǎo)入植物體使之表達(dá),以便誘發(fā)RNA沉默,就有可能強(qiáng)化植物體內(nèi)天然的RNA沉默病毒基因的能力。2007年代玉華等[4]構(gòu)建了RSV全長(zhǎng)CP基因RNAi載體,遺傳轉(zhuǎn)化水稻,獲得了穩(wěn)定遺傳、高抗或免疫的植株。2011年Shimizu等[5]將RSV編碼的7個(gè)基因都構(gòu)建成RNAi載體,分別導(dǎo)入水稻,接種試驗(yàn)表明:轉(zhuǎn)CP、SP基因的水稻植株對(duì)RSV免疫,轉(zhuǎn)pC1基因的水稻植株抗病性顯著提高,但轉(zhuǎn)pC2和pC4基因的水稻植株抗病性沒有增加。

在抗病基因工程中,外源基因整合到植物基因組中的頻率很低,一般從千分之幾到百萬分之幾不等[6]。為了便于篩選到低頻率的轉(zhuǎn)化事件,常將外源目的基因與易于識(shí)別的選擇標(biāo)記基因串聯(lián),再通過標(biāo)記基因篩選低頻率的轉(zhuǎn)化事件。然而,使用選擇性標(biāo)記基因?qū)χ参锛?xì)胞的生長(zhǎng)和分化有不利的影響;對(duì)環(huán)境存在潛在危害,標(biāo)記基因可能轉(zhuǎn)移到土壤微生物和其他植物,引起其他生物產(chǎn)生抗性;在食品上有一定的安全風(fēng)險(xiǎn)和消費(fèi)心理障礙[7]。因此培育無選擇標(biāo)記基因的安全轉(zhuǎn)基因植物已成為植物基因工程發(fā)展的趨勢(shì)。

目前獲得無選擇標(biāo)記基因植物的方法主要有位點(diǎn)特異性重組、轉(zhuǎn)座子系統(tǒng)和共轉(zhuǎn)化法等。位點(diǎn)特異性重組系統(tǒng)能精確地引入外源基因,但需要進(jìn)行二次轉(zhuǎn)化或雜交,費(fèi)時(shí)、費(fèi)力[8]。利用轉(zhuǎn)座子系統(tǒng)雖然能完整地刪除選擇標(biāo)記基因,但需要通過有性繁殖分離目的基因和標(biāo)記基因,周期長(zhǎng)、效率低,且不穩(wěn)定,難以定向優(yōu)化[9]。共轉(zhuǎn)化法具有操作簡(jiǎn)便,適用范圍廣,基因轉(zhuǎn)化效率較高等優(yōu)點(diǎn),被廣泛應(yīng)用于水稻、煙草、油菜、大豆、玉米等植物中[10-12]。共轉(zhuǎn)化法就是把目的片段和選擇性擇標(biāo)記基因分別構(gòu)建于不同載體或同一載體的不同T-DNA區(qū),期望借助于基因槍或農(nóng)桿菌介導(dǎo)等轉(zhuǎn)化方法將選擇標(biāo)記基因和目的基因同時(shí)導(dǎo)入同一受體細(xì)胞的不同染色體上。一方面利用選擇標(biāo)記基因編碼的性狀,篩選出同時(shí)含有目的基因的細(xì)胞或再生植株。另一方面,通過轉(zhuǎn)基因植株后代自交,使目的基因和選擇標(biāo)記基因發(fā)生分離,從而獲得不攜帶選擇標(biāo)記基因的轉(zhuǎn)基因陽性植株。雖然已有利用共轉(zhuǎn)化法培育無選擇標(biāo)記轉(zhuǎn)基因水稻的報(bào)道[13],但由于RNA干涉載體片段大,結(jié)構(gòu)復(fù)雜,無抗性選擇標(biāo)記基因植株的獲得率還不盡如人意。本研究應(yīng)用RNAi原理,構(gòu)建了RSV CP基因(RSV-HCP)安全表達(dá)載體,利用農(nóng)桿菌介導(dǎo)的雙菌、雙質(zhì)粒共轉(zhuǎn)化法,對(duì)轉(zhuǎn)化體系進(jìn)行了優(yōu)化,成功獲得了轉(zhuǎn)基因再生植株,經(jīng)T1代自交分離、抗病性篩選,獲得了無選擇標(biāo)記基因的抗RSV植株。

1 材料與方法

1.1 轉(zhuǎn)基因受體、病毒分離物及傳毒介體材料

水稻模式品種‘愛知旭’(‘Aichiasahi’)以及對(duì)RSV高感、優(yōu)質(zhì)高產(chǎn)的品種‘武育粳3號(hào)’(‘Wuyujing 3’)和‘淮稻5號(hào)’(‘Huaidao 5’)用作轉(zhuǎn)基因的受體材料。

RSV分離物(RSV-JS)采集自江蘇南京自然發(fā)病的水稻(Oryza sativa Linnaeus)植株,經(jīng) ELISA和PCR鑒定、純化后保存在-70℃?zhèn)溆谩y帶RSV-JS的灰飛虱由江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所提供,飼養(yǎng)在高感品種‘武育粳3號(hào)’上(26℃,14h光照)。

1.2 菌株和質(zhì)粒載體

大腸桿菌[Escherichia coli (Migula)Castellani et Chalmers]JM110、根瘤農(nóng)桿菌 [Agrobacterium tumefaciens(Smith Townsend)Conn]EHA105和RNAi載體pMCG161均為本實(shí)驗(yàn)室保存。載體pCAMBIA1301為澳大利亞CAMBIA中心產(chǎn)品,本實(shí)驗(yàn)室保存。

1.3 載體構(gòu)建

1.3.1 目的基因的克隆

按照已公布 RSV CP基因序列(GenBank.DQ299166.1)設(shè)計(jì)引物。上游引物 RSV-HCP-F:5′-AGACTAGT GGCGCGCCGACTATGTGCATCACCATGAG-3′,引入限制性酶切位點(diǎn)SpeⅠ和AscⅠ;下 游 引 物 RSV-HCP-R:5′-AGGAGCTCCCTAGGACAGCCATCTTAACACCAG-3′,引 入酶切位點(diǎn)SacI和Av rⅡ,預(yù)期擴(kuò)增片段約256bp。

采用Trizol法(Invitrogen)提取水稻葉組織的總RNA為模板,以RSV-HCP-R為引物合成第一鏈cDNA。再以合成的cDNA為模板,以RSVHCP-F和RSV-HCP-R為引物對(duì)進(jìn)行PCR擴(kuò)增,反應(yīng)總體積50μL(模板100ng,dNTP 1mmol/L,聚合酶5U,RSV-HCP-F 0.5μmol/L,RSV-HCPR 0.5μmol/L),反應(yīng)條件:94℃4min;94℃40s,52℃40s,72℃1min,30個(gè)循環(huán);72℃10min。將擴(kuò)增到的RSV-CP基因部分片段命名為RSVHCP。試驗(yàn)以健康植株為陰性對(duì)照。將RSV-HCP克隆于pMD18-T載體,經(jīng)驗(yàn)證序列正確的重組質(zhì)粒命名為pMD18-T-HCP(基因的測(cè)序工作由上海生物工程公司完成)。

1.3.2 無潮霉素抗性基因載體pCMBIA1301-h(huán)pt(-)的獲得

用限制性內(nèi)切酶XhoI酶切載體pCMBIA1301,經(jīng)電泳檢測(cè)、回收、純化大片段,再經(jīng)T4DNA連接酶16℃連接過夜,即可得到去除潮霉素標(biāo)記基因的pCMBIA1301載體,經(jīng)PCR和酶切驗(yàn)證的載體命名為pCMBIA1301-h(huán)pt(-)。

1.3.3 RSV-HCP基因RNAi載體的構(gòu)建

選擇含有來源于水稻Intron的RNAi載體pMCG161,通過酶切、T4連接酶作用,將RSV-HCP正向片段插入在載體的酶切位點(diǎn)Asc I、AvrⅡ間,將反向片段插入在載體的Spe I、Sac I間,獲得RNAi載體pMCG161+/-R。由于該載體含有氯霉素抗性基因,不適合根瘤農(nóng)桿菌介導(dǎo)的遺傳轉(zhuǎn)化,因此將中間載體pMCG161+/-R上的發(fā)夾結(jié)構(gòu),用BamH I、HindⅢ雙酶切,回收6920bp的片段,在T4DNA連接酶作用下,與同樣經(jīng)BamH I、HindⅢ酶切的載體pCMBIA1301-h(huán)pt(-)連接(16 ℃過夜),得到無潮霉素標(biāo)記基因的RNAi載體,以antisense IP 5′(5′-TTCCTGGGCTAAAAGAATTGTTGATTTGGC-3′)和 antisense IP 3′(5′-CCGGTTCTGCCGCTTTTTTTAAAATTGGAT-3′)為 引物對(duì),進(jìn)行PCR鑒定,正確的質(zhì)粒命名為pCMBIA1301+/-R。

利用電擊法將質(zhì)粒pCMBIA1301+/-R和pCAMBIA1301分別轉(zhuǎn)化到農(nóng)桿菌EHA105感受態(tài)細(xì)胞中,得到的陽性重組子分別命名為E13R和 E1301[10]。

1.4 不同水稻品種對(duì)共轉(zhuǎn)化率的影響

分別將水稻品種‘愛知旭’、‘武育粳3號(hào)’和‘淮稻5號(hào)’的成熟種子滅菌后置于愈傷誘導(dǎo)培養(yǎng)基上,28℃黑暗培養(yǎng)10~15d。剝下成熟胚盾片長(zhǎng)出的愈傷組織,進(jìn)行繼代培養(yǎng),每個(gè)品種各取長(zhǎng)勢(shì)良好的愈傷900個(gè),分為3個(gè)重復(fù)。將E13R和E1301分別在YM培養(yǎng)基(酵母膏0.3%,胰蛋白胨0.5%,麥芽糖0.5%,pH=9.0;Kana 50μg/mL;利福平50μg/mL)平板上劃線,28℃黑暗培養(yǎng)2~3d,挑取單菌落,220r/min振蕩培養(yǎng)。當(dāng)A600至0.8時(shí),4000r/min離心收集菌體,用AAM+100μmol/L AS培養(yǎng)基重新懸浮沉淀至A600為0.4。將E13R和E1301的懸浮液按照體積比為1∶1混合,分別對(duì)3個(gè)水稻品種共轉(zhuǎn)化。水稻愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)、與農(nóng)桿菌的共培養(yǎng)、抗性愈傷組織的篩選再生及所用培養(yǎng)基配方等參照易自立[11]的方法。對(duì)T0代再生植株進(jìn)行PCR檢測(cè),分別統(tǒng)計(jì)出抗性愈傷數(shù)、苗數(shù)和陽性植株數(shù),并計(jì)算出愈率、再生率和共轉(zhuǎn)化率。計(jì)算公式如下:

1.5 不同菌液配比對(duì)共轉(zhuǎn)化率的影響

將E13R和E1301的懸浮液按照體積比3∶1、2∶1、1∶1和1∶2混合,以水稻品種‘愛知旭’為受體,分別進(jìn)行共轉(zhuǎn)化。對(duì)T0代再生植株進(jìn)行PCR檢測(cè)后,分別統(tǒng)計(jì)出抗性愈傷數(shù)、苗數(shù)和陽性植株數(shù),并計(jì)算出愈率、再生率和共轉(zhuǎn)化率。

1.6 轉(zhuǎn)基因植株的PCR檢測(cè)

以改進(jìn)的CTAB法[14]提取轉(zhuǎn)基因植株幼嫩葉組織總DNA,采用兩重PCR反應(yīng)體系,同時(shí)擴(kuò)增RSV-HCP和hptⅡ基因。反應(yīng)總體積50μL(模板100ng,dNTP 1mmol/L,聚合酶5U,RSV-HCP-F 0.3 μmol/L,RSV-HCP-R 0.3 μmol/L,N-h(huán)pt-F 0.3μmol/L,N-h(huán)pt-R 0.3μmol/L),反 應(yīng) 條 件 同1.3.1節(jié),預(yù)期PCR產(chǎn)物RSV-HCP片段為265bp,hptⅡ基因片段為1042bp。反應(yīng)產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。hptⅡ擴(kuò)增引物對(duì)為N-h(huán)pt-F和N-h(huán)pt-R。引 物 N-h(huán)pt-F 序 列 為 5′-CCCATGGGATGAAAAAGCCTGAACTCACCGCGAC-3′,N-h(huán)pt-R為5′-CCCATGGGCTATTTCTTTGCCCTCGGACGAGTGC-3′。

1.7 轉(zhuǎn)基因植株的抗病性分析

對(duì)水稻條紋葉枯病的抗性鑒定試驗(yàn)在本所防蟲溫室內(nèi)進(jìn)行(溫度26~30℃,光照14h),以‘鎮(zhèn)稻88’為抗病對(duì)照,‘武育粳3號(hào)’為感病對(duì)照,管理按常規(guī)方法進(jìn)行。接種和調(diào)查方法參照張世賢等[15],水稻條紋葉枯病分級(jí)標(biāo)準(zhǔn)參照盧百關(guān)等[16]。

1.8 數(shù)據(jù)處理

以ANOVA/MANOVA統(tǒng)計(jì)方法分析數(shù)據(jù),并進(jìn)行多重比較。

2 結(jié)果與分析

2.1 RNAi載體的構(gòu)建

2.1.1 RSV CP基因部分核苷酸片段的克隆

以水稻葉組織總RNA為模板,以RSV-HCP-F和RSV-HCP-R為引物,通過 RT-PCR 擴(kuò)增 RSVHCP,1%瓊脂糖電泳分析結(jié)果表明:從RSV侵染的水稻樣品中擴(kuò)增到約260bp的預(yù)期片段,陰性對(duì)照則沒有擴(kuò)增到任何片段。將該片段克隆到pMD18-T載體,得到重組質(zhì)粒pMD18-T-HCP,對(duì)其測(cè)序結(jié)果表明目的片段長(zhǎng)度為256bp,與GenBank No.DQ299166.1序列的201~434bp序列完全一致,說明獲得了RSV CP基因的部分核苷酸片段RSVHCP。通過在NCBI上BLAST發(fā)現(xiàn),與RSV-HCP核苷酸序列一致性達(dá)100%的分離物達(dá)42個(gè),這也說明RSV-HCP序列是高度保守性,將有利于通過RNAi獲得抗RSV的轉(zhuǎn)基因植株。

2.1.2 中間載體的構(gòu)建

構(gòu)建RNAi載體需要一個(gè)兩側(cè)帶有多酶切位點(diǎn)的合適Intron序列,以便將RSV-HCP的正反義鏈插入在Intron的兩翼,形成發(fā)夾結(jié)構(gòu)。本研究選擇了具有水稻Intron的載體pMCG161,將RSV-HCP的正義鏈插入在酶切位點(diǎn)Asc I和AvrⅡ間,將反義鏈插入在酶切位點(diǎn)Spe I和Sac I間。當(dāng)片段正向、反向均連入載體后,此時(shí)的載體含有兩個(gè)AscⅠ酶切位點(diǎn),它們分別位于正義片段和負(fù)義片段的兩端,因此采用AscⅠ對(duì)重組質(zhì)粒進(jìn)行單酶切時(shí),陽性質(zhì)粒得到兩個(gè)片段,其中1650bp的小片段為有效的 發(fā) 夾 結(jié) 構(gòu),包 括 正 向 片 段 (256bp)、intron(1138bp)和反向片段(256bp);而作為陰性對(duì)照的空質(zhì)粒,只得到一條約12913bp的大片段條帶(圖1),說明RNAi載體構(gòu)建成功,命名為pMCG161+/-R,該載體具有氯霉素抗性。

圖1 重組質(zhì)粒pMCG161+/-R的酶切鑒定(Asc I)Fig.1 Restriction analysis of recombinant plasmid pMCG161+/-R with AscⅠ

2.1.3 適合農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化的安全RNAi載體構(gòu)建

為了獲得適合農(nóng)桿菌遺傳轉(zhuǎn)化水稻的去潮霉素抗性基因的RNAi載體,采用限制性內(nèi)切酶BamH I和HindⅢ將RNAi載體pMCG161+/-R上有效的發(fā)夾結(jié)構(gòu)切下,并在T4連接酶的作用下,連入到去除潮霉素抗性基因的載體pCMBIA1301-h(huán)pt(-)上獲得了重組載體pCAMBIA1301+/-R,該載體具有卡那霉素抗性。以 antisense IP5′/antisense IP3′為引物,單克隆為模板進(jìn)行菌落PCR鑒定,結(jié)果表明:部分待檢樣品和陽性對(duì)照(pMCG161+/-R)擴(kuò)增出1121bp的特異條帶,與預(yù)期片段大小一致,而陰性對(duì)照(pCMBIA1301-h(huán)pt(-))未擴(kuò)增出任何條帶。pCAMBIA1301+/-R的酶切鑒定結(jié)果與pMCG161+/-R相似,同樣得到了1650bp的條帶,證明無標(biāo)記基因的RNA干涉載體構(gòu)建成功。進(jìn)一步測(cè)序結(jié)果也說明RSV-HCP發(fā)夾結(jié)構(gòu)已連入載體pCMBIA1301-h(huán)pt(-)中,成功獲得了適合農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化,且在T-DNA區(qū)內(nèi)不含有抗生素標(biāo)記基因的安全RNAi載體,命名為pCAMBIA1301+/-R(圖2)。

圖2 RNAi載體pCMBIA1301+/-R的T-DNA區(qū)示意圖Fig.2 The construct of pCMBIA1301+/-R T-DNA

2.2 不同水稻品種的共轉(zhuǎn)化率

采用重組農(nóng)桿菌E13R和E1301(按照1∶1濃度配比),選擇水稻模式品種‘愛知旭’和對(duì)RSV高感、但優(yōu)質(zhì)高產(chǎn)的水稻品種‘武育粳3號(hào)’和‘淮稻5號(hào)’等進(jìn)行了共轉(zhuǎn)化。在轉(zhuǎn)化過程中,3個(gè)品種的成熟胚最初產(chǎn)生愈傷組織的能力無明顯的差別,但在重組農(nóng)桿菌侵染后,經(jīng)潮霉素篩選,‘愛知旭’產(chǎn)生的抗性愈傷組織最多,出愈率最高(25.6%);其次是‘武育粳3號(hào)’,出愈率為23.3%;而‘淮稻5號(hào)’產(chǎn)生的抗性愈傷數(shù)最少,僅為7.9%。在隨后成苗過程中,‘愛知旭’成苗需要時(shí)間最短,約45d左右,成苗數(shù)也最多,再生率為38.3%;而‘武育粳3號(hào)’的成苗時(shí)間稍晚,需要50d左右,同時(shí)成苗數(shù)也略少(35.7%)。3個(gè)品種中‘淮稻5號(hào)’的成苗時(shí)間最晚,80d后才出現(xiàn)少量再生苗,同時(shí)成苗數(shù)也最少,僅5.6%的再生率。對(duì)再生植株進(jìn)行PCR檢測(cè)后,對(duì)陽性植株數(shù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì),計(jì)算共轉(zhuǎn)化率,采用ANOVA/MANOVA統(tǒng)計(jì)分析數(shù)據(jù),并進(jìn)行多重比較,3個(gè)品種的共轉(zhuǎn)化率有顯著差異??梢钥闯鏊酒贩N‘愛知旭’的共轉(zhuǎn)化率最高,達(dá)9.07%;推廣品種‘武育粳3號(hào)’的共轉(zhuǎn)化率略低于‘愛知旭’,達(dá)到6.59%;而‘淮稻5號(hào)’的所有再生植株均未檢測(cè)到外源目的基因(表1)。由此可見,本研究所用的遺傳轉(zhuǎn)化體系最適合模式品種‘愛知旭’的轉(zhuǎn)化,其次是‘武育粳3號(hào)’,而不適合‘淮稻5號(hào)’的轉(zhuǎn)化。

表1 不同水稻品種的轉(zhuǎn)化效率1)Table 1 Co-transformation efficiencies of different rice varieties

2.3 不同菌液配比對(duì)共轉(zhuǎn)化率的影響

選用最適合RNAi載體pCAMBIA1301+/-R的共轉(zhuǎn)化受體品種‘愛知旭’,分別用菌液E13R與E1301按照3∶1、2∶1、1∶1、1∶2混合對(duì)350個(gè)愈傷進(jìn)行了共培養(yǎng),對(duì)抗性愈傷、再生植株數(shù)等的統(tǒng)計(jì),發(fā)現(xiàn)當(dāng)E1301菌液濃度較高時(shí)(E13R:E1301為1∶2),盡管抗性愈傷和再生苗數(shù)都相對(duì)較多,但hptⅡ和RSV-HCP的共轉(zhuǎn)化率較低(5.97%),而當(dāng) E13R菌液濃度較高時(shí)(2∶1和3∶1)hptⅡ和 RSV-HCP的共轉(zhuǎn)化率較高(13.56%~16.33%),最終獲得的轉(zhuǎn)基因再生陽性植株數(shù)目較多(表2)。

表2 不同農(nóng)桿菌菌液濃度對(duì)轉(zhuǎn)化效率的影響Table 2 Effects of different density ratios on co-transformation efficiency

2.4 無潮霉素抗性基因植株的獲得

將獲得的33個(gè)轉(zhuǎn)基因再生植株,通過帶毒灰飛虱人工接種后,其中5株未表現(xiàn)癥狀(0級(jí)),9株表現(xiàn)輕微癥狀(Ⅰ級(jí)),5株表現(xiàn)中等癥狀(Ⅱ級(jí)),12株癥狀嚴(yán)重(Ⅲ級(jí)),而受體‘愛知旭’發(fā)病嚴(yán)重,全部為Ⅱ級(jí)或Ⅲ級(jí),發(fā)病率為100%。PCR檢測(cè)結(jié)果表明:表現(xiàn)為0~Ⅰ級(jí)的轉(zhuǎn)基因再生植株均擴(kuò)增到潮霉素抗性基因(hptⅡ)和RSV-HCP。

圖3 T1代植株的PCR檢測(cè)Fig.3 Analysis of T1transformation of hptⅡ gene and RSV-HCP fragment

對(duì)33個(gè)株系的T1代植株進(jìn)行帶毒灰飛虱人工接種,篩選到14個(gè)株系的87株不表現(xiàn)病害癥狀的植株,通過雙重PCR檢測(cè)潮霉素抗性基因(hptⅡ)和RSV-HCP(圖3),其中16株(5個(gè)株系)為不攜帶hptⅡ的陽性植株。說明通過本研究構(gòu)建的載體成功獲得了不攜帶選擇標(biāo)記基因的轉(zhuǎn)基因抗病毒植株,為進(jìn)一步育種應(yīng)用打下了良好的基礎(chǔ)。

3 討論

在植物轉(zhuǎn)基因過程中,選擇標(biāo)記基因的使用使得大量篩選抗性愈傷和再生植株成為可能。傳統(tǒng)的做法是將標(biāo)記基因和目的基因串聯(lián)起來,置于同一載體(T-DNA)內(nèi),以便通過標(biāo)記基因篩選低頻率的轉(zhuǎn)化事件[1,4,17],但后期刪除標(biāo)記基因卻非常困難。隨著人們環(huán)保意識(shí)的加強(qiáng),對(duì)標(biāo)記基因的安全性提出了質(zhì)疑,并引起了國(guó)際上的普遍關(guān)注,不同的國(guó)家也制定了相關(guān)的條款和法規(guī)加以限制。因此,在獲得轉(zhuǎn)基因植株后,是否能成功去除標(biāo)記基因?qū)D(zhuǎn)基因材料的育種應(yīng)用和安全釋放至關(guān)重要。在國(guó)內(nèi)外,已有通過RNAi技術(shù)使水稻獲得抗RSV特性的報(bào)道。Park[1]利用 RSV 的全長(zhǎng) CP,Zhou[17]利用 RSV 的全長(zhǎng)SP分別構(gòu)建了RNAi載體,遺傳轉(zhuǎn)化水稻,均獲得了高抗或免疫的植株。Shimizu[5]更是將RSV編碼的7個(gè)基因的部分核苷酸序列(500bp)都構(gòu)建成RNAi載體,分別導(dǎo)入水稻模式品種‘日本晴’,比較含不同基因的轉(zhuǎn)基因植株的抗病性差異,試驗(yàn)表明轉(zhuǎn)化RSV CP和RSV SP的植株具有良好的抗性。但上述試驗(yàn)更多的是在做機(jī)制層面上的研究,為了便于篩選,其轉(zhuǎn)基因植株均攜帶有選擇標(biāo)記基因,難以直接投入生產(chǎn)或進(jìn)行育種應(yīng)用。另外,已有研究表明僅60~200bp的病毒基因片段就能誘導(dǎo)RNA沉默從而獲得抗病毒抗性[18],所以只要選擇具有高度保守性的RSV基因片段,就能達(dá)到全長(zhǎng)基因的效果,這樣不僅大大簡(jiǎn)化了構(gòu)建植物表達(dá)載體的工作量,還縮小了T-DNA區(qū)的長(zhǎng)度,更利于遺傳轉(zhuǎn)化和減小對(duì)水稻基因組的影響。

雙菌、雙質(zhì)粒共轉(zhuǎn)化法作為一種簡(jiǎn)便易行的去除選擇標(biāo)記基因的轉(zhuǎn)基因方法,目前得到了廣泛的應(yīng)用,而利用雙菌、雙質(zhì)粒共轉(zhuǎn)化法轉(zhuǎn)化RNAi載體還未見報(bào)道。由于目的基因和選擇標(biāo)記基因分別位于兩種質(zhì)粒上,再加上RNA干涉載體的T-DNA區(qū)片段大,結(jié)構(gòu)復(fù)雜,使其共轉(zhuǎn)化效率難以達(dá)到預(yù)期結(jié)果。本文利用RSV CP基因(969bp)的高度保守區(qū)段(RSV-HCP,234bp)構(gòu)建了RNA干涉載體,與全長(zhǎng)CP基因相比,既能保證對(duì)RSV CP基因的RNA干涉效果,還大大縮短了外源插入片段,使得轉(zhuǎn)化率(轉(zhuǎn)化率=再生苗數(shù)/共培養(yǎng)的愈傷數(shù)×100%)最高可達(dá)到19.14%,相比單質(zhì)粒轉(zhuǎn)全長(zhǎng)CP基因的轉(zhuǎn)化率(15%)[4]有明顯提高。

在雙菌雙質(zhì)粒轉(zhuǎn)化中,通常的做法是將重組農(nóng)桿菌菌液濃度按照1∶1配比,本試驗(yàn)首先比較了在該配比下轉(zhuǎn)化水稻模式品種‘愛知旭’及生產(chǎn)上的推廣品種‘武育粳3號(hào)’和‘淮稻5號(hào)’的差異。結(jié)果表明,‘愛知旭’的共轉(zhuǎn)化率最高,‘武育粳3號(hào)’次之,而‘淮稻5號(hào)’沒有獲得任何陽性植株,不同品種間的差異較為顯著。這主要是由于在植物的遺傳轉(zhuǎn)化中,決定轉(zhuǎn)化成功與否的重要因素為材料的再生能力和效率,而這兩者最終是由品種的基因型決定的。此外,本研究結(jié)果表明在一定范圍內(nèi),含有目的基因的重組農(nóng)桿菌濃度越高轉(zhuǎn)化效率越高,當(dāng)E13R與E1301配比為3∶1時(shí),共轉(zhuǎn)化率最高,濃度配比為2∶1時(shí)次之,濃度比為1∶2時(shí)最低,可能的原因是pCMBIA1301+/-R 的 T-DNA 區(qū)(11297bp)相對(duì)于pCMBIA1301的 T-DNA 區(qū)(5576bp)要 大 很多,這就造成了發(fā)卡結(jié)構(gòu)相對(duì)于潮霉素抗性基因更難插入水稻的基因組中。本文通過雙菌雙質(zhì)粒共轉(zhuǎn)化方法轉(zhuǎn)化水稻模式品種‘愛知旭’和生產(chǎn)上推廣品種‘武育粳3號(hào)’,均獲得了無標(biāo)記基因抗RSV的轉(zhuǎn)基因植株,為轉(zhuǎn)基因材料進(jìn)一步的推廣應(yīng)用鋪平了道路。

[1] Park H M,Choi M S,Kwak D Y,et al.Suppression of NS3 and MP is important for the stable inheritance of RNAi-mediated rice stripe virus(RSV)resistance obtained by targeting the fully complementary RSV-CP gene[J].Molecules and Cells,2012,33(1):43-51.

[2] 陳潔,吳麗娟,周彤,等.江蘇省主栽水稻品種對(duì)條紋葉枯病與灰飛虱的抗性評(píng)價(jià)[J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2010,33(4):105-108.

[3] Ding S W,Voinnet O.Antiviral immunity directed by small RNAs[J].Cell,2007,130(3):413-426.

[4] 代玉華,王錫鋒,李莉,等.一種適合水稻農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化的RNAi載體的構(gòu)建和潮霉素對(duì)水稻轉(zhuǎn)化的影響[J].植物保護(hù),2007,33(2):37-40.

[5] Shimizu T,Nakazono-Nagaoka E,Uehara-Ichiki T,et al.Targeting specific genes for RNA interference is crucial to the development of strong resistance to rice stripe virus[J].Plant Biotechnology Journal,2011,9(4):503-512.

[6] De Vetten N,Wolters A M,Raemakers K,et al.A transformation method for obtaining marker-free plants of a cross-pollinating and vegetatively propagated crop[J].Nature Biotechnology,2003,21(4):439-442.

[7] Komamine Heksemsekya.Systems for the removal of a selection marker and their combination with a positive marker[J].Plant Cell Reports,2001,20(4):383-392.

[8] 邱淑萍,陳在杰,王鋒.Cre/loxp位點(diǎn)特異性重組系統(tǒng)在轉(zhuǎn)基因植物中的應(yīng)用[J].福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2008,77(2):211-217.

[9] 金維正,段瑞君,張帆,等.利用Ac/Ds轉(zhuǎn)座子系統(tǒng)在水稻中獲得無選擇標(biāo)記轉(zhuǎn)基因植株的方法[J].生物工程學(xué)報(bào),2003,19(6):668-673.

[10]Tenllado F,Diaz-Ruiz J R.Double-stranded RNA-mediated interference with plant virus infection[J].Journal of Virology,2001,75(24):12288-12297.

[11]Tenllado F,Llave C,Diaz-Ruiz J R.RNA interference as a new biotechnological tool for the control of virus diseases in plants[J].Virus Research,2004,102(1):85-96.

[12]Wang M B A D,Waterhouse P M.A single copy of a virus-derived transgene encoding hairpin RNA gives immunity to barley yellow dwarf virus[J].Molecular Plant Pathology,2000,1(6):347-356.

[13]劉峰,趙伊英,蘇永昌,等.雙農(nóng)桿菌共轉(zhuǎn)化獲得無標(biāo)記轉(zhuǎn)pepc基因的水稻植株(英文)[J].應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報(bào),2005,11(4):393-398.

[14]Doyle J J,Doyle J L.A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue[J].Phytochemical Bulletin,1987,19(4):11-15.

[15]張世賢,李莉,王錫鋒,等.我國(guó)北方稻區(qū)水稻條紋病毒分子變異和水稻品種抗病性分析[J].植物保護(hù),2007,33(5):45-50.

[16]盧百關(guān),方兆偉,劉漢清,等.不同粳稻品種抗水稻條紋葉枯病情況的調(diào)查研究[J].中國(guó)稻米,2006(1):22-24.

[17]Zhou Y,Yuan Y,Yuan F,et al.RNAi-directed down-regulation of RSV results in increased resistance in rice(Oryza sativa L.)[J].Biotechnology Letters,2012,34(5):965-972.

[18]Sijen T,Wellink J,Hiriart J B,et al.RNA-Mediated virus resistance:role of repeated transgenes and delineation of targeted regions[J].The Plant Cell,1996,8(4):2277-2294.

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