胡青紅, 王超然, 李 靜,2, 王 彥, 谷 雪, 閻 超*
(1.上海交通大學(xué)藥學(xué)院,上海 200240;2.上海通微分析技術(shù)有限公司,上海 201203)
毛細(xì)管整體柱(monolithic column)是通過(guò)在毛細(xì)管內(nèi)原位聚合或固化的方法制備得到的具有多孔結(jié)構(gòu)的整體棒狀固定相,因其具有特殊的多孔結(jié)構(gòu)和簡(jiǎn)便的制備過(guò)程而受到關(guān)注[1]。其中,聚合物毛細(xì)管整體柱作為一種新型的色譜固定相,由于其比無(wú)機(jī)硅膠整體柱在生物相容性、pH穩(wěn)定性和修飾選擇性等方面更具有優(yōu)勢(shì),自20世紀(jì)90年代被引入后,發(fā)展十分迅速[2,3]。Svec[4,5]和 Arrua 等[6]綜述了近些年來(lái)聚合物毛細(xì)管整體柱的最新進(jìn)展。
硼酸親和整體柱是一類具有特異親和性能的聚合物整體柱。它利用硼酸基團(tuán)能夠可逆結(jié)合含順二羥基結(jié)構(gòu)的化合物,生成穩(wěn)定的五元環(huán)原理來(lái)進(jìn)行特異性分離。其中以苯硼酸為功能基團(tuán)的硼酸親和材料用得最多。其反應(yīng)機(jī)理如圖1所示。在堿性條件(pH>8)下,硼酸基團(tuán)經(jīng)過(guò)羥化從原來(lái)的三鍵共面結(jié)構(gòu)變成四面體硼酸陰離子,然后與順二羥基化合物形成酯環(huán);而在酸性條件下,此前產(chǎn)生的環(huán)狀酯水解,使反應(yīng)向反方向進(jìn)行[7,8]。整體柱滲透性好、傳質(zhì)快等優(yōu)勢(shì)結(jié)合硼酸親和色譜的專一性,非常適合于復(fù)雜樣品的分析。目前,硼酸親和整體柱主要用于生物樣品的分離分析,如碳水化合物[9,10]、糖蛋白[11-13]等的分離分析,而將其應(yīng)用于中藥及其提取物的分析還鮮有報(bào)道。
圖1 硼酸親和作用原理Fig.1 Schematic illustration of the boronic acid method
中藥提取物作為一類新興的天然藥物產(chǎn)品,正被廣泛應(yīng)用于醫(yī)療保健等行業(yè)[14]。但中藥提取物成分復(fù)雜,且在很多中藥材中,一些小分子活性物質(zhì)的含量很低,往往要經(jīng)過(guò)多步提取、濃縮才能進(jìn)行測(cè)定。因而對(duì)這類小分子物質(zhì)的檢測(cè),富集手段顯得尤為重要。硼酸親和整體柱因其專一的親和性,能夠特異性地結(jié)合含有順二羥基結(jié)構(gòu)的化合物,因此可以用于此類化合物的提取富集。本研究利用以4-乙烯基苯硼酸(VPBA)為功能單體,季戊四醇三丙烯酸酯(PETA)為交聯(lián)劑所制備的poly(VPBA-co-PETA)硼酸親和毛細(xì)管整體柱[15]選擇性地富集兩種常見(jiàn)中草藥—— 蒲公英和刺果衛(wèi)矛中的活性物質(zhì),如綠原酸等,發(fā)現(xiàn)經(jīng)poly(VPBA-co-PETA)整體柱富集后,原樣品中被分析物的濃度顯著提高,達(dá)到了預(yù)期的效果。
TriSepTM-2100加壓毛細(xì)管電色譜系統(tǒng)(美國(guó)Unimicro Technologies公司),包括溶劑輸送系統(tǒng)、柱上紫外/可見(jiàn)光檢測(cè)器、微流控系統(tǒng)、高壓電源和數(shù)據(jù)采集系統(tǒng);島津高效液相色譜儀(日本島津公司),包括LC-20AB泵、SPD-20A檢測(cè)器、DGU-20A3脫氣儀和LC solution工作站。石英毛細(xì)管(100 μm i.d.,365 μm o.d.,河北永年銳灃色譜器件有限公司);0.22 μm水相、有機(jī)相濾膜(上海半島實(shí)業(yè)有限公司凈化器材廠)。
甲醇和乙腈(色譜純,美國(guó)TEDIA公司);γ-甲基丙烯酰氧丙基三甲氧基硅烷(γ-MAPS,純度97%)、VPBA(純度 98%)、PETA(純度 98%)均購(gòu)于英國(guó)Alfa Aesa公司;偶氮二異丁腈(AIBN)、乙二醇和二甘醇購(gòu)于中國(guó)醫(yī)藥集團(tuán)上海化學(xué)試劑有限公司;三氟乙酸(TFA)等其他試劑均為分析純。
蒲公英(Herba Taraxaci)、刺果衛(wèi)矛(Euonymus acanthocarpus)購(gòu)于河北省安國(guó)市伊康藥業(yè)有限公司,經(jīng)上海交通大學(xué)藥學(xué)院王夢(mèng)月副教授鑒定為菊科植物蒲公英的干燥全草和衛(wèi)矛科植物刺果衛(wèi)矛的干燥根。
毛細(xì)管首先經(jīng)過(guò)堿洗、酸洗、甲醇沖洗等預(yù)處理步驟后進(jìn)行硅烷化反應(yīng)以修飾其內(nèi)壁;然后稱取單體VPBA、PETA、致孔劑乙二醇、二甘醇以及引發(fā)劑AIBN適量,混合均勻后抽入毛細(xì)管內(nèi),置于75℃水浴中反應(yīng)12 h,得到poly(VPBA-co-PETA)硼酸親和整體柱。
精密稱定咖啡酸、綠原酸對(duì)照品各1 mg,用少量甲醇溶解,配制成0.5 g/L的對(duì)照品儲(chǔ)備液,經(jīng)0.22 μm 濾膜過(guò)濾,備用。
精密稱定3,4-二羥基苯乙醇和2,3-二羥基苯甲酸芐酯精提物對(duì)照樣品各約10 mg,用少量甲醇溶解,配制成1 g/L儲(chǔ)備液,經(jīng)0.22 μm濾膜過(guò)濾,備用。
所有樣品在4℃條件下避光保存,實(shí)驗(yàn)前用流動(dòng)相稀釋配制至所需濃度。
蒲公英:經(jīng)粉碎后稱取適量蒲公英粉末,加10倍質(zhì)量的甲醇超聲提取、過(guò)濾;濾渣中再加8倍量的甲醇超聲提取、過(guò)濾;合并兩次濾液,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至干,加水定容至一定體積,得其醇提液。取適量醇提液用水(醇提液與水的體積比為1∶4)分散后依次用石油醚、氯仿、乙酸乙酯和正丁醇萃取、回收,冷凍干燥后用甲醇定容成1 g/L儲(chǔ)備液。取正丁醇提取液,稀釋后進(jìn)樣。
刺果衛(wèi)矛:取刺果衛(wèi)矛粉末1 g,加甲醇20 mL,回流30 min,抽濾,濾液蒸干,殘?jiān)屑铀?0 mL,加熱使其溶解,抽濾,濾液用醋酸乙酯振搖提取2次(10 mL/次),合并醋酸乙酯液,蒸干,加甲醇使溶解,作為刺果衛(wèi)矛樣品儲(chǔ)備液。儲(chǔ)備液稀釋后進(jìn)樣。
1.5.1 毛細(xì)管液相色譜分析條件
毛細(xì)管poly(VPBA-co-PETA)硼酸親和整體柱柱長(zhǎng)45 cm(有效長(zhǎng)度25 cm)。流動(dòng)相:A相為乙腈-10 mmol/L磷酸鹽緩沖液(pH 8.5)(20∶80,v/v),B相為乙腈-1%乙酸(pH 2.8)(20∶80,v/v);洗脫程序:先用堿性的A相平衡系統(tǒng),待不保留物質(zhì)出峰(約10 min)后,切換至酸性的B相洗脫25 min;流速50 μL/min。檢測(cè)波長(zhǎng)為214 nm。樣品環(huán)體積約為0.8 μL;分流比約為38∶1,實(shí)際進(jìn)樣量約為20 nL。
1.5.2 高效液相色譜分析條件
色譜柱:TSK gel ODS-100V(250 mm×4.6 mm)。流動(dòng)相:A 相為乙腈-水(10∶90,v/v;含0.1%TFA),B 相為乙腈-水(90∶10,v/v;含 0.1%TFA);線性梯度洗脫程序:0~35 min,100%A~100%B。流速1 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng)為214 nm。
蒲公英提取物中富含酚酸類化合物,具有廣譜抗菌、抗氧化、消炎利膽、促進(jìn)新陳代謝等作用[16]。綠原酸和咖啡酸是其中主要的有效成分[17](其結(jié)構(gòu)見(jiàn)圖2),兩者均是含有順二羥基結(jié)構(gòu)的化合物。
圖2 綠原酸和咖啡酸的分子結(jié)構(gòu)Fig.2 Molecular structures of chlorogenic acid and caffeic acid
2.1.1 綠原酸和咖啡酸標(biāo)準(zhǔn)品的分離
按1.5.2節(jié)的色譜條件對(duì)綠原酸和咖啡酸標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行分離,得到的圖譜見(jiàn)圖3a。從圖3a中可以看出,綠原酸和咖啡酸在高效液相色譜中分離效果良好,并依其極性的大小順序先后出峰,出峰時(shí)間分別為17.0 min左右和19.5 min左右。以此作為綠原酸和咖啡酸保留時(shí)間的參考標(biāo)準(zhǔn)。
2.1.2 蒲公英提取物中綠原酸和咖啡酸的分離
取制備好的蒲公英提取物樣品進(jìn)樣,按1.5.2節(jié)分析條件分離,得到的色譜圖如圖3b所示。從圖3b中可見(jiàn),在17.0 min和19.5 min的位置只出現(xiàn)了極小的色譜峰,說(shuō)明蒲公英正丁醇提取液中綠原酸和咖啡酸的含量很少,直接檢測(cè)困難。
2.1.3 蒲公英提取物中綠原酸和咖啡酸富集后的分離
由于綠原酸和咖啡酸的分子結(jié)構(gòu)中含有順二羥基,所以能夠被poly(VPBA-co-PETA)硼酸親和整體柱特異捕獲。實(shí)驗(yàn)中,先用堿性流動(dòng)相平衡系統(tǒng),取制備好的蒲公英提取物樣品進(jìn)樣富集分離,此時(shí)綠原酸和咖啡酸被保留在整體柱上,其余物質(zhì)被直接洗脫;將流動(dòng)相切換成酸性流動(dòng)相后,保留在整體柱上的綠原酸和咖啡酸被洗脫,收集洗脫液,按1.5.2節(jié)條件進(jìn)行HPLC檢測(cè),得到的色譜圖如圖3c所示。由此可以看到,經(jīng)整體柱富集后,蒲公英提取物中綠原酸和咖啡酸的色譜峰顯著增大,表明poly(VPBA-co-PETA)整體柱能很好地富集提取樣品中的綠原酸和咖啡酸。
圖3 (a)綠原酸和咖啡酸標(biāo)準(zhǔn)品、(b)蒲公英提取物樣品直接進(jìn)樣和(c)經(jīng)親和整體柱富集后進(jìn)樣的高效液相色譜圖Fig.3 HPLC chromatograms of(a)a mixture of chlorogenic acid and caffeic acid standards,(b)an extract sample of Herba Taraxaci and(c)an extract sample of Herba Taraxaci after enrichment by the monolithic column
為了進(jìn)一步考察poly(VPBA-co-PETA)整體柱對(duì)中藥中小分子活性物質(zhì)的富集作用,我們選擇了另一種中草藥刺果衛(wèi)矛。刺果衛(wèi)矛提取物中含有3,4-二羥基苯乙醇和2,3-二羥基苯甲酸芐酯等小分子活性物質(zhì),這兩種化合物的結(jié)構(gòu)式如圖4所示,可見(jiàn)它們均含有順二羥基結(jié)構(gòu),推測(cè)可以被poly(VPBA-co-PETA)親和整體柱特異性捕獲。
圖4 3,4-二羥基苯乙醇和2,3-二羥基苯甲酸芐酯的分子結(jié)構(gòu)圖Fig.4 Molecular structures of 3,4-dihydroxyphenylethanol and benzyl 2,3-dihydroxybenzoate
在1.5.2節(jié)條件下對(duì)3,4-二羥基苯乙醇和2,3-二羥基苯甲酸芐酯精提物的對(duì)照品進(jìn)行HPLC分離,結(jié)果分別如圖5a和圖5b所示。它們?cè)诜聪嘁合嗌V柱上的保留時(shí)間分別約為17 min和31 min。出峰順序與其極性大小順序一致。
圖5 (a)3,4-二羥基苯乙醇精提物對(duì)照樣品、(b)2,3-二羥基苯甲酸芐酯精提物對(duì)照樣品、(c)刺果衛(wèi)矛提取物樣品直接進(jìn)樣和(d)經(jīng)親和整體柱富集后進(jìn)樣的高效液相色譜圖Fig.5 HPLC chromatograms of(a)3,4-dihydroxyphenylethanol reference, (b)benzyl 2,3-dihydroxybenzoate reference,(c)an extract sample of Euonymus acanthocarpus and(d)an extract sample of Euonymus acanthocarpus after enrichment by the monolithic column
在同樣的分析條件下對(duì)刺果衛(wèi)矛提取物直接進(jìn)樣分析。從圖5c中可見(jiàn),刺果衛(wèi)矛提取物中大約有10余種活性物質(zhì),在17 min處3,4-二羥基苯乙醇的出峰位置只有一個(gè)很小的色譜峰,在31 min處2,3-二羥基苯甲酸芐酯的出峰位置幾乎看不到色譜峰,說(shuō)明刺果衛(wèi)矛提取物中3,4-二羥基苯乙醇和2,3-二羥基苯甲酸芐酯的含量很低,直接用HPLC分析檢測(cè)不到。將上述樣品經(jīng)過(guò)poly(VPBA-co-PETA)硼酸親和整體柱后,收集酸性條件下的洗脫液,然后進(jìn)行HPLC分析,得到的色譜圖見(jiàn)圖5d。與圖5c對(duì)比可看出,經(jīng)硼酸親和整體柱富集后,在17 min和31 min均有明顯的色譜峰出現(xiàn),說(shuō)明3,4-二羥基苯乙醇和2,3-二羥基苯甲酸芐酯被很好地富集在硼酸親和柱上,使得其濃度顯著提高,從而得到檢測(cè)。
本研究在自制的poly(VPBA-co-PETA)硼酸親和整體柱上可以特異性地捕獲含有順二羥基的化合物。在前期實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,我們將其用于蒲公英中的綠原酸和咖啡酸、刺果衛(wèi)矛中的3,4-二羥基苯乙醇和2,3-二羥基苯甲酸芐酯等含順二羥基結(jié)構(gòu)的小分子活性物質(zhì)的富集,使其色譜峰響應(yīng)顯著提高,達(dá)到了檢測(cè)要求,為中藥中低含量活性物質(zhì)的分離檢測(cè)提供了新的思路。
[1]Chen X,Tolley H D,Lee M L.J Sep Sci,2011,34:2088
[2]Cao Q,Xu Y,Liu F,et al.Anal Chem,2010,82:7416
[3]Connolly D,Currivan S,Paull B.Proteomics,2012,12:2904
[4]Svec F.J Chromatogr A,2010,1217:902
[5]Svec F.J Chromatogr A,2012,1228:250
[6]Arrua R D,Talebi M,Causon T J,et al.Anal Chim Acta,2012,738:1
[7]Liu X C.Chinese Journal of Chromatography(劉小川.色譜),2006,24(1):73
[8]Hage D S.Clin Chem,1999,45:593
[9]Shoji E,F(xiàn)reund M S.J Am Chem Soc,2002,124(42):12486
[10]Westmark P R,Gardiner S J,Smith B D.J Am Chem Soc,1996,118:11093
[11]Zhang Q B,Tang N,Brock J W C,et al.J Proteome Res,2007,6(6):2323
[12]Ren L B,Liu Y C,Dong M M,et al.J Chromatogr A,2009,1216:8421
[13]Lin Z A,Pang J L,Lin Y,et al.Analyst,2011,136:3281
[14]Xu W G,Xu P.Research& Information of Traditional Chinese Medicine(徐為公,徐鵬.中藥研究與信息),2005,7(10):34
[15]Wang C R,Wang Y,Gao Y,et al.Chinese Journal of Analytical Chemistry(王超然,王彥,高也,等.分析化學(xué)),2012,40(8):1207
[16]Lü J H,Qiu S C,Zhang L T,et al.Lishizhen Medicine and Materia Medica Research(呂俊華,邱世翠,張連同,等.時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥),2002,13(4):215
[17]Huang C J,Lin X D,Li J,et al.Modern Chinese Medicine(黃昌杰,林曉丹,李娟,等.中國(guó)現(xiàn)代中藥),2006,8(5):32