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固相萃取-超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法檢測豬肉中玉米赤霉醇類的殘留量

2013-10-22 11:23:06李麗萍吳國華
色譜 2013年7期
關(guān)鍵詞:赤霉醇類乙腈

李麗萍, 范 賽, 趙 榕, 李 兵, 劉 偉, 吳國華

(北京市疾病預(yù)防控制中心營養(yǎng)與食品衛(wèi)生所,北京 100013)

α-玉米赤霉醇(ZER)屬于雷索酸內(nèi)酯類(RALs)物質(zhì),同類物質(zhì)還包括β-玉米赤霉醇(β-ZAL)、玉米赤霉酮(ZAN)、玉米赤霉烯酮(ZEN)、α-玉米赤霉烯醇(α-ZOL)和 β-玉米赤霉烯醇(β-ZOL),其結(jié)構(gòu)相似[1-3]。RALs 物質(zhì)是非甾體類雌性激素,ZER作為家畜增重的外源激素效果良好,被廣泛用于動植物的促生長。20世紀(jì)70年代歐美國家就已將玉米赤霉醇作為牛羊增重劑,80年代傳入我國。有數(shù)據(jù)表明雷索酸內(nèi)酯類是致畸和致癌物,ZER在動物組織殘留會引起人體性機能紊亂及影響第二性征的正常發(fā)育,其排出體外后還可經(jīng)水和食物造成二次污染和環(huán)境污染[4-6]。ZEN具有免疫毒性、肝毒性,對腫瘤的發(fā)生也有一定影響,其廣泛存在于谷物及其他農(nóng)作物中,極易被用于飼料而進入畜產(chǎn)品體內(nèi)造成殘留,進而對人體健康造成威脅[7,8]。為了確保人類健康,我國、歐盟以及世界糧農(nóng)組織先后明確禁止將激素類物質(zhì)應(yīng)用于家畜生產(chǎn)[8-11]。但由于玉米赤霉醇作為畜禽產(chǎn)品促生長劑的效果明顯,部分違法者仍在畜禽養(yǎng)殖過程中使用玉米赤霉醇,導(dǎo)致玉米赤霉醇可能會殘留在各種食用組織中。因此,研究和開發(fā)動物源性食品中玉米赤霉醇類藥物的分析技術(shù),對于食品安全檢測具有重要意義。

目前,針對玉米赤霉醇類物質(zhì)的檢測方法主要有酶聯(lián)免疫法(ELISA)、薄層色譜法(TLC)[12-14]、高效液相色譜法(HPLC)[15,16]、氣相色譜-質(zhì)譜法(GC-MS)[17,18]、液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法 (LC-MS/MS)[19-23]等。免疫技術(shù)或酶聯(lián)免疫技術(shù)雖然靈敏度高,簡便快速,但假陽性率不可避免,一般用于樣品篩選;氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法通常需要復(fù)雜的衍生步驟使待測物轉(zhuǎn)化為氣相色譜可分析的化合物,液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法則需要對樣品進行較徹底的凈化以改善待測物在質(zhì)譜上的基質(zhì)抑制效應(yīng)。所用樣品前處理技術(shù)多為液-液萃取,操作繁瑣且需要使用大量的有機溶劑反復(fù)萃取。本文通過HLB小柱固相萃取進行富集凈化和超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜技術(shù)(UPLC-MS/MS)進行分離檢測,方法簡便快速、可節(jié)省大量溶劑,對環(huán)境友好,可以滿足對市場上動物源性食品中痕量玉米赤霉醇類物質(zhì)的監(jiān)管需求。

1 實驗部分

1.1 儀器與試劑

Waters ACQUITYTM超高效液相色譜儀、MICROMASSTM-Quattro premier XE質(zhì)譜儀(美國Waters公司)。T25 Basic型均質(zhì)器(德國 IKA公司)。Oasis HLB柱(150 mg,6 mL),ENVI-Carb GCB固相萃取小柱(500 mg,6 mL;美國Supelco公司),ENVI-Carb-NH2GCB固相萃取小柱(500 mg,6 mL;美國Supelco公司),HPLC級甲醇、乙腈(Dikma公司)。

α-玉米赤霉醇、β-玉米赤霉醇、α-玉米赤霉烯醇、β-玉米赤霉烯醇、玉米赤霉酮和玉米赤霉烯酮標(biāo)準(zhǔn)品,同位素內(nèi)標(biāo)α-玉米赤霉烯醇-D7、β-玉米赤霉烯醇-D7均購自加拿大TRC公司。β-葡萄糖醛酸酶/芳香基硫酸酯酶購自美國羅氏公司。

1.2 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制

精確稱取各標(biāo)準(zhǔn)品0.0100 g,分別置于10 mL棕色容量瓶中,用甲醇溶解并定容至10 mL,配成質(zhì)量濃度為1000 mg/L的標(biāo)準(zhǔn)儲備液,于-20℃冰箱保存。需要時各取儲備液0.1 mL置于10 mL棕色容量瓶中,并用甲醇稀釋成10 mg/L的混合中間液,使用前將中間液以甲醇稀釋配制成1.0 mg/L的混合標(biāo)準(zhǔn)液。同位素內(nèi)標(biāo)α-玉米赤霉烯醇-D7和β-玉米赤霉烯醇-D7單獨配制成10.0 mg/L的標(biāo)準(zhǔn)中間溶液,使用前將中間液以甲醇稀釋配制成1.0 mg/L的混合標(biāo)準(zhǔn)液作為標(biāo)準(zhǔn)使用液。兩種溶液均于避光、-20℃下保存。

1.3 樣品前處理

準(zhǔn)確稱取5.0 g均質(zhì)豬肉樣品,加入20 μL的1.0 mg/L內(nèi)標(biāo)溶液和10 mL pH 5.2的乙酸-乙酸鈉緩沖溶液,渦旋混勻、超聲30 min,再加入β-葡萄糖醛酸酶/芳香基硫酸酯酶溶液100 μL,于(37±1)℃振蕩酶解12 h,取出后冷卻至室溫,加入25 mL甲醇超聲提取30 min,0~4℃下以10000 r/min離心10 min,轉(zhuǎn)移上清液至另一潔凈試管中,待凈化。Oasis HLB柱(6 mL,150 mg)依次用6 mL甲醇、6 mL水活化,提取液上柱后,用3 mL超純水淋洗小柱,減壓抽干。以6 mL甲醇洗脫,收集洗脫液,在40℃下氮氣濃縮至干,殘留物用初始流動相復(fù)溶后過0.22 μm的有機濾膜供UPLC-MS/MS測定。

1.4 色譜-質(zhì)譜條件

1.4.1 液相色譜條件

色譜柱:Waters ACQUITY UPLCTMBEH C18柱(100 mm ×2.1 mm,1.7 μm);柱溫:40 ℃;樣品室溫度:4℃;進樣體積:5 μL。流動相A為水,流動相B為乙腈;梯度洗脫程序:0~5 min,65%A線性降到40%A;5~5.10 min,40%A線性降到5%A,并保持到7.50 min;7.50~8.00 min,5%A降到0%A,并保持到8.50 min;8.50~9.00 min,0%A線性升到 65%A,并保持到 10.0 min。流速為 0.3 mL/min。

1.4.2 質(zhì)譜條件

電離方式:電噴霧負離子模式(ESI-);多反應(yīng)監(jiān)測模式(MRM)采集,駐留時間0.10 s;毛細管電壓:2.70 kV;錐孔電壓:45 V;離子源溫度:100℃;脫溶劑溫度:400℃;脫溶劑氣流量:600 L/h;碰撞室壓力:0.33 Pa。其他質(zhì)譜條件見表1。

表1 多反應(yīng)監(jiān)測模式下6種化合物的檢測參數(shù)Table 1 MRM parameters of the six compounds

2 結(jié)果與討論

2.1 儀器條件的優(yōu)化

通過流動注射泵連續(xù)進樣200 μg/L以甲醇-水溶液(50∶50,v/v)為溶劑的單標(biāo)準(zhǔn)溶液,并同時開啟液相色譜,設(shè)定其流動相為甲醇-水溶液(50∶50,v/v),流速為50 μL/min。在此條件下對質(zhì)譜參數(shù)如毛細管電壓、錐孔電壓、脫溶劑氣流速等參數(shù)進行了正、負離子優(yōu)化,優(yōu)化結(jié)果見1.4.2節(jié)。玉米赤霉醇及其類似物均屬于二羥基苯甲酸內(nèi)酯類化合物,其苯環(huán)上都有2個羥基,呈弱酸性。在液相色譜-電噴霧質(zhì)譜檢測時易失去質(zhì)子而產(chǎn)生[M-H]-準(zhǔn)分子離子。經(jīng)過優(yōu)化后,結(jié)果表明6種玉米赤霉醇類物質(zhì)均在負離子模式下產(chǎn)生[M-H]-的最強準(zhǔn)分子離子峰。從理論上推測,偏堿性的流動相更易提高ESI-模式下目標(biāo)化合物的響應(yīng)。因此,本研究考察了分別以0.1%氨水溶液-甲醇、10 mmol/L乙酸銨水溶液-甲醇、純水-甲醇、0.1%甲酸水溶液-甲醇、0.1%氨水溶液-乙腈、10 mmol/L乙酸銨水溶液-乙腈、純水-乙腈、0.1%甲酸水溶液-乙腈作為流動相時對目標(biāo)化合物色譜行為與質(zhì)譜響應(yīng)的影響。但結(jié)果顯示,以純水和乙腈為流動相時,6種目標(biāo)物質(zhì)分離完全,靈敏度最高。因此,本研究最終選擇水和乙腈為流動相。

2.2 樣品前處理條件的選擇

玉米赤霉醇類化合物是一種類雌激素物質(zhì),在動物組織中會以硫酸軛合物或葡萄糖醛酸軛合物等形式存在,因此樣品要先進行水解,使待測物游離或從組織中釋放以進行后續(xù)的提取工作。目前,對于動物源性食品中玉米赤霉醇類物質(zhì)的提取方式國內(nèi)外均有報道,但多集中于使用乙醚、丙酮、正己烷和乙酸乙酯等極性相對較弱的提取液進行提取,經(jīng)NaOH溶液反萃后,再用反相固相萃取柱凈化[24]。方法步驟繁瑣,且耗費大量的溶劑。如農(nóng)業(yè)部1025號公告-19-2008和GB/T 21982-2008,二者在檢測手段上與本文相差不大,但前處理過程則較為復(fù)雜[23,24]。農(nóng)業(yè)部 1025 號公告-19-2008 中酶解后首先采用正己烷反復(fù)萃取,旋蒸至近干后再用乙酸乙酯復(fù)溶才能過SPE小柱凈化;而GB/T 21982-2008中酶解后首先采用乙醚反復(fù)萃取,旋蒸至近干后再用二氯甲烷復(fù)溶,還要經(jīng)NaOH溶液反萃才能過SPE小柱凈化。而對植物性食品中玉米赤霉醇類物質(zhì)的報道則多集中于使用84%乙腈水溶液進行提?。?9]??紤]到玉米赤霉醇類物質(zhì)的物理化學(xué)性質(zhì)類似,因此本實驗嘗試采用了甲醇水溶液作為提取液進行提取,避免了采用正己烷或乙醚提取而產(chǎn)生的脂類雜質(zhì)的干擾,省去了采用NaOH溶液反萃的去脂過程,從而減少了提取步驟,并優(yōu)化了提取效率,避免了反復(fù)轉(zhuǎn)移所帶來的目標(biāo)物損失,凈化效果對比如圖1所示,低水平加標(biāo)的離子流圖如圖2所示。并且由于精簡了提取過程,也減少了大量有機溶劑的使用和工作時間,對環(huán)境友好,更適用于大量樣品的監(jiān)測工作。通過對酶解后的溶液分別加入10、15、20、25、30 mL 的甲醇進行提取,并搭配 ENVICarb固相萃取柱、NH2固相萃取柱、ENVI-Carb固相萃取柱串接NH2固相萃取柱、HLB固相萃取柱進行對比試驗。結(jié)果顯示,HLB固相萃取柱能同時滿足6種玉米赤霉醇類化合物的凈化要求,效果最佳。HLB柱在20 μg/kg加標(biāo)水平下,不采用內(nèi)標(biāo)法計算的絕對回收率均可以達到80%以上,其他兩種小柱或兩種小柱的組合其絕對回收率只有30%~50%,且部分化合物沒有檢出。因此本研究最終選定HLB柱作為凈化手段。

2.3 方法的線性關(guān)系、檢出限與定量限

圖1 采用(a)國標(biāo)方法與(b)本方法對空白樣品的凈化效果對比Fig.1 Comparison of purification effects of the blank sample by(a)the GB method with(b)this method

圖2 6種化合物的加標(biāo)樣品的總離子流圖(0.1 μg/kg)Fig.2 Total ion chromatograms of the six standards fortified in a blank sample at the level of 0.1 μg/kg

將標(biāo)準(zhǔn)使用液用甲醇-水(50∶50,v/v)溶液作溶劑逐級稀釋,配制成質(zhì)量濃度分別為1.0、5.0、10.0、25.0、50.0、100.0 μg/L 的系列混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,其中均含有5 μg/L的內(nèi)標(biāo)。并采用液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀進行分析,記錄各化合物的色譜峰面積(A)和內(nèi)標(biāo)的色譜峰面積(Ai),以A和Ai的比值y(氘代同位素內(nèi)標(biāo)除對應(yīng)各自的化合物外,其他化合物按色譜保留時間順序以相近的氘代同位素化合物為內(nèi)標(biāo))對相應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)溶液中化合物的質(zhì)量濃度x進行線性回歸計算,得出線性方程、線性范圍和相關(guān)系數(shù)(r),結(jié)果見表2。由結(jié)果可見,在1.0~100.0 μg/L范圍內(nèi),各物質(zhì)均取得良好線性相關(guān),r大于0.999。質(zhì)量濃度為10.0 μg/L的標(biāo)準(zhǔn)溶液的MRM的提取離子色譜圖見圖3。樣品中目標(biāo)化合物的色譜峰與相應(yīng)標(biāo)準(zhǔn)品的色譜峰的保留時間必須一致,每種化合物的兩對離子必須同時出現(xiàn),且豐度比符合歐盟關(guān)于食品中污染物的確認依據(jù)2002/657/EC[25]。待測化合物的定性離子色譜峰的信噪比(S/N)應(yīng)不小于3,定量離子色譜峰的S/N應(yīng)不小于10。

表2 各化合物的線性方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限和定量限Table 2 Linear equations,correlation coefficients(r),LODs and LOQs of the six compounds

圖3 6種目標(biāo)化合物標(biāo)準(zhǔn)溶液(含2種內(nèi)標(biāo))的MRM色譜圖Fig.3 MRM chromatograms of a standard mixture of the six compounds and two internal standards

2.4 方法的回收率和精密度

通過向陰性豬肉樣品基質(zhì)中添加分析物進行測定,以確定方法的準(zhǔn)確度和精密度。首先精確稱取5.0 g豬肉樣品,加入適量的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,使得玉米赤霉醇類物質(zhì)的含量分別達到1.0、5.0、10.0 μg/kg,按優(yōu)化的條件進行處理和測定,采用內(nèi)標(biāo)法進行計算,結(jié)果見表3。本方法靈敏度高,定性準(zhǔn)確,可以用于豬肉中玉米赤霉醇類藥物殘留的確證檢測。

表3 3個加標(biāo)水平下的回收率試驗結(jié)果(n=6)Table 3 Results of the recovery test at three spiked levels(n=6)

2.5 樣品測定

通過采用所建立的方法,對所采集的30份豬肉樣品進行了檢測,但在采集的樣品中均未檢出上述6種玉米赤霉醇類物質(zhì)。同時進行的作為質(zhì)量控制數(shù)據(jù)的加標(biāo)回收試驗結(jié)果也滿足測定結(jié)果的要求,回收率在70%以上。計劃再次采集大量樣品進行檢測以確證方法的適用性。

3 結(jié)論

本文采用酶解方式對豬肉樣品進行徹底水解,采用HLB固相萃取柱凈化,以超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜對6種玉米赤霉醇類物質(zhì)進行檢測。本方法準(zhǔn)確可靠、靈敏度度高,適用于動物源性食品中玉米赤霉醇類物質(zhì)的多殘留確證和定量檢測。

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[24]GB/T 21982-2008

[25]Commission Decision 2002/657/EC of12 August2002.Implementing Council Directive 96/23/EC Concerning the Performance of Analytical Methods and the Interpretation of Results(2002).Off J Eur Comm,L221:8

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