金 秋,奚立民,張昕欣,柯中爐
(臺州職業(yè)技術(shù)學(xué)院 生化制藥研發(fā)中心,浙江 臺州 318000)
無患子 (Sapindus mukorossi Gaertn),又名肥皂樹,在我國長江流域和華南各省均有栽培[1]。其假種皮中含有大量皂苷成分,主要包括以常春藤皂苷元為基本骨架的三萜皂苷及一些倍半萜皂苷[2]。無患子皂苷具有較強(qiáng)去污能力[3],易降解,對皮膚刺激性小,是洗發(fā)香波、化妝品及各種生物洗滌劑的優(yōu)良原料[4];同時還具有抗病毒、降血壓、抗真菌、殺蟲等多種藥理作用[5-9]。
皂苷類化合物分子具有親水和疏水結(jié)構(gòu),可用水或甲醇、乙醇等有機(jī)溶劑提取。目前無患子皂苷的研究和工業(yè)生產(chǎn)均以水提法為主,但水的溶解范圍很大,造成水提物雜質(zhì)含量過高,皂苷的純度降低。魏鳳玉等[10-11]研究了水提-大孔樹脂吸附法提取,并用超濾法分離提純無患子皂苷;饒厚曾等[1,12]介紹了微波萃取法提取無患子皂苷工藝。上述研究雖提出了無患子皂苷提取的一些新方法,但也存在溶劑消耗量大、能耗高和產(chǎn)品純度低等缺點(diǎn),不適合工業(yè)化生產(chǎn)的要求。本研究目的在于比較各種不同提取方法對無患子皂苷提取的效率,從易操作、低能耗和低成本等角度出發(fā),篩選最佳提取工藝,以期為其工業(yè)化生產(chǎn)提供理論依據(jù)。
供試材料為無患子假種皮,由天臺縣滿園春農(nóng)林開發(fā)有限公司提供。將無患子假種皮置于電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱內(nèi)于80℃烘干,并用萬能粉碎機(jī)粉碎成80 目 (0.177 mm)粉末備用。
供試試劑甲醇、乙醇、丙酮均為分析純,乙腈為色譜純;常春藤皂苷元為標(biāo)準(zhǔn)品,購于中國藥品生物制品檢定所。
供試儀器為SY-1000E 多用途恒溫超聲提取機(jī)(北京弘祥隆生物技術(shù)開發(fā)有限公司),MDS-6 微波萃取儀 (上海新儀微波化學(xué)科技有限公司),R-210 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 (瑞士步琪有限公司),DHG 型電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱 (上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司),F(xiàn)W-100 型高速萬能粉碎機(jī) (北京時利和科技發(fā)展有限公司),AS-220 電子分析天平 (波蘭瑞德威公司),DK-S26 電熱恒溫水浴鍋 (上海森信實(shí)驗(yàn)儀器有限公司),安捷倫1220 高效液相色譜儀(美國安捷倫公司)。
以0.5 mg·mL-1的常春藤皂苷元乙腈溶液為對照,采用高效液相色譜法測定無患子皂苷含量[13]。色譜條件:色譜柱Angilent C18(4.6 mm×250 mm,5 μm),柱溫30℃,流動相CH3CN∶H2O為85∶15,流速1 mL·min-1,檢測時間30 min,檢測波長210 nm。
無患子皂苷的提取效率用無患子皂苷得率來衡量。計(jì)算公式為:無患子皂苷得率/%=純皂苷質(zhì)量/無患子假種皮干重×100。
1.3.1 單因素試驗(yàn)設(shè)計(jì)
不同提取方式。稱取10 g 無患子假種皮干粉末,用甲醇作為溶劑,料液比為1 ∶5,分別用回流、索氏、超聲和微波4種方式來提取無患子粉末中的無患子皂苷,提取時間為0.5 h,溫度為50℃,提取次數(shù)為1 次,用液相色譜檢測各種提取液中無患子皂苷的含量,以考察提取方式對無患子皂苷得率的影響。設(shè)3個重復(fù)。
不同提取因素。用10 g 無患子粉末,以回流提取方式,在不同提取溶劑 (水、甲醇、乙醇和丙酮)、提取次數(shù)(1,2,3 和4 次)、料液比(1∶1,1∶3,1∶5 和1∶8)、提取時間 (1,2,3 和4 h)和提取溫度 (40℃,50℃,60℃和70℃)條件下重復(fù)提取。試驗(yàn)除了設(shè)定某單因素水平變化外,其他提取條件分別為:提取溶劑為乙醇,提取次數(shù)為3 次,料液比為1∶5,提取時間為1 h,提取溫度為50℃。合并提取液作為樣品提取物,用液相色譜檢測各種提取液中無患子皂苷的含量,以考察以上5個因素對無患子皂苷得率的影響。試驗(yàn)設(shè)3個重復(fù)。
1.3.2 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)
在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,用10 g 無患子粉末,以回流方式提取,對提取溶劑 (A)、提取次數(shù)(B)、料液比 (C) (m/V)、提取時間 (D)和提取溫度 (E)各因素進(jìn)行L16(45)正交試驗(yàn)。1-4 水平因素A 分別為水、甲醇、乙醇和丙酮;因素B 分別為1,2,3 和4 次;因素C 分別為1 ∶1,1∶3,1∶5 和1 ∶8;因素D 分別為1,2,3 和4 h;因素E 分別為40℃,50℃,60℃和70℃。
1.3.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析
采用方差分析 (ANOVA)和Tukey’s test 來檢驗(yàn)各個處理間無患子皂苷得率的差異顯著性。
2.1.1 提取方式對無患子皂苷得率的影響
回流、索氏、超聲和微波4種提取方式的無患子皂苷得率均存在顯著差異 (P <0.001) (圖1)。其中,超聲提取的皂苷得率最高 (14.25%),其次是微波提取 (11.02%),而回流提取和索氏提取的得率分別為9.72% 和8.28%。由此可知,超聲提取的效率最高,其原因可能是超聲波將強(qiáng)烈的震動能和巨大的能量傳遞給無患子粉末和溶劑,從而破壞了無患子細(xì)胞,加強(qiáng)胞內(nèi)皂苷的釋放、擴(kuò)散和溶解,提高了浸出效率。超聲提取在較短時間(0.5 h)和較低溫度 (50℃)下就能使無患子皂苷基本提取完全,是一種潛在的工業(yè)化生產(chǎn)且經(jīng)濟(jì)高效的提取方式。其他3種方式由于限定了提取溫度、時間和次數(shù),皂苷得率低于超聲提取。如果改變上述提取條件,回流提取的皂苷得率應(yīng)該有所增加,也不失為一種簡單易行的工業(yè)化提取方式。而微波提取和索氏提取由于需要高昂的設(shè)備和較高的能耗,所以工業(yè)化應(yīng)用潛力不大。
圖1 不同提取方式對皂苷得率的影響
2.1.2 提取溶劑對無患子皂苷得率的影響
以水、丙酮、甲醇和乙醇為溶劑提取無患子皂苷 (圖2),除了水和丙酮之間的皂苷得率差異不顯著以外 (P >0.05),4種溶劑的無患子皂苷得率存在著顯著差異。
圖2 不同提取溶劑對皂苷得率的影響
其他條件一定時,4種溶劑中,以甲醇提取的皂苷得率最高 (13.92%),其次為乙醇 (9.68%);以水、丙酮為提取溶劑時,皂苷得率最低。雖然甲醇的皂苷得率最高,但是甲醇提取物雜質(zhì)含量較高,易吸收空氣中的水而結(jié)塊,不利于保存;且甲醇具有毒性,不利于工業(yè)化生產(chǎn)。乙醇提取皂苷得率低于甲醇,但是綜合考慮提取物純度、產(chǎn)品安全性及溶劑回收容易程度等因素,推薦以乙醇作為工業(yè)化生產(chǎn)無患子皂苷的提取溶劑。
2.1.3 提取次數(shù)對無患子皂苷得率的影響
由圖3 可知,除提取1 次的較其他次數(shù)間的皂苷得率差異顯著以外,其余各次提取得率間的差異不顯著。同等條件下,皂苷得率隨提取次數(shù)的增加而增大。提取次數(shù)為2~4 次時,其增幅變緩。從節(jié)能降耗的角度考慮,可選擇工業(yè)化生產(chǎn)的提取次數(shù)為3 次。
圖3 不同因素對無患子皂苷得率的影響
2.1.4 料液比對無患子皂苷得率的影響
由圖3 知,除了1∶5 和1∶8 料液比的皂苷得率差異不顯著外,其他料液比的皂苷得率間均存在顯著差異。同等條件下,提取溶劑量的增加有利于皂苷的溶出,皂苷得率也隨之增加。提取溶劑在樣品量的5~8 倍時,皂苷得率變化較小。從減少成本的角度考慮,工業(yè)化生產(chǎn)無患子皂苷的提取溶劑量以樣品量的3~5倍為宜。
2.1.5 提取時間對無患子皂苷得率的影響
由圖3 知,提取時間為1,2,3 和4 h 的皂苷得率間的差異均不顯著。通常,隨著提取時間的增加,原料中的組分逐漸擴(kuò)散到溶劑中,一定時間后,溶于溶劑中的組分達(dá)到一定濃度后,其溶解速度變緩,最后趨于平衡[2]。由此表明,1 h 的提取時間已能基本完全提取無患子中的皂苷成分,再增加提取時間將增加能耗。因此,在工業(yè)化生產(chǎn)無患子皂苷時,提取時間可設(shè)定為1 h。
2.1.6 提取溫度對無患子皂苷得率的影響
由圖3 可知,不同提取溫度下,除了40℃較其他提取溫度的皂苷得率間存在顯著差異外,其余提取溫度的皂苷得率差異不顯著。同等條件下,40~60℃時,無患子皂苷得率隨溫度增加而增大,升至70℃后,皂苷得率不再上升。無患子皂苷在常溫下易溶于乙醇,溫度升高有利于皂苷的溶出,但溫度過高,不但會增加能耗,還會造成部分皂苷水解,生成副產(chǎn)物,影響提取物純度及后續(xù)的利用[2]。因此,為了降低能耗,工業(yè)化生產(chǎn)無患子皂苷時,提取的溫度可設(shè)定在50℃。
由表1 可知,各因素對無患子皂苷提取率的影響大小依次為A >B >E >C >D,即提取溶劑對皂苷提取率的影響最大,其次為提取次數(shù),第三為提取溫度,第四為料液比,提取時間的影響最小。最佳提取工藝條件為A2B4C2D1E2,即提取溶劑為甲醇,提取次數(shù)為4 次,料液比為1∶3,提取時間為1 h,提取溫度為50℃。經(jīng)驗(yàn)證,該條件下無患子皂苷得率為14.66%,說明優(yōu)化出的最佳工藝是穩(wěn)定可靠的。正交試驗(yàn)結(jié)果與單因素試驗(yàn)結(jié)果也基本吻合。由方差分析可以看出,提取溶劑的均方比F大于其臨界值F0.10(3,3)=2.490,說明對皂苷提取率有影響;而提取次數(shù)、料液比、提取時間和提取溫度的F 均小于其臨界值,對皂苷提取率的影響不顯著。這是因?yàn)槿軇┑姆N類直接影響其穿透無患子細(xì)胞的能力,進(jìn)而影響皂苷的提取率。由于提取次數(shù)、料液比、提取時間和提取溫度均在適宜范圍內(nèi)考察,故對結(jié)果影響較小。
表1 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果
超聲提取無患子皂苷的提取效率明顯高于微波提取、回流提取和索氏提取,有條件的生產(chǎn)企業(yè)可購置超聲提取儀器用于無患子皂苷的提取?;亓魈崛‰m然提取效率不如超聲提取,但其設(shè)備投入低,操作方便,經(jīng)濟(jì)可靠,也是一種適用于工業(yè)化生產(chǎn)無患子皂苷的提取方式。
通過單因素試驗(yàn)和正交實(shí)驗(yàn),確定回流提取無患子皂苷的最佳提取工藝條件為:以甲醇為提取溶劑,提取次數(shù)為4 次,料液比為1∶3,提取時間為1 h,提取溫度為50℃。在該條件下,無患子皂苷的得率為14.66%。
[1]饒厚曾,郭隆華.無患子皂苷提取工藝研究[J].江西科學(xué),2002,20 (1):55-58.
[2]黃素梅,王敬文,杜孟浩,等.無患子總皂苷的提取工藝研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,38 (1):354-356.
[3]中國植物志編委會.中國植物志四十七卷 (第一分冊)[M].北京:科學(xué)出版社,1998.
[4]張敏杰,劉佩茹,趙俊滋,等.無患子的開發(fā)利用[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā),1993,5 (4):76-78.
[5]Brahm M,史青.無患子果皮中皂苷的抗真菌活性[J].國外醫(yī)學(xué)中醫(yī)中藥分冊,2002,24 (5):300-301.
[6]Tamura Y,Khan A A,Tiwaris K,et al.Antimicrobial activity of Sapindus mukorossi and Rheum emodi extracts against H.pylori:in vitro and in vivo studies[J].World J Gastroenterol,2006,14:7136-7142.
[7]Brahm M,Khaja M N,Aara A,et al.Hepatoprotective activity of Sapindus mukorossi and Rheum enodi extracts in vitro and in vivo studies[J].World J Gastroenterol,2008,14 (16):2566-2571.
[8]Huang H C,Tsaiw J,Llaw C C,et al.Anti-platelet aggregation triterpene saponins from the galls of Sapindus mukorossi [J].Chem Pharm Bull,2007,55 (9):1412-1415.
[9]王維勝,龍子江,張玲,等.無患子皂苷對腎性高血壓大鼠血壓及血管活性物質(zhì)的影響[J].中國中藥雜志,2007,32 (16):1703-1705.
[10]魏玉鳳,余錦城,解輝.天然無患子皂苷的提取分離[J].安徽化工,2007,33 (3):15-17.
[11]魏玉鳳,解輝,余錦城,等.超濾法分離提純無患子皂苷[J].膜科學(xué)與技術(shù),2008 (2):85-88.
[12]饒厚曾,桑成濤.微波萃取法提取無患子皂苷工藝[J].遼寧石油化工大學(xué)學(xué)報(bào),2006,26 (4):70-72.
[13]何宇新,馬育彪,李玲,等.反相高效液相色譜法測定不同產(chǎn)地?zé)o患子藥材中常春藤皂苷元的含量[J].時珍國醫(yī)國藥,2010,21 (9):2189-2190.