許賢恩,王仁鳳,王亞軍
(1.浙江工業(yè)大學(xué) 生物工程研究所,浙江 杭州 310014;2.生物轉(zhuǎn)化與生物凈化教育部工程研究中心,浙江 杭州 310014)
生物催化正迅速成長(zhǎng)為生物技術(shù)應(yīng)用的主導(dǎo)方向[1],是現(xiàn)代綠色化學(xué)加工業(yè)的重要組成部分,對(duì)化學(xué)工業(yè)技術(shù)進(jìn)步起著重要的作用[2],越來(lái)越多的化學(xué)品采用生物催化技術(shù)來(lái)合成。但是生物酶法催化反應(yīng)體系中往往含有大量的酶蛋白、催化細(xì)胞、細(xì)胞內(nèi)容物、細(xì)胞碎片等而導(dǎo)致后續(xù)產(chǎn)物回收困難,溶劑萃取時(shí)則會(huì)產(chǎn)生嚴(yán)重的乳化現(xiàn)象,降低后續(xù)提煉產(chǎn)物的提取收率。因此,需要通過(guò)一些措施去除轉(zhuǎn)化液中的菌體及蛋白質(zhì)。工業(yè)生產(chǎn)中往往采用活性炭吸附過(guò)濾的方法,該方法方便易行,但是大量蛋白質(zhì)或菌體細(xì)胞的存在會(huì)使濾餅極其粘滯,堵塞濾孔而中斷過(guò)濾,因而下游的生物轉(zhuǎn)化液中的產(chǎn)物分離回收成為生物酶法催化生產(chǎn)工藝開發(fā)的一個(gè)棘手問(wèn)題。
混凝現(xiàn)象是指微粒凝結(jié)現(xiàn)象,包括凝聚和絮凝現(xiàn)象。在發(fā)酵領(lǐng)域中,混凝技術(shù)主要應(yīng)用于生化產(chǎn)品的制備過(guò)程中的菌體回收[3],菌體、蛋白去除。通過(guò)菌體混凝技術(shù)提高產(chǎn)品的產(chǎn)量,其工作原理是添加混凝劑使顆粒細(xì)小的膠體、菌體細(xì)胞、細(xì)胞碎片、殘留培養(yǎng)基等固形物凝聚成較大的顆粒,易于沉降,從而更有利于發(fā)酵液的固液分離,極大的降低了固液分離的成本[4]。但是鮮有文獻(xiàn)報(bào)道高細(xì)胞濃度的生物轉(zhuǎn)化液中的菌體及蛋白質(zhì)的去除方法。本文考察了混凝和破乳技術(shù)應(yīng)用于生物催化法合成1-氰基環(huán)己基乙酸、阿托伐他汀關(guān)鍵手性前體6-氰基-(3R,5R)-二羥基己酸叔丁酯、1-氰基環(huán)己基乙酸生物轉(zhuǎn)化液中菌體、蛋白質(zhì)去除的可行性。
試劑:6-氰基-(3R,5R)-二羥基己酸叔丁酯由浙江新東港藥業(yè)股份有限公司饋贈(zèng),6-氰基-(5R)-羥基-3-羰基己酸叔丁酯標(biāo)準(zhǔn)品,實(shí)驗(yàn)室自制;1-氰基環(huán)己基乙腈、1-氰基環(huán)己基乙酸由浙江手心醫(yī)藥化學(xué)品有限公司饋贈(zèng)。其余各種試劑均為市售分析純。
UV-2000型紫外可見分光光度計(jì),尤尼柯儀器有限公司,中國(guó)上海。Leica DM4000 B生物顯微鏡,德國(guó)。
低粘度生物轉(zhuǎn)化液A:1-氰基環(huán)己基乙酸的生物轉(zhuǎn)化液,含有底物約為150 g/L的1-氰基環(huán)己基乙酸腈(固體,不易溶于水),菌體含量16 g DCW/L,攪拌反應(yīng)7 h轉(zhuǎn)化率95%以上,無(wú)其他添加物。
高粘度生物轉(zhuǎn)化液B:6-氰基-(3R,5R)-二羥基己酸叔丁酯生物轉(zhuǎn)化液,制備過(guò)程參考文獻(xiàn)[5],含有約200 g/L 6-氰基-(3R,5R)-二羥基己酸叔丁酯、300 g/L葡萄糖酸,菌體含量15 g DCW/L,反應(yīng)體系為0.1 mol/L磷酸鉀緩沖溶液。
選擇 AlCl3·6H2O、Al2(SO4)3·18H2O、FeCl3、Fe2(SO4)3·XH2O、MnCl2·4H2O、ZnSO4·7H2O、聚合硫酸鋁(PAS)、聚合硫酸鐵(PFS)等8種混凝劑作為考察對(duì)象,預(yù)先用去離子水配制300 g/L工作貯液,使用時(shí)按體積量取使用。
參照文獻(xiàn)[6]方法。配制混凝劑溶液,將100 mL生物轉(zhuǎn)化液置于250 mL圓底燒瓶中,控制溫度20~30℃,pH值為初始值約7.0,同時(shí)300 rpm轉(zhuǎn)速攪拌。加入設(shè)定量混凝劑的同時(shí)開始計(jì)時(shí),保持快速攪拌1 min。降低攪拌速度至50 rpm促使絮體形成并保持絮體懸浮,低速攪拌15 min后停止攪拌,取樣,顯微鏡下觀察絮體形態(tài)。靜置30 min后減壓過(guò)濾記錄過(guò)濾速度,除去絮體后取樣檢測(cè),計(jì)算蛋白去除率或者細(xì)胞去除率。
將100 mL生物轉(zhuǎn)化液置于250 mL圓底燒瓶中緩慢機(jī)械攪拌(50 rpm),加入一定量的表面活性劑充分溶解,低速攪拌30 min后取樣,用顯微鏡觀察乳化現(xiàn)象。
對(duì)于以細(xì)胞破碎液為催化劑的轉(zhuǎn)化液,各樣品進(jìn)行絮凝操作,過(guò)濾除絮體后取樣,根據(jù)Bradford法測(cè)定OD595值,計(jì)算蛋白質(zhì)含量[7]。根據(jù)公式(1)計(jì)算蛋白質(zhì)去除率:
其中,ΔCo為添加混凝劑前的蛋白質(zhì)濃度,g/L;ΔCI為添加混凝劑處理后的殘留蛋白質(zhì)濃度,g/L。
對(duì)于以靜息細(xì)胞為催化劑的轉(zhuǎn)化液,各樣品進(jìn)行絮凝操作后過(guò)濾除絮體后取樣分光光度計(jì)測(cè)定OD600值。根據(jù)公式(2)計(jì)算菌體細(xì)胞去除率:
其中,ΔAo為添加混凝劑前的轉(zhuǎn)化液OD600值;ΔAi為添加混凝劑處理后的轉(zhuǎn)化液OD600值。
圖1 不同生物轉(zhuǎn)化液體系的顯微形態(tài)(10×20):a,生物轉(zhuǎn)化液A;b,生物轉(zhuǎn)化液B。
實(shí)驗(yàn)選擇實(shí)驗(yàn)室制備的中低粘稠度的轉(zhuǎn)化液A與高粘稠度的轉(zhuǎn)化液B。如圖1所示,生物轉(zhuǎn)化液A體系較均勻,圖中顏色較深的為聚集在一起的菌體,而生物轉(zhuǎn)化液B存在大量不同尺寸的液滴,即發(fā)生了乳化現(xiàn)象,整個(gè)體系粘滯。實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),向生物轉(zhuǎn)化液A中添加混凝劑鐵鹽、鋁鹽等作為混凝劑能有效聚結(jié)、沉淀轉(zhuǎn)化液中的菌體、蛋白質(zhì)等物質(zhì);而對(duì)于已經(jīng)發(fā)生了乳化現(xiàn)象的生物轉(zhuǎn)化液B,乳化現(xiàn)象會(huì)影響混凝劑與蛋白質(zhì)、菌體的相互作用從而影響混凝效果,因此需要解決轉(zhuǎn)化液的乳化現(xiàn)象。
鐵鹽、鋁鹽及其高聚物是研究的比較透徹的混凝劑并且廉價(jià)易得[8],本試驗(yàn)我們考察了AlCl3·6H2O,Al2(SO4)3·18H2O,F(xiàn)eCl3,F(xiàn)e2(SO4)3·XH2O,MnCl2·4H2O,ZnSO4·7H2O,聚合硫酸鋁(PAS)和聚合硫酸鐵(PFS)等8種混凝劑對(duì)生物轉(zhuǎn)化液A中菌體蛋白混凝效果。在3.0~16.5 g/L濃度范圍內(nèi),不同混凝劑的混凝效果示于圖 2。除MnCl2·4H2O,ZnSO4·7H2O外,其他6種混凝劑在一定濃度范圍內(nèi)的蛋白去除率可以達(dá)到接近100%(圖2)。這6種混凝劑的蛋白去除率隨著投藥量的增大而增大,但過(guò)高的混凝劑用量反而會(huì)降低蛋白質(zhì)的去除效率,尤其是AlCl3·6H2O,F(xiàn)eCl3這兩種混凝劑 (圖 2)。
對(duì)不同混凝劑混凝后的絮體進(jìn)行形貌觀察示于圖 3。MnCl2·4H2O、ZnSO4·7H2O 處理得到的絮體細(xì)密,空隙極小,顯示該混凝過(guò)程中主要是電荷中和起的凝聚作用。而其它6種混凝劑則絮體疏松、空隙較大。這表明在絮體形成的過(guò)程中除了電荷中和、雙電層壓縮的作用外,水解產(chǎn)物的網(wǎng)捕卷掃對(duì)絮凝效果也起了重要的作用,導(dǎo)致混凝劑的使用量相對(duì)較少,混凝效果也相對(duì)較好[9]。
不同混凝劑處理對(duì)生物轉(zhuǎn)化液減壓抽濾時(shí)間的影響示于圖4。Al2(SO4)3·18H2O處理后的絮體最粘稠, 抽濾速度最慢;FeCl3,ZnSO4·7H2O 次之。圖5考察了不同菌體細(xì)胞濃度的生物轉(zhuǎn)化液混凝所需要的 Al2(SO4)3·18H2O 用量,在 4~24 g DCW/L菌體濃度范圍內(nèi),隨著濃度增大Al2(SO4)3·18H2O用量也相應(yīng)增大。
圖2 不同混凝劑不同濃度下的混凝效果
圖3 不同混凝劑混凝處理后的生物轉(zhuǎn)化液形貌(40×10)。其中,0,空白對(duì)照;1,AlCl3·6H2O;2,Al2(SO4)3·18H2O;3,F(xiàn)eCl3;4,F(xiàn)e2(SO4)3·XH2O;5,MnCl2·4H2O;6,ZnSO4·7H2O;7,PAS;8,PFS。
圖4 不同混凝劑對(duì)混凝處理后的生物轉(zhuǎn)化液的過(guò)濾時(shí)間的影響
圖5 不同菌體用量與硫酸鋁混凝劑用量的關(guān)系
考察了十二烷基磺酸鈉、十二烷基硫酸鈉、溴代十六烷基吡啶、十二烷基三甲基氯化銨和十六烷基三甲基氯化銨等5種表面活性劑的破乳效果。結(jié)果表明,十二烷基硫酸鈉具有較好的破乳效果,十二烷基磺酸鈉次之 (圖6)。圖中可以看到十二烷基硫酸鈉處理過(guò)的生物轉(zhuǎn)化液幾乎不存在乳化小液滴,十二烷基磺酸鈉處理過(guò)的樣品仍然含有部分小液滴,其他3種表面活性劑則不同程度的加劇了乳化現(xiàn)象。
向20 g/L表面活性劑處理過(guò)的生物轉(zhuǎn)化液B中添加乙酸乙酯萃取,十二烷基硫酸鈉處理的樣品不出現(xiàn)乳化現(xiàn)象,十二烷基磺酸鈉處理的樣品仍然有部分乳化,其它3種表面活性劑對(duì)乳化現(xiàn)象沒(méi)有任何改善。
經(jīng)不同濃度的十二烷基硫酸鈉處理后,生物轉(zhuǎn)化液B中的乳化小液滴數(shù)量隨著十二烷基硫酸鈉的增加而減少,超過(guò)15 g/L十二烷基硫酸鈉處理能基本消除了乳化小液滴,直接乙酸乙酯萃取也不會(huì)出現(xiàn)乳化現(xiàn)象(圖7)。因此,十二烷基硫酸鈉可以去除生物轉(zhuǎn)化液B的乳化現(xiàn)象,并且較高濃度處理后的生物轉(zhuǎn)化液直接進(jìn)行溶劑萃取亦不發(fā)生乳化現(xiàn)象。
圖6 不同表面活性劑處理后的生物轉(zhuǎn)化液形貌 (10×20)。其中,0,空白對(duì)照;1,十二烷基磺酸鈉;2,十二烷基硫酸鈉;3,溴代十六烷基吡啶;4,十二烷基三甲基氯化銨;5,十六烷基三甲基氯化銨。
圖7 不同濃度十二烷基硫酸鈉處理后的生物轉(zhuǎn)化液形貌(10×20)。其中,a,0 g/L;b,4.0 g/L;c,15.0 g/L;d,20.0 g/L。
乳化后的生物轉(zhuǎn)化液可以先表面活性劑處理使去乳化后,再混凝除去菌體及蛋白質(zhì)等物質(zhì)。表1考察了不同濃度十二烷基硫酸鈉處理后所需的混凝劑添加量,十二烷基硫酸鈉的最佳添加量為4.0 g/L,F(xiàn)eCl3用量9.0 g/L,其它混凝劑的添加量均可以為18.0 g/L。上述預(yù)處理工藝條件均能有效去除蛋白質(zhì),去除率接近100%。
表1 發(fā)生乳化現(xiàn)象的生物轉(zhuǎn)化液經(jīng)不同濃度十二烷基硫酸鈉處理后所需的混凝劑用量
圖8 生物轉(zhuǎn)化液形貌變化。其中,a,未處理生物轉(zhuǎn)化液;b,4.0 g/L十二烷基硫酸鈉、18.0 g/L硫酸鐵處理過(guò)的生物轉(zhuǎn)化液;c,處理后的生物轉(zhuǎn)化液直接萃取效果。
圖8所示以硫酸鐵混凝劑為例,乳化后生物轉(zhuǎn)化液先采用4.0 g/L十二烷基硫酸鈉處理,然后18.0 g/L硫酸鐵混凝處理,可以明顯看到原本均勻分布的、穩(wěn)定的菌體蛋白質(zhì)、菌體碎片等物質(zhì)混凝成肉眼可見的易于去除的大顆粒 (圖8b),處理后轉(zhuǎn)化液未過(guò)濾直接加入乙酸乙酯萃取也不會(huì)發(fā)生乳化現(xiàn)象 (圖8c),且容易兩相分離,蛋白質(zhì)、菌體絮體懸浮在中間層。
環(huán)境保護(hù)迫在眉睫,生物催化合成技術(shù)被越來(lái)越多地被工業(yè)采用。我們通過(guò)試驗(yàn)提出了簡(jiǎn)單易行的生物轉(zhuǎn)化液后處理方法:未發(fā)生乳化的低粘度生物轉(zhuǎn)化液直接加入鋁鹽、鐵鹽或者其高聚物混凝處理;對(duì)于已經(jīng)發(fā)生乳化現(xiàn)象的高粘度生物轉(zhuǎn)化液,先添加少量表面活性劑十二烷基硫酸鈉處理后再混凝處理。處理后的生物轉(zhuǎn)化液幾乎檢測(cè)不到蛋白質(zhì)殘留,減少了后續(xù)分離操作中產(chǎn)物的損失,提高了生物過(guò)程的經(jīng)濟(jì)性。
[1]歐陽(yáng)平凱,韋萍,姚忠.生物化工研究現(xiàn)狀與發(fā)展趨勢(shì)[J].化工進(jìn)展,2003,22(1):1-7.
[2]譚天偉.生物化工現(xiàn)狀與展望[J].化工中間體,2003(11):6-10.
[3]Finkler L.,Luna-Finkler C.L.,Pinto J.C.,et al.Concentration of Cupriavidus necator cells by flocculation and sedimentation[J].World Journal of Microbiology and Biotechnology,2007,23(12):1789-1795.
[4]石亞靜,趙永強(qiáng),王聰,等.絮凝劑在制藥發(fā)酵液預(yù)處理過(guò)程中的應(yīng)用研究[J].醫(yī)藥工程設(shè)計(jì),2009,30(5):13-15.
[5]曹政,王亞軍,肖黎,等.羰基還原酶不對(duì)稱還原(R)-6-氰基-5-羥基-3-羰基己酸叔丁酯的研究[J].生物加工過(guò)程,2013,11(1):17-22.
[6]Whittington P.N.Fermentation broth clarification techniques[J].Applied Biochemistry and Biotechnology,1990,23(2):91-121.
[7]Bradford M.M.A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of pro tein-dye binding[J].Analytical Biochemistry,1976,72(1-2):248-254.
[8]袁宗宣,鄭懷禮,舒型武.絮凝科學(xué)與技術(shù)的進(jìn)展[J].重慶大學(xué)學(xué)報(bào),2001,24(2):143-147.
[9]葉健,吳純德,梁佳莉,等.硫酸鋁作為混凝劑時(shí)絮體破碎與再絮凝的研究[J].中國(guó)給水排水,2011,27(7):71-74.