鄒金華,張忠貴,魏愛琪
(1.天津師范大學(xué)a.生命科學(xué)學(xué)院,b.天津市動植物抗性重點實驗室,天津300387;2.天津市市容環(huán)境宣傳教育培訓(xùn)中心,天津300201)
近年來,隨著工業(yè)“三廢”和大量固液廢棄物的處理不當,農(nóng)業(yè)殺蟲劑和肥料用量的增加[1],環(huán)境中重金屬的含量大量增加[2].在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)上,鎘(Cd)是環(huán)境中的主要重金屬污染源,是生物毒性最強的重金屬之一.Cd不是植物生長所必需的元素,具有很強的生理毒性,和其他重金屬相比,Cd在土壤中的化學(xué)活性較強,更容易被植物根系吸收.這不僅會使農(nóng)產(chǎn)品產(chǎn)量下降,還很容易被植物吸收而進入食物鏈,導(dǎo)致動植物的異常生理反應(yīng)和遺傳變異[3-4],甚至是猝死和細胞程序性死亡.Cd對植物的毒害作用,主要表現(xiàn)為根和葉長度的減小、葉片變黃、萎蔫[4]及生理生化指標的弱化等[5].植物在長期進化過程中,形成了自身的保護系統(tǒng)來對抗和適應(yīng)鎘脅迫[6-9].
毛蔥(Allium cepa var.agrogarum)為百合科(Liliaceae)蔥屬(Allium)洋蔥的變種,適應(yīng)性強,是我國東北地區(qū)的名優(yōu)特產(chǎn).毛蔥易培養(yǎng),生根快,休眠期短,不受季節(jié)限制,是非常經(jīng)典的抗逆研究材料.本文以毛蔥為材料,利用營養(yǎng)液培養(yǎng)法和亞細胞組分差速分離技術(shù),研究在不同濃度的Cd2+脅迫下,毛蔥不同器官Cd吸收積累的特點、Cd吸收積累對幾種礦質(zhì)元素代謝的影響以及根、葉中Cd的亞細胞分布特點,探討Cd脅迫對毛蔥的毒害機理,為Cd污染的毒理學(xué)研究提供資料.
選取長勢相近的毛蔥100個,平均分成4組,固定于帶孔的泡沫板上,分別置于4個4L的培養(yǎng)盆中.室溫20℃下于塑料盤中進行自來水培養(yǎng),每24h更換1次水.培養(yǎng)1周后改用Hoagland全營養(yǎng)液進行培養(yǎng),營養(yǎng)液配方為:Ca(NO3)2,5.78×10-3mg/L;KNO3,8.03×10-3mg/L;NH4H2PO4,1.34×10-3mg/L;MgSO4,4.18×10-3mg/L;MnSO4,8.91×10-6mg/L;H3BO3,4.84×10-5mg/L;ZnSO4,0.95×10-6mg/L;CuSO4,0.20×10-6mg/L;(NH4)2MoO4,0.015×10-6mg/L;Fe-EDTA,7.26×10-5mg/L.4組毛蔥中,3組分別在Hoagland營養(yǎng)液中加入不同濃度的Cd2+,使其濃度分別為1、10、100μmol/L,脅迫12d;設(shè)1個對照組,僅用Hoagland營養(yǎng)液培養(yǎng).
毛蔥幼苗經(jīng)Cd2+脅迫3、6、9、12d后,每組隨機選取10株幼苗,進行根長和葉長的測定.幼苗經(jīng)脅迫處理12d后,用去離子水沖洗,去掉表面的Cd2+和其他礦質(zhì)離子,并將根、莖、葉分開,分別進行編號,放到干凈的培養(yǎng)皿內(nèi).45℃下干燥3 d,80℃下干燥1d,105℃過夜,至樣品恒重.用電動研磨機將樣品研磨成粉末,裝入小試劑瓶,密封.
稱取0.25g干燥樣品放入50mL燒杯中,加入濃硝酸和高氯酸,進行濕法消化[10].消化完全后向燒杯中加入10mL體積分數(shù)為10%的硝酸,轉(zhuǎn)移至25mL容量瓶中,去離子水定容.樣品溶液用電感耦合等離子體發(fā)射光譜儀(ICP-AES)進行Cd及Fe、Mn、Cu、Zn含量的測定.
亞細胞組分中Cd的含量是指1g新鮮根或葉片細胞組織中Cd的質(zhì)量.毛蔥在Cd2+營養(yǎng)液中生長12d后,取葉片和根系,去離子水沖洗干凈,然后用濾紙將葉和根表面的水分吸干.準確稱取待測樣品4g,加入20mL的組分提取液[蔗糖,0.25mol/L;Tris-HCl緩沖液(pH約7.5),50mmol/L;二硫赤蘚糖醇,1mmol/L],在冰上充分研磨勻漿.勻漿后轉(zhuǎn)移至離心管中,冷凍離心機4℃下離心:2000r/min離心10min,所得沉淀為細胞壁組分;上清液在4000r/min下離心15min,所得沉淀為細胞核和葉綠體組分;第2次離心后的上清液在10000r/min下離心20min,所得沉淀為線粒體組分,第3次離心后的上清液即為包含核糖體的可溶性組分.
將差速分級離心法分離出的不同細胞組分置于80℃的烘箱中烘干至恒重,然后轉(zhuǎn)移至50mL的小燒杯中,分別加入濃HNO310mL和HClO41mL,蓋上培養(yǎng)皿,放置在電熱板上進行濕法消化[10].消化完全后轉(zhuǎn)移到10mL的容量瓶中,去離子水定容,振蕩搖勻,得待測含Cd的溶液.
所有待測樣品均用電感耦合等離子體發(fā)射光譜儀(ICP-AES)進行Cd含量的測定.
用Excel 2003和Sigmaplot 9.0軟件對實驗數(shù)據(jù)進行分析.
各處理組和對照組毛蔥幼苗根和葉片的生長情況如圖1所示.
圖1 不同濃度Cd2+對毛蔥葉長和根長的影響Fig.1 Effects of different concentrations of Cd2+on root length and leaf length of Allium cepa var.agrogarum
整個實驗過程中,對照組毛蔥的根系發(fā)達,長勢良好,為乳白色,有一定光澤,而且有側(cè)根不斷生長.1μmol/L Cd2+處理組的毛蔥長勢略好于對照組,差異不明顯.10μmol/L Cd2+處理組的長勢與對照組基本一致,植株上部生長良好,但根呈現(xiàn)淡黃色.100μmol/L Cd2+處理組的毛蔥根系稀少,呈黃色,根脆且易斷,后期根有腐爛現(xiàn)象,無側(cè)根生長.由圖1(a)可知,對照組、1μmol/L Cd2+處理組和 10μmol/L Cd2+處理組的根系生長幅度較大,長勢良好,尤其在6~9d根長顯著增加;100μmol/L Cd2+處理組則對根系有較強抑制作用,根系生長緩慢,后期甚至發(fā)生腐爛.
實驗過程中對照組葉片呈油綠色,生長旺盛.1μmol/L Cd2+處理組比對照組長勢好.10μmol/L Cd2+處理組與對照組的長勢基本一致,但葉片顏色較淺.100μmol/L Cd2+處理組葉片較短,呈黃色,后期葉片有萎蔫干枯現(xiàn)象.由圖1(b)可知,對照組、1μmol/L Cd2+處理組、10μmol/L Cd2+處理組的葉片生長幅度較大,尤其在6~9d顯著增加,1μmol/L Cd2+處理對毛蔥葉片生長有輕微促進作用,100μmol/L Cd2+處理組的葉片生長則受到較強的抑制作用,6d后葉片長度顯著低于其他組葉片的長度.
不同濃度的Cd2+脅迫12d后,毛蔥根、莖、葉中Cd、Fe、Mn、Cu、Zn的含量如表1所示.
表1 不同濃度Cd2+脅迫后毛蔥不同部位幾種金屬元素的含量Tab.1 Several minerals contents in different parts of Allium cepa var.agrogarum after treatments with different concentrations of Cd2+
由表1可知,對照組毛蔥幼苗的根、莖、葉中Cd含量極低.3個處理組中根、莖、葉中Cd的含量均遠遠高于對照組,且同一部位Cd含量隨營養(yǎng)液中Cd2+濃度的提高而大幅增加,尤其是Cd2+濃度達到100μmol/L時,3個部位中Cd的含量均呈幾何級數(shù)增加.比較毛蔥幼苗不同部位,除了對照組幼苗的莖中Cd含量高于根部外,3個處理組中,根中的Cd含量均遠高于莖、葉中的,相差10倍以上;其次是葉片;莖中Cd含量最低.這些表明,毛蔥根系從溶液中吸收的Cd主要積累在根部,向地上部轉(zhuǎn)移的Cd量極低.
Cd2+脅迫總體上增加了毛蔥幼苗各部位對Fe的吸收.根部Fe的含量隨著Cd2+處理濃度的增大一直呈增加趨勢;莖中3個處理組Fe的含量都高于對照組,但Cd2+處理濃度為100μmol/L時,莖中Fe的含量低于其他2個處理濃度;葉片中Fe的含量隨著處理濃度的增加先降低,之后大幅增加,處理濃度為10μmol/L和100μmol/L時葉片中Fe的含量相近.部位之間進行比較,4組幼苗均是根中Fe的含量最大,莖中最低.Cd2+脅迫也影響了毛蔥幼苗各部位對Mn的積累.總的來看,葉片中Mn含量最高,其次為莖,根中最少.與對照相比,低濃度Cd2+脅迫增加了毛蔥各部位對Mn的積累,而高濃度則減少了各部位Mn的含量.不同濃度的Cd2+脅迫降低了毛蔥根、莖、葉中Cu和Zn的含量,且營養(yǎng)液中Cd2+濃度越高,毛蔥這2種金屬的含量降低得越多.
不同濃度的Cd2+脅迫下,毛蔥幼苗根和葉片各亞細胞組分中Cd的含量如圖2所示.
圖2 不同濃度Cd2+處理對毛蔥根、葉Cd亞細胞分布的影響Fig.2 Subcellular distribution of Cd in roots and leaves of Allium cepa var.agrogarum under the stress of different concentrations of Cd2+
由圖2可以看出,在根和葉片的各亞細胞組分中,Cd含量均以細胞壁組分最高,可溶性細胞質(zhì)組分次之,線粒體組分、細胞核與葉綠體組分的Cd含量相近,均低于細胞壁和細胞質(zhì)組分中Cd的含量.隨著Cd2+處理濃度的增加,各亞細胞組分中Cd含量均呈現(xiàn)上升趨勢,尤其是Cd2+濃度由10μmol/L增加到100μmol/L時,細胞壁組分Cd含量的增加幅度最大,細胞質(zhì)組分次之.
圖3顯示了不同的Cd2+處理濃度下,Cd在毛蔥幼苗根和葉片各亞細胞組分中的分配比例.
圖3 毛蔥根、葉各亞細胞組分Cd含量的分配比例Fig.3 Cd percentages in different subcellular fractions in roots and leaves of Allium cepa var.agrogarum
由圖3(a)可以看出,隨著營養(yǎng)液中Cd2+處理濃度的增加,Cd在根部的細胞壁和細胞質(zhì)中的分配比例逐漸增加,在線粒體、細胞核中的分配比例下降.由圖3(b)可以看出,隨著營養(yǎng)液中Cd2+處理濃度的增加,Cd在葉片細胞壁中的分配比例先是大幅度增加,如當Cd2+濃度為10μmol/L時,Cd在細胞壁中的比例達到65%,隨著Cd2+濃度進一步增加到100μmol/L時,Cd在細胞壁中的分配比例略有下降.Cd在細胞質(zhì)中分配比例先是隨著培養(yǎng)液中Cd2+濃度的增大而降低,在Cd2+濃度為10μmol/L時,分配比例僅為17%,但隨著培養(yǎng)液中Cd2+濃度提高到100μmol/L,Cd在葉片細胞質(zhì)中分配的比例又大幅度增加,達到29%.Cd在葉片線粒體、細胞核和葉綠體中的分配比例同在根中一樣,也是隨著培養(yǎng)液中Cd2+濃度的增大,分配比例逐漸下降.總體上,Cd在葉片各亞細胞組分中的分配比例與在根中相似,都是在細胞壁中的比例最大,其次是細胞質(zhì),在線粒體、細胞核及葉綠體中的Cd分配比例最小.
由以上結(jié)果可知,Cd在毛蔥根和葉片亞細胞組分中的分配情況相似,根和葉片細胞吸收的Cd均主要分布在細胞壁組分和細胞質(zhì)可溶性組分中,線粒體、葉綠體和細胞核組分中相對較少.與對照組相比,隨著Cd2+處理濃度的增加,細胞壁組分和細胞質(zhì)組分中Cd的分配比例呈明顯上升趨勢,而線粒體、葉綠體和細胞核組分中Cd的分配比例呈下降趨勢.
植物具有多種抗逆機制應(yīng)對Cd的毒害,途徑主要有2種:金屬排斥和金屬富集作用.當重金屬進入植株后,起初富集在植物根部,隨后逐漸被運送到葉片部分[10-11].對大蒜[10]、玉米[12]、向日葵[13]、楊樹[14-15]中Cd分布的研究表明,Cd被植物根部吸收后,大部分保留在根系.本文對毛蔥的研究結(jié)果也表明,當增加營養(yǎng)液中Cd2+濃度時,毛蔥根系中Cd增加的幅度遠遠大于莖和葉,說明根部是Cd在毛蔥植株內(nèi)積累的主要部位,Cd向地上部分運輸量很少.一方面是由于根系浸泡在營養(yǎng)液中,為Cd的直接接觸部位,另一方面,重金屬更多地積累在根部,降低了對地上部分的毒害作用,這也是植物對重金屬脅迫的有效應(yīng)對機制.
重金屬對植物的毒害作用之一是干擾植物對養(yǎng)分的吸收,從而破壞植物體內(nèi)養(yǎng)分平衡.多數(shù)學(xué)者認為,Cd2+作為一種重金屬離子,或與植物必需營養(yǎng)元素競爭根部的吸收位點,進而影響植物對礦質(zhì)元素的吸收;或通過影響細胞質(zhì)膜透性來影響礦質(zhì)元素的吸收,改變細胞內(nèi)礦質(zhì)元素的濃度和組成[16-19].本研究結(jié)果表明,毛蔥Cd的吸收和積累改變了各器官中Fe、Mn、Cu、Zn等金屬元素的含量,根中的變化最明顯,可能是因為根部直接接觸Cd2+,根部細胞質(zhì)膜的選擇透過性受到嚴重影響所致.
本研究中根和葉片各亞細胞組分中Cd含量的測定結(jié)果表明,根和葉片細胞吸收的Cd均主要分布在細胞壁組分和細胞質(zhì)可溶性組分中,線粒體、細胞核及葉綠體組分中相對較少.植物細胞壁結(jié)構(gòu)除了有機械保護作用外,還是重金屬離子從細胞外進入到細胞內(nèi)的第一道屏障,在植株對重金屬離子的絡(luò)合、螯合中起關(guān)鍵作用,從而可以防止更多的重金屬離子通過細胞壁進入原生質(zhì)體中[20-21].結(jié)合到細胞壁上的重金屬由于已被螯合,因此對植物的生理生化活動沒有毒性,這樣便從源頭上控制了超出植物耐受量的重金屬的進入,使其毒害作用降到最小.當重金屬離子在細胞壁上的含量達到所能承受的最大極限時,細胞質(zhì)可溶性部分,尤其是細胞質(zhì)中的金屬硫蛋白、植物螯合肽等一些富含巰基的小分子,能夠有效螯合進入細胞內(nèi)的Cd,形成電子密度顆粒,然后以囊泡的方式對其進行包裹,小囊泡逐漸增多,將電子密度顆粒轉(zhuǎn)移到液泡中,從而把金屬離子進行液泡區(qū)室化而儲存在液泡中.重金屬經(jīng)區(qū)隔化或與細胞內(nèi)緩沖體系作用后,原生質(zhì)中重金屬的含量會大幅減少.本研究結(jié)果也表明,新陳代謝旺盛的細胞核、葉綠體和線粒體組分結(jié)合的Cd量較少,從而減少了Cd對細胞功能的影響.因此,細胞壁固持和液泡區(qū)室化可能在植物對重金屬的解毒、耐性和超富集方面起著非常重要的作用[20-23].
本研究還發(fā)現(xiàn),隨著Cd2+處理濃度的增加,根和葉片細胞壁組分和細胞質(zhì)組分中Cd的分配比例呈明顯上升趨勢,而線粒體、細胞核及葉綠體組分中Cd分配比例呈下降趨勢.這表明,環(huán)境中Cd的含量越高,毛蔥根和葉片中積累的Cd越多,其細胞壁組分和細胞質(zhì)組分對Cd的固持和液泡區(qū)室化作用越強,降低了Cd對線粒體、細胞核、葉綠體等新陳代謝活躍部位的影響.低Cd2+濃度時,雖然細胞核和線粒體組分中Cd分配比例高,但由于Cd2+總濃度低,因此對細胞的代謝活動影響也較小,本實驗室前期的研究結(jié)果[3-5]證明了這一點.
綜上可知,毛蔥吸收的Cd2+主要積累在根部,向地上部分轉(zhuǎn)移很少,從而降低了Cd對地上部分的毒害作用,這是植物抵御Cd毒害的機理之一.從細胞水平來看,Cd主要分布在根、葉的細胞壁組分和細胞質(zhì)可溶性組分中,而結(jié)合在細胞核、線粒體、葉綠體等新陳代謝活動旺盛的細胞器上的Cd相對較少,這樣可以最大程度地減輕Cd對植物生理活動的影響.這些結(jié)果進一步證實細胞壁沉淀螯合和液泡區(qū)室化是植物抵抗重金屬毒害的一種重要機制,對于提高植物的抗逆性尤其是抗重金屬能力至關(guān)重要.
[1] 劉大林,胡楷崎,劉偉國,等.高粱屬植物對土壤鎘吸收及亞細胞的分配[J].生態(tài)學(xué)雜志,2011,30(6):1217-1221.
[2] 邵云,姜麗娜,李向力,等.五種重金屬在小麥植株不同器官中的分布特征[J].生態(tài)環(huán)境,2005,14(2):204-207.
[3] 章愛秀,劉曉穎,彭永康,等.鎘脅迫下蘿卜根系蛋白質(zhì)組的差異表達[J].天津師范大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2013,33(1):67-73.
[4] ZOU J H,YUE J Y,ZHANG Z G,et al.Effects of cadmium stress on root tip cells and some physiological indexes in Allium cepa var.agrogarum L[J].Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica,2012,54(1):129-141.
[5] 宇克莉,鄒婧,鄒金華.鎘脅迫對玉米幼苗抗氧化酶系統(tǒng)及礦質(zhì)元素吸收的影響[J].農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報,2010,29(6):1050-1056.
[6] 張軍,束文圣.植物對重金屬鎘的耐受機制[J].植物生理與分子生物學(xué)學(xué)報,2006,32(1):1-8.
[7] 王芳,丁杉,張春華.不同鎘耐性水稻非蛋白巰基及鎘的亞細胞和分子分布[J].農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報,2010,29(4):625-629.
[8] QIN R,JIANG W S,LIU D H.Aluminum can induce alterations in the cellular localization and expression of three major nucleolar proteins in root tip cells of Allium cepa var.agrogarum L[J].Chemosphere,2013,90(2):827-834.
[9] QIN R,JIANG W S,LIU D H.Cadmium can induce alterations in the cellular localization and expression of three major nucleolar proteins[J].Plant Soil,2013(368):365-373.
[10]LIU D H,ZOU J,MENG Q M,et al.Uptake and accumulation and oxidative stress in garlic(Allium sativum L.)under lead phytotoxicity[J].Ecotoxicology,2009(18):134-143.
[11]BAKER A J M.Metal tolerance[J].New Phytologist,1987,106(1):93-111.
[12]ZOU J H,YU K L,ZHANG Z G,et al.Antioxidant response system and chlorophyll fluorescence in chromium (VI)-treated Zea mays L.seedlings[J].Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica,2009,51(1):23-33.
[13]ZOUJ,XU P,LU X,et al.Accumulation of cadmium in three sunflower(Helianthus annuus L.)cultivars[J].Pakistan Journal of Botany,2008,40(2):759-765.
[14]JIAO Y Q,GE W,QIN R,et al.Influence of cadmium stress on growth,ultrastructure and antioxidative enzymes in Populus 2025[J].Fresenius Environmental Bulletin,2012,21(6):1375-1384.
[15]JIAO Y Q,GE W,SUN B L,et al.Cadmium-mediated oxidative stress and ultrastructural changes in root cells of poplar cultivars[J].South African Journal of Botany,2012(83):98-108.
[16]郭智,黃蘇珍,原海燕.Cd脅迫對馬藺和鳶尾幼苗生長、Cd積累及微量元素吸收的影響[J].生態(tài)環(huán)境,2008,17(2):651-656.
[17]郭智,原海燕,奧巖松.鎘脅迫對龍葵幼苗光合特性和營養(yǎng)元素吸收的影響[J].生態(tài)環(huán)境學(xué)報,2009,18(3):824-829.
[18]李景梅,葛建镕,馮耀勇,等.不同鎘水平對菠菜生長及營養(yǎng)元素含量的影響[J].長春理工大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2007,30(4):72-75.
[19]王芳,楊勇,張燕,等.不同蔬菜對鎘的吸收累積及亞細胞分布[J].農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報,2009,28(1):44-48.
[20]蔡保松,張國平.大、小麥對鎘的吸收運輸及在籽粒中的積累[J].麥類作物學(xué)報,2002,22(3):82-86.
[21]LIU D H,KOTTKE I.Subcellular localization of cadmium in the root cellsofAlliumcepabyelectronenergylossspectroscopyandcytochemistry[J].Journal of Biosciences,2004,29(3):329-335.
[22]LIU D H,KOTTKE I,ADAM D.Localization of cadmium in the root cells of Allium cepa by energy dispersive X-ray analysis[J].Biologia Plantarum,2007,51(2):363-366.
[23]王宏鑌,王煥校,文傳浩,等.Cd處理下不同小麥品種幾種解毒機制探討[J].環(huán)境科學(xué)學(xué)報,2002,22(4):523-528.