孫 娜,牛利剛,孔令恒,朱娟霞,徐 燕,杜劍青
(1.西安醫(yī)學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所生理學(xué)教研室,陜西 西安 710021;2.西安交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院生理學(xué)與病理生理學(xué)系,陜西 西安 710061)
腦干對(duì)脊髓背角傷害性信息的傳入具有下行抑制性調(diào)控作用,電刺激中縫大核(nucleus raphe magnus,NRM)或者于NRM內(nèi)注射谷氨酸或5-羥色胺(5-h(huán)ydroxytryptamine,5-HT)等受體激動(dòng)劑,可以對(duì)由傷害性軀體或者內(nèi)臟刺激引起的脊髓傷害感受性反射或者脊髓背角神經(jīng)元進(jìn)行抑制性調(diào)節(jié),而NRM的這種下行抑制性調(diào)節(jié)作用在解剖學(xué)上被認(rèn)為是由脊髓背外側(cè)束(dorsolateral funiculus,DLF)下行介導(dǎo)的[1-2]。另外有研究[3]顯示:5-HT能神經(jīng)元主要集中在腦干的NRM,其下行纖維可達(dá)脊髓膠質(zhì)區(qū)/側(cè)角和前腳,尤其是從NRM至脊髓后側(cè)角的5-HT神經(jīng)通路,因此脊髓內(nèi)5-HT遞質(zhì)的釋放被認(rèn)為是腦干下行抑制系統(tǒng)參與鎮(zhèn)痛作用的主要因素。然而,這些研究都是以軀體痛或者直腸和膀胱腹部?jī)?nèi)臟痛為研究靶點(diǎn),而關(guān)于心臟痛的腦干下行性調(diào)節(jié)卻少有研究。為了進(jìn)一步探討NRM對(duì)心臟傷害性感受的下行性調(diào)控作用以及參與其中的脊髓通路和5-HT受體系統(tǒng)的作用,本實(shí)驗(yàn)采用Jou等[4]人建立的大鼠心臟-軀體運(yùn)動(dòng)反射(cardiosomatic motor reflex,CMR)模型,以心包內(nèi)注射致痛劑辣椒素(capsaicin,CAP)誘發(fā)背斜方肌(spinotrapezius,SPT)肌電(electromyogram,EMG)為指標(biāo),分析EMG的變化,探討NRM對(duì)心臟傷害性感受的調(diào)節(jié)作用及其調(diào)控通路,為心絞痛的臨床神經(jīng)治療研究提供有效的參考。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物、主要試劑和儀器 實(shí)驗(yàn)選用成年、雄性、健康的Sprgue Dawley(SD)大鼠,體質(zhì)量250~350g,由西安交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,動(dòng)物合格證號(hào):0008366。大鼠在標(biāo)準(zhǔn)清潔級(jí)環(huán)境中飼養(yǎng),室溫20℃~25℃,12h晝夜循環(huán)光照,自由攝食飲水。在保證實(shí)驗(yàn)統(tǒng)計(jì)的基礎(chǔ)上盡量減少實(shí)驗(yàn)動(dòng)物使用的數(shù)目。戊巴比妥鈉(美國Sigma公司)溶于生理鹽水,配制成2×10-2g·mL-1溶液用于動(dòng)物初始麻醉,1×10-2g·mL-1溶液用于動(dòng)物麻醉維持;CAP(美國Sigma公司)溶于吐溫80和無水乙醇混合溶液(按1∶1的配比)中,配制成1×10-3g·mL-1的母液,待實(shí)驗(yàn)當(dāng)天用生理鹽水稀釋到濃度為1mg·L-1;麥角新堿(美國Sigma公司,5-HT受體拮抗劑)溶于二甲基亞砜溶液中,待麥角新堿完全溶解后,再將溶有麥角新堿的二甲基亞砜溶液與生理鹽水按照3∶7的體積比混合,配制成濃度分別為3×10-3g·mL-1和5×10-3g·mL-1溶液。PowerLab信號(hào)采集與分析系統(tǒng)(澳大利亞AD Instruments公司),蠕動(dòng)泵(BT100-2J,保定蘭格恒流泵有限責(zé)任公司),小動(dòng)物呼吸機(jī)(DW3000-B,淮北正華生物儀器設(shè)備有限公司),溫度控制儀(原西安醫(yī)科大學(xué)教學(xué)儀器廠),動(dòng)物腦立體定位儀(SN-2N,日本Narishige公司),雙線記憶示波器(VC-10)、雙通道放大器(AVM-11)、刺激器(SEN-3301)和隔離器(SS-202J)(日本Nihon Kohden公司)。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法 所有大鼠均以2×10-2g·mL-1戊巴比妥鈉(45~55mg·kg-1)腹腔麻醉,行常規(guī)氣管插管和頸外靜脈、頸總動(dòng)脈插管術(shù)后,制備CMR大鼠模型:于大鼠左側(cè)上胸部第1到第3肋軟骨處行開胸術(shù),暴露胸腺和心臟,用玻璃探針在心包膜上開一小孔,將一內(nèi)徑0.051cm、外徑0.094cm,長(zhǎng)度14~16cm、遠(yuǎn)端有數(shù)個(gè)小洞的硅膠管順胸腺的中線由之前在心包上所開的孔插入心包,導(dǎo)管順左心室表面插入約2cm并縫合在胸腺和各層胸壁組織之間予以固定。心包內(nèi)可反復(fù)注入和抽出液體。每一次從導(dǎo)管內(nèi)抽出的液體均作為廢棄液被處理,以免污染下一次實(shí)驗(yàn)。實(shí)驗(yàn)開始時(shí),于T4~T6水平暴露大鼠左側(cè)背斜方?。╯pinotrapezius,SPT),插入同芯電極記錄大鼠EMG反應(yīng),EMG信號(hào)經(jīng)AVM-11雙通道放大器(Nihon Kohden)放大后,由PowerLab軟件采集和分析,濾波為1000~3000Hz。實(shí)驗(yàn)中維持大鼠于淺麻醉狀態(tài)(1×10-2g·mL-1戊巴比妥鈉,10~15mg·kg-1·h-1),體溫保持(37.0±0.5)℃。
1.3 實(shí)驗(yàn)分組及處理方法 大鼠隨機(jī)分為NRM電刺激組(n=8)、NRM電刺激聯(lián)合DLF橫斷組(n=8)和NRM電刺激聯(lián)合5-HT受體拮抗劑鞘內(nèi)微注射組(n=18)。①NRM電刺激組:為實(shí)現(xiàn)電刺激大鼠NRM區(qū)的目的,根據(jù)Paxions &Watson圖譜,將一根外徑0.45mm的鋼制導(dǎo)管植入大鼠腦干NRM區(qū)上方2mm處(前囟后9.4~11.8mm,腦表面下7.0~7.4mm,中線旁開0~0.5mm)。同芯刺激電極經(jīng)此導(dǎo)管進(jìn)入NRM區(qū),使其尖端位置長(zhǎng)于導(dǎo)管尖端2mm。每只大鼠在行NRM電刺激前,先行單純CAP(0.2mL,1mg·L-1)心包內(nèi)注射,其誘發(fā)的EMG活動(dòng)作為基礎(chǔ)對(duì)照;間隔50min,給予大鼠NRM電刺激(75μA)及心包內(nèi)CAP注射,觀察NRM電刺激對(duì)心包內(nèi)注射CAP所誘發(fā)EMG反應(yīng)的影響;50min后,再次心包內(nèi)注射CAP,觀察EMG恢復(fù)情況,作為后對(duì)照。為保證實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)的準(zhǔn)確,每次CAP刺激后,用溫生理鹽水沖洗心包腔5~6次,每次0.2mL,去除心包內(nèi)殘留的CAP,每次心包CAP刺激時(shí)間間隔50min,以避免藥物耐受性現(xiàn)象的出現(xiàn)。②NRM電刺激聯(lián)合DLF橫斷組:為實(shí)現(xiàn)觀察脊髓下行調(diào)控路徑的目的,對(duì)大鼠實(shí)施C1~C3節(jié)段的開錐板術(shù)并將硬脊膜完全剝離,暴露脊髓組織,實(shí)驗(yàn)需要時(shí)用精細(xì)眼科剪解剖學(xué)橫斷DLF。實(shí)驗(yàn)過程:CAP心包內(nèi)注射,記錄EMG活動(dòng)作為基礎(chǔ)對(duì)照;50min后行NRM區(qū)電刺激(75μA)及心包內(nèi)CAP注射,記錄EMG以觀察NRM的下行性調(diào)控作用;繼而用精細(xì)眼科剪實(shí)現(xiàn)DLF解剖學(xué)阻斷,50min后再次行NRM區(qū)電刺激(75μA)及心包內(nèi)CAP注射,記錄EMG活動(dòng)以判斷DLF橫斷對(duì)NRM下行性調(diào)控作用的影響。DLF被橫斷后,血壓下降,但50min內(nèi)血壓便得以恢復(fù)至基線水平。③NRM電刺激聯(lián)合5-HT受體拮抗劑鞘內(nèi)微注射組:為觀察5-HT受體拮抗劑麥角新堿在NRM下行性抑制性調(diào)控中的作用,對(duì)大鼠實(shí)施脊髓鞘內(nèi)置管術(shù),即將一根規(guī)格為PE10的導(dǎo)管通過枕骨大孔植入至脊髓T3~T5節(jié)段,插入深度為3.5~4.0cm,為后期脊髓內(nèi)藥物注射做準(zhǔn)備。實(shí)驗(yàn)過程:先行CAP心臟刺激記錄EMG活動(dòng)作為基礎(chǔ)對(duì)照;繼而NRM電刺激(75μA)及心包內(nèi)注射CAP,記錄EMG以觀察NRM的下行性調(diào)控作用;間隔50min,鞘內(nèi)注射溶媒(10μL)或麥角新堿(30或50μg,10μL),15min后,行NRM區(qū)電刺激(75μA)及心包內(nèi)CAP注射,記錄EMG活動(dòng)以觀察麥角新堿鞘內(nèi)注射對(duì)NRM電刺激的影響;50min后,行NRM區(qū)電刺激(75μA)并心包內(nèi)注射CAP,記錄EMG以判斷藥物作用的持續(xù)時(shí)間。實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,將實(shí)驗(yàn)中所記錄的EMG用PowerLab軟件進(jìn)行頻率直方圖處理。當(dāng)放電頻率高于3imp·s-1時(shí),作為放電的開始;當(dāng)放電頻率低于3imp·s-1時(shí),則作為放電的終止,從而得到每次CAP心包內(nèi)注射所誘發(fā)的肌電反應(yīng)總個(gè)數(shù)(total number of motor unit discharges,TMUD)。每只大鼠第1次心包內(nèi)注射CAP所誘發(fā)的肌電反應(yīng)的TMUD被標(biāo)化為100%,作為基礎(chǔ)對(duì)照(control),其后續(xù)肌電反應(yīng)均以第1次心包內(nèi)注射CAP所誘發(fā)的肌電反應(yīng)的TMUD為分母進(jìn)行標(biāo)化,以消除大鼠個(gè)體間的差異。電刺激后肌肉放電單位數(shù)高于基礎(chǔ)對(duì)照110%或者低于對(duì)照90%,視為有意義,可計(jì)入統(tǒng)計(jì)范疇[5]。
1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS 10.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。各組大鼠CAP誘發(fā)的背斜方肌EMG的變化率以表示,組內(nèi)各處理因素之間的比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用SNK-q檢驗(yàn)。
2.1 NRM電刺激下大鼠CMR的變化 當(dāng)給予NRM 75μA的高強(qiáng)度電刺激時(shí),大鼠EMG反應(yīng)為基礎(chǔ)對(duì)照的(48.15±6.10)%,明顯低于基礎(chǔ)對(duì)照(P<0.05);間隔50min后,后對(duì)照恢復(fù)良好,為基礎(chǔ)對(duì)照的(96.16±1.63)%,與基礎(chǔ)對(duì)照比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。NRM對(duì)CAP誘發(fā)的EMG反應(yīng)抑制性調(diào)節(jié)效應(yīng)的原始肌電實(shí)例圖見圖1A,NRM電刺激位點(diǎn)組織再建圖見圖1B。
2.2 NRM電刺激作用下大鼠CMR下行抑制性調(diào)節(jié)脊髓通路的變化 于C1-C2脊髓節(jié)段行雙側(cè)DLF橫斷術(shù),解剖學(xué)阻斷脊髓DLF下行通路。DLF阻斷前,75μA電刺激NRM的抑制效應(yīng)為基礎(chǔ)對(duì)照的(52.08±6.60)%(P<0.05);DLF阻斷后,NRM電刺激的抑制效應(yīng)消失,為基礎(chǔ)對(duì)照的(91.82±2.42)%(P>0.05);DLF阻斷前NRM電刺激所產(chǎn)生的肌電效應(yīng)與DLF阻斷后比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。DLF橫斷面積實(shí)例圖見圖2。
圖1 電刺激NRM對(duì)CAP誘發(fā)EMG的抑制性調(diào)節(jié)效應(yīng)原始肌電實(shí)例圖(A)及NRM電刺激位點(diǎn)組織再建圖(B)Fig.1 Raw traces of NRM stimulation-induced inhibitory modulation of EMG responses to CAP from one rat(A)and locations of electrical stimulation sites in NRM(B)
圖2 脊髓C2節(jié)段DLF橫斷面積實(shí)例圖Fig.2 DLF transection area at C2level of spinal cord
2.3 麥角新堿對(duì)NRM電刺激下行抑制性調(diào)節(jié)的翻轉(zhuǎn)效應(yīng) NRM電刺激聯(lián)合鞘內(nèi)微量注射5-HT受體拮抗劑麥角新堿(30和50μg)后所產(chǎn)生的EMG反應(yīng)與NRM電刺激比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),但仍未恢復(fù)至基礎(chǔ)對(duì)照水平(P<0.05);NRM電刺激聯(lián)合鞘內(nèi)注射麥角新堿溶媒所產(chǎn)生的EMG反應(yīng)與NRM電刺激比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示:電刺激NRM可以對(duì)CMR產(chǎn)生抑制調(diào)節(jié)作用;DLF橫斷實(shí)驗(yàn)表明NRM的下行抑制性調(diào)節(jié)是經(jīng)脊髓通路DLF實(shí)現(xiàn)的;鞘內(nèi)注射5-HT受體拮抗劑麥角新堿部分翻轉(zhuǎn)了NRM的下行性抑制效應(yīng),說明5-HT參與了NRM對(duì)心臟傷害性感受的下行抑制性調(diào)節(jié)。
表1 麥角新堿鞘內(nèi)注射對(duì)NRM下行抑制性調(diào)控作用的影響Tab.1 Influence of methysergide intrathecal administration in descending inhibitory modulation of NRM(n=6,,η/%)
表1 麥角新堿鞘內(nèi)注射對(duì)NRM下行抑制性調(diào)控作用的影響Tab.1 Influence of methysergide intrathecal administration in descending inhibitory modulation of NRM(n=6,,η/%)
*P<0.05compared with control;△P<0.05compared with NRM stimulation.
Group ide+NRM stimulation NRM stimualtion Methysergide 30μg 100.0046.94±4.12*71.50±2.66*△47.05±5.01 EMG Program:Control NRM stimulation Methyserg*Methysergide 50μg 100.0044.77±4.44*70.76±4.67*△51.00±3.94*Vehicle 100.0043.10±6.91*42.15±5.51*42.00±4.33*
目前,大多數(shù)學(xué)者認(rèn)為腦干內(nèi)源性下行抑制系統(tǒng)主要由中腦導(dǎo)水管周圍灰質(zhì)(periaqueductal gray,PAG)、延髓頭端腹內(nèi)側(cè)核群(rostral ventromedial medulla,RVM)和一部分腦橋背外側(cè)網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)組成,經(jīng)脊髓DLF下行對(duì)延髓和脊髓背角痛覺感受性信息的傳入產(chǎn)生抑制性調(diào)制[6]。而NRM為RVM核群內(nèi)最重要的一個(gè)核團(tuán),是內(nèi)源性鎮(zhèn)痛系統(tǒng)的一個(gè)重要的中繼站。在NRM內(nèi)存在3類神經(jīng)元:“停止”神經(jīng)元(off-cell)、“啟動(dòng)”神經(jīng)元(on-cell)和“中性”神經(jīng)元(neutral cell)。許多研究[7-10]發(fā)現(xiàn):當(dāng)給予NRM高強(qiáng)度的電刺激(50~200μA)時(shí),可以通過激活off-cell,抑制oncell,從而對(duì)軀體或內(nèi)臟傷害性刺激起到抑制性調(diào)節(jié)作用,如甩尾反射、熱板反射和直腸/膀胱-軀體運(yùn)動(dòng)反射等,然而這些有關(guān)的研究均局限于軀體痛和腹部臟器痛,有關(guān)心臟傷害性感受的研究很少。本實(shí)驗(yàn)采用了一種新的動(dòng)物模型,通過CMR證明了NRM對(duì)心臟傷害性感受同樣具有抑制性調(diào)節(jié)作用。
另外許多資料證實(shí)脊髓DLF參與痛覺下行抑制調(diào)節(jié)。Chandler等[11]研究報(bào)道脊髓電刺激(spinal cord stimulation,SCS)可以抑制由心臟內(nèi)注射緩激肽(bradykinin,BK)引起的胸段脊髓丘腦束神經(jīng)元的興奮活動(dòng)。Zhou等[1]研究報(bào)道:NRM對(duì)內(nèi)臟傷害性感受的抑制性調(diào)節(jié)效應(yīng)是通過脊髓DLF介導(dǎo)的;在大鼠直腸放置膨脹氣囊產(chǎn)生內(nèi)臟傷害性刺激,觀察脊髓背角神經(jīng)元的電活動(dòng),當(dāng)給予NRM高強(qiáng)度電刺激(50~200μA)時(shí),可減少脊髓背角神經(jīng)元的神經(jīng)沖動(dòng),而在橫斷DLF后,這種抑制效應(yīng)隨即消失。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果也提示:雙側(cè)DLF橫斷后,NRM對(duì)CMR的下行性抑制性調(diào)節(jié)被阻斷,與以往研究結(jié)果一致。綜合以往的研究資料以及本實(shí)驗(yàn)結(jié)果,本文作者認(rèn)為:高強(qiáng)度的電刺激可能主要激活了NRM內(nèi)off-cell,而off-cell的神經(jīng)沖動(dòng)主要通過脊髓DLF下行發(fā)揮調(diào)節(jié)作用。
解剖學(xué)研究發(fā)現(xiàn)NRM約50%的神經(jīng)元為5-HT能神經(jīng)元,Potrebic等[12]采用抗體微電極技術(shù)發(fā)現(xiàn)NRM內(nèi)的off-cell/on-cell/neutral-cell均呈5-HT免疫陽性反應(yīng),其中5-HT免疫陽性反應(yīng)在neutral-cell分布最多,off-cell次之,on-cell最少。而這些5-HT能神經(jīng)元80%以上為縫-脊投射神經(jīng)元,即其投射纖維主要經(jīng)脊髓DLF下行,分布于同側(cè)脊髓后角,可通過軸-軸突觸影響脊髓后角的傷害性感受神經(jīng)細(xì)胞的活動(dòng),從而在痛覺調(diào)制中發(fā)揮鎮(zhèn)痛作用。然而,5-HT對(duì)脊髓傷害性反應(yīng)的調(diào)控是復(fù)雜的,可能產(chǎn)生抑制作用,也有可能產(chǎn)生易化作用,這可能歸因于激活的受體亞型不同、藥物注射的劑量不同或者傷害性刺激類型不同。有研究[13-16]顯示:脊髓的5-HT1、5-HT2和5-HT3受體與鎮(zhèn)痛效應(yīng)有關(guān)。麥角新堿作為非選擇5-HT1和5-HT2受體的拮抗劑被廣泛使用。本研究通過鞘內(nèi)注射麥角新堿部分翻轉(zhuǎn)了電刺激NRM對(duì)CMR的抑制作用,提示5-HT及其受體參與NRM對(duì)CMR的下行性抑制作用,即高強(qiáng)度電刺激可能主要激活了NRM內(nèi)的off-cell,off-cell的神經(jīng)沖動(dòng)通過脊髓DLF通路下行,促使大量的5-HT釋放至脊髓背角,導(dǎo)致脊髓背角感覺神經(jīng)元超極化,從而明顯提高了疼痛的閾值,而一旦麥角新堿阻斷了脊髓背角感覺神經(jīng)元上的5-HT受體,導(dǎo)致5-HT的抑制作用減弱或消失。即使鞘內(nèi)注射高濃度的麥角新堿(50μg)也沒有完全阻斷NRM對(duì)CMR的抑制效應(yīng),這說明還有其他脊髓受體參與了源自NRM的抑制性調(diào)節(jié)過程。研究[14]顯示:雖然NRM內(nèi)5-HT能神經(jīng)元為主導(dǎo),但是還有不到50%的神經(jīng)元為去甲腎上腺素(norepinephrine,NE)、多種神經(jīng)肽和γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)能神經(jīng)元,其中5-HT與NE、5-HT與阿片肽、5-HT與GABA以及GABA與阿片肽等也多有共存現(xiàn)象,而這些神經(jīng)元的活動(dòng)之間存在著復(fù)雜的構(gòu)筑關(guān)系,至今還不十分清楚。
綜上所述,本實(shí)驗(yàn)中給予NRM電刺激可以減弱大鼠SPT的緊張性反應(yīng),而DLF和5-HT下行纖維系統(tǒng)參與NRM對(duì)CMR下行性抑制性調(diào)節(jié)。臨床上許多患者在經(jīng)歷過心絞痛后,會(huì)出現(xiàn)上胸部肌肉緊張性的增加,這與本實(shí)驗(yàn)中的大鼠模型相似。本研究結(jié)果將為心絞痛的臨床神經(jīng)治療研究提供有效的基礎(chǔ)研究資料。
[1]Zhuo M,Gebhart GF.Facilitation and attenuation of a visceral nociceptive reflex from the rostroventral medulla in the rat[J].Gastroenterology,2002,122(4):1007-1019.
[2]Sengupta JN,Mickle A,Kannampalli P,et al.Visceral analgesic effect of 5-HT4receptor agonist in rats involves the rostroventral medulla(RVM)[J].Neuropharmacology,2014(79):345-358.
[3]Steeds CE.The anatomy and physiology of pain[J].Basic Sci,2013,31(2):49-53.
[4]Jou CJ,F(xiàn)arber JP,Qin C,et al.Intrapericardial algogenic chemicals evoke cardiac-somatic motor reflexes in rats[J].Auton Neurosci,2001,94(1/2):52-61.
[5]韓 曼,孫 娜,劉曉華,等.脊髓NMDA受體對(duì)心包內(nèi)注射緩激肽誘發(fā)大鼠心臟-軀體運(yùn)動(dòng)反射的調(diào)節(jié)作用[J].吉林大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2012,38(5):832-835.
[6]Millan MJ.Descending control of pain[J].Neurobiology,2002,66(6):355-474.
[7]Urban MO,Smith DJ.Role of neurotensin in the nucleus raphe magnus in opioid-induced antinociception from the periaqueductal gray[J].J Pharmacol Exp Ther,1993,265(2):580-586.
[8]Zhuo M,Gebhart GF.Biphasic modulation of spinal nociceptive transmission from the medullary raphe nuclei in the rat[J].J Neurophysiol,1997,78(2):746-758.
[9]Randich A,Mebane H,DeBerry JJ,et al.Rostral ventral medulla modulation of the visceromotor reflex evoked by urinary bladder distension in female rats[J].J Pain,2008,9(10):920-926.
[10]Zhuo M,Sengupta JN,Gebhart GF.Biphasic modulation of spinal visceral nociceptive transmission from the rostroventral medial medulla in the rat[J].J Neurophysiol,2002,87(5):2225-2236.
[11]Chandler MJ,Brennan TJ,Garrison DW,et al.A mechanism of cardiac pain suppression by spinal cord stimulation:implications for patients with angina pectoris[J].Eur Heart J,1993,14(1):96-105.
[12]Potrebic SB,Mason P,F(xiàn)ields HL.The density and distribution of serotonergic appositions onto identified neurons in the rat rostral ventromedial medulla[J].J Neurosci,1995,15(5Pt 1):3273-3283.
[13]Xie DJ,Uta D,F(xiàn)eng PY,et al.Identification of 5-HT receptor subtypes enhancing inhibitory transmission in the rat spinal dorsal horn in vitro[J].Molecular Pain,2012,8(58):1-12.
[14]Jeong CY,Choi JI,Yoon MH.Roles of serotonin receptor subtypes for the antinociception of 5-HT in the spinal cord of rats[J].Eur J Pharmacol,2004,502(3):205-211.
[15]Mallet C,Daulhac L,Bonnefont J,et al.Endocannabinoid and serotonergic systems are needed for acetaminophen-induced analgesia[J].Pain,2008,139(1):190-200.
[16]Han M,Liu XH,Sun N,et al.Lateral reticular nucleus modulates the cardiosomatic reflex evoked by intrapericardial capsaicin in the rat[J].Eur J Neurosci,2013,37(9):1511-1518.