王 娜,陳乃耀
(河北聯(lián)合大學(xué) 附屬醫(yī)院 血液內(nèi)科, 河北 唐山 063000)
間充質(zhì)干細胞(mesenchymal stem cells,MSCs)具有明確的成骨分化能力,且取材方便、來源豐富、免疫原性低,因而被認為是臨床治療骨缺損重要的種子細胞,具有良好的應(yīng)用前景。盡管如此,間充質(zhì)干細胞應(yīng)用過程中還存在著局限性。一方面,MSCs是干細胞家族成員,在體內(nèi)的數(shù)量仍屬少數(shù),在應(yīng)用之前需進行體外擴增及大規(guī)模培養(yǎng),但是在體外培養(yǎng)過程中,間充質(zhì)干細胞傳代次數(shù)是有限的,因為隨著傳代培養(yǎng)次數(shù)的增加,MSCs的增殖減慢甚至停滯、干性減退、喪失分化能力。這些都與細胞衰老的發(fā)生密切相關(guān)。已知MSCs能夠表達SIRT1,并且隨著代數(shù)的增加,該蛋白水平呈下降趨勢[1]。因而,推測 SIRT1在調(diào)控間充質(zhì)干細胞衰老過程中占有重要地位。已有大量研究表明SIRT1可以通過與P53、FOXO、NF-κB及其他蛋白的相互作用去調(diào)控細胞衰老。故通過體外活化SIRT1的方式可能會改變MSCs增殖分化的命運。另一方面,炎性反應(yīng)細胞激活及促炎因子的釋放均會影響MSCs的分化,那么如何改善移植后細胞周圍的炎性反應(yīng)微環(huán)境就顯得頗為重要。目前,大量證據(jù)顯示SIRT1能夠顯著抑制炎性細胞激活,減少炎性因子的釋放,從而改善MSCs周圍炎性環(huán)境,為間充質(zhì)干細胞更好地發(fā)揮治療作用奠定基礎(chǔ)。目前有關(guān)應(yīng)用SIRT1激活劑白藜蘆醇干預(yù)人體新陳代謝,影響骨形成的臨床試驗已有開展并完成(http://clinicaltrials.gov/ct2/results?term=resveratrol+bone&Search=Search)。經(jīng)試驗證實白藜蘆醇具有抗炎活性,能夠調(diào)節(jié)人體的糖脂代謝,減少骨量的丟失,促進絕經(jīng)后女性的骨形成。
沉默信息調(diào)節(jié)因子2(silent information regulator 2, Sir2)是生物體內(nèi)與衰老過程密切相關(guān)的蛋白家族成員。SIRT1是存在于哺乳動物體內(nèi)與Sir2高度同源的同系物,人SIRT1基因定位于染色體10q22.1,基因全長33 kb,包含9個外顯子和8個內(nèi)顯子。其編碼的蛋白由500個氨基酸組成,相對分子質(zhì)量120 000,屬Ⅲ型NAD+依賴的蛋白去乙?;?,該蛋白廣泛存在于各種組織細胞之中。SIRT家族共有7個成員,即SIRT 1~7,SIRT1將底物蛋白中賴氨酸的乙酰基轉(zhuǎn)移到煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD+)的ADP核糖上,產(chǎn)生去乙?;牡鞍住燉0?NAM)和2’-O-乙?;?ADP核糖,通過上述反應(yīng)過程SIRT1參與調(diào)節(jié),如細胞衰老、凋亡、分化等多種生理活動,可能是所有生物共同的壽命調(diào)節(jié)基因之一。研究發(fā)現(xiàn)尼克酰胺、sirtinol抑制SIRT1活性,而白藜蘆醇和槲皮素是其功能激活劑。
衰老是自然界的普遍現(xiàn)象,從生物學(xué)上講,衰老是生物隨著時間的推移發(fā)生的退行性改變,表現(xiàn)為結(jié)構(gòu)和機能衰退,適應(yīng)性和抵抗力減退。衰老是生命發(fā)展必然,可以說,任何細胞從誕生之時起,老化的進程就已經(jīng)開始了,當然間充質(zhì)干細胞也不例外。在臨床應(yīng)用MSCs之前,需要進行體外擴增,以期獲得足夠細胞數(shù)量用于移植。但體外培養(yǎng)過程,MSCs的衰老使得獲得細胞的質(zhì)量下降,甚至不具備分化能力,這非常不利于基于MSCs的組織修復(fù)過程[2]。為了得到足夠數(shù)量的高質(zhì)量MSCs,必須找到可靠的延緩MSC衰老的方法。目前MSCs衰老的機制尚未完全闡明,主要有以下幾種原因:1)端??s短:端粒為真核細胞染色體末端的特殊結(jié)構(gòu),其在染色體的穩(wěn)定、復(fù)制、保護和控制細胞生長及壽命等諸多方面具有重要作用,并與細胞凋亡和細胞永生密切相關(guān)。2)氧化應(yīng)激:細胞代謝過程中產(chǎn)生的活性自由基會導(dǎo)致脂質(zhì)過氧化、DNA斷裂突變,修復(fù)和復(fù)制過程因之發(fā)生錯誤,隨著錯誤的積累,產(chǎn)生異常蛋白質(zhì),影響原有蛋白和酶的功能,最終導(dǎo)致細胞衰老。MSCs代謝過程中產(chǎn)生的活性氧的積累可以導(dǎo)致減少成骨細胞的數(shù)量及骨形成[3]。3)癌基因和抑癌基因:癌基因參與調(diào)控細胞周期、DNA損傷修復(fù)、凋亡等生理過程,但除此以外,癌基因的激活還涉及細胞衰老過程[4]。
NF-κB基因家族是哺乳動物中調(diào)節(jié)衰老相關(guān)通路的重要轉(zhuǎn)錄因子家族,參與細胞對外界刺激的應(yīng)答,調(diào)控與細胞凋亡、細胞衰老、炎性反應(yīng)發(fā)生以及免疫有關(guān)基因的活性。在小鼠中發(fā)現(xiàn),應(yīng)用NF-κB抑制劑可以延緩DNA損傷引發(fā)的細胞衰老[5]。而SIRT1可通過將NF-κB亞基去乙?;{(diào)節(jié)其活性,從而影響NF-κB下游復(fù)雜的信號通路,最終達到調(diào)控細胞衰老的目的。
目前人們普遍認識到P53基因同時參與細胞凋亡、癌變和衰老等的調(diào)節(jié)[6]。基因水平的研究顯示,過表達SIRT1能夠促進應(yīng)激狀態(tài)下細胞存活[7],這與其能夠使P53蛋白C端賴氨酸去乙?;嚓P(guān)。乙?;腜53能夠促進細胞凋亡的發(fā)生[8]。實驗發(fā)現(xiàn),衰老細胞往往高表達P53,SIRT1通過對P53特異性的去乙?;饔茫撔哉{(diào)節(jié)其活性[9]。同時這種去乙酰化的P53可以抑制細胞內(nèi)活性氧的產(chǎn)生[10],進而改變細胞內(nèi)氧化還原平衡,最終達到延長細胞壽命的目的。
FOXO亞家族在腫瘤抑制,能量代謝和壽命延長中起著至關(guān)重要的作用。有研究表明,SIRT1與FOXO家族相互作用調(diào)控細胞衰老[11]。在氧化應(yīng)激條件下,SIRT1激活劑白藜蘆醇通過與FOXO1、FOXO3a和FOXO4相互作用,降低細胞內(nèi)活性氧自由基的水平,增強超氧化物歧化酶的生成,提升細胞抗氧化應(yīng)激能力[12]。
SIRT1通過調(diào)控下游信號的去乙?;饔?,進一步影響氧化應(yīng)激反應(yīng)和癌基因與抑癌基因的活性,最終改變細胞周期,延長細胞壽命,發(fā)揮抗衰老作用,進而實現(xiàn)促進MSCs骨修復(fù)作用的目的。然而上述關(guān)于SIRT1調(diào)控MSCs衰老的機制及促進成骨分化的機制尚不十分清楚,仍需進一步的探討研究。
骨組織修復(fù)與重建過程中免疫系統(tǒng)發(fā)揮著重要作用[13- 14],激活的炎性細胞及釋放的炎性因子環(huán)境非常不利于骨重建修復(fù)。并且近年來越來越多的研究證據(jù)表明,促炎因子的釋放抑制MSCs成骨分化[15- 16]。由此可見,炎性反應(yīng)嚴重影響著基于MSCs的骨修復(fù)作用。而SIRT1蛋白在調(diào)節(jié)炎性反應(yīng)中發(fā)揮著重要作用。
在炎性反應(yīng)中,激活的巨噬細胞和T淋巴細胞可以產(chǎn)生大量促炎性反應(yīng)因子,如TNF-α、INF-γ、IL- 6 和IL- 1等。敲除SIRT1可使巨噬細胞釋放TNF-α增多[17], T細胞更易活化并釋放更多的促炎性反應(yīng)因子INF-γ和IL- 5等[18]。前面提到SIRT1能夠調(diào)節(jié)NF-κB活性,NF-κB除參與調(diào)節(jié)衰老外,還是炎性反應(yīng)過程中重要的信號分子。SIRT1通過抑制NF-κB活性,減少TNF-α和IL- 1的產(chǎn)生[19],而促炎因子TNF-α又可以成為NF-κB刺激因子,影響MSCs的成骨分化[20]。根據(jù)以上事實,不難發(fā)現(xiàn),SIRT1通過抑制炎性反應(yīng)細胞功能、減少炎性因子釋放、降低炎性因子效應(yīng),實現(xiàn)抑制炎性反應(yīng)功能,同時也說明SIRT1在免疫調(diào)節(jié)過程中占有重要地位。
除上述提到的SIRT1對MSCs成骨分化的間接影響外,SIRT1還直接參與調(diào)控MSCs的骨向分化過程。經(jīng)尼克酰胺處理的MSCs更傾向于成脂分化,并且高表達成脂相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子PPAR-γ[21],相反,經(jīng)白藜蘆醇預(yù)處理的MSCs即使培養(yǎng)于尼克酰胺條件下,亦傾向成骨分化,并且PPAR-γ表達下調(diào),成骨相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子RUNX2表達增加。另有研究表明,SIRT1還可以促進成骨細胞分化,抑制破骨細胞和骨髓脂肪細胞形成[22]。
綜上所述,SIRT1參與調(diào)節(jié)機體的多種生理功能,并通過這些生理功能直接或間接地影響了MSCs的增殖與分化。目前臨床上基于間充質(zhì)干細胞的組織修復(fù)治療手段已經(jīng)顯示了良好的前景,但有關(guān)SIRT1蛋白與MSCs增殖分化的確切關(guān)系尚未解釋清楚。白藜蘆醇雖然是SIRT1的激活劑,但其藥理作用并不僅局限于此,因此其影響MSCs的明確機制還需進一步研究闡釋。SIRT1蛋白與MSCs增殖分化之間有著緊密的聯(lián)系,這些發(fā)現(xiàn)使得臨床上應(yīng)用小分子SIRT1激活劑干預(yù)MSCs的組織修復(fù)過程、更好的調(diào)控MSCs向骨及軟骨細胞發(fā)育成為可能。
[1] Ho PJ, Yen ML, Tang BC,etal. H2O2accumulation mediates differentiation capacity alteration, but not proliferative decline, in senescent human fetal mesenchymal stem cells [J]. Antioxid Redox Signal, 2013, 18: 1895- 1905.
[2] Alt EU, Senst C, Murthy SN,etal. Aging alters tissue resident mesenchymal stem cell properties [J]. Stem Cell Res, 2012, 8: 215- 225.
[3] Kassem M, Marie PJ. Senescence-associated intrinsic mechanisms of osteoblast dysfunctions [J]. Aging Cell, 2011, 10: 191- 197.
[4] Rufini A, Tucci P, Celardo I,etal. Senescence and aging: the critical roles of p53[J]. Oncogene, 2013, 32: 5129- 5143.
[5] Tilstra JS, Robinson AR, Wang J,etal. NF-κB inhibition delays DNA damade-induced senescence and aging in mice [J]. J Clin Invest, 2012, 122:2601- 2612.
[6] Tucci P. Caloric restriction: is mammalian life extension linked to p53[J]. Aging (Albany NY), 2012, 4: 525- 534.
[7] Lee JT, Gu W. SIRT1 Regulator of p53 Deacetylation[J]. Genes cancer, 2013, 4: 112- 117.
[8] Yuan F, Xie Q, Wu J,etal. MST1 promotes apoptosis through regulating Sirt1-dependent p53 deacetylation[J]. J Biol Chem, 2011, 286: 6940-6945.
[9] Hasty P, Christy BA. P53 as an intervention target for cancer and aging [J]. Pathobiol Aging Age Relat Dis, 2013, 3: doi:10.3402/pba.v3i0.22702.
[10] Radak Z, Koltai E, Taylor AW,etal. Redox-regulating sirtuins in aging, caloric restriction, and exercise[J]. Free Radical Biol Med, 2013, 58: 87- 97.
[11] Fusco S, Maulucci G, Pani G. Sirt1 Def-eating senescence? [J]. Cell Cycle, 2012, 11: 4135- 4146.
[12] Hori YS, Kuno A, Hosoda R,etal. Regulation of FOXOs and p53 by SIRT1 modulators under oxidative stress [J]. PloS ONE, 2013, 8: doi: 10.1371/journal.pone.0073875.
[13] Shi Y, Wei L, Wang Y,etal. Stem cells deployed for bone repair hijacked by T cells[J]. Cell Stem Cell, 2012, 10:6- 8.
[14] Park MJ, Park HS, Cho ML,etal. Transforming growth factor β-transduced mesenchymal stem cells ameliorate experimental autoimmune arthritis through reciprocal regulation of Treg/Th17 cells and osteoclastogenesis [J] Arthritis Rheum,2011, 63:1668- 1680.
[15] Krum SA, Chang J, Miranda-Carboni G,etal. Novel functions for NF-κB: Inhibition of bone formation [J]. Nat Rev Rheumatol, 2010, 6:607- 611.
[16] Chang J, Wang Z, Tang E,etal. Inhibition of osteoblastic bone formation by nuclear factor kappa B [J]. Nat Med, 2009, 15:682- 689.
[17] Shen Z, Ajmo JM, Rogers CQ,etal. Role of SIRT1 in regulation of LPS-or two ethanol metabolites-induced TNF-α production in cultured macrophage cell lines [J]. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol, 2009, 296: 1047- 1053.
[18] Zhang J, Lee SM, Shannon S,etal. The type III histone deacetylase SIRT1 is essential for maintenance of T cell tolerance in mice [J]. J Clin Invest, 2009, 119:3048- 3058.
[19] Kang J, Jiang MH, Min HJ,etal. IKK-β-mediated cell activation exacerbates inflammation and inhibits recovery after spinal cord injury [J], Eur J Immunol, 2011,41:1266- 1277.
[20] Tang Y, Xie H, Chen J,etal. Activated NF-κB in bone marrow mesenchymal stem cells from systemic lupus erythematosus patients inhibits osteogenic differentiation through downregulating Smad signaling [J] Stem Cells Dev,2013, 22:668- 678.
[21] Shakibaei M, Shayan P, Busch F,etal. Resveratrol Mediated Modulation of Sirt- 1/Runx2 Promotes Osteogenic Differentiation of Mesenchymal Stem Cells: Potential Role of Runx2 Deacetylation [J]. PLoS ONE, 2012,7:doi:10.1371/journal.pone.0035712.
[22] Shakibaei M, Buhrmann C, Mobasheri A. Resveratrol-mediated SIRT- 1 interaction with p300 modulate receptor activator of NF-κB ligand(RANKL) activation of NF-κB signaling and inhibit osteoclastogenesis in bone-derived cells[J]. J Biol Chem, 2011, 286: 11492- 11505.