于張穎,肖 發(fā),柳丹丹,翟 量,沈立榮
(浙江大學(xué)生物系統(tǒng)工程與食品科學(xué)學(xué)院,浙江杭州 310058)
蜂王漿是工蜂咽下腺、上顎腺和腦后腺分泌的供蜜蜂幼蟲和蜂王食用的漿狀物,是決定蜜蜂幼蟲成為工蜂還是蜂王的關(guān)鍵因素[1],對人體具有抗疲勞[2]、抗衰老[3]、免疫調(diào)節(jié)[4]等保健功能,作為營養(yǎng)保健品、藥品、化妝品在國內(nèi)外廣泛應(yīng)用[5]。最新研究表明,占王漿總蛋白的82%~90%的主蛋白(Major Royal Jelly Proteins,簡寫MRJPs)是蜂王漿中最重要的活性成分,是代表蜂王漿質(zhì)量和新鮮度的標(biāo)志[1]。但目前國內(nèi)外市場的蜂王漿產(chǎn)品均為蜂王漿原漿或凍干粉加工品,很有必要對MRJPs進(jìn)行新產(chǎn)品的研究開發(fā)。
近年來國內(nèi)外已先后開展了離心[6]、堿提酸沉[7]、鹽提酸沉[7]、柱層析[8-10]等分離 MRJPs 的研究探索,但堿提酸沉、鹽提酸沉存在有機(jī)溶劑污染、影響蛋白活性、副產(chǎn)物浪費(fèi)等問題,柱層析則存在工藝復(fù)雜、成本偏高的問題,而離心分離具有操作簡便、對蛋白活性影響小、王漿酸和多糖等其它活性成分可回收利用的優(yōu)點(diǎn)。為此,我們開展了MRJPs離心分離和副產(chǎn)物回收利用及產(chǎn)物質(zhì)量分析研究,為蜂王漿深加工提供科學(xué)依據(jù)。
鮮王漿 杭州碧于天保健品有限公司提供;Bradford蛋白定量試劑盒 上海杰瑞生物科技有限公司;中等分子質(zhì)量蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)、TMB顯色液試劑盒 上海澤衡生物科技有限公司;HRP-羊抗兔抗體 北京莊盟國際生物基因科技有限公;MRJP1多克隆抗體 采用本實(shí)驗(yàn)室重組表達(dá)的MRJP1免疫大白兔得到[11]。
pH計(jì) 賽德瑞斯公司;5804R型冷凍離心機(jī)艾本德中國有限公司;CP70MX超速離心機(jī) 日本Hitachi公司;752型紫外可見分光光度計(jì) 北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;FD-1-50真空冷凍干燥機(jī) 南京以馬內(nèi)利儀器設(shè)備有限公司;蛋白電泳儀 美國Bio-Rad公司;2300自動(dòng)凱氏定氮儀 福斯賽諾分析儀器(蘇州)有限公司。
1.2.1 MRJPs提取 稱取適量鮮王漿,按一定液料比(2~10mL/g)加入適當(dāng)濃度的 NaCl溶液(0.3~0.7mol/L),混勻,調(diào)節(jié) pH(5~9),4℃充分?jǐn)嚢枰欢螘r(shí)間(2~10h)后,4℃、12000r/min 離心 30min,取上清液即為MRJPs溶液,將MRJPs溶液和含糖分、王漿酸的沉淀分別冷凍干燥備用[6]。
用凱氏定氮法測定鮮王漿中蛋白質(zhì)含量(參考GB 9697-2008)[12],Bradford 法(BSA 為標(biāo)準(zhǔn)蛋白)測定提取上清液中可溶性蛋白MRJPs含量[13]。
MRJPs提取率(%)=上清液中蛋白質(zhì)量/所用鮮王漿中蛋白質(zhì)量×100
1.2.2 MRJPs提取工藝的優(yōu)化 通過單因素實(shí)驗(yàn)考察液料比、pH、抽提時(shí)間、離子強(qiáng)度對鮮王漿中MRJPs提取率的影響。液料比選擇 2、4、6、8、10mL/g五個(gè)水平,pH 選擇5、6、7、8、9 五個(gè)水平,抽提時(shí)間選擇2、4、6、8、10h 五個(gè)水平,離子強(qiáng)度(NaCl濃度)選擇0.3、0.4、0.5、0.6、0.7mol/L 五個(gè)水平,以 MRJPs提取率為考察指標(biāo)。在此基礎(chǔ)上選擇適當(dāng)水平進(jìn)行了四因素三水平正交實(shí)驗(yàn)(表1),以優(yōu)化MRJPs的提取工藝。
表1 正交實(shí)驗(yàn)因素水平表Table 1 Factors and levels for orthogonal design
1.2.3 SDS-PAGE電泳分析 參考《分子克隆·第三版》[14],對提取所得蛋白進(jìn)行 SDS-PAGE 電泳,采用12%分離膠,考馬斯亮藍(lán)法染色,對結(jié)果拍照分析。
1.2.4 MRJP1提取分離 參考Salazar-Olivo L A等人的方法[6]改進(jìn):稱取適量鮮王漿,用等質(zhì)量超純水稀釋混勻,充分抽提6h;混合液在245000×g、4℃條件下離心5h,出現(xiàn)分層現(xiàn)象后,將中間層取出,用2倍質(zhì)量超純水將中間層溶解,室溫下抽提1h,混勻;將該液在30000×g、6℃下離心30min,取上清;上清液在245000×g、6℃下離心5h,取沉淀,此沉淀即為MRJP1蛋白,-20℃保存。
1.2.5 ELISA法檢測MRJPs純度 我們前期研究已證實(shí),MRJP1與MRJPs家族其它成員具有很高的同源性,MRJP1多克隆抗體可與MRJPs家族其它蛋白產(chǎn)生交叉反應(yīng)[15],因此本實(shí)驗(yàn)中以大腸桿菌中重組表達(dá)的MRJP1制備的多克隆抗體為一抗,以MRJP1為標(biāo)準(zhǔn)蛋白,采用間接ELISA法測定提取產(chǎn)物凍干粉中MRJPs蛋白含量。
1.2.5.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立 參考文獻(xiàn)[16],將MRJP1溶于 CBS緩沖液(0.05mol/L,pH=9.6)中,配成10μg/mL的溶液,倍比稀釋后加樣于96孔板中,4℃包被過夜。PBST(0.05%)洗滌,5%脫脂牛奶37℃封閉1.5h。PBST洗滌,MRJPs全蛋白多克隆抗體(一抗,1∶5000稀釋)37℃孵育1h。PBST洗滌,HRP標(biāo)記的羊抗兔抗體(二抗,1∶5000稀釋)37℃孵育0.5h。PBST洗滌,TMB顯色液室溫反應(yīng)15min后加入2mmol/L H2SO4終止顯色反應(yīng)。立即于酶聯(lián)免疫檢測儀上測定450nm及630nm處吸光值。以O(shè)D450~OD630為縱坐標(biāo),MRJP1濃度為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.5.2 MRJPs定量分析 同法測定最佳提取條件下MRJPs提取液凍干粉(配成15μg/mL溶液)的MRJPs含量。
1.2.6 MRJPs凍干粉中水分和王漿酸測定 參照GB 9697-2008[12]測定 MRJPs凍干粉中水分和王漿酸的含量。
1.2.7 鮮王漿及MRJPs提取副產(chǎn)物中王漿酸和總糖測定 取鮮王漿及MRJPs提取副產(chǎn)物沉淀的凍干物,參照 GB 9697-2008[12],采用分光光度法測定總糖含量,采用液相色譜法測定王漿酸含量,二者回收率的計(jì)算方法為:
王漿酸回收率(%)=沉淀中王漿酸質(zhì)量/所用鮮王漿中王漿酸質(zhì)量×100
總糖回收率(%)=沉淀中總糖質(zhì)量/所用鮮王漿中總糖質(zhì)量×100
所有實(shí)驗(yàn)均作三組平行,所得數(shù)據(jù)用DPS軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。
2.1.1 液料比對MRJPs提取率的影響 在pH=7,抽提時(shí)間6h,離子強(qiáng)度0.5mol/L條件下,由圖1可知,液料比在2~10mL/g范圍內(nèi),液料比越高,MRJPs提取率越高。其中,在2~4mL/g及8~10mL/g范圍內(nèi),MRJPs提取率隨液料比增高而增長較快;在4~8mL/g范圍內(nèi),MRJPs提取率隨液料比增高而增長緩慢??紤]到生產(chǎn)過程中加水過多會(huì)帶來額外的脫水成本,選擇4、6、8mL/g作為正交實(shí)驗(yàn)的三個(gè)水平。
2.1.2 pH對MRJPs提取率的影響 由圖2可知,在液料比6mL/g,抽提時(shí)間6h,離子強(qiáng)度0.5mol/L條件下,當(dāng)pH在5~6范圍內(nèi)時(shí),MRJPs提取率隨pH增高而快速增長;當(dāng)pH在6~7范圍內(nèi)時(shí),MRJPs提取率隨pH增高而較快增長;當(dāng)pH在7~8范圍內(nèi)時(shí),MRJPs提取率隨pH增高而略有增高;當(dāng)pH在8~9范圍內(nèi)時(shí),MRJPs提取率隨pH增高而緩慢下降。根據(jù)提取率大小選擇pH7、8、9進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)。
圖1 液料比對MRJPs提取率的影響Fig.1 Effect of the ratio of solution to sample on MRJPs extraction rate
圖2 pH對MRJPs提取率的影響Fig.2 Effects of pH values on MRJPs extraction rate
2.1.3 抽提時(shí)間對MRJPs提取率的影響 在液料比6mL/g,pH=7,離子強(qiáng)度0.5mol/L條件下,抽提時(shí)間在2~10h范圍內(nèi),MRJPs提取率隨抽提時(shí)間延長而提高。在2~4h范圍內(nèi),MRJPs提取率隨抽提時(shí)間延長而快速提高;在4~10h范圍內(nèi),MRJPs提取率隨抽提時(shí)間延長而緩慢提高。其結(jié)果見圖3。綜合考慮生產(chǎn)效率的影響,選用4、6、8h三個(gè)水平進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)。
圖3 抽提時(shí)間對MRJPs提取率的影響Fig.3 Effect of extracting time on MRJPs extraction rate
2.1.4 離子強(qiáng)度對MRJPs提取率的影響 由圖4可見,在液料比6mL/g,pH=7,抽提時(shí)間6h條件下,離子強(qiáng)度為0.3~0.6mol/L時(shí),隨著離子強(qiáng)度的增大,MRJPs提取率隨之提高;離子強(qiáng)度為0.6~0.7mol/L時(shí),MRJPs提取率隨離子強(qiáng)度的增大而降低。綜合考慮提取率及脫鹽帶來的成本,選擇離子強(qiáng)度0.3、0.4、0.5mol/L進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)。
圖4 離子強(qiáng)度對MRJPs提取率的影響Fig.4 Effect of ionic strength on MRJPs extraction rate
以MRJPs提取率為指標(biāo)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)并對結(jié)果進(jìn)行極差和方差分析。由表2和表3可知,影響MRJPs提取率的因素依次為:離子強(qiáng)度>pH>抽提時(shí)間>液料比,但影響均不顯著(p>0.05)。由表2可知,最佳條件組合為A3B2C3D3,即液料比8mL/g,pH8,抽提時(shí)間8h,離子強(qiáng)度0.5mol/L。按此優(yōu)化工藝作進(jìn)一步驗(yàn)證,結(jié)果MRJPs提取率達(dá)81.14%。
表2 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 2 Analysis of orthogonal experiment results
表3 方差分析結(jié)果Table 3 Result of variance analysis
根據(jù)MRJPs蛋白SDS-PAGE電泳圖(圖5)中的蛋白標(biāo)準(zhǔn)估計(jì),MRJPs標(biāo)蛋白條帶主要分布范圍在42.1~97.4ku,其中以分子量為57ku的條帶最明顯,與Kamakura等報(bào)道的MRJP1分子量一致[2]。同時(shí),MRJP1的純化產(chǎn)物也顯示為分子量為57ku單一蛋白條帶,也符合已報(bào)道的 MRJP1蛋白特征[2],說明MRJP1提取得到了單一蛋白。
圖5 MRJPs和MRJP1 SDS-PAGE電泳圖Fig.5 SDS-PAGE analysis of MRJPs and MRJP1泳道M:蛋白質(zhì)Marker。
MRJP1標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖6,得到MRJP1與吸光度間的回歸方程:y=0.1100x+0.1239(R2=0.998,式中y為吸光度,x為MRJPs含量),將所測MRJPs凍干粉的吸光度(OD450-OD630=1.306±0.110)代入該式,換算得含MRJPs凍干粉純度為71.7%。
圖6 MRJP1標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.6 Standard curve of MRJP1
按照GB 9697-2008測得MRJPs提取物凍干粉含水分0.005%,王漿酸0.55%。
鮮王漿及最佳條件下提取MRJPs產(chǎn)生的沉淀凍干物中王漿酸及總糖含量見表5。經(jīng)換算得副產(chǎn)物質(zhì)量為原料的2.68%,其中王漿酸和總糖回收率分別為2.91%和1.26%。
表4 鮮王漿和副產(chǎn)物中王漿酸及總糖分析結(jié)果Table 4 Analysis of 10-HDA and total sugar in fresh royal jelly and by-product
藍(lán)瑞陽等[7]報(bào)道的蜂王漿蛋白的鹽提酸沉法收率為83.62%,堿提酸沉法收率為75.17%,但該報(bào)道沒有做純度測定。本研究通過正交實(shí)驗(yàn),得到了離心提取王漿主蛋白MRJPs的最佳工藝:液料比8mL/g,pH8,抽提8h,離子強(qiáng)度0.5mol/L。在此條件下,MRJPs提取率達(dá)到81.14%,產(chǎn)物純度達(dá)到71.7%。同時(shí)實(shí)現(xiàn)了副產(chǎn)物王漿酸和總糖的回收,使蜂王漿活性產(chǎn)物得到充分利用。此外,采用自制重組表達(dá)MRJP1多克隆抗體,通過ELISA法檢測了所提取MRJPs的純度,為蜂王漿深加工和質(zhì)量控制提供了科學(xué)依據(jù)。
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