賀 穎,葉志云
(廈門大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,福建 廈門361102)
鼠雙微體基因X(MdmX,亦稱 Mdm4)是1996年發(fā)現(xiàn)的一個新的p53結(jié)合蛋白[1],由于它與另一個p53結(jié)合蛋白鼠雙微體基因2(Mdm2)在結(jié)構(gòu)上高度相似,因而被命名為MdmX.它與Mdm2在結(jié)構(gòu)上同源,分別由490和491個氨基酸組成[2].2個蛋白都具有相似的功能區(qū):N端p53結(jié)合區(qū),介導(dǎo)對p53的轉(zhuǎn)錄調(diào)控,該區(qū)結(jié)構(gòu)在2種蛋白中嚴(yán)格保守[3];中央?yún)^(qū)鋅指結(jié)構(gòu),由第301~329個氨基酸構(gòu)成,其功能均未知[4];C端RING結(jié)構(gòu)區(qū),該區(qū)是這2個蛋白形成同源或異源二聚體的關(guān)鍵,也是Mdm2作為泛素連接酶的核心,但MdmX的RING結(jié)構(gòu)域卻不具備泛素連接酶功能[5].MdmX和Mdm2的蛋白結(jié)構(gòu)主要差異部分在中央酸性區(qū)[4];另外,Mdm2具有核定位信號(NLS)及出核信號(NES),而MdmX則沒有[2].在生物學(xué)功能上,MdmX和Mdm2均為p53信號通路中重要的調(diào)控因子,兩者的功能各不相同,無法互相替代.敲除 Mdm2的小鼠胚胎因激活p53依賴的細(xì)胞凋亡通路而死亡,敲除MdmX的小鼠胚胎則因依賴p53的細(xì)胞增殖抑制而死亡,但若同時敲除p53基因,胚胎均能正常發(fā)育[6-9].Mdm2和 MdmX 在p53信號通路中的調(diào)控關(guān)系非常復(fù)雜,Mdm2可以介導(dǎo)自身及MdmX的泛素化降解[10],而MdmX與Mdm2的結(jié)合又可穩(wěn)定Mdm2,抑制其降解[11].兩者在p53通路中的調(diào)節(jié)與它們之間的表達(dá)水平密切相關(guān),當(dāng)MdmX與Mdm2在細(xì)胞內(nèi)水平相當(dāng)時,它們共同抑制p53的活性;而當(dāng)MdmX表達(dá)量較高時,則可穩(wěn)定p53的表達(dá)[12].
體軸發(fā)育抑制因子Axin是一個重要的架構(gòu)蛋白,參與Wnt、JNK、TGF-β及p53等多種信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑的調(diào)控[13-17].在p53信號通路中,Axin與p53、HIPK2及Daxx等相互作用形成復(fù)合物,誘導(dǎo)p53的轉(zhuǎn)錄活化,共同促進(jìn)細(xì)胞的凋亡[18-19].我們曾報道過 Mdm2在 Axinp53通路中不依賴于其泛素連接酶的抑制功能[20].Mdm2可通過競爭結(jié)合p53與HIPK2破壞Axin/p53/HIPK2活化復(fù)合體的形成,從而抑制p53的轉(zhuǎn)錄激活及其誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡[20].然而,MdmX是否參與Axin-p53信號通路的調(diào)控,其作用機(jī)制等仍未知.基于MdmX與Mdm2在結(jié)構(gòu)上的相似性及其在p53信號通路的重要作用,本文對MdmX在Axin-p53信號通路中的作用進(jìn)行了研究.研究表明:與Mdm2相似,MdmX也能通過競爭Axin與p53的結(jié)合,從而抑制Axin對p53的轉(zhuǎn)錄激活.這一發(fā)現(xiàn)有助于全面了解MdmX的細(xì)胞生物學(xué)功能,豐富了Axin-p53信號通路的調(diào)控機(jī)理,并可為腫瘤的臨床治療提供新的線索.
使用的大部分藥品與試劑分別購自美國Sigma公司、上海生工(Sangon)生物工程公司和華美(Sino-America)生物工程公司;限制性內(nèi)切酶和DNA標(biāo)準(zhǔn)分子質(zhì)量Marker購自大連寶生(Takara)生物工程公司;堿性磷酸酶(CIP)購自美國Promega公司;Klenow DNA聚合酶、T4DNA 連接酶(T4Ligase)、T4多核苷酸激酶(T4PNK)購自美國Invitrogen公司;用于免疫共沉淀和Western blotting分析的抗HA和DO-1抗體購自美國Santa Cruze公司;抗Axin和GFP的多克隆抗體由本實(shí)驗(yàn)室自行免疫新西蘭兔后純化獲得;PVDF膜購自Millipore公司.
常用的表達(dá)載體如pBluescriptⅡSK及pCMV5等由本實(shí)驗(yàn)室保存;Axin和p53全長表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建參照文獻(xiàn)[14,16];p53-luc熒光素酶報告基因質(zhì)粒的構(gòu)建參照文獻(xiàn)[16];pEGFP-N1質(zhì)粒購自Clontech公司;MdmX全長表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建根據(jù)美國國家生物技術(shù)信息中心(National Center for Biotechnology Information,NCBI)核酸數(shù)據(jù)庫中編號為NM_002393的MdmX mRNA 序 列 設(shè) 計(jì) 引 物 (5′-ATG ACA TCA TTT TCC ACC TCT-3′和5′-TTA TGC TAT AAA AAC CTT AAT-3′),以 HEK 293細(xì)胞的總 RNA 逆轉(zhuǎn)錄形成的cDNA為模板進(jìn)行PCR,把MdmX全長PCR產(chǎn)物平端克隆到pBluescriptⅡSK中.測序驗(yàn)證后,用BamH I和XhoI亞克隆到表達(dá)載體pCMV5-HA 中,得到 pCMV5-HA-MdmX;MdmXΔp53則是以pCMV5-HA-MdmX為模板,通過點(diǎn)突變PCR的方法獲得,所用引物序列為:5′-GAC ATC ATT TTC CAC CCT TAG CAC TTT AGC C-3′和 5′-GGC TAA AGT GAC AAG GGT GGA AAA TGA TGT C-3′.
所用的人胚胎腎細(xì)胞HEK 293與293T用含有10%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))小牛血清(FBS)、100IU青霉素和100μg/mL鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基(GIBCO公司)進(jìn)行培養(yǎng),培養(yǎng)條件為37℃,5%(體積分?jǐn)?shù))CO2.細(xì)胞傳代時,先將培養(yǎng)液吸去,用PBS緩沖液潤洗一次,再加入適量含0.25%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))胰酶的0.02%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))EDTA溶液,使其覆蓋細(xì)胞層,待細(xì)胞從培養(yǎng)瓶壁上脫落后,加入少量培養(yǎng)液終止胰酶的作用,再用移液管吹打數(shù)次使細(xì)胞彼此分開,加入適量的培養(yǎng)液將細(xì)胞吹打混勻后便可傳代培養(yǎng).
轉(zhuǎn)染前24h消化細(xì)胞,離心去除胰酶消化液,加入適量的培養(yǎng)液,重懸浮細(xì)胞并均勻地平鋪在60mm培養(yǎng)皿中,保持細(xì)胞密度約為40%~60%.轉(zhuǎn)染前1h更換細(xì)胞培養(yǎng)液,小心加入約5mL預(yù)熱的新鮮培養(yǎng)液,以免使貼壁好的細(xì)胞懸浮起來.磷酸鈣-DNA沉淀的制備:在1.5mL離心管中加入220μL水,在水中央位置加入混勻好的DNA質(zhì)粒.將31μL 2mol/L CaCl2小心加入到Eppendorff管底,再沿Eppendorff管壁逐滴加入2×HEPES緩沖液(1.6g NaCl、0.074 g KCl、0.027g Na2HPO4·2H2O、0.2g葡萄糖和1g HEPES依次溶解于90mL雙蒸水中,用0.5mol/L NaOH將pH值調(diào)為7.05左右,加雙蒸水定容至100 mL),在CaCl2與上層溶液形成的界面之間用移液槍吹出幾個氣泡以攪亂其界面,室溫放置20~30min,使磷酸鈣-DNA沉淀緩慢形成.用移液槍吹吸一次混勻后逐滴將磷酸鈣-DNA沉淀加入細(xì)胞培養(yǎng)液中,輕微晃動使磷酸鈣-DNA沉淀在細(xì)胞上分布均勻.
轉(zhuǎn)染后24~40h可收獲細(xì)胞.將60mm細(xì)胞培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)液吸去,加入500μL裂解緩沖液(20 mmol/L Tris-HCl(pH 7.4),150mmol/L NaCl,1 mmol/L EDTA,1mmol/L EGTA,1%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))Triton,2.5mmol/L 焦磷酸鈉,1mmol/Lβ-巰基乙醇,1mmol/L釩酸鈉,1μg/mL亮抑酶肽,1mmol/L蛋白酶抑制劑(PMSF),置于4℃裂解5min,用細(xì)胞刮將細(xì)胞從盤面刮下,收集在1.5mL Eppendorff管中.隨后在冰上用超聲處理10次,每次1s.超聲處理后的細(xì)胞裂解液在4℃用13 200r/min離心30min.取50μL上清轉(zhuǎn)移到新管,加入等量2×SDS樣品緩沖液作為全細(xì)胞裂解液,置沸水煮10min,后放于-80℃?zhèn)溆?剩余上清用于免疫共沉淀分析.取5 μL蛋白A/G瓊脂糖珠(Santa Cruz Biotech公司),用適量裂解緩沖液洗3次,每次3 000r/min離心3 min;洗完后,取5μL相應(yīng)抗體與瓊脂糖珠及400μL細(xì)胞裂解液上清和400μL裂解緩沖液混合,在4℃層析柜中緩慢顛倒混合3h,使蛋白從細(xì)胞裂解液中被特異性抗體免疫沉淀下來.免疫沉淀反應(yīng)完成后,在4℃以3 000r/min速度離心3min,小心吸去上清,用500μL裂解緩沖液溫和清洗瓊脂糖珠3次,最后用30 μL裂解緩沖液重懸瓊脂糖珠,再加入等量的2×SDS樣品緩沖液,沸水煮10min,存于-80℃?zhèn)溆?
鋪適當(dāng)密度的細(xì)胞于6孔或12孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,待細(xì)胞貼壁生長到培養(yǎng)板孔面積的90%后,轉(zhuǎn)染0.5μg熒光素酶報告基因、適量的質(zhì)粒DNA,以及0.2μg pEGFP-N1.轉(zhuǎn)染24h后,吸凈培養(yǎng)液,向每孔加入200μL 細(xì)胞裂解液(0.05mol/L Tris(pH 7.8),1 mmol/L DTT,0.1% (質(zhì)量分?jǐn)?shù))Triton-X100),使其覆蓋細(xì)胞層,放入4℃充分裂解細(xì)胞10min.取50μL細(xì)胞懸液,與100μL熒光素/ATP混合溶液(ATP溶液:0.125mol/L Tris,25mmol/L MgCl2,2.4mg/mL ATP;熒 光 素 溶 液:0.278mg/mL 熒 光 素,5 mmol/L KH2PO4(pH 7.8))于渦旋混勻器快速混勻后,在熒光檢測儀(Promega公司)讀取發(fā)光值并記錄.同時取剩余20μL裂解液上清,通過 Western blotting分析檢測綠色熒光蛋白(GFP)表達(dá)量作為內(nèi)標(biāo),以矯正系統(tǒng)讀數(shù).實(shí)驗(yàn)結(jié)果為至少5次實(shí)驗(yàn)的平均值.
首先,運(yùn)用熒光素酶報告基因系統(tǒng)檢測MdmX對Axin激活p53轉(zhuǎn)錄活性的影響.在HEK 293細(xì)胞中轉(zhuǎn)入0.5μg的p53-luc報告基因,然后以圖1中的各種組合分別轉(zhuǎn)染2μg Axin,3μg HA-MdmX 或?qū)xin和MdmX共轉(zhuǎn)染,用空載體補(bǔ)平各孔細(xì)胞轉(zhuǎn)入的DNA量,保證各蛋白表達(dá)水平基本一致,并且在每組細(xì)胞中共轉(zhuǎn)染0.2μg的GFP作為內(nèi)標(biāo).圖1中的Western blotting結(jié)果為細(xì)胞中各蛋白的表達(dá)情況.可以看到,單轉(zhuǎn)Axin時(第二道),熒光素酶活性增強(qiáng)了9倍左右,說明Axin強(qiáng)烈誘導(dǎo)p53的轉(zhuǎn)錄活性.而當(dāng)MdmX與Axin共轉(zhuǎn)染時(第四道),熒光素酶的活性明顯下降,說明MdmX能抑制Axin對p53的激活.
MdmX是如何抑制Axin對p53的激活成為我們研究的下一個重點(diǎn).之前的研究發(fā)現(xiàn)Mdm2是通過與p53的結(jié)合抑制Axin對p53的激活[20],而MdmX具有與Mdm2相似的p53結(jié)合域,為了驗(yàn)證MdmX是否也能通過它與p53的結(jié)合對Axin激活p53產(chǎn)生影響,構(gòu)建了MdmX缺失p53結(jié)合域的突變體MdmXΔp53.在HEK 293細(xì)胞中以圖2中各組合方式轉(zhuǎn)染2μg Axin,3μg MdmX及3μg MdmXΔp53,同時共轉(zhuǎn)染0.5μg p53-luc熒光素酶報告基因和0.2 μg的GFP,用空載體補(bǔ)平各組細(xì)胞轉(zhuǎn)入的DNA量,保證各蛋白表達(dá)水平基本一致.圖2中的 Western blotting結(jié)果表示細(xì)胞中各蛋白的表達(dá)情況.可以看到,MdmXΔp53不能抑制Axin對p53的激活,說明MdmX可能通過與p53的結(jié)合抑制Axin對p53的轉(zhuǎn)錄激活.
圖1 MdmX對Axin激活p53的影響Fig.1 Effect of MdmX on Axin-induced p53transcriptional activation
圖2 MdmXΔp53對Axin激活p53的影響Fig.2 Effect of MdmXΔp53on Axin-induced p53transcriptional activation
為了檢測MdmX能否與Axin競爭結(jié)合p53,從而導(dǎo)致對Axin-p53信號通路的抑制,在HEK 293T細(xì)胞中轉(zhuǎn)染2μg Axin,再共轉(zhuǎn)入DNA濃度依次遞增(0,2,4,8μg)的 HA-MdmX.轉(zhuǎn)染24h后收集并裂解細(xì)胞,用耦聯(lián)p53多克隆抗體的瓊脂糖珠免疫沉淀細(xì)胞中內(nèi)源的p53.Western blotting檢測免疫沉淀物和全細(xì)胞裂解液,用抗p53的單克隆抗體DO-1、抗Axin和抗HA的抗體分別檢測p53、Axin和MdmX的表達(dá)情況.如圖3所示,隨著MdmX表達(dá)量的增加,與p53共沉淀的Axin逐漸減少,說明MdmX可以減弱Axin與p53的相互作用.
圖3 MdmX對Axin與p53相互作用的影響Fig.3 Effect of MdmX on the interaction between Axin and p53
通過上述熒光素酶報告基因?qū)嶒?yàn),可以得知MdmX的p53結(jié)合域是其抑制Axin激活p53的關(guān)鍵,可以推測缺失p53結(jié)合域的MdmX是無法與Axin競爭p53結(jié)合的.在HEK 293T細(xì)胞中轉(zhuǎn)染2 μg Axin,然后共轉(zhuǎn)染不同濃度梯度(3和8μg)的HAMdmX或HA MdmXΔp53.轉(zhuǎn)染24h后收集細(xì)胞,用耦聯(lián)p53多克隆抗體的瓊脂糖珠免疫沉淀內(nèi)源p53,觀察共沉淀的MdmX及其突變體的變化.如圖4所示,MdmXΔp53由于不能與p53結(jié)合,不影響Axin與p53的相互作用,進(jìn)一步驗(yàn)證了MdmX能通過與p53的結(jié)合抑制Axin與p53的相互作用.
圖4 MdmXΔp53對Axin與p53相互作用的影響Fig.4 Effect of MdmXΔp53on the interaction between Axin and p53
MdmX與Mdm2均為p53信號通路中重要的負(fù)調(diào)控因子.Mdm2的主要功能為介導(dǎo)p53的泛素化降解,從而影響p53的穩(wěn)定性,而MdmX則主要抑制p53的轉(zhuǎn)錄活性[12].本實(shí)驗(yàn)室前期的研究證明Axin/p53活化復(fù)合體在p53的轉(zhuǎn)錄激活及其誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡中起重要作用[20].本文的研究進(jìn)一步發(fā)現(xiàn) MdmX對Axin-p53信號通路的抑制與 Mdm2相似,都是通過競爭Axin與p53的結(jié)合而實(shí)現(xiàn).這有別于以往認(rèn)為的兩者在作用機(jī)制上完全不同,提示結(jié)構(gòu)上的相似性在某些基因調(diào)控方面還是起到類似的功能.但兩者在Axin/p53活化復(fù)合體中的功能是否可以相互替代,或者兩者需要協(xié)同進(jìn)行作用應(yīng)是下一步研究的重點(diǎn).另外,MdmX能否與Axin/p53復(fù)合體中其他成員如HIPK2等發(fā)生相互作用而影響p53信號通路的調(diào)節(jié),在各種DNA損傷刺激下其表達(dá)水平的變化對Axin/p53活化復(fù)合體有何影響等問題也很值得繼續(xù)進(jìn)行深入的研究.此外,MdmX在Axin-p53信號通路中的抑制作用也為某些腫瘤的臨床治療提供了新的線索.在很多有野生型p53表達(dá)的腫瘤中,如乳腺癌、膠質(zhì)母細(xì)胞瘤、視網(wǎng)膜母細(xì)胞瘤及惡性神經(jīng)膠質(zhì)瘤等,發(fā)現(xiàn)有MdmX基因的擴(kuò)增[8],在這些腫瘤細(xì)胞中Axin/p53活化復(fù)合體的功能會由于大量MdmX的競爭作用而被抑制.已有研究證明,在一定劑量的抗腫瘤藥物阿霉素(doxorubicin)作用下,Axin/p53活化復(fù)合體會被誘導(dǎo)大量生成,引起細(xì)胞凋亡,抑制腫瘤的形成[20].但是其有效作用劑量較大,對正常細(xì)胞的損傷也很嚴(yán)重,具有很強(qiáng)的毒副作用.如果能加入MdmX與p53結(jié)合的阻斷劑,使這些MdmX過表達(dá)的腫瘤細(xì)胞中Axin/p53活化復(fù)合體的作用不被 MdmX所抑制,就有望降低阿霉素的用量,減少治療時對正常細(xì)胞的毒副作用,達(dá)到更好的腫瘤治療效果.
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