王彩虹, 牛燦芳, 羅會(huì)穎, 楊培龍, 姚 斌
農(nóng)業(yè)部飼料生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院飼料研究所,北京 100081
半纖維素是目前世界上存在的第二大豐富的雜聚合物,通常與纖維素和木質(zhì)素一起存在于植物細(xì)胞壁中[1,2]。甘露聚糖和木聚糖一起構(gòu)成了半纖維素的主要成分[3,4]。完全消化甘露聚糖需要幾種酶的協(xié)同作用,包括β-1,4-甘露聚糖酶、β-甘露糖苷酶、β-葡萄糖苷酶和 α-半乳糖苷酶等。
β-甘露聚糖酶是一類能水解含甘露糖的多糖水解酶的總稱,根據(jù)酶作用底物特異性和作用特點(diǎn)可以分為外切β-甘露聚糖酶和內(nèi)切β-甘露聚糖酶兩種類型[5]。β-甘露聚糖酶屬于半纖維素酶類,現(xiàn)已被廣泛應(yīng)用于飼料、造紙、洗滌劑、食品和石油開(kāi)采等行業(yè),以及尚未完全開(kāi)發(fā)的生物質(zhì)能源等領(lǐng)域,例如在乙醇生產(chǎn)過(guò)程中,一系列的酶類包括纖維素酶類、木聚糖酶和甘露聚糖酶等一起作用可以有效地將木質(zhì)纖維素類物質(zhì)水解為糖類[6]。大多數(shù)工業(yè)應(yīng)用領(lǐng)域需要在高溫環(huán)境中進(jìn)行[7],為了滿足工業(yè)應(yīng)用的需求,尋找與改造能在高溫環(huán)境中起催化作用的嗜熱酶是一個(gè)急需解決的問(wèn)題,因此,對(duì)嗜熱β-甘露聚糖酶進(jìn)行結(jié)構(gòu)和功能的研究具有很高的理論價(jià)值和實(shí)際意義[8]。
β-甘露聚糖酶的來(lái)源非常廣泛,包括動(dòng)植物和微生物。其中動(dòng)物來(lái)源主要是低等動(dòng)物(如蝸牛和海洋軟體動(dòng)物等)的腸道分泌液,哺乳動(dòng)物體內(nèi)一般不含此酶。Yamaura等[9]從海螺和一種海洋軟體動(dòng)物中純化出了內(nèi)切β-甘露聚糖酶;Xu等[10]從軟體動(dòng)物貽貝中也分離純化得到了β-甘露聚糖酶。許多植物(如蘆筍、咖啡、胡蘿卜、魔芋、四棱豆、長(zhǎng)角豆、咖啡豆和瓜兒豆等)萌發(fā)的種子以及番茄果實(shí)和種子中都含有甘露聚糖酶[11]。而微生物是甘露聚糖酶的最主要來(lái)源,包括細(xì)菌、真菌和放線菌等。截至目前,研究較多的是細(xì)菌類的芽胞桿菌、枯草桿菌和假單胞菌,真菌類的曲霉、里氏木霉,以及放線菌類的鏈霉菌等[12]。微生物來(lái)源的β-甘露聚糖酶優(yōu)點(diǎn)很多,包括酶活性高、提取方便、生產(chǎn)成本低、pH和溫度作用范圍廣以及底物專一性較高等。因此,微生物來(lái)源的β-甘露聚糖酶已成為工業(yè)用酶的主要來(lái)源和近年來(lái)的研究熱點(diǎn)。尤其極端微生物生長(zhǎng)的特殊條件與工業(yè)環(huán)境很相近,隨著對(duì)嗜熱酶反應(yīng)機(jī)理和分子生物學(xué)研究的逐步深入,開(kāi)發(fā)嗜熱酶產(chǎn)品具有廣闊的前景[13]。
β-甘露聚糖酶根據(jù)最適pH的不同可分為酸性β-甘露聚糖酶、中性β-甘露聚糖酶和堿性β-甘露聚糖酶;根據(jù)最適溫度的不同,可分為嗜熱β-甘露聚糖酶、中溫β-甘露聚糖酶和低溫β-甘露聚糖酶。嗜熱甘露聚糖酶常用的獲取途徑包括:從嗜熱微生物中直接分離獲得,從常規(guī)生物來(lái)源中獲得,或通過(guò)蛋白質(zhì)工程、基因改造的方法獲得。
糖苷水解酶由催化模塊、非催化的碳水化合物結(jié)合模塊以及l(fā)inker區(qū)和其他一些輔助模塊組成[14]。根據(jù)催化域氨基酸序列及結(jié)構(gòu)特征,糖苷水解酶被劃分為133個(gè)家族。β-甘露聚糖酶屬于糖苷水解酶(GH)5、26或113家族。截至目前(2014年8月),公共數(shù)據(jù)庫(kù)中(Genbank和 http://www.cazy.org/)已經(jīng)報(bào)道的β-甘露聚糖酶序列共有232個(gè),包括GH5家族126個(gè)(其中細(xì)菌來(lái)源的56個(gè),真菌來(lái)源的70個(gè)),GH26家族104個(gè)(其中細(xì)菌來(lái)源的88個(gè),真菌來(lái)源的9個(gè),另有7個(gè)未進(jìn)行分類),GH113家族目前報(bào)道的只有2個(gè)(均來(lái)源于細(xì)菌)。其中有22個(gè)β-甘露聚糖酶開(kāi)展了蛋白質(zhì)晶體結(jié)構(gòu)解析研究,包括GH5家族14個(gè)(其中細(xì)菌來(lái)源的8個(gè),真菌來(lái)源的有6個(gè)),GH26家族7個(gè)(其中細(xì)菌來(lái)源的5個(gè),真菌來(lái)源的2個(gè))及GH113家族1個(gè)(來(lái)源于細(xì)菌)。根據(jù)序列的相似性,GH5甘露聚糖酶又被分為三個(gè)亞家族,包括GH5-7、GH5-8和GH5-10[15]。序列相似性在25%以上的甘露聚糖酶歸為同一個(gè)亞家族,其中細(xì)菌來(lái)源的GH5甘露聚糖酶多屬于GH5-8亞家族,真菌來(lái)源的GH5甘露聚糖酶多屬于GH5-7亞家族。盡管已知GH5和GH26在親核基團(tuán)、供體質(zhì)子和折疊方式上均相似,但是它們序列相似性不高。甘露聚糖酶氨基酸序列的保守性在不同類生物個(gè)體及不同家族酶蛋白之間有較大差別。
β-甘露聚糖酶屬于典型的(β/α)8桶狀結(jié)構(gòu),催化殘基分別位于第4和第7 β折疊片上,且至少有4個(gè)殘基與底物結(jié)合位點(diǎn)有關(guān)[16]。不同酶中碳水化合物結(jié)合模塊共發(fā)現(xiàn)38 674個(gè),其分類共分布在69個(gè)家族和215個(gè)未分類的碳水化合物結(jié)合模塊(carbohydrate-binding module,CBM)家族。
根據(jù)構(gòu)成,可以將催化底物甘露聚糖分為四類:均一甘露聚糖(β-1,4-D-甘露糖構(gòu)成的主鏈)、葡甘露聚糖(β-1,4-D-甘露糖和 β-1,4-D-葡萄糖構(gòu)成的主鏈)、半乳甘露聚糖(帶有半乳糖側(cè)鏈的β-1,4-D-甘露糖)和半乳葡甘露聚糖(帶有半乳糖側(cè)鏈的 β-1,4-D-甘露糖和 β-1,4-D-葡萄糖構(gòu)成的主鏈)[17]。這些多糖均呈線狀的或分枝的多糖苷鏈。甘露聚糖存在于自然界中的許多植物中,半乳糖甘露聚糖大多存在于長(zhǎng)角豆和瓜兒豆的胚乳中,而葡萄糖甘露聚糖大多存在于魔芋球莖中。不同來(lái)源的甘露聚糖有著不同的構(gòu)成,它們的分子量以及主側(cè)鏈的組成均不相同(見(jiàn)表1)。
β-1,4-甘露聚糖酶的活性受到側(cè)鏈以及主鏈上D-葡萄糖的含量的影響。α-半乳糖殘基和葡萄糖殘基在主鏈中的位置、含量及酯酞化的程度,底物本身的物理狀態(tài)(例如溶液的黏度和底物狀態(tài))也會(huì)影響不同來(lái)源的β-甘露聚糖酶的鏈切割方式和水解程度。例如結(jié)晶態(tài)的甘露聚糖就不易被酶降解[19,20],朱劼等[20]在酸性 β-甘露聚糖酶的固態(tài)發(fā)酵工藝研究中發(fā)現(xiàn)水與固料的比例為1.2∶1時(shí)要比0.8∶1時(shí)酶活高出1.6倍。有學(xué)者研究甘露聚糖酶降解魔芋膠或槐豆膠時(shí),作用于多糖鏈非還原端的第3個(gè)或第4個(gè)糖分子,降解產(chǎn)物為 MG、GM、MM、GG、MMM、GGM、GMM、MGM、MMMM、GMMG、GMMM、GGMM 和 MMMMM[21]。雖然不同來(lái)源甘露聚糖酶的切割方式和水解程度不同,但主要產(chǎn)物都是低聚糖,很少產(chǎn)生或不產(chǎn)生單糖,如 Han等[22]發(fā)現(xiàn) Man5A-TM1和 Man5ATM2分解多聚糖為聚合度大于3的低聚糖;Bacillus sp.MSJ-5來(lái)源的甘露聚糖酶水解多聚糖為二糖至六糖,以及非常少量的單糖[23]。
表1 不同來(lái)源的甘露聚糖的組成[18] Table 1 The composition of different sources of mannans.
能夠在極端環(huán)境下生長(zhǎng)的微生物稱為極端微生物[24]。根據(jù)極端微生物的不同生活環(huán)境,極端微生物又被分為嗜鹽菌、嗜熱菌、嗜壓菌和嗜酸菌等。極端微生物能夠生產(chǎn)一些具有商業(yè)價(jià)值的工業(yè)產(chǎn)品,例如,酶、抗生素和激素等[25,26]。大多數(shù)微生物的生長(zhǎng)溫度范圍為20~45℃之間,而將能夠在45℃以上正常生長(zhǎng)的微生物稱為嗜熱微生物[27]。其中嗜熱細(xì)菌和嗜熱古菌近來(lái)一直是人們研究的主要對(duì)象,而對(duì)嗜熱真菌的關(guān)注則要少一些。
嗜熱酶是一類酶催化最適反應(yīng)溫度為60℃以上的酶,主要是從嗜熱微生物中獲得[28]。從20世紀(jì)90年代開(kāi)始,生物科技的發(fā)展和應(yīng)用促進(jìn)了人們對(duì)嗜熱酶的探索研究[29]。研究發(fā)現(xiàn),大多數(shù)嗜熱微生物產(chǎn)生的嗜熱酶在高溫條件下具有良好的熱穩(wěn)定性,克服了中溫酶(20~55℃)和低溫酶(2~20℃)在工業(yè)應(yīng)用中活性不穩(wěn)定的現(xiàn)象。在工業(yè)應(yīng)用中,嗜熱酶較中溫酶有非常明顯的優(yōu)勢(shì):第一,可降低酶制劑的成本。由于嗜熱酶的穩(wěn)定性好,使得該類酶即使在室溫下進(jìn)行分離提純、包裝運(yùn)輸也不失活,這就大大降低了生產(chǎn)成本。第二,可提高反應(yīng)的催化效率。由于反應(yīng)溫度的提高,使得分子運(yùn)動(dòng)速度加快,繼而酶催化能力大大加強(qiáng)。第三,能夠降低反應(yīng)能耗。由于嗜熱酶具有較高的熱穩(wěn)定性,使得在生產(chǎn)中不需要復(fù)雜的冷卻裝置來(lái)進(jìn)行溫度的調(diào)節(jié),這樣在降低生產(chǎn)成本、減少能耗的同時(shí),也減少了冷卻過(guò)程對(duì)環(huán)境所造成的污染。第四,降低雜菌的污染。嗜熱酶往往具有較高的反應(yīng)溫度(大于60℃),在此溫度下,少有雜菌能夠生存,繼而減少了細(xì)菌代謝物對(duì)產(chǎn)物的污染。第五,對(duì)化學(xué)變性劑及相關(guān)金屬離子具有較高的耐受力,因此擴(kuò)大了酶反應(yīng)的適用范圍[30,31]。
嗜熱酶較高的反應(yīng)活性以及較好的穩(wěn)定性,使得它在生物質(zhì)能源、化學(xué)制品、食品、飼料、醫(yī)藥和石油開(kāi)采等方面都有廣泛的應(yīng)用前景。但是目前從天然環(huán)境中獲得的嗜熱甘露聚糖酶較少[32~34],而且天然存在的嗜熱甘露聚糖酶的熱穩(wěn)定性并不理想,影響了其在生產(chǎn)應(yīng)用中的效果,如盧海強(qiáng)等[33]的Man5XZ7最適溫度為80℃,但僅在50℃下保持穩(wěn)定。再者,動(dòng)物體內(nèi)消化道為酸性環(huán)境,飼料用甘露聚糖酶應(yīng)在強(qiáng)酸性條件下能發(fā)揮作用,但目前已獲得的嗜熱甘露聚糖酶的最適 pH 大多都在 4.0 ~ 5.0[33,34]。因此,為了更好地適應(yīng)工業(yè)生產(chǎn)的需要,已開(kāi)始嘗試通過(guò)基因改造的方法提高甘露聚糖酶的熱穩(wěn)定性并改變其酸堿適應(yīng)性。
嗜熱β-1,4-甘露聚糖酶具有高比活,以及高溫下高活性的特點(diǎn)[7,34],在很多工業(yè)領(lǐng)域都倍受關(guān)注。例如酶法水解半乳甘露聚糖被應(yīng)用于石油和天然氣行業(yè)來(lái)提高石油和天然氣的開(kāi)采率,由于石油開(kāi)采需要80℃以上的極端溫度,應(yīng)用嗜熱甘露聚糖酶非常適合[7]。到目前為止,已報(bào)道的嗜熱甘露聚糖酶約有30個(gè),其中,最適溫度大于80℃的極端嗜熱甘露聚糖酶有6個(gè)(見(jiàn)表2)。
表2 最適溫度大于80℃的極端嗜熱甘露聚糖酶 Table 2 Extremely thermophilic mannanases with optimum temperature higher than 80℃.
之前大多數(shù)已經(jīng)報(bào)道的嗜熱甘露聚糖酶都屬于26家族[35],但近幾年從真菌中分離得到了屬于5家族成員的極端嗜熱甘露聚糖酶,包括來(lái)自Aspergillus niger BK01 的 ManBK[32],來(lái)自 Aspergillus nidulans XZ7 的 Man5XZ7[33]和來(lái)自 Talaromyces leycettanus JCM12802 的 Man5A[34]。
在微生物來(lái)源的甘露聚糖酶中,已有90個(gè)GH5 β-甘露聚糖酶進(jìn)行了酶學(xué)性質(zhì)的測(cè)定,其中42個(gè)來(lái)源于細(xì)菌,48個(gè)來(lái)源于真菌。GH26中有41個(gè)進(jìn)行了酶學(xué)性質(zhì)的測(cè)定,其中34個(gè)來(lái)源于細(xì)菌,只有7個(gè)來(lái)源于真菌。而113家族中目前只有一個(gè)進(jìn)行了酶學(xué)性質(zhì)的測(cè)定,其來(lái)源于細(xì)菌。
目前已經(jīng)報(bào)道的甘露聚糖酶的最適溫度大多在50~60℃之間。而關(guān)于嗜熱甘露聚糖酶的報(bào)道還較少。真菌來(lái)源的甘露聚糖酶最適溫度最高的為 90℃,來(lái)源 于 Talaromyces leycettanus JCM12802[34],其次是來(lái)源于 A.nidulans XZ3 的Man5XZ3[38]和來(lái)源于 Aspergillus niger BK01 的ManBK[39],最適溫度均為80℃。細(xì)菌甘露聚糖酶最適溫度最高的為90℃,來(lái)源于Thermotoga neapolitana[35]。
影響甘露聚糖酶蛋白嗜熱的結(jié)構(gòu)因素有很多,包括氫鍵、鹽橋和二硫鍵等。在 β-甘露聚糖酶嗜熱改良方面,已經(jīng)有多個(gè)報(bào)道,在β-甘露聚糖酶熱穩(wěn)定性的結(jié)構(gòu)研究方面也已經(jīng)取得了一定的進(jìn)展[40]。目前,主要是通過(guò)對(duì)從自然界中獲得的甘露聚糖酶進(jìn)行理性設(shè)計(jì),通過(guò)同源建模、分子對(duì)接、二級(jí)結(jié)構(gòu)分析以及動(dòng)力學(xué)模擬等手段對(duì)其進(jìn)行分子改良從而獲得嗜熱的β-甘露聚糖酶。此外,也有文獻(xiàn)報(bào)道糖基化修飾以及碳水化合物結(jié)合模塊對(duì)甘露聚糖酶的熱穩(wěn)定性有影響[40]。
2.4.1 N-糖基化修飾 糖基化是在酶的控制下,蛋白質(zhì)或脂質(zhì)附加上糖類的過(guò)程。糖基化發(fā)生于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中。蛋白質(zhì)經(jīng)過(guò)糖基化作用之后,可形成糖蛋白。蛋白質(zhì)糖基化可以根據(jù)糖苷鏈類型的不同分為四類,包括-O-糖苷鍵型(以絲氨酸、蘇氨酸、羥賴氨酸和羥脯氨酸的羥基為連接點(diǎn)形成);-N-糖苷鍵型(以天冬酞胺的酚胺基、N末端氨基酸的α-氨基以及賴氨酸或精氨酸的ω-氨基為連接點(diǎn)形成);醋糖苷鍵型(以天冬氨酸或谷氨酸的游離羧基為連接點(diǎn)形成)以及以半胱氨酸為連接點(diǎn)的糖苷鍵。
目前已經(jīng)有多篇文獻(xiàn)報(bào)道N-糖基化對(duì)酶的熱穩(wěn)定性的促進(jìn)作用。如謝春芳等[41]以來(lái)源于Armillariella tabescens的β-甘露聚糖酶 Man47為研究對(duì)象,利用計(jì)算化學(xué)對(duì)Man47進(jìn)行理性設(shè)計(jì),經(jīng)過(guò)分子對(duì)接、二級(jí)結(jié)構(gòu)分析和糖基化的可行性分析后,構(gòu)建具有 EAS(enhanced aromatic sequence)序列的突變體G-123作為N-糖基化的突變位點(diǎn)以提高其熱穩(wěn)定性。王彩虹等[34]從Talaromyces leycettanus JCM12802中獲得的Man5A,其糖基化程度高的蛋白Man5A1在70℃下處理1 h,酶活沒(méi)有損失,而糖基化程度低的蛋白Man5A2只剩余了40%的酶活。Fonseca-Maldonado等[42]和 Wei等[43]也報(bào)道了類似的研究結(jié)果。研究顯示,N-糖基化提高酶的熱穩(wěn)定性可能是由于N-糖基化減少了蛋白的不正確折疊從而提高了蛋白折疊的可逆性[44]。
2.4.2 碳水化合物結(jié)合模塊對(duì)熱穩(wěn)定性的影響 糖苷水解酶中的碳水化合物結(jié)合模塊(CBM)結(jié)構(gòu)域可能會(huì)促進(jìn)酶與底物的聯(lián)系,從而促進(jìn)酶的熱穩(wěn)定性。目前已經(jīng)有很多文獻(xiàn)報(bào)道CBM對(duì)甘露聚糖酶的熱穩(wěn)定性有促進(jìn)作用。王彩虹等[34]從 Talaromyces leycettanus JCM12802 中獲得的Man5A,在70℃處理1 h,Man5A可以維持幾乎100%的活性,然而其去掉 CBM(ManACBM)后穩(wěn)定性明顯降低,ManA-CBM僅維持70%的活性。盧海強(qiáng)等[38]從Aspergillus nidulans XZ3中獲得的Man5XZ3的熱穩(wěn)定性要明顯優(yōu)于去掉CBM 后的 Man5ΔCBM,Man5XZ3在60℃處理1 h能維持50%的酶活,Man5ΔCBM僅能維持30%左右。
到目前為止,嗜熱β-甘露聚糖酶的研究已經(jīng)取得了很大的進(jìn)展。首先,在嗜熱β-甘露聚糖酶的基因資源挖掘方面,已經(jīng)從嗜熱微生物中發(fā)現(xiàn)了6個(gè)最適溫度大于80℃的極端嗜熱甘露聚糖酶,其中 Aspergillus niger BK01 來(lái)源的 ManBK[39]和TalaromycesleycettanusJCM12802來(lái)源的Man5A[34]的熱穩(wěn)定溫度都能達(dá)到70℃。今后利用生物信息學(xué)分析、環(huán)境基因組或轉(zhuǎn)錄組功能基因的直接克隆等技術(shù)將大大加快嗜熱β-甘露聚糖酶基因資源的獲得。
很多β-甘露聚糖酶雖然極端嗜熱,但是存在熱穩(wěn)定性差、不能在酸性環(huán)境發(fā)揮作用,以及表達(dá)量低等特點(diǎn)。因此在今后研究的重點(diǎn)將集中于以下幾個(gè)方面。第一,通過(guò)生物信息學(xué)分析對(duì)嗜熱甘露聚糖酶進(jìn)行改造,以適應(yīng)生產(chǎn)需求;第二,對(duì)影響外源嗜熱甘露聚糖酶的轉(zhuǎn)譯、轉(zhuǎn)運(yùn)和分泌等相關(guān)的分子機(jī)制進(jìn)行研究,構(gòu)建基于受體菌株優(yōu)化、基因優(yōu)化、表達(dá)元件優(yōu)化、目標(biāo)基因定點(diǎn)整合與拷貝數(shù)控制技術(shù)等的高效生物反應(yīng)器,以提高表達(dá)量。目前,嗜熱甘露聚糖酶基因序列及其酶蛋白結(jié)構(gòu)數(shù)據(jù)不斷累積,新的具有嗜熱特性天然酶也時(shí)有發(fā)現(xiàn),計(jì)算機(jī)輔助酶分子模擬技術(shù)的發(fā)展使人們對(duì)嗜熱β-甘露聚糖酶的嗜熱機(jī)制及快速分子改良研究成為可能。
[1]Gilbert H J,St?lbrand H,Brumer H.How the walls come crumblingdown:Recentstructuralbiochemistry ofplant polysaccharide degradation[J].Curr.Opin.Plant.Biol.,2003,11(3):338-348.
[2]Shallom D,Shoham Y.Microbial hemicellulases[J].Curr.Opin.Microbiol.,2003,(6):219-228.
[3]Scheller H V,Ulvskov P.Hemicelluloses[J].Plant Biology,2010,61:263.
[4]St?lbrand H,Siika-ahoM,Tenkanen M.Purification and characterization of two β-mannanases from Trichoderma reesei[J].J.Biotechnol.,1993,29:229-242.
[5]張婕,趙敏.β-甘露聚糖酶的研究進(jìn)展[J].黑龍江醫(yī)藥,2011,24:248-250.
[6]Várnai A,Huikko L,Pere J,et al..Synergistic action of xylanase and mannanase improves the total hydrolysis of softwood[J].Bioresour.Technol.,2011,102(19):9096-9104.
[7]Comfort D A,Chhabra S R,Conners S B,et al..Strategic biocatalysiswith hyperthermophilic enzymes[J]. Green Chem.,2004,6:459-465.
[8]Demirjian D C,Morís-Varas F,Cassidy C S.Enzymes from extremophiles[J].Curr.Opin.Chem.Biol.,2001,5:144-151.
[9]Yamaura I,Matsumoto T.Puri fi cation and some properties of endo-1,4-D-mannanase from a mud snail,Pomaceainsularus(de Ordigny)[J].Biosci.Biotech.Biochem.,1993,57:1316-1319.
[10] Xu B,H?gglund P,St?lbrand H.Endo-β-1,4-mannanases from blue mussel,Mytilus edulis:purification,characterization,and mode of action[J].J.Biotechnol.,2002,92:267-277.
[11] Marraccini P,Rogers J W,Allard C,et al..Molecular and biochemical characterization of endo-β-mannanases from germinating coffee(Coffea arabica)grains[J].Planta,2001,213:296-308.
[12]徐 揚(yáng),劉起麗,聶國(guó)興,等.甘露聚糖酶的研究進(jìn)展[J].河南農(nóng)業(yè)科學(xué),2011,40:3437.
[13]張?jiān)迫A.嗜堿芽孢桿菌N16-5堿性β-甘露聚糖酶的嗜堿機(jī)制研究[D].哈爾濱:東北農(nóng)業(yè)大學(xué),碩士學(xué)位論文,2004.
[14] Mizutani R,Wakamatsu A,Tanaka N,et al..Identification and characterization of novel genotoxic stress-inducible nuclear long noncoding RNAs in mammalian cells[J].PloS ONE,2012,7(4):e34949.
[15] Aspeborg H,Coutinho P M,Wang Y,et al..Evolution,substrate specificity and subfamily classification of glycoside hydrolase family 5(GH5)[J].BMC Evol.Biol.,2012,12:186.
[16] Chauhan P S,Puri N,Sharma P,et al..Mannanases:microbial sources,production,properties and potential biotechnological applications[J].Appl.Microbiol.Biotechnol.,2012,93:1817-1830.
[17] Mikkonen K S,Yadav M P,Cooke P,et al..Films from spruce galactoglucomannan blended with poly(vinyl alcohol),corn arabinoxylan,and konjac glucomannan[J].BioResources,2008,3(1):178-191.
[18]李劍芳,鄔敏辰,夏文水.微生物β-甘露聚糖酶的研究進(jìn)展[J]. 江蘇食品與發(fā)酵,2005,(3):4-9.
[19]熊郃,干信.β-甘露聚糖酶產(chǎn)生菌 R10的產(chǎn)酶特性研究[J]. 工業(yè)微生物,2005,35:29-33.
[20]朱 劼,李劍芳,鄔敏辰.酸性β-甘露聚糖酶的固態(tài)發(fā)酵工藝研究[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2005,33:139-143.
[21]許牡丹,楊偉東,許寶紅,等.微生物β-甘露聚糖酶的制備與應(yīng)用研究進(jìn)展[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2006,27(9):31-34.
[22] Han Y,Dodd D,Hespen C W,et al..Comparative analyses of two thermophilic enzymes exhibiting both β-1,4 mannosidic and β-1,4 glucosidiccleavageactivitiesfrom Caldanaerobius polysaccharolyticus[J].J.Bacteriol.,2010,192:4111-4121.
[23] Zhang M,Chen X,Zhang Z,et al..Purification and functional characterization of endo-β-mannanase MAN5 and its application in oligosaccharide production from konjac flour[J].Appl.Microbiol.Biotechnol.,2009,83(5):865-873.
[24] Horikoshi K,Grant W D.Extremophiles:Microbial Life in Extreme Environments[M].New York:Wiley-Liss,1998.
[25] Kristjansson J K. Thermophilic organisms as sources of thermostable enzymes[J].Trends Biotechnol.,1989,12:349-353.
[26] Maheshwari R,Bharadwaj G,Bhat M K.Thermophilic fungi:Their physiology and enzymes[J].Microbiol.Mol.Biol.Rev.,2000,64(3):461-488.
[27] Cooney D G,Emerson R.Thermophilic Fungi:An Account of TheirBiology, Adivities and Classification[M]. San Francisco:W H Freeman& Co.,1964.
[28] van den Burg B.Extremophiles as a source for novel enzymes[J].Curr.Opin.Microbiol.,2003,6:213-218.
[29] Demirjian D C,Morís-Varas F,Cassidy C S.Enzymes from extremophiles[J].Curr.Opin.Chem.Biol.,2001,5(2):144-151.
[30] Adams M W,Kelly R M.Thermostability and thermoactivity of enzymes from hyperthermophilic archaea[J].Bioorg.Med.Chem.,1994,2(7):659-667.
[31] Danson M J,Hough D W,Russell R J, et al..Enzyme thermostability and thermoactivity[J].Protein Eng.,1996,9(8):629-630.
[32] Zhao W,Zheng J,Zhou H B.A thermotolerant and cold-active mannan endo-1,4-β-mannosidase from Aspergillus niger CBS513.88:Constitutive overexpression and high-density fermentation in Pichia pastoris[J].Bioresour.Technol.,2011,102:7538-7547.
[33] Lu H,Zhang H,Shi P,et al..A family 5 β-mannanase from the thermophilic fungus Thielavia arenaria XZ7 with typical thermophilic enzyme features[J]. Appl. Microbiol.Biotechnol.,2013,97:8121-8128.
[34] Wang C,Luo H,Niu C,et al..Biochemical characterization of a thermophilic β-mannanase from Talaromycesleycettanus JCM12802 with high specific activity[J].Appl.Microbiol.Biotechnol.,2014:1-12.
[35] Duffaud G D,McCutchen C M,Leduc P,et al..Purification and characterization of extremely thermostable beta-mannanase,beta-mannosidase, and alpha-galactosidase from the hyperthermophilic eubacterium Thermotoga neapolitana 5068[J].Appl.Environ.Microbiol.,1997,63:169-177.
[36] Gibbs M D,Reeves R A,Sunna A,et al..Sequencing and expression of a β-mannanase gene from the extreme thermophile Dictyoglomus thermophilum Rt46B.1,and characteristics of the recombinant enzyme[J].Curr.Microbiol.,1999,39:351-357.
[37] Politz O,Krah M,Thomsen K,et al..A highly thermostable endo-1,4-β-mannanase from the marine bacterium Rhodothermusmarinus[J].Appl.Microbiol.Biotechnol.,2000,53:715-721.
[38] Lu H,Luo H,Shi P,et al..A novel thermophilic endo-β-1,4-mannanase from XZ3:functional roles of carbohydrate-binding module and Thr/Ser-rich linker region[J].Appl.Microbiol.Biotechnol.,2014,98:2155-2163.
[39] Bien-Cuong D,Thi-Thu D,Berrin J G, et al..Cloning,expression in Pichia pastoris,and characterization ofa thermostableGH5 mannan endo-1,4-β-mannosidasefrom Aspergillus niger BK01[J].Microb.Cell Fact.,2009,8:59.
[40] Tanaka M,Umemoto Y,Okamura H,et al..Cloning and characterization of a β-1,4-mannanase 5C possessing a family 27 carbohydrate-binding module from a marine bacterium,Vibrio sp.strain MA-138[J].Biosci.Biotechnol.Biochem.,2009,73:109-116.
[41]謝春芳,黎玉鳳,劉大嶺,等.利用 N-糖基化修飾對(duì)β-甘露聚糖酶Man47的穩(wěn)定性改造[J].中國(guó)生物工程雜志,2013,33:79-85.
[42] Fonseca-Maldonado R,VieiraD S,AlpontiJS, et al..Engineering the pattern of protein glycosylation modulates the thermostability of a GH11 xylanase[J].J.Biol.Chem.,2013,288:25522-25534.
[43] Wei W,Chen L,Zou G,et al..N-glycosylation affects the proper folding,enzymatic characteristics and production of a fungal β-glucosidase[J].Biotechnol.Bioeng.,2013,110:3075-3084.
[44] Qi F,Zhang W,Zhang F,et al..Deciphering the effect of the different N-glycosylation sites on the secretion,activity,and stability of cellobiohydrolase I from Trichodermareesei[J].Appl.Environ.Microbiol.,2014,80:3962-3971.