王志宏,彭 勝,雷明盛,2,3,鄭 陽,史麗娟,周云雷,彭密軍
1 吉首大學(xué) 林產(chǎn)化工工程湖南省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 杜仲湖南省工程實(shí)驗(yàn)室,張家界 427000;2武漢大學(xué)中南醫(yī)院,武漢 430071;3 湖南省張家界市人民醫(yī)院,張家界 427000
杜仲(Eucommia ulmoides Oliv.)是杜仲科杜仲屬植物,因其具有“三降六抗一增”功效而成為我國(guó)特有的名貴滋補(bǔ)藥材[1]。它富含多種活性成分,如黃酮類、木脂素類、苯丙素類和環(huán)烯醚萜類等。其中黃酮類物質(zhì)有明顯的保護(hù)心血管、抗氧化、清除自由基、增強(qiáng)免疫以及抗腫瘤等功效[2]。我國(guó)杜仲種植范圍廣泛,杜仲葉資源豐富易得,且杜仲葉中總黃酮含量較高。研究表明,杜仲葉富含多種黃酮:槲皮素、山奈酚、山奈酚-O-β-D-葡萄糖苷、槲皮素-3-O-β-D-葡萄糖苷、槲皮素-3-O-蕓香糖苷、槲皮素-3-半乳糖苷、槲皮素-3-O-葡萄糖基-(1→2)-阿拉伯糖苷或槲皮素-3-O-木糖基-(1→2)-葡萄糖苷等[6,7]。但在消化、吸收和代謝過程中,黃酮苷元比黃酮苷的效價(jià)高[3-5]。趙德義[8]等人通過比較杜仲黃酮和銀杏黃酮的HPLC 指紋圖譜發(fā)現(xiàn),杜仲黃酮苷元主要為槲皮素和山奈酚。酸水解可將糖苷水解為對(duì)應(yīng)的苷元,而聚酰胺樹脂對(duì)含酚羥基化合物的富集純化效果較好,為富集總黃酮的理想材料,采用聚酰胺樹脂富集杜仲總黃酮的條件較為成熟[9],但是對(duì)杜仲黃酮苷元的富集工藝卻很少見報(bào)道。本研究參考《中國(guó)藥典》中銀杏黃酮的水解工藝,對(duì)杜仲黃酮的水解工藝進(jìn)行考察[10],進(jìn)而考察苷元的富集工藝,以期為杜仲葉資源優(yōu)勢(shì)向經(jīng)濟(jì)優(yōu)勢(shì)轉(zhuǎn)化尋找有效途徑。
杜仲葉于2013 年11 月份采集于吉首大學(xué)張家界校區(qū),經(jīng)廖博儒研究員鑒定為杜仲;將采集的矮林杜仲葉,經(jīng)微波殺青,50 ℃烘干,粉碎,過80 目篩,備用;槲皮素(Quercetin,批號(hào)YA0806YB13,上海源葉生物科技有限公司,純度≥98%,HPLC);山奈酚(Kaempferol,批號(hào)20130329,上海源葉生物科技有限公司,純度≥98%,HPLC);甲醇為色譜純(國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);聚酰胺樹脂(60~100目)、鹽酸、氫氧化鈉、醋酸、95%乙醇等均為分析純。
LC-20A 高效液相色譜儀,日本島津;U-3900 紫外分光光度計(jì),日本HITCHI 公司;BM400 型數(shù)顯電熱恒溫水浴鍋,日本YAMATO;AEL-405M 型萬分之一天平,日本SHIMADZU;GZX-9146-MBE 數(shù)顯鼓風(fēng)干燥箱,上海博迅實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠。
1.3.1 杜仲黃酮苷元HPLC 檢測(cè)條件
高效液相色譜條件:Diamonsil C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)色譜柱;流動(dòng)相:甲醇-0.2%磷酸(63∶37);檢測(cè)波長(zhǎng):370 nm;流速:1.0 mL/min;柱溫:30 ℃;進(jìn)樣量20 μL[11]。
1.3.2 杜仲黃酮苷元TLC 檢測(cè)條件
薄層色譜檢測(cè)條件:展開劑為甲苯-乙酸乙酯-甲酸(9∶3∶1),顯色劑為1%三氯化鋁-乙醇溶液,顯色、晾干后置于紫外燈365 nm 下檢測(cè)[12]。
1.3.3 杜仲葉提取物樣品制備方法
取適量杜仲葉樣品,加入95%乙醇,超聲輔助提取60 min,過濾,濾液保存?zhèn)溆?濾渣再用60%乙醇以1∶20(g/mL)料液比超聲輔助提取60 min,過濾;合并兩次濾液,減壓濃縮、冷凍干燥,得杜仲葉提取物[13]。
1.3.4 水解杜仲黃酮單因素與正交試驗(yàn)
實(shí)驗(yàn)以黃酮苷元槲皮素和山奈酚總和為考察指標(biāo)。準(zhǔn)確稱取20 mg 杜仲葉提取物,經(jīng)參考相關(guān)文獻(xiàn)及在預(yù)實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上[14,15],確定單因素考察如下:料液比(mg/mL)為4∶1、3.5∶1、3∶1、2.5∶1、2∶1、1.5∶1 和1∶1,水解時(shí)間考察范圍為2、3、4、5、6 h,水解溫度考查范圍為50、60、70、80、90 ℃,鹽酸濃度為3、4、5、6、7、8 mol/L。依據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,選擇L9(34)的正交實(shí)驗(yàn)表進(jìn)行設(shè)計(jì),確定水解杜仲黃酮制備黃酮苷元的最佳工藝,試驗(yàn)重復(fù)3 次。
1.3.5 黃酮苷元的富集工藝
在最佳工藝條件下制備適量的杜仲葉黃酮苷元樣品,減壓濃縮后水洗至中性;用甲醇洗滌濾餅,收集濾液,薄層色譜檢測(cè)至無目標(biāo)物止。將濾液與適量聚酰胺樹脂混合,進(jìn)行充分的靜態(tài)吸附,混合裝柱,再經(jīng)梯度洗脫,薄層色譜跟蹤檢測(cè),收集相同洗脫液,合并、減壓濃縮、冷凍干燥得粗樣品,HPLC 法測(cè)其含量;然后將所得粗產(chǎn)品通過干法上樣進(jìn)行聚酰胺二次富集,HPLC 跟蹤檢測(cè),收集相同洗脫液,合并、減壓濃縮、冷凍干燥得純化樣品,測(cè)定樣品中黃酮苷元含量。
2.1.1 料液比對(duì)水解的影響
在70 ℃條件下,以甲醇∶鹽酸為4∶1,鹽酸濃度為6 mol/L,將料液比(mg/mL)設(shè)為4∶1、3.5∶1、3∶1、2.5∶1、2∶1、1.5∶1 和1∶1,水解4 h,結(jié)果見圖1(A)。隨料液比比例增加,水解所得黃酮苷元的含量呈增加趨勢(shì),但當(dāng)料液比達(dá)到2∶1 之后,苷元含量基本趨于平穩(wěn)。原因可能是料液比較大時(shí),水解反應(yīng)及物質(zhì)的溶解在體系中不充分;當(dāng)溶劑比例提高到一定程度,即料液比較小時(shí),雖然反應(yīng)較為徹底,但體系中酸含量的增大又會(huì)對(duì)苷元造成影響,并從節(jié)約實(shí)驗(yàn)成本角度出發(fā),所以將實(shí)驗(yàn)料液比選為2∶1(mg/mL)。
2.1.2 水解溫度對(duì)水解的影響
以料液比為2∶1(mg/mL),甲醇∶鹽酸為4∶1,鹽酸濃度為6 mol/L,溫度為50、60、70、80、90 ℃,水解4 h,考察不同水解溫度對(duì)水解黃酮苷元含量的影響,結(jié)果見圖1(B)。由圖可知,隨溫度的升高,分子運(yùn)動(dòng)加快,有利于水解反應(yīng)的進(jìn)行,但是溫度過高,副反應(yīng)增加,雜質(zhì)相應(yīng)增多。綜合考慮,確定水解溫度為70 ℃左右。
2.1.3 水解時(shí)間對(duì)水解的影響
按照水解條件,以料液比為2∶1(mg/mL),甲醇∶鹽酸為4∶1,鹽酸濃度為6 mol/L,水解溫度為70℃,水解時(shí)間分別為2、3、4、5、6 h,進(jìn)行水解,考察不同水解時(shí)間對(duì)水解得黃酮苷元含量的影響,結(jié)果見圖1(C)。由圖可得,水解4 h 時(shí),苷元的含量達(dá)到最大值,當(dāng)水解反應(yīng)時(shí)間較短時(shí),水解不充分;水解時(shí)間過長(zhǎng)時(shí),在體系中會(huì)產(chǎn)生副產(chǎn)物從而影響苷元的含量。綜合考慮,確定水解時(shí)間為4 h 左右。
2.1.4 鹽酸濃度對(duì)水解的影響
在70 ℃下,料液比為2∶1(mg/mL),鹽酸濃度分別為3、4、5、6、7、8 mol/L,甲醇∶鹽酸為4∶1,水解4 h,考察不同鹽酸濃度對(duì)水解得黃酮苷元含量的影響,結(jié)果見圖1(D)。由圖可得,隨鹽酸濃度的增加,苷元含量呈現(xiàn)先增后減的趨勢(shì),原因可能為酸雖然可以使糖苷鍵質(zhì)子化,但是酸的濃度過高,可能會(huì)對(duì)黃酮的母核造成破壞,降低黃酮苷元的含量。綜合考慮,確定水解鹽酸濃度為6 mol/L 左右。
根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,以水解溫度、水解時(shí)間和鹽酸濃度3 個(gè)指標(biāo)作為正交實(shí)驗(yàn)考察的優(yōu)化水平,每個(gè)因素選取3 個(gè)因素水平,進(jìn)行L9(34)正交實(shí)驗(yàn),因素水平表見表1,正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表2。
表1 因素水平表Table 1 Factors and levels for orthogonal experiments
表2 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 2 Results of orthogonal experiments
根據(jù)正交實(shí)驗(yàn)的結(jié)果,極差分析發(fā)現(xiàn),對(duì)杜仲黃酮水解工藝的影響較大的因素依次為鹽酸濃度、水解時(shí)間和水解溫度。方差分析結(jié)果見表3,由方差分析可得,水解溫度和水解時(shí)間對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響達(dá)到顯著,而鹽酸濃度對(duì)黃酮苷元含量的影響達(dá)到極顯著。綜合考慮,確定最佳的水解工藝為A3B1C2,即水解溫度為80 ℃,水解時(shí)間為3 h,鹽酸濃度為6 mol/L。
表3 方差分析表Table 3 Table of variance analysis
按照正交試驗(yàn)結(jié)果,在料液比為2∶1(mg/mL)條件下,將A3B1C2的工藝重復(fù)3 次,對(duì)該工藝的穩(wěn)定性進(jìn)行驗(yàn)證,苷元的含量為2.512%(RSD=0.059%),表明該工藝的重現(xiàn)性與穩(wěn)定性較好,達(dá)到優(yōu)化目的。
杜仲葉中黃酮苷元主要為槲皮素和山奈酚,但是其游離存在的含量很低,經(jīng)測(cè)定槲皮素的含量為0.021%,而山奈酚為0.005%,本實(shí)驗(yàn)通過酸水解杜仲黃酮使水解物中的苷元含量達(dá)到2.512%,提高近100 倍。
采用不同梯度的甲醇-水體系以2 BV/h 的流速進(jìn)行洗脫,最后用100%甲醇洗至檢測(cè)不到苷元為止。洗脫液用薄層色譜跟蹤檢測(cè),結(jié)果見表4。50%甲醇洗脫液中已經(jīng)含有苷元,含量極低,70%~100%洗脫液中苷元含量較高,合并洗脫液,濃縮,冷凍干燥,得黃酮苷元粗品。HPLC 法測(cè)其純度為12.87%。
表4 薄層檢測(cè)洗脫液中苷元的結(jié)果Table 4 Enriching result of flavonoid aglycone in the eluent with TLC
將上述所得樣品干法上樣,進(jìn)行聚酰胺二次富集。洗脫流速為2 BV/h,每梯度洗脫體積為5 BV,經(jīng)水與低濃度的醇溶液除雜之后,用70%、90%和100%甲醇溶液洗脫,每50 mL 收集一次。實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),50%甲醇洗脫液中并未檢測(cè)到杜仲黃酮苷元,黃酮苷元主要存在70%~100%洗脫液中,洗脫曲線如圖2 所示,合并成分相似的洗脫液,減壓濃縮,得杜仲黃酮苷元樣品。經(jīng)HPLC 法測(cè)定,黃酮苷元純度達(dá)63.19%,黃酮苷元純度較一步富集提升將近5 倍。
圖2 黃酮苷元的洗脫曲線Fig.2 The elution curve of flavonoid aglycone
杜仲黃酮苷元可由酸水解制備所得,在料液比為2∶1(mg/mL),水解溫度80 ℃,水解時(shí)間3 h,鹽酸濃度6 mol/L 的最佳工藝參數(shù)條件下,黃酮苷元最高含量可達(dá)2.512%;對(duì)水解液減壓濃縮、脫酸處理,經(jīng)聚酰胺一步富集,黃酮苷元含量為12.87%,所得樣品再干法上樣,經(jīng)聚酰胺兩步富集之后,杜仲黃酮苷元含量可達(dá)63.19%。
1 Li FD(李芳東),Du HY(杜紅巖).Eucommia ulmoides Oliv.(杜仲).Beijing:China Press of Traditional Chinese Medicine,2001.1-2.
2 Wang ZH(王志宏),Peng S(彭勝),Lei MS(雷明盛),et al.Advances in studies on biological activity of Eucommia ulmoides Oliv.Nat Prod Res Dev(天然產(chǎn)物研究與開發(fā)),2013,25:1302-1309.
3 Izumi T,Piskula,Osawas,et al.Soy isoflavone aglycones are absorbed faster and in higher amounts than their glucosides in humans.J Nutri Edu,2000,137:1695-1699.
4 Lv P(呂鵬),Huang XW(黃曉舞),Lv QJ(呂秋軍).Advances in studies on absorption,distribution,metabolism,of flavonoids.China J Chin Mater Med(中國(guó)中藥雜志),2007,32:1961-1964.
5 Crepy V,Morand C,Besson C,et al.Quercetin,butnot its glycolsides,is absorption from the rat stomach.J Agric Food Chem,2002,50:618-621.
6 Cheng J(成軍),Zhao YY(趙玉英),Cui YX(崔玉新),et al.Study on flavonoids from leave of Eucommia ulmoides Oliv.China J Chin Mater Med(中國(guó)中藥雜志),2000,25:284-286.
7 Fu GM(付桂明),Wan Y(萬茵),Zhang S(張碩),et al.Supercritical fluid extraction technology of flavonoids in Eucommia ulmoides Oliv.leaves and components analysis by LC-MS.Food Sci(食品科學(xué)),2007,28:128-131.
8 Zhao DY(趙德義),Gao JM(高錦明),Xu AX(許愛遐),et al.Study on fingerprint analysis and bioactive function of Eucommia ulmoides flavonoids.Acta Bot Boreal Occident Sin(西北植物學(xué)報(bào)),2003,23:1988-1990.
9 Lin CM(林春梅).Separation and purification of total flavones in burdock leaves by polyamide column.Food Ferment Ind(食品發(fā)酵與工業(yè)),2014,20:236-238.
10 Chinese Pharmacopoeia Commission(國(guó)家藥典委員會(huì)).Pharmacopoeia of the People’s Republic of China.Beijing:China Medical Science Press,2010.Vol I,296.
11 Wang ZH(王志宏),Zhou YL(周云雷),Peng S(彭勝),et al.Simultaneous determination of flavonoid aglycones from Eucommia ulmoides Oliv.by HPLC.Appl Chem Ind(應(yīng)用化工),2014,43:950-953.
12 Li CH(李春紅),Pan H(潘紅),He B(何兵),et al.TLC identification of quercetin and kaempferol and determination of total flavonoids in Toona sinensis leaves.J Luzhou Med Coll(瀘州醫(yī)學(xué)學(xué)報(bào)),2010,33:247-249.
13 Lv Q(呂強(qiáng)),Peng MJ(彭密軍),Peng S(彭勝),et al.Effect of different planting modes on contents of active ingredients in leaves,twig and bark in Eucommia ulmoides.Econ Forest Res(經(jīng)濟(jì)林研究),2012,30:73-76.
14 Wu Y(伍毅).Study on preparation of flavone aglycone from Ginkgo biloba L.extract.Wuxi:Jiangnan University(江南大學(xué)),MSc.2008.
15 Li FG,Zhou H,Sun DL,et al.An efficient method for the simultaneous determination of three flayone aglycones in FlosChrysanthemi by acid hydrolysis and HPLC.J Chin Pharm Sci,2009,18:55-59.