樂 意,劉 力
(貴州大學(xué)藥學(xué)院,貴州貴陽550025)
絞股藍(lán)籽油脂的提取工藝研究及成分分析
樂 意,劉 力*
(貴州大學(xué)藥學(xué)院,貴州貴陽550025)
通過單因素和正交試驗對超聲波輔助提取絞股藍(lán)籽油脂的工藝條件進(jìn)行優(yōu)化,并對所得油脂進(jìn)行成分分析。研究結(jié)果表明,超聲提取采用石油醚為提取溶劑時,最佳油脂提取工藝條件為料液比1∶8(g∶mL),超聲時間30 min,超聲功率400 W,超聲溫度50℃。在此最佳工藝條件下,絞股藍(lán)籽油脂提取率可達(dá)35.37%。所得絞股藍(lán)籽油脂密度0.915 1 g/mL,酸值0.739 8 mg KOH/g,皂化值185.919 7 mg KOH/g,平均分子質(zhì)量908.845 9 u,水分和揮發(fā)物含量0.281 9%。油脂中含有9種脂肪酸,其中6種為不飽和脂肪酸,占總脂肪酸含量的95%,含量最多的是α-桐酸(56.24%)。
絞股藍(lán)籽;提取工藝;超聲波;α-桐酸;不飽和脂肪酸
絞股藍(lán)(Gynostemma pentaphyllum)主要分布在秦嶺南坡、長江流域及其以南地區(qū)[1]。研究發(fā)現(xiàn),絞股藍(lán)中含有皂甙[2-3]、多糖[4]、黃酮[5]等化學(xué)成分,具有抗腫瘤[6-7]、保護(hù)心血管[8]、降血糖[9]等多種藥理作用,這引起人們對絞股藍(lán)開發(fā)利用的極大興趣。目前,對絞股藍(lán)的研究主要集中于絞股藍(lán)的種植技術(shù)[10]、絞股藍(lán)中皂甙[11-13]和多糖[14]等的提取工藝,針對絞股藍(lán)籽的研究較少。姜東亮等[15-16]研究發(fā)現(xiàn)絞股藍(lán)籽中含大量不飽和脂肪酸,尤其是α-桐酸含量非常豐富。本試驗主要對絞股藍(lán)籽油脂的提取方法及其工藝進(jìn)行研究,并采用氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用(gas chromatography-mass spectrometry,GC-MS)對提取出的油脂成分進(jìn)行分析,為進(jìn)一步開發(fā)利用絞股藍(lán)籽提供參考。
1.1 材料與試劑
絞股藍(lán)籽購自陜西省安康平利縣,去皮,干燥,待用;石油醚(沸程60~90℃)、無水乙醇、乙酸乙酯、乙醚、苯、甲醇均為分析純:天津市富宇精細(xì)化工試劑有限公司;氫氧化鉀(分析純):重慶川江化學(xué)試劑廠;無水硫酸鈉(分析純):江蘇強(qiáng)盛功能化學(xué)股份有限公司。
1.2 儀器與設(shè)備
RE-3000型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:上海亞榮生化儀器廠;FW200型高速中藥粉碎機(jī):天津華鑫儀器廠;QP2010型氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀:日本SHIMANZU公司;HF-2B型超聲循環(huán)提取機(jī):北京弘祥隆生物技術(shù)開發(fā)有限公司;FY172型壓榨機(jī):上海二龍糧油設(shè)備有限公司。
1.3 方法
1.3.1 提取方法
(1)壓榨法:直接將烘干的絞股藍(lán)籽投料進(jìn)壓榨機(jī)進(jìn)行榨取,壓榨溫度控制在90℃左右,榨取次數(shù)1~3次,得絞股藍(lán)籽油脂粗品。
(2)索氏提取:稱取20 g絞股藍(lán)籽粉于濾紙包中,放入索氏提取器,在250 mL燒瓶中加入石油醚,水浴60℃回流一定時間后減壓蒸餾烘干至恒質(zhì)量,得絞股藍(lán)籽油脂粗品。
(3)超聲波輔助提?。悍Q取300 g絞股藍(lán)籽粉置于超聲提取器中,加入一定量石油醚,在功率800 W,頻率20 KHz、溫度50℃條件下超聲提取30 min。超聲結(jié)束后減壓蒸餾烘干至恒質(zhì)量,得到絞股藍(lán)籽油脂粗品。
1.3.2 油脂成分的GC-MS色譜分析
(1)脂肪酸的甲酯化[17]:吸取油脂0.2 mL于10 mL容量瓶中,加入2 mL石油醚-苯(1∶1,V/V)的混合溶液,搖動,待油脂溶解后,加入4mL0.5mol/LKOH甲醇溶液,振搖,50℃恒溫靜置60 min后,加入蒸餾水至刻度,靜置分層,取上層清液,加入Na2SO4干燥后,進(jìn)GC-MS分析,采用面積歸一化法對各脂肪酸的相對含量進(jìn)行計算。
(2)氣相色譜(GC)條件:SE-54毛細(xì)管柱(30m×0.25mm× 0.25 μm),氦氣為載氣,恒流方式,流速0.5 mL/min。柱箱采用程序升溫,初始溫度50℃,以10℃/min升溫至240℃,維持20 min。分流比為20∶1,進(jìn)樣口溫度為250℃。
(3)質(zhì)譜(MS)條件:離子源溫度200℃,四級桿溫度150℃,質(zhì)譜延時時間5min,電子倍增器(electronmultiplier,EM)電壓1.20kV,電離方式為電子電離(electronic ionization,EI),電子轟擊能量70 eV。質(zhì)量掃描范圍20~400 m/z。
1.3.3 油脂理化性質(zhì)測定
(1)密度(ρ):根據(jù)密度的定義進(jìn)行測定。
(2)酸值(acid value,AV):采用國家標(biāo)準(zhǔn)GB 5530—2005《動植物油脂酸值和酸度測定》中的滴定儀法進(jìn)行測定。酸值計算公式:
AV=56.1×V×C/m
式中:AV為油脂酸值,mg KOH/g;V為KOH標(biāo)準(zhǔn)溶液的體積,mL;C為KOH標(biāo)準(zhǔn)溶液的濃度,mol/L;56.1為KOH的摩爾質(zhì)量,g/mol;m為試樣的質(zhì)量,g。
(3)皂化值(saponification value,SV):采用國家標(biāo)準(zhǔn)GB/T 5534—2008《動植物油脂皂化值的測定》中的方法進(jìn)行測定。皂化值計算公式:
SV=(V0-V1)×C×56.1/m
式中:SV為油脂皂化值,mg KOH/g;V0為空白試驗所消耗的鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液體積,mL;V1為試樣所消耗的鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液體積,mL;C為鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液的濃度,mol/L;56.1為KOH的摩爾質(zhì)量,g/mol;m為試樣的質(zhì)量,g。
(4)平均分子質(zhì)量(M):根據(jù)得到的皂化值和酸值,計算油脂的平均分子量[18]。油脂平均分子量計算公式:
式中:SV為油脂皂化值,mgKOH/g;AV為油脂酸值,mgKOH/g;56.1為KOH的摩爾質(zhì)量,g/mol;3表示每中和1 mol甘油三酯需消耗3 mol氫氧化鉀。
(5)水分和揮發(fā)物含量:采用國家標(biāo)準(zhǔn)GB/T9696—2008《動植物油脂水分和揮發(fā)物含量測定》中的方法B進(jìn)行測定。水分和揮發(fā)物含量的計算公式:
式中:X為水分及揮發(fā)物含量,%;m1為加熱前玻璃容器及測試試樣的質(zhì)量,g;m2為加熱后玻璃容器及測試試樣的質(zhì)量,g;m0為玻璃容器的質(zhì)量,g。
1.3.4 油脂提取率計算
絞股藍(lán)籽油脂提取率計算公式:
式中:E為油脂提取率,%;m1為絞股藍(lán)籽油質(zhì)量,g;m2為絞股藍(lán)籽粉質(zhì)量,g。
2.1 提取方法考察
2.1.1 提取方法的確定
以石油醚作為提取溶劑,對3種提取方法提取絞股藍(lán)籽油脂進(jìn)行比較,結(jié)果如表1所示。由表1可知,索氏提取法和超聲波輔助提取法的提取率較高。但索氏提取法處理量過低,難以滿足工業(yè)要求。超聲提取法提取周期短,提取率高,不需加熱,處理量大,溶劑用量少,比較適合工業(yè)生產(chǎn)過程[19]。因此,本試驗采用超聲波輔助提取法。
2.1.2 提取溶劑的確定
采用超聲波輔助提取法,在料液比1∶6(g∶mL),超聲溫度50℃,超聲功率500 W,超聲時間30 min條件下,考察提取溶劑(無水乙醇、乙酸乙酯、石油醚、乙醚)對油脂提取率的影響,結(jié)果如圖1所示。由圖1可知,乙酸乙酯、乙醚和石油醚,對油脂有較大溶解度。其中乙酸乙酯的提取率最高,但所得提取物顏色較深且雜質(zhì)較多;石油醚的提取率次之,提取物雜質(zhì)較少;乙醚的提取率與石油醚相仿,但乙醚的沸點較低危險性大。因此,本試驗采取超聲波輔助提取并以石油醚為提取溶劑。
2.2 超聲波提取工藝的單因素考察
超聲波是頻率較高的聲波(>20 kHz),常用于天然產(chǎn)物的提取過程[20-22]。超聲波在介質(zhì)中傳播時能產(chǎn)生空化作用、機(jī)械作用、熱學(xué)作用以及化學(xué)作用[23-24],從而能快速破壞細(xì)胞壁、細(xì)胞膜,加速物質(zhì)的溶出分散過程。本試驗考察超聲時間、超聲功率、料液比、超聲溫度對油脂提取率的影響。
2.2.1 超聲時間
在提取溶劑為石油醚,料液比1∶6(g∶mL),超聲溫度50℃,超聲功率500W條件下,考察超聲時間(10min、20min、30 min、40 min、50 min)對油脂提取率的影響,結(jié)果見圖2。
由圖2可知,隨超聲時長增加,提取率不斷增加。超聲時間超過30 min后,提取率基本保持不變。說明提取時間越長,破壁越完全,溶質(zhì)溶出越充分。在試驗條件下,超聲提取30 min即能將油脂基本提取完全。因此,在本試驗條件下,選擇30 min為適宜的超聲提取時間。
2.2.2 超聲功率
在提取溶劑為石油醚,料液比1∶6(g∶mL),超聲溫度50℃,超聲時間30min條件下,考察超聲功率(300W、400W、500 W、600 W、700 W)對油脂提取率的影響,結(jié)果見圖3。
由圖3可知,超聲功率越強(qiáng),提取率越高。功率超過500W之后提取率變化不大,說明在相同的作用時間內(nèi),超聲提取時功率越強(qiáng),破壁作用越強(qiáng),油脂溶出量越多。在超聲功率500 W試驗條件下,已能將油脂基本提取完全。因此,在本試驗條件下,選擇500 W為適宜的超聲功率。
2.2.3 料液比
在溶劑為石油醚,超聲溫度50℃,超聲時間30 min,超聲功率500 W條件下,考察料液比(1∶6、1∶7、1∶8、1∶9、1∶10(g∶mL))對油脂提取率的影響,結(jié)果見圖4。
由圖4可知,溶劑用量的越多,提取率越高。料液比超過1∶8(g∶mL)之后,提取率變化不大。溶劑用量越大,油脂越容易滲透出來。結(jié)果表明,料液比達(dá)到1∶8(g∶mL)即能將油脂基本提取完全。因此,在本試驗條件下,1∶8(g∶mL)是適宜的料液比。
2.2.4 超聲溫度
在溶劑為石油醚,料液比1∶8(g∶mL),超聲功率500 W,超聲30min條件下,考察超聲溫度(20℃、30℃、40℃、50℃、60℃)對油脂提取率的影響,結(jié)果見圖5。
由圖5可知,超聲溫度增加,提取率也隨之增加,并在40℃達(dá)到最大值,繼續(xù)提高溫度,提取率反而有所下降。在一定條件下,溶劑提取速度主要由擴(kuò)散系數(shù)決定,而擴(kuò)散系數(shù)與溫度成正比,因而溫度越高提取速度越快。但當(dāng)溫度過高時,揮發(fā)油類物質(zhì)散失較多,反而使提取速率下降。而且,溫度太高會使不飽和脂肪酸氧化還原影響油脂組成[25]。因此,在本試驗條件下,選擇40℃為適宜超聲溫度。
2.3 提取工藝條件優(yōu)化
根據(jù)單因素試驗結(jié)果,以絞股藍(lán)籽油脂提取率為評價指標(biāo),采用正交試驗L9(34)優(yōu)化絞股藍(lán)籽油工藝條件,因素與水平見表2,結(jié)果與分析見表3,方差分析見表4。
由表3可知,各因素對絞股藍(lán)籽油提取率的影響主次順序依次為A>B>D>C。優(yōu)化后的組合為A2B2C1D3,即料液比為1∶8(g∶mL),超聲時間為30min,超聲功率為400W,超聲溫度為50℃。按此條件進(jìn)行3次平行試驗,測得絞股藍(lán)籽油提取率平均值為35.37%。由表4可知,料液比對提取率的影響顯著,其余3個因素的影響均不顯著。
2.4 油脂成分分析
2.4.1 絞股藍(lán)籽油脂的理化性質(zhì)分析
對所得絞股藍(lán)籽油脂的理化性質(zhì)進(jìn)行測定,結(jié)果見表5。
由表5可知,絞股藍(lán)籽油脂的密度較低,平均分子量較小。其酸值符合一級花生油、大豆油和菜籽油的酸價標(biāo)準(zhǔn)(≤1.0 mg KOH/g)[26],皂化值低于一般油脂,說明油中游離脂肪酸含量較低,油脂質(zhì)量較好。
2.4.2 絞股藍(lán)籽油脂的組成成分分析
用GC-MS對油脂組成成分進(jìn)行檢測,其總離子流色譜圖及質(zhì)譜圖見圖6,各成分鑒定結(jié)果見表6。
由表6可知,絞股藍(lán)籽油中含有9種脂肪酸,其中不飽和脂肪酸有6種。不飽和脂肪酸含量約占總脂肪酸含量的95%,其中含量最多的是α-桐酸,其相對含量高達(dá)56.24%。遠(yuǎn)高于石榴籽和瓜蔞籽,與苦瓜籽相當(dāng)[27]。試驗結(jié)果與姜東亮等[15]的測定結(jié)果類似,與劉世彪等[16]測定結(jié)果有差別。
α-桐酸(α-eleostearic acid,α-ESA)又稱為9Z,11E,13E-十八碳三烯酸,是共軛亞麻酸的一種異構(gòu)體,在體內(nèi)會代謝為c9,t11-CLA,具有抑制腫瘤[28]、降低膽固醇[29]、降低體內(nèi)亞油酸含量[30]等作用。本研究結(jié)果表明,絞股藍(lán)籽含有豐富的不飽和脂肪酸,尤其是α-桐酸,具有進(jìn)一步開發(fā)為營養(yǎng)補(bǔ)充劑或藥物的潛力。
采用超聲提取工藝以石油醚為提取溶劑時,最佳油脂提取工藝條件為料液比1∶8(g∶mL),超聲時間30 min,超聲功率400 W,超聲溫度50℃。在此優(yōu)化工藝條件下,絞股藍(lán)籽油脂提取率可達(dá)35.37%。絞股藍(lán)籽油脂組成中不飽和脂肪酸的含量約占總脂肪酸含量的95%,且主要為α-桐酸(56.24%)。
絞股藍(lán)籽中富含以α-桐酸為主的不飽和脂肪酸,因此絞股藍(lán)籽作為天然的α-桐酸資源,有潛力成為c9,t11-CLA新的天然膳食來源,具有進(jìn)一步研究開發(fā)的價值。這對提高絞股藍(lán)資源的利用率,增加其商業(yè)附加值具有實際意義。
[1]張彤,劉為鵬,李華,等.中國絞股藍(lán)種質(zhì)資源的生態(tài)分布及利用[J].陜西農(nóng)業(yè)科學(xué),2015,61(4):55-59.
[2]劉欣,葉文才,蕭文鸞,等.絞股藍(lán)的化學(xué)成分研究[J].中國藥科大學(xué)學(xué)報,2003,34(1):23-26.
[3]HU L,CHEN Z,XIE Y.New triterpenoid saponins fromGynostemma pentaphyllum[J].J Nat Prod,1996,59(12):1143-1145.
[4]周寶珍,肖婭萍,??》?絞股藍(lán)多糖的分離純化及紅外光譜、氣相色譜分析[J].中華中醫(yī)藥雜志,2012,27(1):100-103.
[5]侯冬巖,回瑞華,關(guān)崇新.絞股藍(lán)中總黃酮的分析研究[J].沈陽師范大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2003,22(1):39-42.
[6]LU H F,CHEN Y S,YANG J S,et al.Gypenosides induced G0/G1 arrest via inhibition of cyclin E and induction of apoptosis via activation of caspases-3 and-9 in human lung cancer A-549 cells[J].In Vivo,2008,22(2): 215-221.
[7]CHEN J C,LU K W,TSAI M L,et al.Gypenosides induced G0/G1 arrest via CHk2 and apoptosis through endoplasmic reticulum stress and mitochondria-dependent pathways in human tongue cancer SCC-4 cells[J]. Oral Oncol,2009,45(3):273-283.
[8]HAN X Y,WEI H B,ZHANG F C.Analysis of the inhibitory effect of gypenoside on Na(+),K(+)-ATPase in rats'heart and brain and its kinetics [J].Chin J Integr Med,2007,13(2):128-131.
[9]YEO J,KANG Y J,JEON S M,et al.Potential hypoglycemic effect of an ethanol extract ofGynostemma pentaphyllumin C57BL/KsJ-db/db mice [J].J Med Food,2008,11(4):709-716.
[10]陳華榮.絞股藍(lán)栽培技術(shù)[J].安徽林業(yè),2008,153(1):44-45.
[11]劉振洋,劉延澤,劉改嵐,等.絞股藍(lán)總皂苷的閃式提取和純化工藝研究[J].中草藥,2009,40(7):1071-1073.
[12]王青豪,潘虹,楊宇飛,等.從絞股藍(lán)中聯(lián)合提取皂苷、黃酮和多糖工藝優(yōu)化[J].食品科學(xué),2012,33(22):63-66.
[13]鄧美林,吳天祥.乙醇提取絞股藍(lán)超微粉總皂苷的研究[J].中國釀造,2009,28(4):52-55.
[14]宋淑亮,唐金寶,吉愛國,等.絞股藍(lán)多糖的提取純化和含量測定[J].中藥材,2006,29(6):595-598.
[15]姜東亮,馬彩霞,肖婭萍.絞股藍(lán)種子中α-桐酸的定性和定量分析[J].光譜實驗室,2012,29(3):1848-1853.
[16]劉世彪,譚秀梅,彭小列,等.絞股藍(lán)種子油的提取、成分分析和急性毒性實驗[J].廣西植物,2014,34(1):130-134.
[17]寇秀穎,于國萍.脂肪和脂肪酸甲酯化方法的研究[J].食品研究與開發(fā),2005,26(2):46-47.
[18]MITTELBACH M.Diesel fuel derived from vegetable oils,VI:Specifications and quality control of biodiesel[J].Bioresource Technol,1996, 56(1):7-11.
[19]LI H,PORDESIMO L,WEISS J.High intensity ultrasound-assisted extraction of oil from soybeans[J].Food Res Int,2004,37(7):731-738.
[20]張海容,朱迎春.超聲萃取沙棘籽油的研究[J].中國釀造,2009,28(10):96-98.
[21]陳茵茹,康健,趙芙蓉.超聲微波雙輔助提取葡萄籽低聚原花青素的研究[J].中國釀造,2012,31(8):23-28.
[22]竇玉慧,孫曉紅,祝軍,等.響應(yīng)面分析法優(yōu)化超聲輔助提取紅肉蘋果花青苷工藝[J].中國釀造,2014,33(4):65-70.
[23]SUSLICK K S,HAMMERTON D A,CLINE R E.Sonochemical hot spot[J].J Am Chem Soc,1986,108(18):5641-5642.
[24]SUSLICK K S.Sonochemistry[J].Science,1990,247(4949):1439-1445.
[25]CHEMAT F,GRONDIN I,SHUM C S A,et al.Deterioration of edible oilsduringfoodprocessingbyultrasound[J].Ultrason Sonochem,2004, 11(1):13-15.
[26]盧艷杰.油脂檢測技術(shù)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2003.
[27]袁高峰,孫海燕,李鐸.植物種子共軛亞麻酸含量分析[J].浙江大學(xué)學(xué)報:農(nóng)業(yè)與生命科學(xué)版,2011,37(3):326-331.
[28]KOHNO H,SUZUKI R,NOGUCHI R,et al.Dietary conjugated linolenic acid inhibits azoxymethane-induced colonic aberrant crypt foci in rats[J].Jpn J Cancer Res,2002,93(2):133-142.
[29]YANG L,LEUNG K Y,CAO Y,et al.Alpha-linolenic acid but not conjugatedlinolenicacidishypocholesterolaemicinhamsters[J].Brit J Nutr,2005,93(4):433-438.
[30]NOGUCHI R,YASUI Y,SUZUKI R,et al.Dietary effects of bitter gourd oil on blood and liver lipids of rats[J].Arch Biochem Biophys, 2001,396(2):207-212.
Extraction technology and composition analysis ofGynostemma pentaphyllumseed oil
LE Yi,LIU Li*
(School of Pharmaceutical Sciences,Guizhou University,Guiyang 550025,China)
Ultrasonic-assisted extraction process ofGynostemma pentaphyllumseed oil was optimized by single factor test and orthogonal test,and the composition of the seed oil extract wasanalyzed.Usingpetroleumetherasextractionsolvent,theoptimalultrasonic-assistedconditionswereasfollows: materialtosolutionratio1∶8(g∶ml),extraction time 30 min,ultrasonic power 400 W and extraction temperature 50℃.Under the optimized condition, the extraction rate of seed oil could reach 35.37%.Physicochemical properties of the seed oil including density,acid value,saponification value, average molecular weight and the content of moisture and volatile matter were 0.915 1 g/ml,0.739 8 mg KOH/g,185.919 7 mg KOH/g,908.845 9 u and 0.281 9%,respectively.GC-MS analysis revealed that there were 9 kinds of fatty acids inG.pentaphyllumseed oil,including 6 kinds of unsaturated fatty acids which accounted for 95%of the total fatty acids,and the major constituent was α-eleostearic acid(56.24%).
Gynostemma pentaphyllum;extraction technology;ultrasonic;α-eleostearic acid;unsaturated fatty acid
TS201.1
A
0254-5071(2015)06-0084-05
10.11882/j.issn.0254-5071.2015.06.019
2015-05-03
貴州省科學(xué)技術(shù)基金(黔科合J字[2010]2225號)
樂意(1981-),女,講師,碩士,研究方向為分離工程。
*通訊作者:劉力(1976-),男,講師,博士研究生,研究方向為分離工程。