曾 瑛綜述,曾 斌審校
(南華大學(xué)附屬第一醫(yī)院消化內(nèi)科,湖南衡陽421001)
DNA甲基化在肝癌發(fā)生與發(fā)展中的作用及研究現(xiàn)狀
曾 瑛綜述,曾 斌審校
(南華大學(xué)附屬第一醫(yī)院消化內(nèi)科,湖南衡陽421001)
肝腫瘤; DNA甲基化; 遺傳學(xué),醫(yī)學(xué); 綜述
肝臟是人體內(nèi)最大的消化及內(nèi)分泌器官,原發(fā)性肝癌(肝癌)具有易轉(zhuǎn)移、侵襲性強的特點,是臨床最常見的惡性腫瘤之一,5年生存率低,成為威脅人類生命第2名的惡性腫瘤。在我國,肝癌最主要的病因為病毒性肝炎,其中以乙型肝炎、丙型肝炎最常見,而在西方國家則以酒精性肝病為主。近年來不明原因的肝癌越來越多見,并呈年輕化趨勢,隨著對肝癌研究的深入,發(fā)現(xiàn)表觀遺傳學(xué)改變在肝癌發(fā)生中起核心作用,DNA甲基化、組蛋白修飾及miRNA表達異常均屬于表觀遺傳學(xué)改變,而肝癌發(fā)生的核心環(huán)節(jié)主要與DNA異常甲基化相關(guān)。本文就近年來DNA甲基化改變與肝癌的相關(guān)研究作一綜述。
DNA甲基化是指在DNA甲基轉(zhuǎn)移酶(DNMT)的作用下,以S-腺苷甲硫氨酸為供體,將甲基基團轉(zhuǎn)移到DNA CpG序列的胞嘧啶5位碳原子上,形成5-甲基胞嘧啶的過程。DNMTs包括3種類型——DNMT1、DNMT2、DN MT3a/DNMT3b。DNMT1在細胞中含量最豐富,具有維持甲基化活性的作用;DNMT3家族主要起從頭甲基化作用,使本來無甲基化的DNA雙鏈發(fā)生甲基化,是催化DNA甲基化最重要、最關(guān)鍵的酶,與腫瘤的早期事件密切相關(guān);DNMT2的作用還有待進一步研究。CpG島超甲基化與抑癌基因的表達沉默有關(guān),在腫瘤的早期發(fā)生過程中起重要作用;而腫瘤基因組普遍低甲基化與原癌基因的活化、染色質(zhì)結(jié)構(gòu)的改變、堿基丟失密切相關(guān),并與腫瘤的浸潤、轉(zhuǎn)移、預(yù)后等有重要聯(lián)系。已有大量研究證實,DNA甲基化改變與肝癌關(guān)系密切,而DNMTs作為甲基化過程中的中間媒介,其表達水平高低與DNA甲基化水平有重要關(guān)聯(lián)。
2.1 DNA低甲基化與肝癌 惡性腫瘤如胃癌[1]、乳腺癌[2]、前列腺癌[3]、結(jié)腸癌[4]等普遍存在DNA低甲基化,肝癌也是如此。Nishida等[5]研究發(fā)現(xiàn),全基因組DNA低甲基化是早期肝癌形成的重要機制,同時也是非肝硬化肝癌早期染色質(zhì)結(jié)構(gòu)改變的重要原因?;虻图谆饕l(fā)生在重復(fù)的DNA序列中,可激活處于沉默狀態(tài)的DNA序列,如LINES和Alu等重復(fù)序列[6],轉(zhuǎn)移自身基因組位置,使其功能遭到破壞。有研究通過檢測LINE-1基因的甲基化水平(13例健康人和50例肝癌患者)發(fā)現(xiàn),肝癌患者LINE-1甲基化水平顯著低于健康人,且其甲基化水平越低,腫瘤體積越大,分化水平越低,甲胎蛋白水平相對越高,患者1~2年生存率就越低[7]。Shen等[8]研究發(fā)現(xiàn),53例肝癌患者中 AKT3、CD147、CCL20和SCGB1D1基因呈現(xiàn)低甲基化水平,且與腫瘤惡性程度具有相關(guān)性。最近研究發(fā)現(xiàn),在肝癌的發(fā)生與發(fā)展過程中人胰島素樣生長因子-Ⅱ(IGF-Ⅱ)基因P4啟動子低甲基化是一個早期和常見現(xiàn)象,在肝癌癌變過程中引起細胞染色體不穩(wěn)定性增加,并且參與P4啟動子表達激活[9]。多項研究發(fā)現(xiàn),PAX4、HPA、VIM、uPA、c-myc基因低甲基化水平對肝癌的發(fā)生有促進作用[10-11]。DNA低甲基化激活了原癌基因Ras、myc等惰性基因的表達,研究發(fā)現(xiàn),肝癌組織中c-myc和c-N-Ras普遍呈現(xiàn)低甲基化狀態(tài),從而誘發(fā)肝癌的發(fā)生。近年來,有研究發(fā)現(xiàn),在正常細胞中表達沉默的Trks家族在肝癌組織中表達卻上升,這與其在肝癌組織中啟動子區(qū)甲基化水平顯著降低相關(guān),從而促進腫瘤的發(fā)生、存活、轉(zhuǎn)移[12]。
2.2 DNA高甲基化與肝癌 在肝癌中,抑癌基因表達沉默、DNA修復(fù)功能喪失均與啟動子CpG島高甲機化密切相關(guān),致使DNA損傷不能及時修復(fù),從而發(fā)生細胞異常增生,這與腫瘤發(fā)生有著密切關(guān)系。Hua等[13]在44例肝癌組織中發(fā)現(xiàn),p16基因的甲基化率為64.5%,而癌旁組織中只檢出了5例,且p16基因高甲基化的患者術(shù)后復(fù)發(fā)風(fēng)險顯著升高,為肝癌根治術(shù)術(shù)后患者復(fù)發(fā)風(fēng)險的評估提供了有力依據(jù)。Song等[14]、Shen等[8]采用定量甲基化特異PCR方法檢測到在肝癌組織及肝癌細胞株中,SOX1、NFATC1、BMP4、CDKN2A等基因 CpG島甲基化均呈高水平狀態(tài),從而影響肝癌的發(fā)生,且甲基化狀態(tài)與肝癌的TNM分期顯著相關(guān)。Liu等[15]對乙醇及病毒引起的肝癌進行檢測,發(fā)現(xiàn)PAX5基因表達較正常組織明顯下調(diào),并發(fā)現(xiàn)PAX5啟動子區(qū)存在高甲基化狀態(tài),可能是其表達下調(diào)的主要原因。Choi等[16]采用甲基化特異性PCR及雜合性缺失研究等方法,發(fā)現(xiàn)39例肝癌中有22例RIZI基因啟動子區(qū)呈現(xiàn)高甲基化,Lv等[17]研究表明,BTG3在肝癌組織中表達下調(diào),與啟動子區(qū)高甲基化相關(guān),2個實驗研究發(fā)現(xiàn),RIZI和BTG3啟動子區(qū)甲基化水平越高,越容易發(fā)生遠處轉(zhuǎn)移,肝癌惡性程度越高,腫瘤體積相對越大,患者總存活率越低。P16INK4a是Rb信號通路中一種重要周期調(diào)控蛋白,有研究發(fā)現(xiàn),其在肝癌中表達缺失,且其啟動子區(qū)CpG島甲基化率顯著高于慢性活動性肝炎及肝硬化組,結(jié)果表明,其表達缺失是啟動子區(qū)異常甲基化所致[18]??傊?,大量研究證實抑癌基因表達沉默與DNA甲基化關(guān)系密切,是肝癌發(fā)生的重要表觀遺傳學(xué)改變。
2.3 DNMTs與肝癌 研究表明,DNMT在多種腫瘤細胞中表達增高、活性增強,而在DNA甲基化改變中起催化作用的甲基轉(zhuǎn)移酶包括DNMT1、DNMT3a/3b。普遍認為,從頭甲基轉(zhuǎn)移酶在腫瘤發(fā)生過程中較維持甲基轉(zhuǎn)移酶更為重要。李宏濤等[19]采用實時定量PCR檢測DNMT的表達情況,發(fā)現(xiàn)DNMT1、DNMT3b在MHCC97L、SMMC742、BEL7402、MHCC97M3和HepG25種肝癌細胞系中均呈高表達,且發(fā)現(xiàn)DNMT3a的表達水平越高,肝癌細胞系的遠處轉(zhuǎn)移能力可能越低。Qin等[20]發(fā)現(xiàn),在55例肝癌組織中DNMT1表達水平均升高,且與門脈癌栓、腫瘤細胞分化高低及患者生存率相關(guān)。有學(xué)者報道,在大鼠肝癌模型中發(fā)現(xiàn)DNMT1及DNMT3b具有協(xié)助作用,均能促進抑癌基因啟動子區(qū)高甲基化,并與肝癌組織浸潤性生長及門靜脈癌栓形成有關(guān)[21]。Mandrekar等[22]研究發(fā)現(xiàn),在癌旁組織、肝硬化組織及肝癌組織中,DNMTs表達逐漸升高,DNMTs種類也逐漸呈多樣化趨勢。Kanai等[23]研究發(fā)現(xiàn),與癌旁組織相比,肝癌組織中DNMT表達水平顯著升高,導(dǎo)致DNA高甲基化,從而誘導(dǎo)原發(fā)性肝癌的發(fā)生。
因表觀遺傳學(xué)有可逆性,目前抑制抑癌基因DNA高甲基化水平,恢復(fù)其表達成為抗腫瘤藥物研發(fā)的主攻方向。目前研究較為廣泛的5-氮雜胞苷類制劑,已被批準用于骨髓異常綜合征的臨床治療。這類核苷類抗代謝藥通過競爭性結(jié)合DNMT結(jié)合位點而形成穩(wěn)定的共價鍵,從而達到抑制甲基轉(zhuǎn)移酶活性的作用。近來Tao等[24]采用RT-PCR及Western blotting檢測SMMC-7721肝癌細胞株相關(guān)抑癌基因的端粒酶活性,發(fā)現(xiàn)使用5-Aza-CR處理過的肝癌中端粒酶活性明顯下降,且hTERET啟動子區(qū)出現(xiàn)了去甲基化,使相關(guān)抑癌基因重新表達,誘導(dǎo)肝癌細胞的凋亡。Venturelli等[25]發(fā)現(xiàn),5-Aza-CR具有雙重抗腫瘤效應(yīng),不僅能夠恢復(fù)腫瘤甲基化異常狀態(tài),而且使腫瘤對凋亡誘導(dǎo)物質(zhì)(如腫瘤壞死因子相關(guān)凋亡誘導(dǎo)配體)具有增敏性,為其抗腫瘤作用提供了分析依據(jù)。其次像氨基苯甲酸類,如普魯卡因胺,是一種非核苷酸類甲基轉(zhuǎn)移酶抑制劑,研究表明普魯卡因胺能使肝癌細胞株HepG2高甲基化的GSTP基因去甲基化重新表達,鹽酸普魯卡因主要通過干擾DNA與DNMT1的結(jié)合位點,使超甲基化的CpG島去甲基化,繼而發(fā)揮治療腫瘤的作用。臨床試驗研究表明,普魯卡因胺的不良反應(yīng)相對較小,但由于其對心臟的不良反應(yīng),而限制了臨床應(yīng)用。另有肼類,代表藥物肼屈嗪,Song等[26]研究發(fā)現(xiàn),經(jīng)過肼屈嗪處理過的宮頸癌細胞中,抑癌基因APC表達明顯上調(diào),且發(fā)現(xiàn),肼屈嗪對多藥耐藥實體腫瘤有益。綠茶中含有豐富的茶多酚類,研究發(fā)現(xiàn)其具有去甲基化作用,不僅通過競爭抑制DNMT1的催化結(jié)合位點,從而抑制DNA甲基化,而且能使p16、hMLH1、06-MGMT基因的甲基化逆轉(zhuǎn),使其激活;現(xiàn)已被食品藥品監(jiān)督管理局批準應(yīng)用于臨床,用于腫瘤治療前景可觀。近年來研究發(fā)現(xiàn),Zebularine、Psammaplin A均具有抑制DNMT活性,誘導(dǎo)腫瘤細胞凋亡的作用。其中Zebularine也屬于核苷類制劑,有研究發(fā)現(xiàn),Zebularine能激活RASSF1A、CIS等多個抑癌基因的表達,促進肝癌細胞凋亡,抑制其生長,且該藥在聯(lián)合抗腫瘤治療中不會使p16基因重新甲基化,可用于長期維持治療[27]。Zebularine具有毒性反應(yīng)少、結(jié)構(gòu)穩(wěn)定、可口服等優(yōu)點,易于患者接受,臨床應(yīng)用前景廣泛。其他如姜黃素、雷公藤、三氧化二坤等藥物[28-29]均發(fā)現(xiàn)有抑制DNA甲基化作用,具有抗腫瘤效應(yīng)。
近年來DNA甲基化的研究進展迅速,為多種基因的甲基化與肝癌的早期診斷、預(yù)后及治療提供了一定的理論依據(jù),但需要更多臨床樣本進行驗證和研究。肝癌的發(fā)生是多因素參與的復(fù)雜過程,還有許多問題待進一步研究,如組蛋白修飾及miRNA的表達異常、甲基化與染色質(zhì)重構(gòu)的關(guān)系等。此外,目前去甲基化藥物在臨床應(yīng)用上不夠成熟,藥物的劑量、給藥途徑、毒性反應(yīng)及確切療效仍不十分清楚,因此,在臨床上還需尋找特異性更強、敏感性更高的甲基化基因,研究不良反應(yīng)更低的去甲基化藥物,更早實現(xiàn)肝癌的分子靶向治療;但DNA去甲基化藥物也可能造成基因組不穩(wěn)定,存在其他組織潛在癌變風(fēng)險,如何防范和避免是需深入研究的問題。
[1]Compare D,Rocco A,Liguori E,et al.Global DNA hypomethylation is an early event in Helicobacter pylori-related gastric carcinogenesis[J].J Clin Pathol,2011,64(8):677-682.
[2]Portela A,Esteller M.Epigenetic modifications and human disease[J].Nat Biotechnol,2012,28(10):1057-1068.
[3]Yang B,Sun H,Lin W,et al.Evaluation of global DNA hypomethylation in human prostate cancer and prostatic intraepithelial neoplasm tissues by immunohistoc hemistry[J].Urol Oncol,2013,31(5):628-634.
[4]Siegel R,Ward E,Brawley O,et al.Cancer statistics,2011:the impact of elim-inating socioeconomic and racial disparities on premature cancer deaths[J].CA Cancer J Clin,2011,61(4):212-236.
[5]Nishida N,Kudo M,Nishimura T,et al.Unique association between global DNA hypomethylation and chromosomal alterations in human hepatocellular carcinoma[J].PloS One,2013,8(9):e72312.
[6]De Smet C,Loriot A.DNA hypomethynation in cancer:Epigenetic scars of a neoplastic journey[J].Epigenetics,2010,5(3):206-213.
[7]Ramzy II,Omran DA,Hamad O,et al.Evaluation of serum LINE-1 hypomethylation as a prognostic maker for hepatocelluar carcinoma[J].Arab J Gastroenterol,2011,12(3):139-142.
[8]Shen J,Wang S,Zhang YJ,et al.Genome-wide DNA methylation profiles in hepatocelluar carcinoma[J].Hepatology,2012,55(6):1799-1808.
[9]Dong ZZ,Yao M,Qian J,et al.Abnormal expression of insulin-like growth factor-IIandinterveningofitsmRNAtranscriptioninthepromotionofHepG2 cell apoptosis[J].Zhonghua Yi Xue Za Zhi,2013,93(12):892-896.
[10]Hanahan D,Weinberg RA.Hallmarks of cancer:the next generation[J]. Cell,2011,144(5):646-674.
[11]Pogribny IP,Rusyn I.Role of epigenetic aberrations in the developemet and progression of human hepatocellular carcinoma[J].Cance Lett,2014,342(2):223-230.
[12]Jin W,Lee JJ,Kim MS,et al.DNA methylation-dependent regulation of TrkA、TrkB and TrkC genes in human hepatocellular carcinoma[J].Biochem Biophys Res Commun,2011,406(1):89-95.
[13]Hua D,Hu Y,Wu YY,et al.Quantitative methylation analysis of multiple genes using methylation-sensitive restriction enzyme-basedquantitative PCR for the detection of hepatocellular carcinoma[J].Exp Mol Pathol,2011,91(1):455-460.
[14]Song MA,Tiirikainen M,Kwee S,et al.Elucidating the landscape of aberrant DNA methylation in hepatocellular carcinoma[J].PloS One,2013,8(2):e55761.
[15]Liu W,Li X,Chu ES,et al.Paired box gene 5 is a novel tumor suppressor in hepatocellular carcinoma through interaction with p53 signaling pathway[J].Hepatology,2011,53(3):843-853.
[16]Choi HN,Bae JS,Jamiyandorj U,et al.Expression and role of SIRT1 in hepatocellular carcinoma[J].Oncol Rep,2011,26(2):503-510.
[17]Lv Z,Zou H,Peng K,et al.The suppressive role and aberrent promoter methylation of BTG3 in the progression of hepatocelluar carcinoma[J]. PloS One,2013,8(10):e77473.
[18]Ahmed R,Salama H,F(xiàn)ouad A,et al.Detection of aberrant p16INK4A methylation in sera of patients with HCV-related liver diseases:An Egyptian study[J].Med Sci Monit,2010,16(9):CR410-415.
[19]李宏濤,梁后杰,李文梅,等.肝癌細胞系中DNA甲基轉(zhuǎn)移酶和HLA1類分子的表達及意義[J].中華腫瘤防治雜志,2010,17(5):1141-1143.
[20]Qin W,Leonhardt H,Pichler G.Regulation of DNA methyltransferase 1 by interactions and modifications[J].Nucleus,2011,2(5):392-402.
[21]Medina-Franco JL,Caulfield T.Advances in the computational developmentofDNAmethyltransferaseinhibitors[J].DrugDiscov,2011,16(9/10):418-425.
[22]Mandrekar P.Epigenetic regulation in alcoholic liver disease[J].World J Gastroenterol,2011,17(20):2456-2464.
[23]Kanai Y.Genome-wide DNA methylation profiles in precancerous conditions and cancers[J].Cancer Sci,2010,101(1):36-45.
[24]Tao SF,Zhang CS,Guo XL,et al.Anti-tumor effect of 5-aza-2′-deoxycytidine by inhibiting telomerase acitvity in hepatocelluar carcinoma cells[J]. World J Gastroenterol,2012,18(19):2334-2343.
[25]Venturelli S,Berger A,Weiland T,et al.Dual antitumour effect of 5-azacytidine by inducing a breakdown of resistance-mediating factors and epigemetic modulation[J].Gut,2011,60(2):156-165.
[26]Song Y,Zhang C.Hydralazine inhibits human cervical cancer cell growth in vitro in association with APC demethylation and reexpression[J].Cancer Chemother Pharmacol,2009,63(4):605-613.
[27]Daniunaite K,Berezniakovas A,Jankevicius F,at al.Frequent Methylation of RASSF1 and RARB in Urine Sediments From Patients with Early Stage Prostate Cancer[J].Medicina(Kaunas),2011,47(3):147-153.
[28]Liu Z,Xie Z,Jones W,et al.Curcumin is a potent DNA hypomethylation agent[J].Bioorg Med Chem Lett,2009,19(3):706-709.
[29]Yang L,Luo JM,Wen SP,et al.Effect of As2O3 on demethylation of SHP-1 gene in human lymphoma cell line T2[J].Ai Zheng,2009,28(3):249-254.
10.3969/j.issn.1009-5519.2015.08.019
:A
:1009-5519(2015)08-1173-03
2014-11-17)
曾瑛(1988-),女,湖南益陽人,碩士研究生,主要從事醫(yī)學(xué)臨床工作;E-mail:306712932@qq.com。