韓曉勇 宋婷婷 王立 等
摘要:以靖江香沙芋莖尖為外植體進(jìn)行快速繁殖技術(shù)研究。結(jié)果表明,75%乙醇浸泡30 s和84消毒液消毒10~15 min配合使用滅菌效果最好;芽誘導(dǎo)最適培養(yǎng)基為MS+0.5 mg/L TDZ,培養(yǎng)25 d后芽誘導(dǎo)率最高,為80%,芽高度為2.3 cm;繼代增殖最適培養(yǎng)基為MS+1.0 mg/L TDZ,月增殖倍數(shù)可達(dá)4.3;生根培養(yǎng)最適培養(yǎng)基為1/2MS+01 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+0.02%活性炭,平均生根時(shí)間為11 d,生根率達(dá)100%,根系最長為2.9 cm;生根培養(yǎng)45 d,將試管苗移入營養(yǎng)土中生長,30 d后移栽成活率達(dá)100%。
關(guān)鍵詞:靖江香沙芋;組織培養(yǎng);芽誘導(dǎo);快繁
中圖分類號(hào): S632.304+.3文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A文章編號(hào):1002-1302(2015)01-0050-03
收稿日期:2014-03-03
基金項(xiàng)目:江蘇省農(nóng)業(yè)科技自主創(chuàng)新資金[編號(hào):CX(12)2008]。
作者簡介:韓曉勇(1983—),男,山西忻州人,碩士,助理研究員,從事特色經(jīng)濟(jì)作物組織培養(yǎng)技術(shù)研究。E-mail:hanxy84@163.com。
通信作者:殷劍美,博士,研究員,主要從事特色經(jīng)濟(jì)作物研究。Tel:(025)84390860;E-mail:yinjm2006@sohu.com。靖江香沙芋屬天南星科(Araceae)芋屬(Colocasia) 多子芋類型,是靖江市農(nóng)民栽培的芋類作物當(dāng)家品種。其塊莖中淀粉含量高,既可以當(dāng)糧食,又可做蔬菜,是老幼皆宜的滋補(bǔ)品,并含有多種維生素,有一股獨(dú)特的香味。加工前景廣闊,聞名并暢銷廣西、廣東及港、澳地區(qū)。靖江香沙芋通常采用母芋留種方式進(jìn)行繁殖,種性退化問題較為突出,抗病性和抗逆性減退。建立靖江香沙芋組培再生體系,不僅有利于品種的更新復(fù)壯,更可為種苗工廠化生產(chǎn)和新品種選育提供技術(shù)支持與儲(chǔ)備。
近年來,芋組織培養(yǎng)已相繼開展,對(duì)其莖尖和葉片等不同外植體培養(yǎng)進(jìn)行了廣泛的研究[1-5]。但這些研究主要圍繞外植體愈傷誘導(dǎo)及植株再生,而愈傷誘導(dǎo)過程中易發(fā)生變異,不利于保持本品種的優(yōu)良特性。本研究旨在建立一種從芽直接到多芽體,多芽體到試管苗的繁殖方式。這種繁殖方式不僅可以提高繁殖系數(shù)和繁殖速度,而且利于保持本品種的優(yōu)良特性,可有效保護(hù)具有地方特色的種質(zhì)資源。
1材料與方法
1.1材料
供試材料為靖江香沙芋芋莖尖。
1.2方法
1.2.1無菌材料的處理選取保存完好、無腐爛斑點(diǎn)的芋,經(jīng)0.2%的K2MnO4消毒5 min后整齊排列在周轉(zhuǎn)箱中,用沙子覆蓋到整個(gè)芋塊的2/3處,放置到光照培養(yǎng)箱中催芽。待芽生長到1~3 cm時(shí)切取莖尖,剝除外層2~3層葉片,流動(dòng)水沖洗10 min,在超凈臺(tái)上用75%乙醇浸泡30 s,分別用NaClO、84 消毒液2種消毒劑,NaClO設(shè)10、15、20 min,84消毒液設(shè)5、10、15 min 3個(gè)時(shí)間段處理滅菌,每種處理分別接種12個(gè)莖尖于MS培養(yǎng)基中,觀察滅菌效果。
1.2.2芽誘導(dǎo)分化外植體經(jīng)滅菌后接種在添加不同濃度的6-BA和NAA及TDZ和IBA組合的MS培養(yǎng)基中,接種25 d后比較芽的分化率、芽高度及葉片數(shù)等確定適宜芽分化的培養(yǎng)基。激素濃度設(shè)置7個(gè)處理,每個(gè)處理設(shè)3次重復(fù),每次重復(fù)接種15個(gè)莖尖。
1.2.3繼代增殖誘導(dǎo)培養(yǎng)基上萌發(fā)出的不定芽長到2 cm左右時(shí),切取單芽接種在添加不同濃度的6-BA和NAA及TDZ和IBA組合的MS培養(yǎng)基中,30 d時(shí)觀察其增殖倍數(shù)。激素濃度設(shè)置6個(gè)處理,每個(gè)處理設(shè)3次重復(fù),每次重復(fù)接種20個(gè)單芽。
1.2.4生根將高2.0 cm以上、帶有2張或2張以上葉的健壯小苗切下,轉(zhuǎn)入生根培養(yǎng)基中培養(yǎng)。生根基本培養(yǎng)基為1/2MS并添加0.02%活性炭。調(diào)查不同處理的平均生根時(shí)間,30 d的生根數(shù)、生根率、葉片數(shù)、根系平均長度及根系形態(tài)。生根培養(yǎng)基設(shè)置4個(gè)處理,每個(gè)處理設(shè)3次重復(fù),每次重復(fù)接種15個(gè)小苗。
1.2.5煉苗與移栽生根培養(yǎng)45 d的再生苗在室外常溫下放置5 d后,打開瓶蓋煉苗1~2 d。將根系發(fā)達(dá)、株高5~12 cm 的再生苗從培養(yǎng)瓶中取出,洗去根部的培養(yǎng)基,移栽到營養(yǎng)土中,并置于相對(duì)濕度80%~90%、溫度20~25 ℃的環(huán)境中遮陰培養(yǎng)1周,2周后正常光照培養(yǎng),30 d時(shí)統(tǒng)計(jì)成活率。
1.2.6培養(yǎng)基滅菌及培養(yǎng)條件高壓滅菌前調(diào)整培養(yǎng)基pH值為5.8,保持121 ℃滅菌20 min。培養(yǎng)室溫度為(25±2) ℃,光照度2 000~3 000 lx,每天光照12 h。培養(yǎng)基中瓊脂的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為7 g/L,蔗糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)為30 g/L。
2結(jié)果與分析
2.1不同消毒液和滅菌時(shí)間對(duì)外植體滅菌效果的影響
從表1可以看出,外植體用84消毒液滅菌10~15 min效果最好,滅菌成功率達(dá)83.3%以上。NaClO滅菌成功率遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于84消毒液。
表1不同消毒液和滅菌時(shí)間對(duì)外植體滅菌效果的影響
消毒劑種類時(shí)間
(min)接種莖段數(shù)
(個(gè))污染數(shù)
(個(gè))污染率
(%)NaClO1012650.01512433.32012325.084消毒液512650.01012216.7151218.3
2.2芽誘導(dǎo)分化
從表2可以看出,MS+0.5 mg/L TDZ和MS+1.0 mg/L TDZ培養(yǎng)基芽誘導(dǎo)率及芽長勢(shì)優(yōu)于另外幾種培養(yǎng)基。其中以MS+0.5 mg/L TDZ培養(yǎng)基芽誘導(dǎo)率最高,為80%,芽高度為2.3 cm(圖1-A)。TDZ與6-BA 2種植物生長調(diào)節(jié)劑對(duì)芋芽誘導(dǎo)及生長的影響差異較大,與6-BA相比,TDZ對(duì)芽分化率及株高差異都達(dá)到顯著水平,經(jīng)25 d就能誘導(dǎo)莖尖長成2~3張葉。隨著6-BA與NAA配比濃度的提高,芽分化率呈上升趨勢(shì),但株高及展開葉數(shù)呈下降趨勢(shì)。當(dāng) 6-BA ∶NAA=4.0 ∶0.2時(shí),葉片容易發(fā)生卷曲。表2不同激素濃度和激素種類對(duì)芽誘導(dǎo)的影響
激素種類及濃度接種數(shù)
(個(gè))分化數(shù)
(個(gè))分化率
(%)株高
(cm)展開葉數(shù)
(張)植株表現(xiàn)6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L154c26.7c1.4c1b芽矮小6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L153c20.0c1.3c1b芽矮小6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L157b46.7b1.8b2ab芽矮小6-BA 4.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L157b46.7b1.4c1b葉片卷曲TDZ 0.5 mg/L+IBA 0.0 mg/L1512a80.0a2.3a3a正常TDZ 1.0 mg/L+IBA 0.0 mg/L1511a73.3a2.3a3a正常TDZ 1.0 mg/L+IBA 0.4 mg/L158b53.3b1.7b2ab芽粗短注:同列數(shù)據(jù)后不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)。表3、表4同。
2.3繼代增殖
由表3 可以看出,誘導(dǎo)叢生芽增殖最適宜培養(yǎng)基為MS+1.0 mg/L TDZ,叢生芽分化速度快,增殖倍數(shù)可達(dá)4.3(圖1-B),與其他處理差異顯著。方差分析結(jié)果顯示,TDZ對(duì)芽增效系數(shù)顯著高于6-BA。隨著6-BA與NAA配比濃度的提高,增殖系數(shù)呈先升后降的趨勢(shì)。當(dāng)6-BA ∶NAA=4.0 ∶0.2 時(shí),增殖系數(shù)和芽均較小。
2.4生根培養(yǎng)
由表4可以看出,不同激素濃度對(duì)組培苗生根影響較大。其中激素濃度為6-BA ∶NAA=0.1 ∶0.5時(shí)生根效果最好,平均生根時(shí)間為11 d,生根率達(dá)100%,30 d的根系長度、葉片數(shù)以及株高均顯著高于其他處理,分別為2.9 cm、3.5張和5.6 cm(圖1-C)。隨著NAA濃度增大,根系長度、葉片數(shù)和株高都有不同程度的下降,根系逐漸變短變粗,最終呈雞爪
表3不同激素濃度和激素種類對(duì)芽增殖的影響
激素種類激素濃度
(mg/L)接種數(shù)
(個(gè))芽數(shù)
(個(gè))增殖系數(shù)生長描述6-BA/NAA1.5/0.22034e1.7e芽較小2.0/0.22042d2.1d芽較大4.0/0.22032e1.6e芽很小TDZ/IBA0.5/0.02078b3.9b正常1.0/0.02086a4.3a正常1.0/0.42075c3.75c易生根
狀,并伴有少量氣生根出現(xiàn)。組培苗培養(yǎng)45 d左右(圖1-D)移入苗床營養(yǎng)土中,15 d后開始長出新葉,30 d時(shí)成活率達(dá)100%(圖1-E)。
3討論
TDZ(苯基噻二唑基脲)是一種人工合成的苯基脲重氮噻唑取代衍生物。Mok等首次發(fā)現(xiàn)TDZ有很強(qiáng)的細(xì)胞分裂素活性,濃度很低的TDZ能促進(jìn)利馬豆(lima bean)愈傷組織生長[6]。Chand等發(fā)現(xiàn),在芋莖尖分生組織培養(yǎng)中,與BA相表4不同激素濃度對(duì)生根的影響
NAA
(mg/L)6-BA
(mg/L)接種數(shù)
(個(gè))生根時(shí)間
(d)生根苗數(shù)
(苗)生根率
(%)平均根長
(cm)葉片數(shù)
(張)株高
(cm)植株表現(xiàn)0.50.1151115100a2.9a3.50a5.6a細(xì)長1.00.1151315100a1.7b2.80b3.4b粗短2.00.1151315100a1.2c2.25c2.8c雞爪狀,氣生根4.00.1151315100a1.0c2.50bc2.9c雞爪狀,氣生根
比,MS培養(yǎng)基中添加一定濃度的TDZ可以增強(qiáng)外植體的活力[7]。本試驗(yàn)結(jié)果表明,與6-BA相比,TDZ更適于促進(jìn)芋莖尖萌動(dòng)、生長及叢生芽增殖,與崔瑾等得出的TDZ在不同基因型芋組織培養(yǎng)的生理效應(yīng)和TDZ對(duì)莖尖生長的影響結(jié)論[8-9]一致。適宜靖江香沙芋芽分化的培養(yǎng)基為MS+0.5~1.0 mg/L TDZ,其中以MS+0.5 mg/L TDZ的培養(yǎng)基芽誘導(dǎo)率和芽的高度方面表現(xiàn)最好;叢生芽增殖最適宜培養(yǎng)基為MS+1.0 mg/L TDZ,叢生芽分化速度快,增殖倍數(shù)可達(dá)4.3。林文麗等在海門香沙芋的組織培養(yǎng)中認(rèn)為TDZ與IBA適當(dāng)濃度配比有利于叢生芽的增殖[2],本試驗(yàn)結(jié)果表明,添加IBA反而利于組培苗生根,形成差異的原因可能與品種的基因型有關(guān)。
在一定濃度范圍內(nèi),提高NAA濃度有利于試管苗生根。但NAA濃度不能太高,當(dāng)NAA濃度高于2.0 mg/L時(shí),根系長度、葉片數(shù)和株高都出現(xiàn)不同程度的下降,說明高濃度NAA對(duì)試管苗的生長產(chǎn)生抑制作用,這種抑制作用隨著NAA濃度的升高而越加明顯[10]。外植體在培養(yǎng)過程中體內(nèi)的多酚氧化酶被激活,使細(xì)胞里的酚類物質(zhì)氧化成棕褐色的醌類物質(zhì),有時(shí)使整個(gè)培養(yǎng)基變褐,從而抑制其他酶的活性,影響材料的培養(yǎng)。在培養(yǎng)基中加入0.02%的活性炭抗氧化吸附,并勤換培養(yǎng)基可以減少褐化[11]。
本研究中靖江香沙芋莖尖離體培養(yǎng)過程中產(chǎn)生叢芽但未見愈傷組織的產(chǎn)生,這種直接通過“芽生芽”的方式獲得與親本類似的幼苗,可以減少變異的可能,有效保護(hù)具有地方特色的種質(zhì)資源,這與張曉蘭等的觀點(diǎn)[4]一致。
參考文獻(xiàn):
[1]杭玲,羅瑞鴻,蘇國秀,等. 荔浦芋組培技術(shù)及應(yīng)用[J]. 中國蔬菜,2006(5):61.
[2]林文麗,陳華. 海門香沙芋組培技術(shù)研究與應(yīng)用[J]. 農(nóng)業(yè)科技通訊,2008(6):43-46.
[3]曲芬霞. 賀州香芋組織培養(yǎng)離體再生體系的建立[J]. 貴州農(nóng)業(yè)科學(xué),2011,39(6):26-28.
[4]張曉蘭,張偉強(qiáng).“六月紅”芋組培技術(shù)初探[J]. 福建果樹,2003(4):11-12.
[5]郭德義. 長汀檳榔芋高效組培繁殖技術(shù)研究[D]. 福州:福建農(nóng)林大學(xué),2010.
[6]Mok M C,Mok D S,Armsstrong D J,et al. Cytokin activrity of N-phenyc-N′-1,2,3-thidiazoc-5-ylurea(thidiazuron)[J]. Phytochemistry,1982,21:1509-1511.
[7]Chand H,Pearson M N,Lovell P H. Rapid vegetative multiplication in Colocasia esculenta (L.) Schott (taro)[J]. Plant Cell Tissue and Organ Culture,1998,55(3):223-226.
[8]崔瑾,朱月林,李式軍. 苯基噻二唑基脲(TDZ)在不同基因型芋組織培養(yǎng)中的生理效應(yīng)[J]. 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2002,25(2):31-34.
[9]崔瑾,李式軍. 苯基噻二唑基脲(TDZ)和瓊脂對(duì)芋莖尖生長的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2002(6):82-83.
[10]黃永偉,賈明仁,王洪波,等. 影響文冠果組織培養(yǎng)苗離體生根的因素[J]. 北方果樹,2010,7(8):85-87.
[11]劉根林,梁珍海,朱軍. 活性炭在植物組織培養(yǎng)中的作用概述[J]. 江蘇林業(yè)科技,2001,28(5):46-48.