戴皇冠,郝翠芳,黃鑫,劉振騰,連花瑜,劉暢
(1.山東青島大學(xué),青島 266071;2.山東省煙臺市毓璜頂醫(yī)院生殖醫(yī)學(xué)科,煙臺 264000;3.山東大學(xué),濟南 250000)
γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)是一種天然存在的功能性氨基酸,是谷氨酸在谷氨酸脫羧酶的作用下脫羧而成,是哺乳動物中樞神經(jīng)系統(tǒng)中主要的抑制性神經(jīng)遞質(zhì)。GABA 主要通過與其受體結(jié)合發(fā)揮生物學(xué)效應(yīng)。GABA 受體根據(jù)其不同的藥理學(xué)特征區(qū)分為GABAA、GABAB、GABAC三種亞型,其中GABAA受體及GABAC受體屬配體門控型離子通道,目前所識別出的組成GABAA受體亞基種類有7 個亞基族16 種單體(α1-6、β1-3、γ1-3、δ、ε、θ、π)[1]。GABAB受體為G 蛋白偶聯(lián)受體。GABAA受體及GABAB受體廣泛分布于中樞神經(jīng)系統(tǒng),GABAC受體主要存在于視網(wǎng)膜和視覺通路中。有研究發(fā)現(xiàn),GABA 及其A 型受體也廣泛存在于外周神經(jīng)組織及非神經(jīng)組織中,如:腦垂體、胰腺、腎上腺、睪丸、卵巢、子宮和胎盤等[2]。有關(guān)GABA及其A 型受體在生殖系統(tǒng)中的作用,已有研究表明GABA 信號在女性生殖過程中發(fā)揮著特異性作用,既參與調(diào)節(jié)卵泡發(fā)育過程中雌孕激素的分泌,也參與卵泡發(fā)育和成熟。早期研究發(fā)現(xiàn),大鼠發(fā)情周期不同階段的生殖器官中存在GABA[3-4]。Erd?等[5]將[3H]muscimol(蠅 覃 醇,GABAA受 體 激 動劑)作為放射性配體,發(fā)現(xiàn)在大鼠卵巢上存在GABAA結(jié)合位點,尤其是在顆粒細胞上富含高親和力的、特異的GABAA結(jié)合位點。人的卵巢上也存在GABA 及A 型受體結(jié)合位點[5]。
上述研究提示,GABA 及其A 型受體可能與生殖內(nèi)分泌之間有著密切聯(lián)系。近年來,通過基因微陣列技術(shù)研究人卵丘顆粒細胞,發(fā)現(xiàn)其A 型受體α5亞單位的基因表達水平與卵母細胞核成熟有關(guān)[6-7]。本文研究了GABA 及其A 型受體α5亞單位在小鼠卵巢卵丘顆粒細胞中的表達情況,旨在探討其與卵泡發(fā)育及卵母細胞成熟的相關(guān)性,以期為研究卵母細胞成熟和卵泡發(fā)育的分子生物學(xué)機制提供新的認(rèn)識。
孕馬血清促性腺激素(PMSG,Prospec-tany,以色列);人絨毛膜促性腺激素(HCG,麗珠制藥);RNA 提取采用Qiagen Rneasy Mini Kit(Qiagen,Hilden,德國);實時熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)試劑盒(TaKaRa,日本);兔源性抗GABRA5 多克隆抗體(Abcam,英國);熒光(IgG-Cy3)標(biāo)記二抗和兔源性抗GABA 多克隆抗體(武漢博士德公司);辣根酶標(biāo)記山羊抗兔IgG、SP免疫組化試劑盒及二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色試劑盒(北京中杉金橋生物技術(shù)公司);Western blotting相關(guān)試劑(碧云天公司)。
1.卵丘顆粒細胞提取:(1)生發(fā)泡期(GV)卵丘顆粒細胞的收集:將20~21 日齡,體質(zhì)量約13~15g的性成熟前雌性昆明小鼠飼養(yǎng)于光照(6:00~18:00)及溫度(25 ℃)條件下,動物正常進食及自由飲水。小鼠經(jīng)腹腔注射PMSG(10 U/只),48h后斷頸處死小鼠,無菌操作下取出小鼠雙側(cè)卵巢,在解剖顯微鏡下,去除周圍脂肪組織,培養(yǎng)液洗凈卵巢上血污,置于培養(yǎng)液中,用無菌4號半針頭針刺卵巢讓其釋放出GV 期卵泡,然后用吸管反復(fù)機械吹打卵泡,使卵丘顆粒細胞與卵母細胞分離,收集GV 期卵母細胞周圍的卵丘顆粒細胞,1 000r/min 離心5min,棄上清,備用。在培養(yǎng)液中加入200μmol/L的異丁基甲基黃嘌嶺(IBMX,Cayman,美國)防止GV 期卵泡自發(fā)成熟。
2.MⅡ卵丘顆粒細胞的收集:小鼠經(jīng)腹腔注射PMSG(10U/只),48h后注射HCG(10U/只),注射HCG 后12~13h挑破輸卵管膨大的壺腹部,將釋出的MⅡ期卵泡移入含有0.1%的透明質(zhì)酸酶的培養(yǎng)液中,室溫放置10 min,用吸管反復(fù)機械吹打卵泡使卵母細胞和卵丘顆粒細胞充分分離,收集卵丘顆粒細胞,1 000r/min離心5min,棄上清,備用。
3.實時熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(qRT-PCR)檢測:(1)RNA 提取和逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng):分別將收集的300個GV 期及MⅡ期卵母細胞周圍的卵丘顆粒細胞置于含裂解液的離心管中,總RNA 抽提方法按照Rneasy Mini Kit(Qiagen,德國)說明書描述進行。逆 轉(zhuǎn) 錄 反 應(yīng) 參 照PrimeScriptTMRT reagent Kit(TaKaRa,日本)操作說明書進行,對照實驗用DEPC水取代逆轉(zhuǎn)錄酶,以排除DNA 污染。(2)根據(jù)Genebank 進行引物設(shè)計和合成(表1)。(3)qRT-PCR:依照SYBR Premix Ex Taq 實時熒光定量試劑盒(TaKaRa,日本)說明書進行,使用Rotor Gene 3000型實時熒光定量聚合酶反應(yīng)儀(Corbett Research,澳大利亞)測定。循環(huán)參數(shù):95 ℃30s,95 ℃5s45個循環(huán),60 ℃60s。每次反應(yīng)結(jié)束均進行熔解曲線分析,并計算GABRA5與β-actin的相對關(guān)系。運算分析最終所得2-ΔΔCT值[8]。
表1 qRT-PCR引物序列
4.Western blotting檢測:實驗簡述如下:用蛋白裂解液裂解收集的300個GV 期和MⅡ期卵母細胞周圍的卵丘顆粒細胞,冰上靜置30min后在4 ℃下離心5 min。用BCA 法測蛋白濃度。每孔上樣100μg,進行SDS-PAGE 電泳,轉(zhuǎn)膜,7%TBST 脫脂奶粉室溫封閉2h,一抗(兔源性抗GABRA5多克隆抗體)4 ℃孵育過夜,加入羊抗兔二抗,室溫孵育1h,化學(xué)發(fā)光液顯色。以GAPDH 為內(nèi)參,采用Bio-Rad圖像分析儀(伯樂,美國)分析。
5.免疫組織熒光檢測:獲取GV 期卵巢和MⅡ期輸卵管組織,4%多聚甲醛4℃固定過夜,常規(guī)石蠟包埋,切成4μm 切片。按組織免疫熒光常規(guī)步驟操作。一抗1∶100稀釋,陰性對照采用正常兔血清IgG 代替一抗。激光共聚焦顯微鏡掃描成像。
6.免疫組織化學(xué)檢測:免疫組化方法簡述如下,石蠟切片常規(guī)脫水,檸檬酸緩沖液微波抗原修復(fù),H2O2去離子水孵育,山羊血清室溫封閉,加入兔源性抗GABA 多克隆抗體(1∶100),4℃孵育過夜,滴加辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔二抗室溫孵育。DAB顯色,充分沖洗后蘇木素復(fù)染、酒精逆濃度脫水、二甲苯透明、干燥后中性樹膠封片,光學(xué)顯微鏡下觀察。結(jié)果判定:細胞質(zhì)內(nèi)含棕黃色顆粒者為陽性細胞,用PBS代替一抗作為陰性對照,其余步驟與上述相同。
采用SPSS 17.0軟件進行統(tǒng)計分析,計量資料采用Student’s t-檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
GV 期和MⅡ期卵母細胞周圍的卵丘顆粒細胞中均有GABRA5 mRNA 的表達,相對于GV 期的表達水平,GABRA5 mRNA 在MⅡ期卵母細胞周圍卵丘顆粒細胞的表達是上調(diào)的,GV 組∶MⅡ組為(1.00±0.00)vs.(2.32±0.30),即MⅡ期表達量約是GV 期的2.32倍,有統(tǒng)計學(xué)差異(P<0.05)(圖1)。
GABRA5蛋白在GV 期和MⅡ期卵母細胞周圍的卵丘顆粒細胞中均有表達,其表達量隨卵母細胞成熟而呈上升趨勢,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P <0.05)(圖2、3)。
圖1 GABRA5mRNA 在GV 期和MⅡ期卵丘顆粒細胞中的表達
圖2 Western blotting檢測GV 期和MⅡ期卵丘顆粒細胞中GABRA5蛋白的表達
圖3 GV 期和MⅡ期卵丘顆粒細胞中GABRA5蛋白相對表達量的比較
激光共聚焦結(jié)果顯示,GABRA5 蛋白表達于GV 期和MⅡ期卵母細胞周圍卵丘顆粒細胞的細胞膜、細胞質(zhì),激發(fā)出紅色熒光,藍色為PI染核;陰性對照未見陽性表達(圖4)。
免疫組化顯示,GABA 均定位于GV 期和MⅡ期卵母細胞周圍卵丘顆粒細胞的胞質(zhì)中(圖5)。
圖4 GABRA5在GV 期和MⅡ期卵丘顆粒細胞中表達情況。免疫熒光染色法×400
圖5 GABA 在GV 期和MⅡ期卵丘顆粒細胞中表達情況。免疫組化染色法×400
卵母細胞和卵丘顆粒細胞之間存在雙向交流。卵母細胞在卵丘顆粒細胞的分化和發(fā)育過程中起著重要的調(diào)節(jié)作用,同時卵丘顆粒細胞在卵母細胞發(fā)育和成熟過程中起著重要的營養(yǎng)作用及信號傳導(dǎo)作用,因而卵丘顆粒細胞的基因表達和功能狀態(tài)在一定程度上可以反映卵母細胞的發(fā)育能力[9-10]。研究卵母細胞周圍的卵丘顆粒細胞基因表達改變,為分析卵母細胞的質(zhì)量提供有價值的信息,也可用于評估卵母細胞發(fā)育的狀態(tài)和微環(huán)境[11]。
本研究對性成熟前小鼠給予外源性激素人工誘導(dǎo)卵泡發(fā)育及卵母細胞成熟,利用qRT-PCR 檢測GV 期和MⅡ期卵母細胞周圍的卵丘顆粒細胞中GABRA5 mRNA 的表達情況,發(fā)現(xiàn)GABRA5 mRNA表達水平存在上調(diào)趨勢,其與卵母細胞成熟度呈正相關(guān),表明卵母細胞成熟與GABRA5 基因的表達量升高有關(guān)。但Devjak等[7]通過基因微陣列技術(shù)研究人卵丘顆粒細胞,發(fā)現(xiàn)GABRA5 基因在卵丘顆粒細胞中的表達量與卵母細胞成熟度呈負(fù)相關(guān),即其在MⅠ期卵母細胞周圍的卵丘顆粒細胞的表達量高于其在MⅡ期卵母細胞時卵丘顆粒細胞 中 表 達 量。另 外,Huang 等[6]對GABRA5 基 因在多囊卵巢綜合征患者卵母細胞成熟過程中的表達進行了研究,GABRA5基因在GV 期和MⅠ期卵母細胞時卵丘顆粒細胞的表達水平高于其在MⅡ期卵母細胞周圍卵丘顆粒細胞中的表達水平,即在人卵母細胞成熟過程中表達量逐漸減少。兩位學(xué)者的研究結(jié)果表明人卵母細胞成熟與GABRA5基因的表達量下降有關(guān)。本實驗結(jié)果與上述研究結(jié)論不一致,推測其原因,可能是研究對象的種屬差異所致。
根據(jù)Western blotting和組織免疫熒光研究結(jié)果顯示,GABRA5蛋白在GV 期和MⅡ期卵母細胞周圍卵丘顆粒細胞上均存在表達,且受體表達量隨卵母細胞成熟而增高,進一步推測GABRA5 可能在卵泡發(fā)育成熟過程中發(fā)揮調(diào)控作用。Amenta等[12]利用組 織 放 射 自 顯 影 技 術(shù),將[3H]muscimol作為放射性配體,發(fā)現(xiàn)在豬的卵泡上A 型受體有可逆、可飽和、高親和力的特性,并且A 型受體在卵泡發(fā)育過程中是逐漸減少的。由于A 型受體亞基較多,并且A 型受體各亞基之間可有不同的組合方式,但不是所有的亞基都能彼此間有效地組裝成功能性受體[13]。到目前為止,A 型受體參與卵泡發(fā)育和卵母細胞成熟方面的分子機制仍然不清,所以尚需進一步的研究和證實。
本實驗利用免疫組織化學(xué)技術(shù)檢測GABA 在小鼠卵巢卵丘顆粒細胞上的表達情況,顯示GABA在GV 期和MⅡ期卵母細胞周圍卵丘顆粒細胞的胞質(zhì)中均存在表達。Louzan等[3]也發(fā)現(xiàn)在鼠發(fā)情周期的不同階段中,卵巢中可檢測到GABA 的存在。此外,Batta[14]觀察到外源性的GABA 能增加大鼠排卵釋放的卵母細胞數(shù)目,并能影響這些釋放的卵母細胞的質(zhì)量。同時,有學(xué)者通過電生理技術(shù)研究人和小鼠的卵母細胞胞膜,發(fā)現(xiàn)GABA 能增加GV 和MⅡ卵母細胞胞膜的傳導(dǎo)性和敏感性,且Bicuculline(GABAA受體拮抗劑)能降低胞膜對GABA 的 反應(yīng)性[15]。劉 曉 艷 等[16]用 放 射 免 疫 測 定方法證實了人卵泡液中存在GABA,并且成熟卵泡液中的濃度高于未成熟卵泡液中的濃度。這些研究結(jié)果進一步提示GABA 有可能通過與其受體結(jié)合參與卵泡發(fā)育和成熟的過程。
此外,GABA 及其受體也在精子頂體反應(yīng)和獲能中起著重要調(diào)節(jié)作用[17]。體內(nèi)多種遞質(zhì)如GABA、孕酮、透明帶(ZP)作用于GABA 受體產(chǎn)生生理效應(yīng)。而目前關(guān)于GABA 及其受體報道較多的是在腫瘤發(fā)生發(fā)展方面的研究,如乳腺癌[18],前列腺 癌[19]等。Sengupta等[20]報 道GABRA5 參 與神經(jīng)系統(tǒng)腫瘤的發(fā)生,認(rèn)為GABRA5 通過誘導(dǎo)細胞周期S期和G2期細胞凋亡而參與神經(jīng)系統(tǒng)腫瘤的發(fā)生發(fā)展過程。但關(guān)于GABA 信號參與卵泡發(fā)育和成熟的分子機制及信號通路的報道甚少,其潛在價值仍待進一步研究。
總之,GABA 及其受體在生殖活動和生殖疾病中的影響正日益受到重視。GABA 及其受體在中樞神經(jīng)系統(tǒng)和生殖內(nèi)分泌系統(tǒng)發(fā)揮重要作用,推測GABA 也可能通過與其A 型受體結(jié)合參與小鼠卵泡發(fā)育和卵母細胞成熟過程。希望通過本實驗,為研究神經(jīng)遞質(zhì)及相關(guān)受體在生殖內(nèi)分泌系統(tǒng)中的作用提供新的數(shù)據(jù)。
[1] Maemura K,Shiraishi N,Sakagami K,et al.Proliferative effects of gamma-aminobutyric acid on the gastric cancer cell line are associated with extracellular signal-regulated kinase 1/2 activation[J].J Gastroenterol Hepatol,2009,24:688-696.
[2] Watanabe M,Maemura K,Kanbara K,et al.GABA and GABA receptors in the central nervous system and other organs[J].Int Rev Cytol,2002,213:1-47.
[3] Louzan P, Gallardo MG, Tramezzani JH . Gammaaminobutyric acid in the genital tract of the rat during the oestrous cycle[J].J Reprod Fertil,1986,77:499-504.
[4] Schaeffer JM, Hsueh AJ.Identification of gammaaminobutyric acid and its binding sites in the rat ovary[J].Life Sci,1982,30:1599-1604.
[5] Erd?SL,László A.High specific gamma-aminobutyric acid binding to membranes of the human ovary[J].J Neurochem,1984,42:1464-1467.
[6] Huang X,Hao C,Shen X,et al.Differences in the transcriptional profiles of human cumulus cells isolated from MI and MII oocytes of patients with polycystic ovary syndrome[J].Reproduction,2013,145:597-608.
[7] Devjak R,F(xiàn)on Tacer K,Juvan P,et al.Cumulus cells gene expression profiling in terms of oocyte maturity in controlled ovarian hyperstimulation using GnRH agonist or GnRH antagonist[J/OL].PloS One,2012,7:e47106.
[8] Schmittgen TD,Livak KJ.Analyzing real-time PCR data by the comparative C(T)method[J].Nat Protoc,2008,3:1101-1108.
[9] 錢易,孟艷,崔毓桂,等.卵丘細胞在卵母細胞發(fā)育過程中的作用[J].生殖醫(yī)學(xué)雜志,2013,05:375-378.
[10] Huang Z,Wells D.The human oocyte and cumulus cells relationship:new insights from the cumulus cell transcriptome[J].Mol Hum Reprod,2010,16:715-725.
[11] Feuerstein P,Puard V,Chevalier C,et al.Genomic assessment of human cumulus cell marker genes as predictors of oocyte developmental competence:impact of various experimental factors[J/OL].PLoS One,2012,7:e40449.
[12] Amenta F,Erdo S L,Mione MC,et al.3H-muscimol binding sites within guinea pig ovary:a histoautoradiographic study[J].Pharmacology,1986,32:202-207.
[13] Feng H,Jounaidi Y,Haburcak M,et al.Etomidate produces similar allosteric modulation inα1β3δandα1β3γ2L GABA[J].Br J Pharmacol,2014,171:789-798.
[14] Batta SK.Effect of histamine,phencyclidine,phenoxybenzamine and gamma-aminobutyric acid on ovulation and quality of ova in rats[J].Reproduccion,1980,4:99-107.
[15] Dolci S,Eusebi F,Siracusa G.Gamma-aminobutyric-N-acid sensitivity of mouse and human oocytes[J].Dev Biol,1985,109:242-246.
[16] 劉曉艷.卵泡發(fā)育過程中γ-氨基丁酸作用的初步探討[D].廣州:南方醫(yī)科大學(xué)婦產(chǎn)科學(xué)(生殖醫(yī)學(xué)),2008.
[17] Kon H,Takei GL,F(xiàn)ujinoki M,et al.Suppression of progesterone-enhanced hyperactivation in hamster spermatozoa by gamma-aminobutyric acid[J].J Reprod Dev,2014,60:202-209.
[18] Zhang D,Li X,Yao Z,et al.GABAergic signaling facilitates breast cancer metastasis by promoting ERK1/2-dependent phosphorylation[J].Cancer Letters,2014,348:100-108.
[19] Wu W,Yang Q,F(xiàn)ung KM,et al.Linkingγ-aminobutyric acid A receptor to epidermal growth factor receptor pathways activation in human prostate cancer[J].Mol Cell Endocrinol,2014,383:69-79.
[20] Sengupta S,Weeraratne SD,Sun H,et al.α5-GABAA receptors negatively regulate MYC-amplified medulloblastoma growth[J].Acta Neuropathol,2014,127:593-603.