朱亞珠

（浙江國際海運(yùn)職業(yè)技術(shù)學(xué)院，浙江舟山316021）

甘薯葉中咖啡?？崴犷愇镔|(zhì)的分離純化和高效液相色譜法分析

朱亞珠

（浙江國際海運(yùn)職業(yè)技術(shù)學(xué)院，浙江舟山316021）

以甘薯葉為研究材料，通過半制備高效液相色譜（HPLC）分離純化得到6種咖啡?？崴犷愇镔|(zhì)產(chǎn)品，并采用核磁共振（NMR）和電噴霧飛行時間質(zhì)譜（ESI-TOF/MS），對不同甘薯葉多酚的具體組成成分及多酚含量進(jìn)行檢測分析。結(jié)果表明，甘薯葉多酚主要為咖啡酰奎尼酸及其衍生物。不同品種的甘薯葉多酚組成基本相同，主要成分為3-CQA、4-CQA、5-CQA、3，4-diCQA、3，5-diCQA和4，5-diCQA，但含量有所差異。本實(shí)驗(yàn)采用高效液相色譜法準(zhǔn)確、重現(xiàn)性好，并結(jié)合對不同品種紫薯葉酚類物質(zhì)含量進(jìn)行比較，能夠?yàn)樯a(chǎn)原料選擇和工藝提供質(zhì)量控制依據(jù)。

甘薯葉，多酚，咖啡?？崴?，純化，高效液相色譜

甘薯［Ipomoea batatas（L.）Lam.］是世界上重要的糧食、飼料、工業(yè)原料及新型能源用塊根作物，廣泛種植于世界各國［1］。目前有關(guān)甘薯營養(yǎng)價值的研究較多，日本已將其列為抗癌食品［2］。但是，對于甘薯莖葉研究卻遠(yuǎn)不及對甘薯的研究深入。現(xiàn)代醫(yī)學(xué)研究表明，甘薯葉具有抗氧化，抗過敏，促進(jìn)胃腸蠕動，刺激消化，治療便秘，促進(jìn)膽固醇排泄，防止心血管脂肪沉積，維持動脈血管彈性，保護(hù)消化道、呼吸道及關(guān)節(jié)腔潤滑等功效［3-6］。我國，甘薯葉資源十分豐富，但目前基本上作為廢棄物被拋棄，若能變廢為寶，將甘薯葉進(jìn)行深加工，具有十分重要的經(jīng)濟(jì)價值和現(xiàn)實(shí)意義［7-8］。

隨著現(xiàn)代營養(yǎng)科學(xué)的發(fā)展，人們發(fā)現(xiàn)多酚類物質(zhì)對人體有著重要的生理功能，具有很強(qiáng)的抗氧化效果。甘薯葉中含有大量的富含還原性酚羥基的多酚類物質(zhì)，其活性成分及功能逐漸受到學(xué)者的關(guān)注［9-13］。目前國內(nèi)外已有一些關(guān)于甘薯葉多酚組成分析的報(bào)道［14-15］，但很少涉及到不同品種甘薯葉間多酚含量及其成分的比較，阻礙了我國針對不同品種紫薯資源的深層次開發(fā)。本文采用半制備型HPLC從甘薯葉中分離純化甘薯葉多酚單體化合物，并利用HPLC對不同甘薯葉多酚的具體組成成分進(jìn)行分析，以期為我國甘薯葉的開發(fā)利用提供一定的理論基礎(chǔ)。

1　材料與方法

1.1材料與儀器

10份甘薯親本材料浙江省舟山市，2012年7月，葉齡5個月，由舟山市普陀區(qū)勾山富都生態(tài)農(nóng)場提供（表1）；3-CQA（綠原酸，3-O-Caffeoylquinic acid，CAS號327-97-9，純度＞98%）購于美國Sigma公司；Folin-Ciocalteu試劑、4-咖啡奎寧酸（4-CQA，4-OCaffeoylquinic acid，CAS號905-99-7，純度＞98%）、5-咖啡奎寧酸（5-CQA，5-O-Caffeoylquinic acid，CAS號906-33-2，純度＞98%） 購于日本Fluka公司；3，4-咖啡奎寧酸（3，4-diCQA，3，4-di-O-caffeoylquinic acid）、3，5-咖啡奎寧酸（3，5-diCQA，3，5-di-O-caffeoylquinic acid）、4，5-咖啡奎寧酸（4，5-diCQA，4，5-di-O-caffeoylquinic acid）根據(jù)Liu等［16］的方法制備；甲醇、甲酸（色譜純）、無水乙醇等其他試劑（分析純） 購于南京化學(xué)試劑有限公司。

BL-220H分析天平日本島津公司；Agilent 1100高效液相色譜儀美國安捷倫公司；TSKgel ODS-80 TsQA色譜柱（4.6mm×250mm） 日本Tosoh公司；YMCPACK ODS-A色譜柱（10mm×250mm，5μm，） 日本YMC公司；HH-4數(shù)顯恒溫水浴鍋江蘇國華電器有限公司；AKTA Purifier 10蛋白純化系統(tǒng)美國通用電氣公司；micrOTOF-QIII電噴霧飛行時間質(zhì)譜儀（ESI-TOF/MS） 美國Applied Biosystems公司；Bruker DRX-500MHz核磁共振儀（NMR） 德國Bruker公司；MODULYOD-230冷凍干燥機(jī)美國。

表1　實(shí)驗(yàn)所用甘薯主要育種親本及來源地Table 1　Names and origins of main sweet potato parents used in this study

1.2實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1樣品處理在甘薯大田封壟期，取5株甘薯植株的頂部展開葉，每株取2片，共取10片，冷凍后在冷凍干燥機(jī)內(nèi)真空冷凍干燥24h，混合均勻，4℃保存。

1.2.2提取方法分別稱取10種甘薯葉粉末（甘薯葉用研缽充分搗碎），依據(jù)實(shí)驗(yàn)室之前確定的甘薯葉多酚最佳提取工藝［16］：提取溫度80℃，料液比1∶50，乙醇濃度70%，提取40min，提取2次，得甘薯葉乙醇提取液。

1.2.3甘薯葉多酚單體化合物的分離純化及結(jié)構(gòu)鑒定采用半制備型HPLC分離純化甘薯葉的酚類單體化合物。甘薯葉乙醇提取液經(jīng)0.22μm微孔濾膜過濾后，采用AKTA純化系統(tǒng)制備各CQA單體［17］。色譜柱為YMC-PACK ODS-A色譜柱（10mm×250mm，5μm）；檢測波長為280nm；進(jìn)樣量為500μL，每管收集5mL；洗脫條件為40%（v/v）甲醇，流速2.0mL/min。根據(jù)紫外檢測器的實(shí)時監(jiān)測收集洗脫液，多次上樣，將出峰時間相同的物質(zhì)富集起來，濃縮并冷凍干燥，制備得到的化合物進(jìn)行ESI-TOF/MS和NMR分析。

ESI-TOF/MS在Thermo Scientific TSQ Quantum Ultra三重四級桿質(zhì)譜儀上采用電噴霧離子源（ESI），在負(fù)離子模式下進(jìn)行檢測，具體參數(shù)：干燥氣為N2，溫度270℃；干燥氣體積流量4L/min，壓力9psi；毛細(xì)管電壓4kV。

NMR在Bruker DRX-500核磁共振譜儀上以D2O為溶劑進(jìn)行，采用5mm TXI H探頭，工作頻率為500MHz，在300K溫度下測定。

1.2.4甘薯葉多酚的組成分析甘薯葉多酚的組成分析采用HPLC法［16］。取甘薯葉乙醇提取液，用去離子水適當(dāng)稀釋，0.22μm微孔濾膜過濾，濾液即為HPLC分析液。色譜條件：TSKgel ODS-80 TsQA色譜柱；柱溫40℃；進(jìn)樣體積為20μL；采用梯度洗脫，流動相A為水，流動相B為甲醇，流動相C為5‰（v/v）甲酸溶液，流速為0.5mL/min，洗脫梯度如表2所示。根據(jù)保留時間和特征吸收色譜與3-CQA、4-CQA、5-CQA、3，4-diCQA、3，5-diCQA和4，5-diCQA標(biāo)準(zhǔn)品對照定性，采用外標(biāo)法定量。

表2　HPLC檢測的洗脫梯度Table 2　Scheme of elution gradient for HPLC analysis

1.2.5混合標(biāo)準(zhǔn)品溶液的制備精確稱取干燥至恒重的3-CQA、4-CQA、5-CQA、3，4-diCQA、3，5-diCQA和4，5-diCQA標(biāo)準(zhǔn)品，分別制備濃度為0.1、0.05、0.01、0.005、0.0025g/L的系列混合標(biāo)準(zhǔn)液，進(jìn)行HPLC檢測，以濃度（g/L）為x，以峰面積為y，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線，計(jì)算回歸方程。

1.2.6檢出限的測定在相同色譜條件下，測定不同質(zhì)量濃度混合標(biāo)準(zhǔn)溶液。HPLC方法對標(biāo)準(zhǔn)品的檢出限是指不斷稀釋標(biāo)樣溶液直至HPLC在280nm波長檢出的色譜峰信號（峰高）與噪音比在3∶1時所對應(yīng)的標(biāo)樣濃度，以不同濃度為橫坐標(biāo)，峰面積為縱坐標(biāo)。

1.2.7精密度、穩(wěn)定性、重復(fù)性和加標(biāo)回收率的測定精密度：移取混合對照品20μL，連續(xù)進(jìn)樣6次，以峰面積計(jì)算相對標(biāo)準(zhǔn)偏差（RSD），考察儀器的精密度。

穩(wěn)定性：精密移取10μL制備得到的樣品溶液，2、4、8、16、32h各測定一次。

重復(fù)性：稱取同一產(chǎn)地同一品系紫薯葉粉末5份，按1.2.2制備溶液，精密移取20μL進(jìn)樣。

加標(biāo)回收率：精確稱取已知6種單體酚類含量的紫薯葉粉末7份，其中2份加入1.2.5中的混合對照品溶液0.1mL，2份加入稀釋10倍的混合對照品溶液0.2mL，2份加入稀釋10倍的混合對照品溶液0.1mL，1份留作空白。然后按照1.2.2提取方法制備試樣，在1.2.4的色譜條件進(jìn)樣10μL。

1.2.8甘薯葉多酚含量的測定甘薯葉多酚含量測定采用Folin-Ciocalteu法［18-19］。取0.5mL樣品液（適當(dāng)稀釋）與1.0mL的Folin-Ciocalteu試劑混勻，靜置5min，加入2.0mL飽和Na2CO3溶液，30℃水浴反應(yīng)1h，冷卻后測定反應(yīng)液在765nm波長處吸光度。甘薯葉多酚含量為每克甘薯葉原料中所含多酚的量（以綠原酸計(jì)，mg/g）。

1.2.9不同種甘薯葉多酚紫外掃描測定以不同品種的甘薯葉為材料，按1.2.4中的色譜條件對10種甘薯葉中多酚類物質(zhì)的組成和含量進(jìn)行分析、比較。

1.3數(shù)據(jù)分析

利用統(tǒng)計(jì)軟件SPSS對不同品系甘薯葉多酚總含量和酚類單體化合物的物質(zhì)含量數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析和LSD多重比較。

2　結(jié)果與分析

2.1甘薯葉多酚的HPLC分析

甘薯葉粉末用70%乙醇在80℃浸提40min，浸提2次，合并提取液。提取液經(jīng)稀釋和0.22μm微孔濾膜過濾，按1.2.4進(jìn)行HPLC分析。從圖1可見，采用TSKgel ODS-80 TsQA色譜柱和水-甲醇-甲酸（5‰，v/v）為流動相，分離效果好，峰形對稱。經(jīng)與標(biāo)樣保留時間及紫外全掃描圖譜比較，可以確定其中3-CQA、4-CQA、5-CQA分別對應(yīng)化合物A、B、C，保留時間分別為14.21、21.46、22.06min；保留時間為31.34、33.02、38.89min的D、E、F色譜峰為未知成分。

2.2甘薯葉多酚單體成分的制備與結(jié)構(gòu)解析

利用AKTA純化系統(tǒng)和YMC-PACK ODS-A色譜柱分別對甘薯葉多酚單體成分進(jìn)行分離純化，收集各組分，經(jīng)濃縮、冷凍干燥得到化合物1～6（圖2，濃度均為0.1g/L）?；衔?～6經(jīng)HPLC分析，峰形清晰、單一，純度均在95%以上；化合物1～3經(jīng)過與標(biāo)樣保留時間及紫外全掃描圖譜比較，分別確定為3-CQA，4-CQA，5-CQA。化合物1～3的NMR分析如表3所示，同時3種化合物的LC-MS分析均為m/z 515［M-H］-。經(jīng)NMR和ESI-TOF/MS分析，以及參照相關(guān)文獻(xiàn)［17，20-23］，得到化合物4～6分別為3，4-diCQA、3，5-diCQA和4，5-diCQA。

圖1　甘薯葉多酚提取液的HPLC色譜圖Fig.1　HPLC-DAD chromatogram of polyphenols extract from sweet potato leaves

圖2　混合酚類標(biāo)準(zhǔn)品（0.1g/L）的HPLC色譜圖Fig.2　HPLC-DAD chromatogram of prepared standard solutions of polyphenolic compounds

表3　6種單體酚類物質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線Table 3　Standard curves of 6 kinds of polyphenol monomers

2.3HPLC法測定甘薯葉多酚單體成分的含量

2.3.1甘薯葉多酚中單體的標(biāo)準(zhǔn)曲線與線性范圍精確移取1.2.5中的混合標(biāo)準(zhǔn)品1mL進(jìn)行梯度稀釋，稀釋后標(biāo)準(zhǔn)品和1.2.2中的樣品溶液在1.2.4色譜條件下進(jìn)樣20μL，3-CQA、4-CQA、5-CQA、3，4-diCQA、3，5-diCQA和4，5-diCQA均能夠得到良好的分離。根據(jù)保留時間和色譜峰的比對，樣品中測得了6種對應(yīng)的單體酚類物質(zhì)，分別為3-CQA、4-CQA、5-CQA、3，4-diCQA、3，5-diCQA和4，5-diCQA。酚類化合物回歸方程如表4所示，各對照品濃度與峰面積的相關(guān)性良好，R2＞0.999。

2.3.2分析方法的評價精密度：3-CQA、4-CQA、5-CQA、3，4-diCQA、3，5-diCQA和4，5-diCQA峰面積RSD分別為1.03%、0.82%、0.99%、1.21%、1.17%、0.79%，說明儀器精密度良好。

穩(wěn)定性：3-CQA、4-CQA、5-CQA、3，4-diCQA、3，5-diCQA和4，5-diCQA的峰面積的RSD分別為0.97%、0.99%、1.21%、1.51%、1.14%、0.87%，表明待測液中的6種多酚成分在32h內(nèi)穩(wěn)定性良好。

重復(fù)性：3-CQA、4-CQA、5-CQA、3，4-diCQA、3，5-diCQA和4，5-diCQA的峰面積的RSD分別為0.88%、0.75%、1.67%、1.82%、1.42%、0.97%，方法重現(xiàn)性良好。

加標(biāo)回收率：3-CQA、4-CQA、5-CQA、3，4-diCQA、3，5-diCQA和4，5-diCQA的回收率分別為99.87%、99.47%、99.62%、99.80%、99.77%、99.91%，RSD分別為0.68%、0.79%、1.55%、1.43%、1.48%、0.94%，說明本方法可行。

2.3.3不同種甘薯葉多酚紫外掃描分析甘薯葉多酚的HPLC分析結(jié)果如圖1所示，有6種組成成分。紫外掃描結(jié)果如圖3所示，表明，峰A、B、C、D、E、F均在326nm處有最大吸收，同時在296nm處有一肩峰。結(jié)合甘薯葉HPLC分析結(jié)果以及紫外掃描結(jié)果，判斷甘薯葉多酚物質(zhì)主要為咖啡?？崴犷愇镔|(zhì)，組分峰A、B、C、D、E、F分別為3-CQA、4-CQA、5-CQA、3，4-diCQA、3，5-diCQA和4，5-diCQA。這與國外的研究結(jié)果基本一致［20-23］。同時，結(jié)果表明不同品種甘薯葉的咖啡?？崴犷愇镔|(zhì)組成相同，但各咖啡?？崴犷愇镔|(zhì)的含量有差異（表5）。

表4　6種單體酚類物質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線Table 4　Standard curves of 6 kinds of polyphenol monomers

表5　甘薯葉中咖啡?？崴犷愇镔|(zhì)的含量Table 5　Caffeoylquinic acid concentrations in sweet potato leaves

2.4不同種甘薯葉多酚含量分析

采用Folin-Ciocalteu法，對10種不同品種甘薯葉乙醇提取物的多酚含量進(jìn)行分析、比較，不同品種甘薯葉乙醇提取物的多酚含量具體見表6。實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)，不同甘薯葉品系間多酚含量差異顯著（p＜0.05），變化范圍為41.52～182.86mg/g，其中臺農(nóng)71最高，煙薯27含量最低。本實(shí)驗(yàn)是在同田條件下種植不同甘薯品系，其多酚種類和含量均有差異。據(jù)此認(rèn)為，甘薯中多酚含量和組成不僅與環(huán)境有關(guān)，也可能由其遺傳背景所決定［21］。

表6　不同品種甘薯葉的多酚含量Table 6　Total polyphenol content of different varieties of sweet potato leaves

3　結(jié)論

根據(jù)前人對甘薯葉中化學(xué)成分的研究，甘薯葉多酚為一類由奎尼酸和不同數(shù)目的咖啡酸縮合而成的酚酸類化合物［21］。根據(jù)甘薯葉中咖啡?？崴犷惢衔锾匦缘牟煌緦?shí)驗(yàn)采用半制備型HPLC從甘薯葉中分離純化得到6種咖啡?？崴釂误w，即3-CQA、4-CQA、5-CQA、3，4-diCQA、3，5-diCQA和4，5-diCQA。該方法簡便易行，分離效果良好，純化率高，可用于高純度咖啡?？崴犷愇镔|(zhì)類單體的制備。同時，本實(shí)驗(yàn)以甲醇和甲酸為流動相進(jìn)行梯度洗脫，采用HPLC-DAD和TSKgel ODS-80 TsQA色譜柱，建立了一種快速檢測和分析甘薯葉中咖啡?？崴犷愇镔|(zhì)的HPLC方法，具有穩(wěn)定性高、重復(fù)性好的優(yōu)點(diǎn)，并有望用于不同種類甘薯葉的初步鑒定。

圖3　峰A～F的紫外掃描譜圖Fig.3　The UV spectra of peak A～F

本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)，甘薯葉中酚類單體主要為咖啡?？崴犷惢衔?，其中3，5-diCQA的含量最高。此外，不同酚類單體在不同品系中含量也不相同，說明甘薯中的多酚含量和組成不僅受環(huán)境影響，也與其遺傳背景有一定的聯(lián)系，這為選育不同類型優(yōu)良甘薯品系提供了依據(jù)。

［1］李強(qiáng)，劉慶昌，翟紅，等.中國甘薯主要親本遺傳多樣性的ISSR分析［J］.作物學(xué)報(bào)，2008，34（6）：972-977.

［2］劉麗香．甘薯葉中多酚提純工藝及抗氧化活性研究［D］.南京：南京農(nóng)業(yè)大學(xué)，2008.

［3］羅麗萍，高蔭榆，洪雪娥，等．甘薯葉柄藤類黃酮的抗腫瘤作用研究［J］.食品科學(xué)，2006，27（8）：248-250.

［4］高瑩，張坤生，任云霞.甘薯葉提取物提取工藝及其抑菌作用的研究［J］.食品研究與開發(fā)，2007，28（1）：74-78.

［5］王友升，董銀卯，宋彥，等．甘薯葉中清除自由基活性物質(zhì)的提取·保存與定性分析［J］.安徽農(nóng)業(yè)科學(xué)，2008，36（1）：4-7.

［6］Huang XQ，Tu ZC，Xiao H，et al.Dynamic high pressure microfluidization-assisted extraction and antioxidant activities of sweet potato（Ipomoea batatas L.）leaves flavonoid［J］.Food and Bioproducts Processing，2013，91（1）：1-6.

［7］Jung JK，Lee SU，Kozukue N，et al.Distribution of phenolic compounds and antioxidative activities in parts of sweet potato（Ipomoea batata L.）plants and in home processed roots［J］. Journal of Food Composition and Analysis，2011，24（1）：29-37.

［8］Johnson M，Pace RD.Sweet potato leaves：properties and synergistic interactions that promote health and prevent disease［J］.Nutrition Reviews，2010，68（10）：604-615.

［9］Liao WC，Lai YC，Yuan MC，et al.Antioxidative activity of water extract of sweet potato leaves in Taiwan［J］.Food Chemistry，2011，127（3）：1224-1228

［10］Bovell-Benjamin AC.Sweet potato：a review of its past，present，and future role in human nutrition［J］.Advances in Food and Nutrition Research，2007，52：1-59.

［11］Chen CM，Li SC，Chen CY，et al.Constituents in purple sweet potato leaves inhibit in vitro angiogenesis with opposite effects ex vivo［J］.Nutrition，2011，27（11-12）：1177-1182.

［12］李鑫，王征.高效液相色譜法測定甘薯葉中的綠原酸含量［J］.湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)，2009，35（2）：130-132.

［13］Lachmana J，Hamouz K，?ulca M，et al.Cultivar differences of total anthocyanins and anthocyanidins in red and purplefleshed potatoes and their relation to antioxidant activity［J］.Food Chemistry，2009，114（3）：836-843.

［14］Ishida H，Suzuno H，Sugiyama N，et al.Nutritive evaluation on chemical components of leaves，stalks and stems of sweet potatoes（Ipomoea batatas poir）［J］.Food Chemistry，2000，68（3）：359-367.

［15］王建玲，劉學(xué)慶.特用甘薯的研究進(jìn)展及綜合開發(fā)利用［J］.雜糧作物，2000，20（3）：43-49.

［16］Liu LX，Sun Y，Laura T，et al.Determination of polyphenolic content and antioxidant activity of kudingcha made from Ilex kudingcha C.J.Tseng［J］.Food Chemistry，2009，112：35-41.

［17］孫怡，張鑫，張文芹，等.苦丁茶冬青苦丁茶中多酚類物質(zhì)的分離純化與結(jié)構(gòu)解析［J］.食品科學(xué)，2011，32（11）：60-63.

［18］劉麗香，Laura T，梁興飛，等.Folin-Ciocalteu比色法測定苦丁茶中多酚含量［J］.茶葉科學(xué)，2008，28（2）：101-106.

［19］Zhang X，Xu F，Gao Y，et al.Optimising the extraction of tea polyphenols，（-）-epigallocatechingallate and theanine from summer green tea by using responsesurface methodology［J］. International Journal of Food Science and Technology，2012，47（10）：2151-2157.

［20］Clifford MN，Johnston KL，Knight S，et al.Hierarchical scheme for LC-MSn identification of chlorogenic acids［J］. Journal of Agricultural and Food Chemistry，2003，51（10）：2900-2911.

［21］Clifford MN，Knight S，Kuhnert N.Discriminating between the six isomers of dicaffeoylquinic acid by LC-MSn［J］.Journal of Agricultural and Food Chemistry，2005，53（10）：3821-3832.

［22］Bravo L，Goya L，Lecumberri E.LC/MS Characterization of phenolic constituents of mate（Ilex paraguariensis，St.Hil.）and its antioxidant activity compared to commonly consumed beverages［J］.Food Research International，2007，40（3）：393-405.

［23］Inbaraj BS，Lu H，Kao TH，et al.Simultaneous determination of phenolic acids and flavonoids in Lycium barbarum Linnaeus by HPLC-DAD-ESI-MS［J］.Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis，2010，51（3）：549-556.

Purification of caffeoylquinic acids from sweet potato leaves and their analysis by high performance liquid chromatography

ZHU Ya-zhu
（Zhejiang International Martime College，Zhoushan 316021，China）

Six caffeoylquinic acid（CQA）derivatives were separated by semi-preparative high performance liquid chromatography（HPLC）from sweet potato leaves.The structures of prepared monomers were confirmed by 1H NMR and electrospray ionization time-of-flight mass spectrometry（ESI-TOF-MS），and the components and total polyphenol contents of different sweet potato leaves were analyzed.The results demonstrated that sweet potato leaf polyphenols were mainly caffeoylquinic acid and its derivatives.The composition of different varieties of sweet potato leaves were basically the same，the main component were six CQA derivatives，including 3-CQA，4-CQA，5-CQA，3，4-diCQA，3，5-diCQA and 4，5-diCQA，and the contents of total polyphenol were different in various groups.Overall，this HPLC method was accurate for investigation of the polyphenol contents and components in sweet potato leaves，and lay down a base for the choice of production material.

sweet potato leaves；polyphenols；caffeoylquinic acids；purification；HPLC

TS201.2

A

1002-0306（2015）10-0073-06

10.13386/j.issn1002-0306.2015.10.006

2014－07－21

朱亞珠（1962-），女，碩士研究生，副教授，主要從事食品加工工藝方面的研究。

浙江省科技廳公益技術(shù)應(yīng)用研究項(xiàng)目（2011C33014）。