吳俊靜 彭先文 喬木等
摘要:為了進(jìn)一步篩選獲得抑制豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)增殖的候選miRNA,為豬繁殖與呼吸綜合征(PRRS)防治及豬的抗病育種提供新策略,通過(guò)3′RACE(Rapid-amplification of cDNA ends)測(cè)序獲得了豬CD163基因3′UTR的完整序列,生物信息學(xué)分析發(fā)現(xiàn)其具有miR-181c、miR-181d、miR-23b、miR-4262等miRNA的作用靶點(diǎn)。利用雙熒光素酶報(bào)告系統(tǒng)檢測(cè)發(fā)現(xiàn),與陰性對(duì)照組相比,miR-181c、miR-181d、miR-23b和miR-4262均可極顯著(P<0.01)抑制熒光素酶的相對(duì)活性,其中miR-181d抑制效果最佳。
關(guān)鍵詞:雙熒光素酶報(bào)告系統(tǒng);miRNA;CD163基因;豬
中圖分類號(hào):R318; Q78 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):0439-8114(2015)19-4854-05
DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2015.19.052
Abstract: CD163 gene is one of the most important PRRSV entry mediators, which determines the cell susceptibility for PRRSV. If we can identify the miRNAs inhibiting CD163 gene expression, the anti-PRRSV miRNAs can be further acquired. In the present study, we got the full porcine CD163 3′UTR sequence by 3′RACE (Rapid-amplification of cDNA ends) sequencing, and found that it existed targeting sequences of miRNA,including miR-181c,miR-181d,miR-23b and miR-4262,by bioinformatics analysis. The results of dual luciferase reporter assay showed that miR-181c,miR-181d,miR-23b and miR-4262 could significantly reduced the related luciferase activity of reporter construct compared with the NC control group (P<0.01), especially for miR-181d. These results indicated that the 4 miRNAs could directly target to porcine CD163 gene,which layed a foundation for the further screening of anti-PRRSV miRNAs in the future.
Key words: dual luciferase reporter system; miRNA; CD163 gene; pig
豬繁殖與呼吸綜合征(Porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS)是由豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)感染引起的一種危害極大的傳染性疾病,因發(fā)病豬耳部發(fā)紺呈紫紅色斑塊狀,又稱藍(lán)耳病,主要導(dǎo)致母豬繁殖障礙(流產(chǎn)、死胎、弱胎、木乃伊胎等)、各年齡階段豬的呼吸道癥狀、哺乳仔豬的高死亡率、免疫抑制和持續(xù)性感染等[1],造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失。PRRSV侵入宿主細(xì)胞首先通過(guò)與細(xì)胞膜表面上的特異性受體結(jié)合,利用細(xì)胞內(nèi)吞作用感染易感細(xì)胞[2],因此這些特異性受體存在與否決定了細(xì)胞對(duì)PRRSV的易感性。CD163是PRRSV感染宿主細(xì)胞的關(guān)鍵受體之一,參與介導(dǎo)病毒的內(nèi)吞和增殖。
CD163是一種清道夫受體(Scavenger receptor),在PRRSV感染宿主細(xì)胞中起重要作用,主要參與病毒脫殼和基因組RNA的釋放過(guò)程。在PRRSV非易感細(xì)胞系(BHK-21、PK-15、NLFK)中轉(zhuǎn)染CD163真核表達(dá)質(zhì)??梢允惯@些細(xì)胞系感染 PRRSV 并在細(xì)胞內(nèi)產(chǎn)生子代病毒粒子[3,4]。CD163的表達(dá)量高低與PRRSV復(fù)制效率呈正相關(guān),上調(diào)CD163表達(dá)會(huì)增加病毒增殖,而下調(diào)CD163表達(dá)可降低病毒增殖[5]。豬肺泡巨噬細(xì)胞(PAM)是PRRSV的天然靶細(xì)胞,而采用CD163的抗體可以有效阻止PRRSV感染PAM[3]。永生化的PAM細(xì)胞系因無(wú)法正常表達(dá)CD163而變?yōu)镻RRSV非易感細(xì)胞[6]。CD163是PRRSV感染過(guò)程中的關(guān)鍵受體,在PRRSV感染PAM或者是Marc-145細(xì)胞的過(guò)程中都必須要有CD163的表達(dá)。
MicroRNA(miRNA)是一類長(zhǎng)約22 bp、高度保守的內(nèi)源性非編碼RNA分子,其表達(dá)具有明顯的組織和時(shí)間特異性,能夠互補(bǔ)或部分互補(bǔ)的與靶mRNA結(jié)合,使mRNA降解或介導(dǎo)其翻譯抑制。成熟的miRNA可同時(shí)封閉多個(gè)靶基因的翻譯,干預(yù)調(diào)節(jié)miRNA可改變多個(gè)靶基因的表達(dá)水平,且干預(yù)調(diào)節(jié)效率很高[7]。miRNA在病毒感染和宿主天然免疫中起關(guān)鍵作用,參與病毒與宿主的互作,它有可能是細(xì)胞最原始的免疫方式。在小鼠中發(fā)現(xiàn)miR-126可通過(guò)靶向作用于VEGFR2調(diào)控病源引起的天然免疫反應(yīng)[8]。在人巨噬細(xì)胞中,miR-155可靶向作用于SOCSS1,刺激干擾素信號(hào)通路下游基因表達(dá),參與抗病毒天然免疫過(guò)程[9]。
豬CD163基因在PRRSV感染宿主豬細(xì)胞的過(guò)程中起關(guān)鍵作用,同時(shí)miRNA介導(dǎo)的基因調(diào)控對(duì)調(diào)節(jié)機(jī)體免疫功能具有重要作用,廣泛參與機(jī)體抗病毒反應(yīng)。miRNA多數(shù)是通過(guò)與靶基因的3′UTR區(qū)序列特異性識(shí)別來(lái)實(shí)現(xiàn)對(duì)基因表達(dá)的調(diào)控作用,因此本研究構(gòu)建了豬CD163基因3′UTR雙熒光素酶報(bào)告載體,篩選鑒定了靶向調(diào)控豬CD163基因的miRNA,可為篩選抑制PRRSV感染增殖的miRNA奠定基礎(chǔ)。endprint
1 材料與方法
1.1 主要試劑與儀器
Marc-145細(xì)胞系由華中農(nóng)業(yè)大學(xué)保存,用含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基對(duì)Marc-145細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng)。psi-CHECK2載體、雙熒光素酶檢測(cè)試劑盒、T4 DNA連接酶和感受態(tài)大腸桿菌DH5α購(gòu)自Promega公司;去內(nèi)毒素質(zhì)粒小量抽提試劑盒購(gòu)自O(shè)mega公司;Opti-MEM無(wú)血清培養(yǎng)基、胎牛血清購(gòu)自Gibco公司;DMEM培養(yǎng)基、磷酸鹽緩沖液(PBS)購(gòu)自HyClone公司;Trizol試劑和脂質(zhì)體(LipofectaminTM 2000)購(gòu)自Invitrogen公司;3′RACE (Rapid-amplification of cDNA ends)試劑盒、限制性內(nèi)切酶XhoⅠ和NotⅠ、Taq DNA聚合酶、dNTP均購(gòu)自Takara公司。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成;miRNA由上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司人工合成。
1.2 豬CD163基因的3′RACE測(cè)序
提取湖北白豬(湖北省農(nóng)業(yè)科學(xué)院畜牧獸醫(yī)研究所實(shí)驗(yàn)豬場(chǎng))肝臟組織總RNA,使用Takara的3′RACE Adaptor引物進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄反應(yīng),合成cDNA第一鏈。反應(yīng)體系為10 μL,反應(yīng)程序?yàn)椋?2 ℃ 60 min;70 ℃ 15 min。
參考豬CD163基因GenBank的cDNA序列(登錄號(hào):NM_213976.1)設(shè)計(jì)外、內(nèi)兩個(gè)上游特異性引物(外引物:5′-CAGGTCGCTCATCTTTTGTTGC-3′和內(nèi)引物:5′-TACCGTCGTTCCACTAGTGATTT -3′),結(jié)合Takara 3′RACE試劑盒的外、內(nèi)兩個(gè)下游錨定引物(外引物:5′-TACCGTCGTTCCACTAGTGATTT-3′和內(nèi)引物:5′-CGCGGATCCTCCACTAGTGATTTCACTATAGG-3′),利用槽式降落PCR擴(kuò)增3′UTR區(qū)片段。第一輪外引物PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系為50 μL,其中反轉(zhuǎn)錄cDNA 2 μL,反應(yīng)程序?yàn)椋?5 ℃預(yù)熱4 min;95 ℃變性30 s,62~52 ℃退火30 s(每個(gè)循環(huán)降低0.5 ℃),72 ℃延伸90 s,共20個(gè)循環(huán);95 ℃變性30 s,52 ℃退火30 s,72 ℃延伸90 s,共15個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min;4 ℃保存。第二輪內(nèi)引物PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系為50 μL,其中第1輪PCR產(chǎn)物1 μL,反應(yīng)程序?yàn)椋?5 ℃預(yù)熱4 min;95 ℃變性30 s,64~54 ℃退火30 s(每個(gè)循環(huán)降低0.5 ℃),72 ℃延伸90 s,共20個(gè)循環(huán);95 ℃變性30 s,54 ℃退火30 s,72℃延伸90 s,共15個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min;4 ℃保存。PCR反應(yīng)產(chǎn)物用1.2%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),從瓊脂糖回收目的DNA,送北京奧科鼎盛生物科技有限公司測(cè)序。
1.3 靶向豬CD163基因3′UTR的miRNA預(yù)測(cè)
利用生物信息學(xué)工具TargenScan,參考人CD163基因3′UTR序列,預(yù)測(cè)調(diào)控CD163基因表達(dá)的物種間保守miRNA(miR-181a、miR-181b、miR-181c、miR-181d、miR-23a、miR-23b、miR-23c等)及其作用靶位點(diǎn)序列(TGAATGT和AATGTGA),詳見(jiàn)http://www.targetscan.org/cgi-bin/targetscan/vert_61/view
_gene.cgi?taxid=9606&rs=NM_203416&members=&showcnc=0&shownc=0&showncf=。對(duì)比新擴(kuò)增獲得的豬CD163基因3′UTR區(qū)序列,發(fā)現(xiàn)也包含這些保守miRNAs的靶位點(diǎn)序列(TGAATGT和AATGTGA)。人工合成miR-181c、miR-181d、miR-23a、miR-4262及陰性對(duì)照(NC)miRNA模擬物。
1.4 豬CD163基因3′UTR雙熒光素酶報(bào)告載體的構(gòu)建
結(jié)合豬CD163基因CDS序列和以上3′RACE測(cè)序結(jié)果,設(shè)計(jì)包含豬CD163基因3′UTR區(qū)的1對(duì)引物,PCR擴(kuò)增豬CD163基因3′UTR區(qū)的 469 bp片段。所用引物:上游引物:5′-CCGCTCGAGTCGCT
CATCTTTTGTTGC-3′,含有XhoⅠ酶切識(shí)別位點(diǎn)(CTCGAG)和保護(hù)堿基(CCG);下游引物:5′-ATTTGCGGCCGCTTTTATTTAATGCCCTTG-3′,含有NotⅠ酶切識(shí)別位點(diǎn)(GCGGCCGC)和保護(hù)堿基(ATTT)。PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系為50 μL,反應(yīng)程序?yàn)椋?5 ℃預(yù)熱4 min;95 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸90 s,5個(gè)循環(huán);95 ℃變性30 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸90 s,共25個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min;4 ℃保存。PCR反應(yīng)產(chǎn)物用1.2% 瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),采用過(guò)柱離心的方法從瓊脂糖回收純化PCR產(chǎn)物,并對(duì)其進(jìn)行測(cè)序驗(yàn)證。
將切膠純化回收后的PCR產(chǎn)物及psiCHECK-2載體分別用限制性內(nèi)切酶XhoⅠ和NotⅠ雙酶切,然后采用T4 DNA 連接酶將線性化psiCHECK-2載體與CD163基因3′UTR 片段相連,連接體系為10 μL:psi-CHECK2載體2 μL,CD163基因3′UTR擴(kuò)增片段6 μL,T4連接酶1 μL,10× T4 DNA連接酶緩沖液1 μL?;旌象w系于4 ℃連接過(guò)夜。取5 μL的連接產(chǎn)物連接反應(yīng)產(chǎn)物轉(zhuǎn)化50 μL感受態(tài)大腸桿菌DH5α,采用菌液PCR篩選陽(yáng)性克隆,并將用XhoⅠ和NotⅠ雙酶切正確的重組質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序鑒定,測(cè)序鑒定正確的重組質(zhì)粒命名為psi-CHECK2-CD163-3UTR。
1.5 熒光素酶活性的檢測(cè)endprint
在轉(zhuǎn)染前1 d,將5×104個(gè)細(xì)胞接種在24孔板中,加入無(wú)抗生素的培養(yǎng)基培養(yǎng)細(xì)胞。轉(zhuǎn)染當(dāng)天,更換細(xì)胞新鮮培養(yǎng)液,用Opti-MEM無(wú)血清培養(yǎng)基稀釋質(zhì)粒和脂質(zhì)體,每孔加入200 ng psi-CHECK2-CD163-3UTR質(zhì)粒、80 nmol/L各miRNA、2 μL LipofectaminTM 2000脂質(zhì)體。將細(xì)胞培養(yǎng)板放入無(wú)菌的5% CO2培養(yǎng)箱中,培養(yǎng)5 h后更換為新鮮完全培養(yǎng)基,24 h后裂解細(xì)胞檢測(cè)熒光素酶活性。上述試驗(yàn)每組設(shè)3個(gè)平行孔,以不進(jìn)行轉(zhuǎn)染的細(xì)胞作為空白對(duì)照,每組試驗(yàn)重復(fù)3次。
用冷PBS清洗細(xì)胞2次,加入120 μL細(xì)胞裂解液1×PLB,室溫?fù)u晃15 min充分裂解細(xì)胞,然后將裂解液收集至1.5 mL離心管中,按照Promega 公司的雙熒光素酶檢測(cè)試劑盒(Dual-Luciferase Reporter Assay)說(shuō)明書(shū)提供的方法,采用PerkinElmer公司的VICTORTM X2 Multilabel Plate Reader儀器檢測(cè)雙熒光素酶活性。
1.6 數(shù)據(jù)分析
螢火蟲(chóng)熒光值(M1)為內(nèi)參熒光值,海腎熒光值(M2)為報(bào)告基因檢測(cè)值,結(jié)果以M2與M1的比值(M2/M1)計(jì)算,利用SPSS 17.0對(duì)檢測(cè)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。數(shù)據(jù)以平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,檢驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn)以P<0.05為有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。
2 結(jié)果與分析
2.1 豬CD163基因的3′RACE測(cè)序及分析
miRNA多數(shù)是通過(guò)與靶基因的3′UTR區(qū)序列特異性識(shí)別來(lái)實(shí)現(xiàn)對(duì)基因表達(dá)的調(diào)控作用,而目前GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)中豬CD163基因的3′UTR序列并不完整,無(wú)法進(jìn)行調(diào)控豬CD163基因表達(dá)miRNAs的篩選鑒定研究。為了獲得豬CD163基因3′UTR的全序列,采用3′RACE結(jié)合槽式降落PCR技術(shù),成功擴(kuò)增獲得了豬CD163基因的特異性片段(圖1),片段測(cè)序結(jié)果與GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)中已知的豬CD163 mRNA序列(NM_213976.1)進(jìn)行比對(duì)分析,獲得豬CD163 CDS下游(3′)新的181 bp核苷酸序列,該序列包含PolyA特征的3′UTR核苷酸序列。
利用TargetScan生物學(xué)軟件預(yù)測(cè)可調(diào)控CD163基因3′UTR區(qū)的物種間保守miRNA(miR-181a、miR-181b、miR-181c、miR-181d、miR-23a、miR-23b、miR-23c等)及作用靶位點(diǎn)序列(TGAATGT和AATGTGA),發(fā)現(xiàn)新擴(kuò)增獲得的豬3′UTR區(qū)也包含這些保守miRNA的作用靶位點(diǎn)序列。
2.2 豬CD163基因3′UTR雙熒光素酶報(bào)告載體的構(gòu)建與鑒定
根據(jù)獲得的豬CD163基因的CDS和3′RACR測(cè)序結(jié)果,設(shè)計(jì)包含3′UTR區(qū)的1對(duì)引物,在5′端和3′端分別引入XhoⅠ和NotⅠ酶切識(shí)別位點(diǎn)及保護(hù)堿基,利用PCR方法擴(kuò)增獲得了豬CD163基因的469 bp長(zhǎng)的目的片段(圖2),將該片段插入雙熒光素酶報(bào)告載體psi-CHECK2的XhoⅠ和NotⅠ酶切位點(diǎn)之間,構(gòu)建豬CD163基因3′UTR雙熒光素酶報(bào)告基因載體psi-CHECK2-CD163-3UTR,構(gòu)建的載體結(jié)構(gòu)如圖3所示。采用菌液PCR鑒定陽(yáng)性克隆,并用XhoⅠ和NotⅠ限制性內(nèi)切酶進(jìn)行雙酶切鑒定,證實(shí)酶切后得到的469 bp的豬CD163基因3′UTR片段與預(yù)期大小相符(圖4)。抽提的重組質(zhì)粒經(jīng)測(cè)序再次驗(yàn)證插入序列的正確性。
2.3 miRNA對(duì)豬CD163基因3′UTR的調(diào)控
為了檢測(cè)以上預(yù)測(cè)的miRNA是否能靶向調(diào)控豬CD163基因3′UTR,將psi-CHECK2-CD163-3UTR和相應(yīng)miRNA模擬物分別共轉(zhuǎn)染Marc-145細(xì)胞,采用雙熒光素酶報(bào)告系統(tǒng)檢測(cè)熒光素酶活性,結(jié)果如表1和圖5所示。與NC對(duì)照組相比,轉(zhuǎn)染miR-181c、miR-181d、miR-23b和miR-4262可以極顯著(P<0.01)降低雙熒光素酶報(bào)告載體psi-CHECK2-CD163-3UTR的熒光素酶活性,其中miR-181d抑制效果最佳(降低46%)。說(shuō)明miR-181c、miR-181d、miR-23b和miR-4262均可靶向作用于豬CD163基因3′UTR,對(duì)豬CD163基因具有一定的調(diào)控作用。
3 小結(jié)與討論
CD163是PRRSV感染宿主細(xì)胞的一個(gè)關(guān)鍵受體,主要參與病毒脫殼和基因組RNA的釋放過(guò)程。它由單核細(xì)胞-巨噬細(xì)胞特異表達(dá),結(jié)構(gòu)包含信號(hào)肽、9個(gè)串聯(lián)的SRCR末端重復(fù)序列、一個(gè)跨膜區(qū)以及胞質(zhì)尾區(qū)。2005年Welch等[10]首次發(fā)現(xiàn)CD163與PRRSV感染有關(guān),PRRSV非易感系的豬腎細(xì)胞表達(dá)CD163后,可以被PRRSV感染并產(chǎn)生子代病毒。Calvert等[3]將從各種細(xì)胞系中分離得到CDl63分子轉(zhuǎn)染到PRRSV不敏感的細(xì)胞系后,這些細(xì)胞內(nèi)都產(chǎn)生子代病毒粒子。并且CD163表達(dá)量的高低與PRRSV復(fù)制效率呈正相關(guān),上調(diào)CD163表達(dá)會(huì)增加病毒增殖,而下調(diào)CD163表達(dá)可降低病毒增殖[5]。Ren等[11]發(fā)現(xiàn)豬CD163基因CDS區(qū)域序列變異與豬PRRSV易感性顯著相關(guān)。
近幾年有文獻(xiàn)報(bào)道m(xù)iRNA參與調(diào)控PRRSV感染。在人工miRNA方面,Xiao等[12]和Xia等[13]針對(duì)PRRSV病毒基因組特點(diǎn),設(shè)計(jì)人工miRNA,利用內(nèi)源性miRNA代謝途徑加工成熟后靶向降解PRRSV RNA,從而達(dá)到抑制病毒感染的效果。這表明人工miRNA的應(yīng)用可能成為有效抗PRRSV的新策略。在內(nèi)源性抗PRRSV增殖的miRNA研究方面,Wang等[14]發(fā)現(xiàn)與天然免疫相關(guān)的miR-125b能顯著抑制PRRSV的RNA復(fù)制和病毒增殖,miR-125b并不是直接作用于PRRSV的基因組,而是作用于宿主細(xì)胞中NF-κB的抑制因子κB-Ras2,通過(guò)調(diào)控NF-κB信號(hào)通路抑制PRRSV的增殖。endprint
CD163在PRRSV感染宿主細(xì)胞過(guò)程中具有重要作用,PRRSV必須依賴CD163的表達(dá)才能在宿主細(xì)胞中繁殖。因此,如果能鑒定獲得抑制CD163基因表達(dá)的miRNA,就可以進(jìn)一步篩選獲得抑制PRRSV增殖的候選miRNA,為PRRS防治及豬的抗病育種提供新策略。本研究擴(kuò)增獲得了豬CD163基因3′UTR的完整序列,生物信息學(xué)分析發(fā)現(xiàn)其具有miR-181c、miR-181d、miR-23b、miR-4262等miRNA的作用靶點(diǎn)。利用雙熒光素酶報(bào)告系統(tǒng)鑒定發(fā)現(xiàn)miR-181c、miR-181d、miR-23b和miR-4262均可靶向作用豬CD163基因的3′UTR,其中miR-181d抑制效果最佳。這4個(gè)miRNA也可能是潛在的能抑制PRRSV增殖的miRNA。然而,本結(jié)果還需要借助體外細(xì)胞學(xué)實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步驗(yàn)證。
Guo等[15]發(fā)現(xiàn)miR-181能與PRRSV RNA非編碼序列結(jié)合,抑制PRRSV感染,且體內(nèi)實(shí)驗(yàn)證實(shí)鼻滴miR-181模擬物可抑制PRRSV在仔豬體內(nèi)增殖,緩解攻毒后仔豬發(fā)病癥狀。研究還表明宿主miR-181在PAM細(xì)胞表達(dá)量較低,而在非易感細(xì)胞或組織中高表達(dá)。在此基礎(chǔ)上,Gao等[16]進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)miR-181能靶向抑制CD163基因表達(dá),從而抑制PRRSV感染,與本研究結(jié)果一致。Zhang等[17]研究結(jié)果顯示,上調(diào)表達(dá)miR-23能抑制PRRSV感染,而干擾掉內(nèi)源性miR-23表達(dá)會(huì)增強(qiáng)PRRSV增殖,表明miR-23具有一定的抗PRRSV增殖效應(yīng)。他們進(jìn)一步研究指出miR-23能通過(guò)激活I(lǐng)RF3/IRF7誘導(dǎo)產(chǎn)生Ⅰ型干擾素,從而抑制PRRSV感染。然而并未研究miR-23與CD163基因的靶向調(diào)控關(guān)系,很可能miR-23能通過(guò)多種途徑(包括抑制受體基因CD163的表達(dá))達(dá)到抑制病毒的效果。有關(guān)miR-4262的相關(guān)研究報(bào)道比較少,其功能還不十分明確。
本研究利用雙熒光素酶報(bào)告系統(tǒng)明確了miR-181c、miR-181d、miR-23b和miR-4262能靶向作用豬CD163基因的3′UTR,對(duì)豬CD163基因具有負(fù)向調(diào)控作用,可為進(jìn)一步篩選抗PRRSV增殖miRNA奠定基礎(chǔ)。
參考文獻(xiàn):
[1] OPRIESSING T, BAKER R B, HALBUR P G. Use of an experimental model to test the efficacy of planned exposure to live porcine reproductive and respiratory syndrome virus[J]. Clin Vaccine Immunol, 2007, 14(12):1572-1577.
[2] DELPUTTE P L, COSTERS S, NAUWYNCK H J. Analysis of porcine reproductive and respiratory syndrome virus attachment and internalization: Distinctive roles for heparan sulphate and sialoadhesin[J]. J Gen Virol, 2005, 86(5): 1441-1445.
[3] CALVERT J G, SLADE D E, SHIELDS S L, et al. CD163 expression confers susceptibility to porcine reproductive and respiratory syndrome viruses[J]. J Virol, 2007, 81(14): 7371-7379.
[4] WELCH S K, CALVERT J G. A brief review of CD163 and its role in PRRSV infection[J]. Virus Res, 2010, 154(1-2): 98-103.
[5] PATTON J B, ROWLAND R R, YOO D, et al. Modulation of CD163 receptor expression and replication of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in porcine macrophages[J]. Virus Res, 2009, 140(1-2): 161-171.
[6] LEE Y J, PARK C K, NAM E, et al. Generation of a porcine alveolar macrophage cell line for the growth of porcine reproductive and respiratory syndrome virus[J]. J Virol Methods, 2010, 163(2): 410-415.
[7] CARTHEW R W, SONTHEIMER E J. Origins and mechanisms of miRNAs and siRNAs[J]. Cell,2009,136(4):642-655.
[8] AGUDO J, RUZO A, TUNG N, et al. The miR-126-VEGFR2 axis controls the innate response to pathogen-associated nucleic acids[J]. Nat Immunol, 2014, 15(1): 54-62.
[9] WANG P, HOU J, LIN L, et al. Inducible microRNA-155 feedback promotes type I IFN signaling in antiviral innate immunity by targeting suppressor of cytokine signaling 1[J]. J Immunol, 2010, 185(10): 6226-6233.endprint
[10] WELCH S K W, SLADE D E, SHIELDS S L, et al. Identification and characterization of a cellular gene essential for PRRS virus infection, 2005 international PRRS symposium [J]. St Louis Missoud, 2005, 2:3-22.
[11] REN Y W, ZHANG Y Y, AFFARA N A, et al. The polymorphism analysis of CD169 and CD163 related with the risk of porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) infection[J]. Mol Biol Rep, 2012, 39(11):9903-9909.
[12] XIAO S, WANG Q, GAO J, et al. Inhibition of highly pathogenic PRRSV replication in MARC-145 cells by artificial microRNAs[J]. Virol J, 2011, 8:491.
[13] XIA B, SONG H, CHEN Y, et al. Efficient inhibition of porcine reproductive and respiratory syndrome virus replication by artificial microRNAs targeting the untranslated regions[J]. Arch Virol, 2013, 158(1): 55-61.
[14] WANG D, CAO L, XU Z, et al. MiR-125b reduces porcine reproductive and respiratory syndrome virus replication by negatively regulating the NF-κB pathway[J]. PLoS One, 2013, 8(2):e55838.
[15] GUO X K, ZHANG Q, GAO L, et al. Increasing expression of microRNA 181 inhibits porcine reproductive and respiratory syndrome virus replication and has implications for controlling virus infection[J]. J Virol, 2013, 87(2):1159-1171.
[16] GAO L, GUO X K, WANG L, et al. MicroRNA 181 suppresses porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) infection by targeting PRRSV receptor CD163[J]. J Virol, 2013, 87(15): 8808-8812.
[17] ZHANG Q, GUO X K, GAO L, et al. MicroRNA-23 inhibits PRRSV replication by directly targeting PRRSV RNA and possibly by upregulating type I interferons[J]. Virology, 2014, 450-451:182-195.endprint