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氙氣延遲后處理誘導(dǎo)蛋白激酶B信號通路活化對大鼠脊髓缺血再灌注損傷的保護(hù)作用

2015-12-16 01:22:07劉詩瑤侯思雨楊彥偉汪曉南金沐董秀華盧家凱程衛(wèi)平
中國循環(huán)雜志 2015年5期
關(guān)鍵詞:氙氣阻斷劑后肢

劉詩瑤,侯思雨,楊彥偉,汪曉南,金沐,董秀華,盧家凱,程衛(wèi)平

氙氣延遲后處理誘導(dǎo)蛋白激酶B信號通路活化對大鼠脊髓缺血再灌注損傷的保護(hù)作用

劉詩瑤,侯思雨,楊彥偉,汪曉南,金沐,董秀華,盧家凱,程衛(wèi)平

目的:探討蛋白激酶B(Akt)信號通路在氙氣延遲后處理對大鼠脊髓缺血再灌注損傷中的作用。

方法:建立大鼠脊髓缺血再灌注損傷模型。采用隨機(jī)數(shù)表法將實(shí)驗(yàn)動物分為7組(n=16):脊髓缺血再灌注組(I/R組)、脊髓缺血再灌注+氙氣延遲后處理組(I/R+Xe組)、脊髓缺血再灌注+PI3K/Akt阻斷劑組(I/R+wortmannin組)、脊髓缺血再灌注+阻斷劑溶劑二甲基亞砜(DMSO)組(I/R+DSMO組)、脊髓缺血再灌注+PI3K/Akt阻斷劑+氙氣延遲后處理組(I/R +wortmannin+Xe組)、脊髓缺血再灌注+阻斷劑溶劑DMSO+氙氣延遲后處理組(I/R+DMSO+Xe組)、假手術(shù)組(Sham組)。分別于缺血再灌注后6、12、24、48 h觀察記錄大鼠后肢運(yùn)動功能,于缺血再灌注后4 h(n=8)和48 h(n=8)行尼氏染色、TUNEL染色檢測存活及凋亡指數(shù),行蛋白印跡法(Western blot) 測定脊髓組織中p-Akt蛋白表達(dá)。

結(jié)果:與Sham組相比,其余各組大鼠在各檢測時點(diǎn)后肢運(yùn)動功能評分顯著降低,脊髓前角運(yùn)動神經(jīng)元存活數(shù)量顯著減少、凋亡數(shù)量顯著增加,p-Akt水平顯著增高(P<0.05)。I/R+Xe組較I/R組大鼠在各檢測時點(diǎn)后肢運(yùn)動功能評分顯著增加,脊髓前角運(yùn)動神經(jīng)元存活數(shù)量顯著提高、凋亡數(shù)量顯著減少,p-Akt水平顯著增高(P<0.05)。I/R+wortmannin+Xe組較I/R+Xe組大鼠在各檢測時點(diǎn)后肢運(yùn)動功能評分明顯下降,脊髓前角運(yùn)動神經(jīng)元存活數(shù)量顯著減少、凋亡數(shù)量顯著增加,p-Akt水平顯著降低(P<0.05)。

結(jié)論:氙氣延遲后處理通過激活A(yù)kt信號通路對大鼠脊髓缺血再灌注損傷起到保護(hù)作用。

氙氣;延遲后處理;脊髓;缺血再灌注;蛋白激酶B通路

(Chinese Circulation Journal, 2015,30:498.)

隨著高血壓和動脈粥樣硬化發(fā)病率的增加,主動脈夾層動脈瘤的發(fā)病率隨之增加[1]。外科手術(shù)是其主要治療方法,而術(shù)后截癱發(fā)病率高達(dá)10%,術(shù)中脊髓缺血再灌注損傷是導(dǎo)致術(shù)后截癱的重要原因[2]。缺血或藥物后處理對脊髓缺血再灌注損傷具有保護(hù)作用[3]。氙氣作為一種惰性麻醉氣體,對心臟、神經(jīng)系統(tǒng)和腎臟的缺血性損傷有保護(hù)效應(yīng)[4]。氙氣延遲后處理對脊髓缺血再灌注損傷具有明確保護(hù)作用,而保護(hù)機(jī)制尚不明確[5]。蛋白激酶B(Akt)是肌醇與磷脂酰肌醇(PI)的重要激酶,Akt信號通路激活參與缺血預(yù)處理和后處理對臟器缺血再灌注損傷的保護(hù)作用[6]。本研究通過建立大鼠脊髓缺血再灌注損傷模型,觀察Akt信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路是否參與氙氣延遲后處理對脊髓缺血再灌注損傷保護(hù)作用,以初步闡明其保護(hù)機(jī)制。

1 材料和方法

實(shí)驗(yàn)材料:112只8周齡雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠(SPF級,封閉群),北京維通利華實(shí)驗(yàn)動物技術(shù)有限公司,體重250~350g。

大鼠脊髓缺血再灌注損傷模型建立[7]:3%戊巴比妥鈉腹腔注射,經(jīng)口氣管插管,全程呼吸機(jī)控制呼吸。術(shù)中維持體溫并行肛溫監(jiān)測。經(jīng)左頸總動脈監(jiān)測近端血壓,尾動脈監(jiān)測遠(yuǎn)端血壓。全程記錄近端、遠(yuǎn)端血壓和肛溫。經(jīng)左髂總動脈,將2F球囊導(dǎo)管置入約10 cm,使前端達(dá)左鎖骨下動脈開口下3~4 mm水平。經(jīng)尾動脈注射500 U/kg肝素鈉,2 min后充起球囊,完全阻斷左鎖骨下動脈遠(yuǎn)端血流,使遠(yuǎn)端血壓急速下降并持續(xù)低于7 mmHg,通過體位調(diào)整維持近端血壓。25 min后,抽空球囊恢復(fù)水平體位。經(jīng)尾動脈注入魚精蛋白(1 mg魚精蛋白中和100 U肝素鈉)??p合髂總動脈穿刺處,確保血流通暢。于阻斷前10 min和阻斷后15 min經(jīng)尾動脈行動脈血?dú)夥治觥?/p>

實(shí)驗(yàn)動物分組和處理方案:將112只大鼠采用隨機(jī)數(shù)表法分為7組,每組16只:(1)脊髓缺血再灌注組(I/R組);(2)脊髓缺血再灌注+氙氣延遲后處理組(I/R+Xe組);(3)脊髓缺血再灌注+PI3K/Akt阻斷劑渥曼青霉素(wortmannin)組(I/R+wortmannin組);(4)脊髓缺血再灌注+阻斷劑溶劑二甲基亞砜(DMSO)組(I/R+DSMO組);(5)脊髓缺血再灌注+PI3K/Akt阻斷劑wortmannin+氙氣延遲后處理組(I/ R+wortmannin+Xe組);(6)脊髓缺血再灌注+阻斷劑溶劑DMSO+氙氣延遲后處理組(I/R+DMSO+Xe組);(7)假手術(shù)組(Sham組)(Sham組與I/R組接受相同的手術(shù)過程,但不充起球囊,將穿刺后25 min作為擬再灌注開始時間)。再灌注后30 min,DMSO各組大鼠經(jīng)尾動脈注入濃度5%的DMSO(0.3 ml);wortmannin各組注入wortmannin(DMSO終濃度5%,0.6 ml/kg,總?cè)莘e0.3 ml);其余各組注入生理鹽水(0.3 ml)。再灌注后1 h,氙氣延遲后處理各組大鼠經(jīng)呼吸機(jī)吸入50%氙氣+50%氧氣混合氣1 h;其余各組吸入50%氮?dú)?50%氧氣混合氣1 h。模型成功建立標(biāo)準(zhǔn):再灌注后4 h大鼠存活,且出現(xiàn)后肢運(yùn)動功能不全(后肢運(yùn)動功能評分<21分)。

標(biāo)本取材:每組16只大鼠隨機(jī)于再灌注后4 h和48 h經(jīng)深麻醉處死,每時間點(diǎn)8只。將大鼠深麻醉后,開胸經(jīng)左心室灌注200 ml冰鹽水至灌洗液清亮,迅速取出脊髓,脊髓L3~L4節(jié)段置于4℃4%的多聚甲醛中固定,備行石蠟包埋切片(4 μm),進(jìn)行尼氏及TUNEL染色使用,脊髓L4~L5節(jié)段放置于-80℃液氮中貯存,進(jìn)行蛋白印跡法(Westernblot) 檢測。

后肢運(yùn)動功能評分:采用盲法于再灌注后6、12、24和48 h分別對實(shí)驗(yàn)動物進(jìn)行后肢運(yùn)動功能評分并錄像,使用BBB(Basso, Beattie and Bresnahan)后肢運(yùn)動功能評分表[8]。BBB評分從0分(神經(jīng)功能完全缺失)到21分(神經(jīng)功能正常)。

尼氏染色和神經(jīng)元細(xì)胞計(jì)數(shù):采用盲法在400倍光鏡下觀察并記錄尼氏染色切片,每個脊髓節(jié)段隨機(jī)抽取3張切片,取3張切片平均值,計(jì)數(shù)正常神經(jīng)元。每組8只大鼠。

脊髓組織TUNEL染色:采用盲法在400倍光鏡下觀察記錄TUNEL染色切片,每個脊髓節(jié)段隨機(jī)抽取3張切片,取3張切片平均值,計(jì)數(shù)正常神經(jīng)元。每組8只大鼠。采用TUNEL檢測試劑盒(ZK-8005,北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司)測定神經(jīng)元細(xì)胞凋亡情況。凋亡神經(jīng)細(xì)胞經(jīng)TUNEL染色細(xì)胞核中有深染棕褐色顆粒。

p-Akt蛋白印跡法檢測:脊髓組織勻漿用蛋白定量試劑盒(BCA法)行蛋白定量并調(diào)整待測樣本的蛋白濃度,配制分離膠(12%),濃縮膠(5%),精確完成蛋白上樣、電泳、轉(zhuǎn)膜和抗原封閉。使用3% BSA-TBST稀釋一抗(p-Akt,1:2 000),孵育,洗膜。5%脫脂奶粉-TBST稀釋二抗[山羊抗兔lgG(H+L)HRP,1:20 000],室溫輕搖40 min,洗膜。X光膠片曝光顯影、定影。分別檢測再灌注后4 h和48 h時點(diǎn)脊髓組織中p-Akt表達(dá)水平。

2 結(jié)果

生理參數(shù)(表1):阻斷前、阻斷后5 min、再灌注后15 min各組大鼠肛溫、近端血壓、阻斷前和再灌注后15 min遠(yuǎn)端血壓行組內(nèi)、組間比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。各組大鼠遠(yuǎn)端血壓在阻斷后5 min進(jìn)行組間比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P >0.05),各組(Sham組除外)大鼠阻斷后5 min遠(yuǎn)端血壓與同組阻斷前遠(yuǎn)端血壓比較顯著降低, 差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P <0.05)。表2顯示:各組阻斷前10 min、再灌注后15 min所測血?dú)夥治鼋Y(jié)果行組內(nèi)、組間比較,差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

表1 實(shí)驗(yàn)過程中的生理參數(shù)

表1 實(shí)驗(yàn)過程中的生理參數(shù)

注: I/R組:脊髓缺血再灌注組;I/R+Xe組:脊髓缺血再灌注+氙氣延遲后處理組;I/R+wortmannin組:脊髓缺血再灌注+PI3K/Akt阻斷劑渥曼青霉素組;I/ R+DSMO組:脊髓缺血再灌注+阻斷劑溶劑二甲基亞砜(DMSO)組;I/R+wortmannin+Xe組:脊髓缺血再灌注+PI3K/Akt阻斷劑wortmannin+氙氣延遲后處理組;I/R+DMSO+Xe組:脊髓缺血再灌注+阻斷劑溶劑DMSO+氙氣延遲后處理組;Sham組:假手術(shù)組。與阻斷前血壓比較*P<0.05 。1 mmHg=0.133 kPa

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表2 阻斷前和再灌注后動脈血?dú)夥治鼋Y(jié)果

表2 阻斷前和再灌注后動脈血?dú)夥治鼋Y(jié)果

注:pH:酸堿度 PaO2:氧分壓 PaCO2:二氧化碳分壓。余注見表1

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后肢運(yùn)動功能評分(表3):Sham組大鼠后肢運(yùn)動功能評分(21.0±0.2)分。其余各組大鼠在麻醉恢復(fù)后6、12、24、48 h后肢運(yùn)動功能評分顯著降低,與Sham組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。與I/R組大鼠相比,I/R+Xe組和I/ R+DMSO+Xe組后肢運(yùn)動功能評分在各個時間點(diǎn)均顯著提高,I/R+wortmannin組和I/R+wortmannin+Xe 組顯著降低,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。與I/R+Xe組大鼠相比,I/R組、 I/R+wortmannin組、I/R+wortmannin+Xe組及I/R+DMSO組后肢運(yùn)動功能評分在各個時間點(diǎn)均顯著降低(P<0.05)。

脊髓組織學(xué)改變、脊髓細(xì)胞凋亡計(jì)數(shù)、脊髓組織中p-Akt蛋白印跡法檢測(表4): Sham組4 h和48 h脊髓組織可見大量正常神經(jīng)元,其余各組脊髓組織中正常神經(jīng)元數(shù)量顯著減少、凋亡神經(jīng)元數(shù)量顯著增加、p-Akt水平顯著增高,與Sham組比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。與I/R組相比,I/R+Xe組和I/R+DMSO+Xe組的4 h和48 h脊髓組織正常神經(jīng)元數(shù)量顯著增多、凋亡神經(jīng)元數(shù)量顯著減少、p-A k t水平

表3 后肢運(yùn)動功能評分結(jié)果

表3 后肢運(yùn)動功能評分結(jié)果

注:與Sham組比較*P<0.05;與I/R組比較△P<0.05;與I/R+Xe組比較▲P<0.05。余注見表1

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顯著增高;I/R+wortm annin組和I/R+wortmannin+Xe組的4 h和48 h脊髓組織正常神經(jīng)元數(shù)量顯著減少、凋亡神經(jīng)元數(shù)量顯著增加、p-Akt水平顯著降低(P<0.05)。與I/R+Xe組相比,I/R組、I/R+wortmannin組、I/R+wortmannin+Xe組和I/R+DMSO組4 h和48 h脊髓組織切片中正常神經(jīng)元數(shù)量顯著減少、凋亡神經(jīng)元數(shù)量顯著增加、p-Akt水平顯著降低(P<0.05)。

表4 脊髓前角運(yùn)動神經(jīng)元數(shù)量、脊髓前角運(yùn)動神經(jīng)元凋亡數(shù)量、蛋白免疫印跡法脊髓組織p-Akt定量

表4 脊髓前角運(yùn)動神經(jīng)元數(shù)量、脊髓前角運(yùn)動神經(jīng)元凋亡數(shù)量、蛋白免疫印跡法脊髓組織p-Akt定量

注:Akt:蛋白激酶B。與Sham組比較*P<0.05;與I/R組比較△P<0.05;與I/R+Xe組比較▲P<0.05。余注見表1

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3 討論

研究證實(shí),再灌注后1 h吸入50%氙氣+50%氧氣混合氣體,對脊髓缺血再灌注損傷發(fā)揮最大保護(hù)作用[5]。大鼠脊髓缺血再灌注后4 h p-Akt達(dá)到表達(dá)高峰,12 h降至低谷;神經(jīng)元再灌注后4 h出現(xiàn)凋亡,48 h凋數(shù)量最多[9]。因此,選擇再灌注后4 h和48 h進(jìn)行正常神經(jīng)元、凋亡神經(jīng)元計(jì)數(shù)及蛋白定量分析。正常的神經(jīng)細(xì)胞胞漿中富含尼氏體,而受損的神經(jīng)細(xì)胞胞漿中尼氏體數(shù)量下降,染色質(zhì)深染,細(xì)胞核固縮。凋亡的神經(jīng)細(xì)胞經(jīng)TUNEL染色呈棕褐色。結(jié)果顯示,氙氣延遲后處理對大鼠脊髓缺血再灌注損傷有保護(hù)作用,BBB后肢運(yùn)動功能評分顯著增高,神經(jīng)元存活數(shù)量顯著增加,細(xì)胞凋亡顯著減少,Akt信號通路被激活,p-Akt表達(dá)增加,加入Akt通道阻斷劑wortmannin后這一保護(hù)作用被抑制。在實(shí)驗(yàn)過程中因?qū)嶒?yàn)條件限制,標(biāo)本無法在取材同時完成檢測,可能導(dǎo)致結(jié)果顯著性降低。

研究表明,氙氣可以減少缺血再灌注損傷模型中神經(jīng)元的死亡,改善神經(jīng)認(rèn)知和神經(jīng)功能障礙[4]。Fries 等[10]用豬心肺復(fù)蘇模型證實(shí),70%氙氣于再灌注1 h行延遲后處理具有神經(jīng)保護(hù)效應(yīng)。Campos-Pires等[11]證實(shí),氙氣對休克腦缺血模型發(fā)揮延遲后處理保護(hù)作用的時間窗長達(dá)3 h。氙氣的神經(jīng)保護(hù)作用機(jī)制被認(rèn)為與直接抑制N,N-二甲基亞硝胺受體(NMDA site)介導(dǎo)的興奮毒性、興奮細(xì)胞膜雙孔鉀通道及細(xì)胞膜三磷酸腺苷敏感鉀通道等有關(guān)[4]。但氙氣延遲后處理發(fā)揮脊髓缺血再灌注損傷保護(hù)作用的機(jī)制仍有待研究。

Bcl-2/Bax被認(rèn)為是PI3K-Akt的下游效應(yīng)因子。研究證實(shí),氙氣通過調(diào)節(jié)Bcl-2/bax的表達(dá)發(fā)揮延遲后處理對大鼠脊髓缺血再灌注的保護(hù)作用[5]。PI3K-Akt 信號通路參與調(diào)控多種影響細(xì)胞生存的轉(zhuǎn)錄因子,如環(huán)磷腺苷效應(yīng)元件結(jié)合蛋白(CREB) 和核因子(NF)-κB和Forkhead 1等。CREB和NF-κB 的激活可增強(qiáng)抗凋亡基因Bcl-2 的表達(dá)。同時,PI3K-Akt可抑制促凋亡基因Bad 的表達(dá)。有研究指出,在全腦和局部腦缺血再灌注后均有暫時的Akt磷酸化的增強(qiáng)[12]。還有研究證實(shí),局部腦缺血再灌注損傷模型缺血后處理可通過激活PI3K-Akt 信號通路產(chǎn)生長時程腦保護(hù)效應(yīng)[13]。目前,仍很少有研究觀察和分析氙氣的神經(jīng)保護(hù)作用與PI3K-Akt通路的關(guān)系。本研究結(jié)果證實(shí),氙氣延遲后處理對大鼠脊髓缺血再灌注的保護(hù)作用是通過PI3K-Akt通路發(fā)生作用的。

細(xì)胞凋亡的機(jī)制涉及多個方面,如線粒體膜通透性及鈣離子水平等[14]。有研究表明,藥物預(yù)處理及后處理均通過線粒體滲透性轉(zhuǎn)運(yùn)孔(mPTP)發(fā)揮對心肌缺血再灌注損傷的保護(hù)作用[15]。另一項(xiàng)研究指出,氙氣預(yù)處理可以通過激活促存活信號(p-Akt)從而促進(jìn)線粒體的存活[16]。在心肌缺血再灌注損傷后處理模型中,p-Akt 在mPTP 處高表達(dá)[17]。氙氣延遲后處理激活A(yù)kt 信號通路是否通過進(jìn)一步抑制mPTP 活性發(fā)揮保護(hù)作用仍有待進(jìn)一步研究證實(shí)。

綜上所述,氙氣延遲后處理可以通過誘導(dǎo)Akt通路活化產(chǎn)生大鼠脊髓缺血再灌注損傷保護(hù)作用。

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The Protective Roll of Xenon Delayed Post-conditioning Via AKT Signal Pathway Activation in Spinal Cord Ischemia/Reperfusion Injury in Rats

LIU Shi-yao, HOU Si-yu, YANG Yan-wei, WANG Xiao-nan, JING-mu, DONG Xiu-hua, LU Jia-kai, CHENG Wei-ping.
Department of Anesthesiology, Anzhen Hospital, Capital Medical University, Beijing (100029), China

Objective: Spinal cord ischemia/reperfusion (I/R) injury may lead spinal cord functional impairment and paraplegia, and we want to investigate the protective roll of xenon (Xe) delayed post-conditioning via protein kinase B (Akt) signal pathway activation in spinal cord I/R injury in experimental rats.Methods: A total of 112 male SD rats were divided into 7 groups: ①I/R group,②I/R+Xe group,③I/R+wortmannin (PI3K-Akt blocker) group,④I/R+DMSO (solvent) group,⑤I/R+wortmannin+Xe group,⑥I/R+DMSO+Xe group,⑦Sham group. n=16 in each group. The excise function in hind legs of rats were observed at 6, 12, 24, 48 hours after treatment; the survival neuron was examined by Nissl staining and TUNEL staining at 4, 48 hours after treatment, and the protein expression of p-Akt in spinal cord was measured by Western blot analysis.Results: Compared with Sham group, all other groups showed obviously decreased excise function in hind legsof rats with less spinal motor neurons, more apoptosis and lower protein expression of p-Akt at each time point, P<0.05. Compared with I/R group, I/R+Xe group presented increased excise function in hind legs, more spinal motor neurons, less apoptosis and elevated protein expression of p-Akt P<0.05. Compared with I/R+Xe group, I/R+wortmannin+Xe group indicated decreased excise function in hind legs, less spinal motor neurons, more apoptosis and inhibited protein expression of p-Akt, P<0.05. While protein expression level was similar between I/R group and I/R+wortmannin+Xe group, P>0.05.Conclusion: Xenon delayed post conditioning may protect spinal cord I/R injury via Akt pathway activation in experimental rats.

Xenon; Delayed post-conditioning; Spinal cord; Ischemia reperfusion injury; AKT signal pathway

2015-02-12)

(編輯:汪碧蓉)

國家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(81070975);衛(wèi)生部行業(yè)專項(xiàng)基金(201402009)

100029 北京市,首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京安貞醫(yī)院 麻醉科

劉詩瑤 碩士研究生 研究方向:心血管麻醉及圍術(shù)期臟器功能保護(hù) Email:shiyao312@sina.com 通訊作者:程衛(wèi)平

Email:ch_eng9735 @sina.com

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A

1000-3614( 2015 )05-0498-05

10.3969/ j. issn. 1000-3614. 2015.05.020

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