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基于重組酶聚合酶擴(kuò)增技術(shù)(RPA)的葡萄卷葉伴隨病毒3號(hào)檢測方法

2016-03-17 00:39:38乾義柯胡白石賽鐵爾汗
新疆農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年2期
關(guān)鍵詞:檢測方法

張 娜, 乾義柯, 魏 霜, 胡白石,陸 平, 賽鐵爾汗,

劉中勇3, 張永江5, 張祥林6

(1.伊犁師范學(xué)院, 新疆伊寧 835000;2.伊犁出入境檢驗(yàn)檢疫局, 新疆伊寧 835000;3.汕頭出入境檢驗(yàn)檢疫局, 廣東汕頭 515041;

4 .南京農(nóng)業(yè)大學(xué), 南京 290000;5.中國檢驗(yàn)檢疫科學(xué)研究院植物檢疫研究所, 北京 100029;

6.新疆出入境檢驗(yàn)檢疫局, 烏魯木齊 830052)

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基于重組酶聚合酶擴(kuò)增技術(shù)(RPA)的葡萄卷葉伴隨病毒3號(hào)檢測方法

張 娜1, 乾義柯2, 魏 霜3, 胡白石4,陸 平2, 賽鐵爾汗2,

劉中勇3, 張永江5, 張祥林6

(1.伊犁師范學(xué)院, 新疆伊寧835000;2.伊犁出入境檢驗(yàn)檢疫局, 新疆伊寧835000;3.汕頭出入境檢驗(yàn)檢疫局, 廣東汕頭515041;

4 .南京農(nóng)業(yè)大學(xué), 南京290000;5.中國檢驗(yàn)檢疫科學(xué)研究院植物檢疫研究所, 北京100029;

6.新疆出入境檢驗(yàn)檢疫局, 烏魯木齊830052)

摘要:【目的】建立一種快速、靈敏的重組酶聚合酶擴(kuò)增技術(shù)(RPA)檢測葡萄卷葉伴隨病毒3(Grapevine leafroll-associated virus 3,GLRaV-3)方法。【方法】根據(jù)GLRaV-3已測序和已報(bào)道的HSP70基因(Heat shock protein 70)保守序列,設(shè)計(jì)用于RPA檢測的特異性引物,建立GLRaV-3的RPA檢測方法,并對其特異性和靈敏度進(jìn)行驗(yàn)證?!窘Y(jié)果】建立RPA檢測方法能夠從GLRaV-3帶毒株中檢測到約380 bp的特異性條帶,僅需在37℃下恒溫反應(yīng)40 min,無需特殊的儀器設(shè)備,經(jīng)特異性評價(jià)特異性好,且該方法與普通PCR檢測靈敏度基本一致?!窘Y(jié)論】建立的RPA檢測方法特異性強(qiáng)、靈敏度高,無需特殊的儀器設(shè)備,適合GLRaV-3的快速檢測方法。

關(guān)鍵詞:葡萄卷葉伴隨病毒3;RPA;檢測方法

0 引 言

【研究意義】葡萄卷葉病毒病(Grapevineleafroll-associatedvirus,GLRaV)是僅次于葡萄扇葉病毒病的一種世界性葡萄病毒病,在國內(nèi)分布較為普遍,田間感病率較高,對葡萄產(chǎn)量和品質(zhì)影響很大,且引起該病的病毒是由多種病毒單獨(dú)或復(fù)合侵染造成[1-3]?,F(xiàn)已報(bào)道的葡萄卷葉伴隨病毒有11種,分別為GLRaV- 1~9,GLRaV-Dr,GLRaV-De[4, 5],我國已鑒定明確的葡萄卷葉伴隨病毒種類共有6種,即GLRaV- 1~5和7[6, 7]。GLRaV已被證明屬于典型的Clostero病毒,僅分布于韌皮部和葉片,其傳播不是靠機(jī)械,通常是靠感染的母株或接穗等繁殖材料[8]。其中葡萄卷葉伴隨病毒3(Grapevineleafroll-associatedvirus3,GLRaV-3)是最重要的一種,為葡萄卷葉病毒屬(Ampleovirus)模式Hya種,基因組全長約18 kb,包含13個(gè)開放閱讀框架,分子量為35 kDa的CP由ORF6編碼[9]。它分布最廣泛造成的經(jīng)濟(jì)損失最大,而且也是這幾種病毒中唯一具有自然介體的病毒[10-12]。GLRaV具有半潛隱性,導(dǎo)致葡萄植株生長衰弱,果實(shí)成熟延遲,果粒大小不均,著色不良,含糖量減少,產(chǎn)量下降,對葡萄的生長發(fā)育有顯著影響。因此,研究葡萄卷葉病毒檢測方法對該類病毒檢驗(yàn)檢疫和葡萄無毒苗木生產(chǎn)具有重要意義?!厩叭搜芯窟M(jìn)展】目前,檢測葡萄卷葉病毒的方法主要有指示植物法、酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA),反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(RT-PCR)和實(shí)時(shí)熒光PCR法。指示植物檢測法比較簡單,但其檢測速度很慢,而且無法確定侵染病毒的種類,靈敏度也較低。葡萄卷葉伴隨病毒ELISA檢測方法[13]靈敏度高,操作簡單,但所需檢測時(shí)間也在1~2,而且抗體制備周期長,費(fèi)用較高,靈敏度不及RT-PCR。利用分子生物學(xué)技術(shù)建立的RT-PCR[14]、免疫捕捉RT-PCR[15]、實(shí)時(shí)熒光RT-PCR[16]、探針雜交[17, 18]以及LAMP方法[19]檢測結(jié)果更為快速、靈敏,但所需要的檢測設(shè)備和探針試劑成本較高。RPA(Recombinase polymerase amplifcation)是一項(xiàng)新型的等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)[20],其主要原理為利用重組酶和引物形成微絲在模板DNA上搜索到與之完全互補(bǔ)配對的序列時(shí),在單鏈DNA結(jié)合蛋白的幫助下使模板DNA解鏈,引物于模板DNA開始配對,并在DNA聚合酶的作用下復(fù)制延伸。該方法主要具備以下優(yōu)點(diǎn):(1)僅需1對引物即可完成擴(kuò)增,不需要太復(fù)雜的引物設(shè)計(jì)過程;(2)只需要37 ℃下恒溫反應(yīng)即可,不需要特殊的熱循環(huán)設(shè)備;(3)反應(yīng)時(shí)間僅需40 min;(4)結(jié)果易于判斷,不像LAMP產(chǎn)物的彌散帶,RPA擴(kuò)增產(chǎn)物根據(jù)引物設(shè)計(jì)位點(diǎn)具有特定大小的條帶?!颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】目前國內(nèi)未見報(bào)道有關(guān)RPA技術(shù)在葡萄病毒檢測方面的應(yīng)用,研究依據(jù)GLRaV-3的HSP70基因(Heat shock protein 70)保守序列,設(shè)計(jì)用于RPA檢測的特異性引物,建立GLRaV-3的RPA檢測方法?!緮M解決的關(guān)鍵問題】利用RPA技術(shù),建立一種簡便高效、特異性強(qiáng)、靈敏度高的方法來快速檢測GLRaV-3,以期為葡萄病毒病害的田間診斷、預(yù)測預(yù)報(bào)和葡萄無毒苗木的生產(chǎn)等提供更好的技術(shù)支持。

1材料與方法

1.1  材 料

含葡萄卷葉伴隨病毒1 (GLRaV-1)、葡萄卷葉伴隨病毒2(GLRaV-2)、葡萄卷葉伴隨病毒3(GLRaV-3)、葡萄卷葉伴隨病毒4(GLRaV-4)、葡萄卷葉伴隨病毒5(GLRaV-5)及葡萄病毒A(GrapevinevirusA,GVA)的葡萄葉片采自新疆伊寧,陰性對照為脫毒葡萄苗,樣品經(jīng)PCR檢測和序列測定確認(rèn)后-80℃凍干保存。

1.2 方 法

1.2.1 總RNA提取及cDNA的合成

參照試劑盒操作(植物總RNA提取試劑盒,天根生物科技有限公司),提取感病葡萄葉片的總RNA。并參照反轉(zhuǎn)錄試劑盒(PrimeScript RT-PCR Kit,TaKaRa)的操作,將提取的RNA制備成cDNA,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2.2引物設(shè)計(jì)

參考RPA引物設(shè)計(jì)的要求[21],根據(jù)GLRaV-3已測序和已報(bào)道的HSP70基因的保守序列,設(shè)計(jì)檢測葡萄卷葉伴隨病毒3號(hào)的RPA檢測引物,擴(kuò)增條帶380 bp。上游引物GLRaV-3-F:5′-ATTGAGGAACAATTTGGGGGACATCCGGCAA

TACT-3′;下游引物GLRaV-3-R:5′-GAACCGACGTATCAATATCTAACGGCTGCCGACTA-3′。引物由上海生工生物工程有限公司合成。

1.2.3RPA檢測

1.2.1中制備的cDNA為模板,采用GLRaV-3-F和GLRaV-3-R引物進(jìn)行RPA擴(kuò)增,同時(shí)設(shè)置陰性對照(模板為脫毒葡萄苗葉片cDNA)。RPA擴(kuò)增體系的配制方法如下:向含有凍干酶粉的0.2 mL TwistAmp 反應(yīng)管(TwistAmp Basic kits,Twist)中加入再水化緩沖液(Rehydration Buffer)29.5 μL,去離子水12.5 μL,上、下游引物各2 μL(終濃度為0.4 μmol/L),模板cDNA 1 μL,最后再加入醋酸鎂溶液2.5 μL(280 mmol/L)。將RPA擴(kuò)增體系充分混勻,置于37℃的金屬浴上反應(yīng)40 min。RPA反應(yīng)結(jié)束后,向RPA擴(kuò)增產(chǎn)物中加入50 μL苯酚/氯仿溶液,充分混勻后12 000 r/min離心2 min,取上清液5 μL于1.5 %瓊脂糖凝膠電泳,在凝膠成像系統(tǒng)上觀察結(jié)果。

1.2.4RPA檢測方法特異性評價(jià)

按照1.2.4 RPA檢測反應(yīng)體系,對供試樣品GLRaV-3以及GLRaV-1、GLRaV-2、GLRaV-4、GLRaV-5、GVA共6種病毒的cDNA進(jìn)行檢測,同時(shí)用脫毒葡萄苗的cDNA做陰性對照,對所建立的RPA檢測方法特異性進(jìn)行評價(jià)。

1.2.5RPA檢測方法靈敏度評價(jià)

將GLRaV-3帶毒株的總RNA制備的cDNA進(jìn)行10倍梯度稀釋,共6個(gè)稀釋度,以梯度稀釋的cDNA為模板,按照1.2.4所示的RPA檢測反應(yīng)體系進(jìn)行RPA靈敏度實(shí)驗(yàn),并參照已報(bào)道的GLRaV-3檢測引物P3U/P3D[22]進(jìn)行PCR靈敏度實(shí)驗(yàn),擴(kuò)增產(chǎn)物長度為653 bp,比較兩種方法檢測靈敏度。

2結(jié)果與分析

2.1 GLRaV-3的RPA檢測方法的建立

以含GLRaV-3的葡萄葉片的cDNA為模板,并以脫毒葡萄苗的cDNA為陰性對照,建立了RPA檢測方法檢測GLRaV-3。GLRaV-3擴(kuò)增條帶與預(yù)期目的條帶大小一致約380 bp,陰性對照脫毒葡萄苗沒有條帶度,建立的RPA檢測體系能夠準(zhǔn)確檢測到GLRaV-3。圖1

M:Marker DL 2000;1:GLRaV-3;2:陰性對照

M:Marker DL 2000;1:GLRaV-3;2:Negative control

圖1 RPA技術(shù)檢測GLRaV-3
Fig. 1 Detection GLRaV-3 by RPA

2.2  RPA檢測方法的特異性評價(jià)

GLRaV-3的RPA特異性評價(jià)結(jié)果顯示,GLRaV-3樣品能夠檢測到380 bp的特異性條帶,其它5種樣品GLRaV-1、GLRaV-2、GLRaV-4、GLRaV-5及GVA均未檢測到條帶,證明該方法具有較強(qiáng)的特異性。圖2

M:Marker DL 2000;1:GLRaV-3;2:GLRaV-1;3:GLRaV-2;4:GLRaV-4;5:GLRaV-5;6:葡萄A病毒

M:Marker DL 2000;1:GLRaV-3;2:GLRaV-1;3:GLRaV-2;4:GLRaV-4;5:GLRaV-5;6:GVA

圖2 GLRaV-3的RPA特異性檢測結(jié)果
Fig. 2 The specificity results of GLRaV-3 by RPA

2.3  RPA檢測方法與普通PCR方法的靈敏度對比

GLRaV-3的RPA檢測方法與普通PCR方法靈敏度比較檢測結(jié)果顯示,普通PCR反應(yīng)設(shè)置在30個(gè)循環(huán)時(shí),當(dāng)稀釋度為10-3時(shí),仍可以檢測到約653 bp的目的條帶;RPA檢測方法反應(yīng)時(shí)間設(shè)置在40 min,當(dāng)稀釋度為10-3時(shí),也可以檢測約380 bp的目的條帶,當(dāng)稀釋度為10-4時(shí),兩種方法均未能擴(kuò)增到目的條帶。說明兩種方法靈敏度相當(dāng)。圖3,圖4

M:Marker DL 2000;1-6:cDNA稀釋度依次為100、10-1、10-2、10-3、10-4、10-5

M:Marker DL 2000;1-6:The dilution of cDNA were 100、10-1、10-2、10-3、10-4、10-5

圖3 GLRaV-3的RPA檢測靈敏度
Fig. 3The detection sensitivity of GLRaV-3 by RPA

M:Marker DL 2000;1-6:cDNA稀釋倍數(shù)依次為100、10-1、10-2、10-3、10-4、10-5

M:Marker DL 2000;1-6:The dilution of cDNA were 100、10-1、10-2、10-3、10-4、10-5

圖4 GLRaV-3的PCR檢測靈敏度
Fig. 4 The detection sensitivity of GLRaV-3 by PCR

3 討 論

RPA技術(shù)是近幾年興起的恒溫?cái)U(kuò)增技術(shù),目前主要應(yīng)用于醫(yī)學(xué)病原菌、轉(zhuǎn)基因的檢測中[23-27]。研究以葡萄卷葉伴隨病毒模式種GLRaV-3為研究對象,建立了GLRaV-3的RPA檢測方法,并對其特異性和靈敏度進(jìn)行了評價(jià),為植物病毒的檢測提供一種新的簡便、快捷的檢測方法。

以RPA技術(shù)建立的恒溫?cái)U(kuò)增體系不需要 PCR 儀等熱循環(huán)設(shè)備,37℃下就能對樣品進(jìn)行檢測,而LAMP等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)需要在60~65℃下進(jìn)行反應(yīng),因此RPA技術(shù)反應(yīng)溫度更容易達(dá)到?;谝陨蟽?yōu)點(diǎn),Crannell等[28]建立一種不依賴任何儀器設(shè)備,僅僅利用人體體溫來完成擴(kuò)增反應(yīng)的RPA檢測方法。這大大增強(qiáng)了該技術(shù)的適用范圍,尤其適合于現(xiàn)場檢測。

LAMP等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)需要針對靶基因上6個(gè)區(qū)段設(shè)計(jì)4條引物才能完成擴(kuò)增,引物設(shè)計(jì)復(fù)雜,需要進(jìn)行大量的優(yōu)化。而RPA 技術(shù)僅需一對引物就可完成整個(gè)擴(kuò)增,引物設(shè)計(jì)相對簡單。另外,LAMP的擴(kuò)增條帶為彌散帶,而RPA技術(shù)的擴(kuò)增條帶根據(jù)引物設(shè)計(jì)位點(diǎn),為特定大小的單一條帶,RPA的擴(kuò)增產(chǎn)物還可以進(jìn)一步分析。因此,可以類似于普通多重PCR原理根據(jù)不同產(chǎn)物片段大小來判斷結(jié)果。基于以上優(yōu)點(diǎn),Kersting等建立了一套含擴(kuò)增內(nèi)標(biāo)的四重RPA技術(shù)用于檢測三種病原菌[29]。

已報(bào)道的LAMP檢測技術(shù)相對靈敏度在0.1%~0.01%(質(zhì)量分?jǐn)?shù)),與已報(bào)道的RPA檢測技術(shù)靈敏度相當(dāng)[30-31]。研究對RPA檢測技術(shù)與RT-PCR檢測技術(shù)的靈敏度進(jìn)行了比較,發(fā)現(xiàn)兩種技術(shù)靈敏度相當(dāng),這與已報(bào)道的文獻(xiàn)結(jié)果一致。而利用添加了探針的RPA實(shí)時(shí)熒光檢測技術(shù),能夠進(jìn)一步提高檢測的準(zhǔn)確性和靈敏度[25-27]。當(dāng)然RPA作為一種新興起的檢測技術(shù),還有許多不足等待完善。首先,RPA體系對于蛋白活性的要求高于Taq酶,體系中任意一種酶失活都將導(dǎo)致 RPA 體系停止工作;其次,RPA擴(kuò)增體系中存在大量蛋白酶,使得 RPA 擴(kuò)增產(chǎn)物必須除去蛋白后才能電泳或進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。再次,RAA 體系與 PCR 同樣采用正反引物與模版雜交,容易出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增。目前, RAA 法還處于初期階段, 但是對于一個(gè)剛出現(xiàn)的新技術(shù)而言, 能夠在體外較低的溫度下最適溫度(37℃)快速擴(kuò)增出目的片段,已經(jīng)是很好的開始。研究所做工作為 RPA 技術(shù)運(yùn)用于植物病毒檢測提供了積累對 RPA 技術(shù)的進(jìn)一步發(fā)展具有積極意義。相信隨著反應(yīng)體系和反應(yīng)條件的不斷優(yōu)化,RPA 法能夠利用它的優(yōu)勢,在醫(yī)藥、農(nóng)業(yè)等領(lǐng)域,特別是在檢測(醫(yī)學(xué)檢測、動(dòng)植物檢疫和野外微生物檢測)等方面廣泛發(fā)揮作用。

4 結(jié) 論

以葡萄卷葉伴隨病毒屬模式種GLRaV-3為研究對象,建立了其RPA檢測方法。該方法只需一對引物即可在37℃恒溫條件下完成檢測,并能準(zhǔn)確區(qū)分其它幾種參試葡萄病毒株,其擴(kuò)增條帶為一條380 bp的特異條帶,擴(kuò)增產(chǎn)物純化后即可用于下游測序、克隆、酶切等分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)。研究所建立的RPA檢測方法在40 min反應(yīng)條件下的靈敏度與普通PCR在30個(gè)擴(kuò)增循環(huán)下的檢測靈敏度相當(dāng),反應(yīng)時(shí)間縮短,不需要特殊的熱循環(huán)儀,適合基層單位和現(xiàn)場檢測使用,為葡萄病毒病害的田間診斷、預(yù)測預(yù)報(bào)和葡萄脫毒苗的生產(chǎn)等提供了更為簡便高效的技術(shù)方法,在植物病毒快速檢測方面具有一定的實(shí)踐意義。

參考文獻(xiàn)(References)

[1] Dovas, C. I., & Katis, N. I. (2003). A spot multiplex nested rt-pcr for the simultaneous and generic detection of viruses involved in the aetiology of grapevine leafroll and rugose wood of grapevine.JournalofVirologicalMethods, 109(2):217-226.

[2] 王升吉, 尚佑芬, 趙玖華, 等. 葡萄卷葉病毒主要檢測技術(shù)比較[J]. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué), 2008, 35(3): 95-98.

WANG Sheng-ji, SHANG You-fen, ZHAO Jiu-hua, et al. (2008). Comparison of main detecting technologies of grapevine leafroll associated virus [J].ShandongAgriculturalSciences, 35(3): 95-98. (in Chinese)

[3] 侯義龍. 葡萄卷葉病毒RT-PCR檢測技術(shù)[J]. 植物保護(hù)學(xué)報(bào), 2003, 30(3): 305-308.

HOU Yi-long. (2003). Detection of GLRaV by RT-PCR [J].Actaphytophylacicasinica, 30(3): 305-308. (in Chinese)

[4] Maliogka, V. I., Dovas, C. I., & Katis, N. I. (2008). Evolutionary relationships of virus species belonging to a distinct lineage within the ampelovirus genus.VirusResearch, 135(1):125-135.

[5] Ghanem-Sabanadzovic, N. A., Sabanadzovic, S., Uyemoto, J. K., Golino, D., & Rowhani, A. (2010). A putative new ampelovirus associated with grapevine leafroll disease.ArchivesofVirology, 155(11):1,871-1,876.

[6] 裴光前, 董雅鳳, 張尊平, 等. 4種葡萄卷葉伴隨病毒多重RT-PCR檢測[J]. 植物病理學(xué)報(bào), 2010, 40(1): 21-26.

PEI Quang-qian, DONG Ya-feng, ZHANG Zun-ping, et al. (2010). Detection of four grapevine leafroll-associated viruses by multiplex RT-PCR [J].ActaPhytopathologicaSinica, 40(1): 21-26. (in Chinese)

[7] 范旭東, 董雅鳳, 張尊平,等. 葡萄卷葉伴隨病毒4和5簡并引物和多重PCR檢測[J]. 植物保護(hù), 2012, 38(6): 95-97.

FAN Xu-dong, DONG Ya-feng, ZHANG Zun-ping, et al. (2012). Detection of GLRaV-4 and 5 using degenerate primer and mutiplex PCR methods [J].PlantProtection, 38(6): 95-97. (in Chinese)

[8] 劉三軍, 郭衛(wèi)東, 張秋葉, 等. 葡萄卷葉病毒3 RT-PCR檢測技術(shù)研究[J]. 果樹學(xué)報(bào), 2002, 19(1): 15-18.

LIU San-jun, GUO Wei-dong, ZHANG Qiu-ye, et al. (2002). Deteetion of grapevine leafroll associated virus 3 by Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction [J].JournalofFruitScience, 19(1): 15-18. (in Chinese)

[9] Kai-Shu, L., Hai-Ying, Z., & Dennis, G. (2004). Complete nucleotide sequence and genome organization of grapevine leafroll-associated virus 3, type member of the genus ampelovirus..JournalofGeneralVirology,85(Pt 7):2,099-2,102.

[10] Habili, N. (1995). Natural spread and molecular analysis of grapevine leafroll-associated virus 3 in australia.Phytopathology, 85(11):1,418-1,422.

[11] Cabaleiro, C., & Segura, A. (2006). Temporal analysis of grapevine leafroll associated virus 3 epidemics.EuropeanJournalofPlantPathology, 114(4):441-446.

[12] C. L. PETERSEN , & Charles, J. G. (1997). Transmission of grapevine leafroll-associated closteroviruses by pseudococcus longispinus and p. calceolariae.PlantPathology, 46(4):509-515.

[13] 陳建軍, 劉崇懷, 古勤生, 等. DAS-ELISA、RT-PCR和IC-RT-PCR檢測葡萄卷葉病毒3的比較研究[J]. 果樹學(xué)報(bào), 2003, 20(3): 173-177.

CHEN Jian-jun, LIU Chong-huai, GU Qin-sheng, et al. (2003). Comparative Studies on DAS-ELISA, RT-PCR and IC-RT-PCR for Detection Grapevine leaforll-associated virus 3 [J].JournalofFruitScience, 20(3): 173-177. (in Chinese)

[14] Thompson, J. R., Fuchs, M., Fischer, K. F., & Perry, K. L. (2012). Macroarray detection of grapevine leafroll-associated viruses.JournalofVirologicalMethods, 183(2):161-169.

[15] Engel, E., Girardi, C. P., Arredondo, V., Dominguez, C., Perez-Acle, T., & Valenzuela, P. (2008). Genome analysis and detection of a chilean isolate of grapevine leafroll associated virus-3.VirusGenes, 37(1):110-118.

[16] Osman, F., & Rowhani, A. (2006). Application of a spotting sample preparation technique for the detection of pathogens in woody plants by rt-pcr and real-time pcr (taqman).JournalofVirologicalMethods, 133(2):130-136.

[17] Fatima, O., Christian, L., Deborah, G., & Adib, R. (2008). Comparison of low-density arrays, rt-pcr and real-time taqman ; rt-pcr in detection of grapevine viruses.JournalofVirologicalMethods, 149(2):292-299.

[18] Saldarelli, P., Minafra, A., Martelli, G. P., & Walter, B. (1994). Detection of grapevine leafroll-associated closterovirus iii by molecular hybridization.PlantPathology, 43(1):91-96.

[19] 范旭東, 董雅鳳, 張尊平, 等. 沙地葡萄莖痘相關(guān)病毒的 RT-LAMP 檢測方法[J]. 植物病理學(xué)報(bào), 2013, 43(3): 286-293.

FAN Xu-dong, DONG Ya-feng, ZHANG Zun-ping, et al. (2013). RT-LAMP assay for detection of Grapevine rupestris stem pitting-associated virus [J].ActaPhytopathologicaSinica, 43(3): 286-293. (in chinese)

[20] Lutz, S., Weber, P., Focke, M., Faltin, B., Hoffmann, J., & Müller, C., et al. (2010). Microfluidic lab-on-a-foil for nucleic acid analysis based on isothermal recombinase polymerase amplification (rpa).labchip.LabonAChip, 10(7):887-893.

[21] Daher, R. K., Stewart, G., Boissinot, M., Boudreau, D. K., & Bergeron, M. G. (2015). Influence of sequence mismatches on the specificity of recombinase polymerase amplification technology.Molecular&CellularProbes, 29(2):116-121.

[22] Turturo, C., Saldarelli, P., Yafeng, D., Digiaro, M., Minafra, A., & Savino, V., et al. (2005). Genetic variability and population structure of grapevine leafroll-associated virus 3 isolates.JournalofGeneralVirology, 86(Pt 1):217-224.

[23] Xu, C., Li, L., Jin, W., & Wan, Y. (2014). Recombinase polymerase amplification (rpa) of camv-35s promoter and nos terminator for rapid detection of genetically modified crops.InternationalJournalofMolecularSciences, 15(10):18,197-18,205.

[24] 鄧婷婷, 黃文勝, 程奇, 等. 重組酶聚合酶擴(kuò)增技術(shù)檢測轉(zhuǎn)基因水稻中的Cry1Ab/c 基因[J]. 中國食品學(xué)報(bào), 2015, 15(3): 187-193.

DENG Ting-ting, HUANG Wen-sheng, CHENG Qi, et al. (2015) . Detection of Cry1Ab/c gene in genetically modified rice by recombinase polymerase amplification [J].JournalofChineseInstituteofFoodScienceandTechnology, 15(3): 187-193. (in Chinese)

[25] Euler, M., Wang, Y., Nentwich, O., Piepenburg, O., Hufert, F. T., & Weidmann, M. (2012). Recombinase polymerase amplification assay for rapid detection of rift valley fever virus.JournalofClinicalVirologytheOfficialPublicationofthePanAmericanSocietyforClinicalVirology,54(4):308-312.

[26] Milena, E., Yongjie, W., Peter, O., Herbert, T., Raquel, E., & Pedro, A., et al. (2012). Recombinase polymerase amplification assay for rapid detection of francisella tularensis.JournalofClinicalMicrobiology, 50(7):2,234-2,238

[27] Boyle, D. S., Lehman, D. A., Lorraine, L., Dylan, P., Mitra, S., & Niall, A., et al. (2013). Rapid detection of hiv-1 proviral dna for early infant diagnosis using recombinase polymerase amplification.Mbio, 4(2):49-52.

[28] Zachary Austin, C., Brittany, R., & Rebecca, R. K. (2014). Equipment-free incubation of recombinase polymerase amplification reactions using body heat.PlosOne, 9(11):112,146.

[29] Kersting, S., Rausch, V., Bier, F. F., & Nickisch-Rosenegk, M. V. (2014). Multiplex isothermal solid-phase recombinase polymerase amplification for the specific and fast dna-based detection of three bacterial pathogens.MicrochimicaActa, 181(13-14):1,715-1,723.

[30] Kiddle, G., Hardinge, P., Buttigieg, N., Gandelman, O., Pereira, C., & Mcelgunn, C. J., et al. (2012). Gmo detection using a bioluminescent real time reporter (bart) of loop mediated isothermal amplification (lamp) suitable for field use.BmcBiotechnology, 12(1):15.

[31] Rostamkhani, N., Haghnazari, A., Tohidfar, M., & Moradi, A. (2011). Rapid identification of transgenic cotton (gossypium hirsutum l.) plants by loop-mediated isothermal amplification.CzechJournalofGenetics&PlantBreeding, 47(4):140-148.

Fund project:Supported by Science and Technology Xinjiang Supporting Program (2013911090)

Based on Recombinase Polymerase Amplification , the Method of

Detection ofGrapevineleafroll-associatedvirus3

ZHANG Na1, QIAN Yi-ke2, WEI Shuang3, HU Bai-shi4, LU Ping2, Saitiieerhan2,

LIU Zhong-yong3, ZHANG Yong-jiang5, ZHANG Xiang-lin6

( 1.YiliNormalCollege,YiningXinjiang835000,China; 2.YiliEntry-ExitInspectionandQuarantineBureau,YiningXinjiang835000,China;3.ShantouEntry-ExitInspectionandQuarantineBureau,ShantouGuangdong515041,China; 4.NanjingAgriculturalUniversity,Nanjing290000,China; 5.InstituteofPlantQuarantine,ChineseAcademyofInspectionandQuarantine,Beijing100029,China; 6.XinjiangEntry-ExitInspectionandQuarantineBureau,Urumqi830052,China)

Abstract:【Objective】 The objective of this study is to develop a recombinase polymerase amplification (RPA) assay for the detection of Grapevine leafroll-associated virus 3 (GLRaV-3).【Method】Specific RPA primers were designed based on HSP 70 (heat shock protein 70) gene of GLRaV-3. A RPA assay was developed for the detection of GLRaV-3 after optimization reaction condition. The specificity and sensitivity of this assay were tested. 【Result】The RPA assay proved to be specific. Only a 380 bp fragment were detected in GLRaV-3 by RPA assay. The sensitivity of this RPA assay was consistent with conventional PCR. What was needed was just to keep the temperature at 37 ℃ about 40 min in RPA reaction without using other special equipments. 【Conclusion】This RPA assay proved to be rapid, sensitive and specific for the detection of GLRaV-3.

Key words:Grapevine leafroll-associated virus 3;RPA;method of detection

通訊作者:張祥林(1964-),男,新疆烏魯木齊人,研究員,碩士生導(dǎo)師,研究方向?yàn)橹参餀z疫,(E-mail)XL6479@163.com

作者簡介:張娜(1983-),女,山西翼城人,實(shí)驗(yàn)師,研究方向?yàn)橹参锉Wo(hù),(E-mail)yucixue@163.com

基金項(xiàng)目:新疆維吾爾自治區(qū)科技支疆項(xiàng)目(2013911090)

收稿日期:2015-07-21

中圖分類號(hào):S41;S182

文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A

文章編號(hào):1001-4330(2016)02-0302-07

doi:10.6048/j.issn.1001-4330.2016.02.016

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