羅愛華,豐大利,付娟,李欣
(三峽大學第二人民醫(yī)院暨宜昌市第二人民醫(yī)院 腫瘤放化療科,湖北 三峽 443000)
?
Ⅰ,Ⅱ期宮頸癌組織HIF-1α與COX-2蛋白共表達對預(yù)后的影響及機制*
羅愛華,豐大利,付娟,李欣
(三峽大學第二人民醫(yī)院暨宜昌市第二人民醫(yī)院 腫瘤放化療科,湖北 三峽 443000)
目的探討Ⅰ,Ⅱ期宮頸癌組織中HIF-1α與COX-2蛋白的共表達對預(yù)后的影響及可能的機制。方法免疫組織化學法分析71例宮頸癌標本的HIF-1α和COX-2的共表達情況;RT-PCR法檢測標本中HIF-1α mRNA和COX-2 mRNA的表達水平。χ2檢驗分析不同表達組患者1、2和3年存活率的差異;采用KM生存分析法了解不同表達組患者的存活時間的差異;采用相關(guān)分析了解蛋白及mRNA表達水平的相關(guān)性。結(jié)果HIF-1α和COX-2共表達組患者的3年存活率低于非共表達組(P<0.05);HIF-1α和COX-2共表達組患者的存活時間低于非共表達組(P<0.05);在Ⅱ期患者中,HIF-1α的蛋白水平與COX-2 mRNA的水平正相關(guān)(rs=0.594,P<0.05)。結(jié)論在Ⅰ,Ⅱ期宮頸癌中,HIF-1α和COX-2共表達組預(yù)后較差;HIF-1α蛋白可能正向調(diào)控COX-2 mRNA的表達。
宮頸癌;缺氧誘導(dǎo)因子1α;環(huán)氧合酶2;共表達;生存分析
缺氧是實體腫瘤形成的重要因素之一,在腫瘤形成時會造成正常血管壓迫或阻塞導(dǎo)致缺氧環(huán)境加重,但在缺氧微環(huán)境下惡性腫瘤仍可不斷生長、浸潤甚至發(fā)生轉(zhuǎn)移,說明腫瘤細胞對缺氧具有很強的適應(yīng)能力。缺氧誘導(dǎo)因子1(hypoxia inducible factor-1,HIF-1)是1992年SEMENZA與WANG在低氧的肝癌細胞株Hep3 B細胞的核提取物中發(fā)現(xiàn)的一種蛋白質(zhì),由兩個亞基組成的異二聚體:HIF-1α和HIF-1β,都具有二聚化所需的堿性螺旋-環(huán)-螺旋(basic-helix-loop-helix,bHLH)和PAS(PERARNT-SIM)結(jié)構(gòu)域[1]。缺氧誘導(dǎo)因子1α(HIF-1α)既是HIF-1活性的調(diào)節(jié)亞基又是活性亞基,是目前發(fā)現(xiàn)的唯一的一個特異性缺氧狀態(tài)下發(fā)揮活性的轉(zhuǎn)錄因子。已在多種惡性腫瘤及癌前病變中檢測到HIF-1α蛋白的過度表達,但正常組織及良性病變中則無表達。環(huán)氧合酶(Cyclooxygenase,COX,)是分解花生四烯酸(arachidonic acid,AA),生成各種內(nèi)源性前列腺素(Prostaglandins,PGs)過程中重要的限速酶。目前,人們認為COX至少有3種形式:COX-1,COX-2,COX-3[2]。COX-2屬于反應(yīng)基因,在靜止細胞中不易被檢測到。COX-2呈誘導(dǎo)性表達,在大多數(shù)正常組織中表達極少,而當細胞接受各種刺激如細胞因子、生長因子、癌基因及促腫瘤劑的誘導(dǎo)后表達上調(diào),參與炎癥及腫瘤的發(fā)生[3-5]。包括結(jié)腸癌[6],肝癌[7-8],胰腺癌[9]在內(nèi)的多種腫瘤組織均發(fā)現(xiàn)有COX-2的高表達,并與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展及預(yù)后密切相關(guān)。本實驗采用免疫組織化學及RT-PCR方法檢測HIF-1α和COX-2的蛋白和mRNA表達水平。按蛋白表達情況分組,探討HIF-1α和COX-2共表達及非共表達組的生存率及生存時間的差異。探討HIF-1α蛋白水平和COX-2 mRNA水平的相關(guān)性,或COX-2蛋白水平和HIF-1αmRNA水平的相關(guān)性,明確HIF-1α和COX-2可能存在的調(diào)節(jié)關(guān)系。
1.1臨床資料
選取2003年9月~2012年2月確診并行手術(shù)治療的71例宮頸癌標本。所有病例臨床資料完整,患者年齡23~77歲,平均年齡46.3歲。所有患者術(shù)前均未行放化療,術(shù)后病理類型均為鱗癌,分期為Ⅰb~Ⅱb期。術(shù)后行放療或放化療。
1.2HIF-1α和COX-2免疫組織化學檢測
1.2.1實驗方法及步驟固定后洗滌、脫水、透明浸蠟包埋,5μm切片,60度30 min脫蠟2次。水化后抗原修復(fù)、阻斷、封閉。然后加一抗,HIF-1α多克隆抗體濃度為1∶400、COX-2多克隆抗體濃度為1∶150,上述一抗均購自Abcam公司。4℃過夜,再加HRP標記二抗40 min;DAB染色3~10 min,蘇木精復(fù)染,顯微鏡下觀察。
1.2.2免疫組織化學結(jié)果判定采用病理圖像系統(tǒng)分析每張切片隨機取3個高倍視野(10×20),HIF-1α按細胞核或細胞漿呈棕黃色染色為陽性;COX-2以細胞質(zhì)內(nèi)出現(xiàn)棕黃色顆粒為陽性。免疫組織化學染色指數(shù)為染色面積與染色強度的乘積。
1.3RT-PCR檢測宮頸癌組織HIF-1αmRNA與COX-2 mRNA的表達情況
Trizol試劑盒提取總RNA,紫外分光光度計測定RNA純度(A260/250>1.8)。取總RNA 5μg,按逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)試劑說明完成cDNA的合成。PCR擴增條件:95℃預(yù)變性10 min,95℃、15 s、60℃、45 s循環(huán)40次。取2μl PCR產(chǎn)物經(jīng)1.2%瓊脂糖凝膠電泳鑒定。數(shù)據(jù)采用儀器自帶軟件分析,ABI Prism 7500 SDS Software。見表1。
表1 擴增引物序列表
1.4統(tǒng)計學方法
采用SPSS 22.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)分析,計數(shù)資料用χ2檢驗,計量資料采用相關(guān)分析,生存分析采用Kaplan-Meier統(tǒng)計學分析及COX回歸分析。
2.1免疫組織化學結(jié)果
HIF-1α陽性表達的宮頸癌標本細胞成團分布,細胞質(zhì)濃染,呈棕黃色染色,見圖1。71例宮頸癌組織中41例HIF-1α陽性,陽性率57.8%。COX-2陽性表達的宮頸癌標本細胞成團分布,細胞質(zhì)濃染,呈棕黃色染色,見圖2。71例宮頸癌組織中53例COX-2陽性,陽性率74.6%。71例宮頸癌組織中HIF-1α與COX-2共表達33例,共表達率46.5%。
2.2HIF-1α和COX-2共表達對生存率的影響
根據(jù)HIF-1α和COX-2的表達情況分為4組:1組,HIF-1α 陰性,COX-2陰性組;2組,HIF-1α陰性,COX-2陽性組;3組,HIF-1α陽性,COX-2陰性組;4組,HIF-1α陽性,COX-2陽性組。各組的存活率見表2,經(jīng)χ2檢驗各組3年存活率有顯著性差異,P<0.05。經(jīng)行×列χ2分割分析,HIF-1α和COX-2共表達組即4組的3年存活率顯著低于另外3組,Pearsonχ2=7.289,P=0.007;而非共表達的3組間3年存活率差異無統(tǒng)計學意義。
2.3生存時間的影響因素
根據(jù)HIF-1α和COX-2的表達情況分為4組:1組,HIF-1α陰性,COX-2陰性組;2組,HIF-1α陰性,COX-2陽性組;3組,HIF-1α陽性,COX-2陰性組;4組,HIF-1α陽性,COX-2陽性組。以上4組K-M生存曲線見圖3,Breslowχ2=9.845,P=0.02,提示按免疫組織化學不同分組的生存分布差異有統(tǒng)計學意義。按患者年齡分組,以45歲為劃分標準,按年齡<45歲組與齡≥45歲組對生存生存時間的影響,做Kaplan-Meier統(tǒng)計學分析,Breslowχ2=0.027,P=0.870,提示不同年齡分組的生存分布差異無統(tǒng)計學意義。按患者臨床分期進行Kaplan-Meier統(tǒng)計學分析,了解臨床分期對患者生存時間的影響,Breslow χ2=8.482,P=0.014,提示不同臨床分期的生存分布差異有統(tǒng)計學意義。采用COX回歸模型分析影響患者生存分布的危險因素。多因素回歸分析提示患者臨床分期及HIF-1α和COX-2免疫組織化學表達情況分別是獨立的預(yù)后因素,見表3。
2.4HIF-1α和COX-2 mRNA的表達情況
HIF-1αmRNA和COX-2 mRNA的擴增動力曲線見圖4。COX-2 mRNA在宮頸癌組織中的表達水平與分期有關(guān),Ⅱ期宮頸癌組織的表達水平顯著高于Ⅰ期宮頸癌患者。
2.5HIF-1α蛋白水平和COX-2 mRNA表達的相關(guān)性
免疫組織化學指數(shù)反映蛋白的表達水平,mRNA含量反應(yīng)了mRNA的表達水平。在Ⅱ期宮頸癌中,HIF-1α蛋白水平和COX-2 mRNA的表達水平呈顯著正相關(guān),r=0.594,P<0.05。而在Ⅰ期宮頸癌組織中兩者相關(guān)性不明顯??赡芘cⅡ期宮頸癌組織乏氧狀況更明顯有關(guān)。
圖1 HIF-1α陽性表達情況 (SP×200)
圖2 COX-2陽性表達情況 (SP×200)
表2 各組存活率的比較
表3 COX模型篩選的危險因素及參數(shù)估計
圖3 不同免疫組織化學分組的Kapplan-meire生存曲線
圖4 mRNA擴增動力曲線
惡性實體腫瘤由于增長迅速,經(jīng)常會常出現(xiàn)缺氧的微環(huán)境,缺氧是惡性腫瘤治療效果差,容易出現(xiàn)放化療耐受性的常見原因之一。CHOI等[10]認為在腫瘤發(fā)生早期即可發(fā)生HIF-1的過度表達,并且HIF-1的過度表達與腫瘤血管形成、侵襲轉(zhuǎn)移能力有關(guān)。正常氧分壓下,細胞內(nèi)HIF-1α不穩(wěn)定,經(jīng)泛素一蛋白酶體等途徑迅速降解。缺氧時,胞質(zhì)中HIF-1α穩(wěn)定性增加,降解受阻,積聚增多并轉(zhuǎn)移到核內(nèi),與核內(nèi)的HIF-β結(jié)合成二聚體,形成有活性的HIF-1,繼而與缺氧反應(yīng)基因結(jié)合,激活轉(zhuǎn)錄過程,引起一系列的細胞對缺氧的反應(yīng)[11]。迄今為止,確定的受HIF-1調(diào)控的缺氧反應(yīng)基因有70多種[12]。該產(chǎn)物涉及參與腫瘤細胞的能量代謝、增殖、凋亡、轉(zhuǎn)移、耐藥及血管擴張、血管新生等多個方面。COX-2屬于反應(yīng)基因,在靜止細胞中不易被檢測到。COX-2在上皮組織癌(包括胃癌、直結(jié)腸癌、前列腺癌、肺癌、胰腺癌、乳腺癌、頭頸部腫瘤等)中普遍存在過度表達現(xiàn)象,并影響患者的預(yù)后[13]。COX-2介導(dǎo)的生物學效應(yīng)涉及腫瘤血管新生、細胞的增殖和凋亡、促進腫瘤細胞遷移,細胞黏附和腫瘤侵襲等。有資料顯示HIF-1α,COX-2表達情況與患者預(yù)后有關(guān)。本實驗資料顯示,HIF-1α和COX-2共表達組的1年,2年,3年存活率均低于非共表達組;HIF-1 α和COX-2共表達組的存活時間顯著低于非共表達組,并且HIF-1α和COX-2共表達可以作為一個獨立的預(yù)后因素。兩者共表達預(yù)后較差,可能與兩者共同促進腫瘤的惡性行為有關(guān)。
對于HIF-1α和COX-2的關(guān)系,STASINOPOULOS等[14]認為COX-2可通過其催化產(chǎn)物PGE2激活HIF-1α活性以促進腫瘤血管生成。TAMMALI等[15]提出COX-2/PGE2/HIF-1α/VEGF途徑可能是COX-2促進腫瘤血管生成的又一條途徑。LIM等[16]通過研究發(fā)現(xiàn),COX-2選擇性抑制劑NS398通過COX-2/PGE2途徑抑制HIF-1αmRNA的表達,減少HIF-1α的合成,從而抑制缺氧誘導(dǎo)的血管生成。JUNG等[17]的研究顯示,HIF-1是關(guān)聯(lián)炎癥和癌變過程的一個重要轉(zhuǎn)錄因子,IL-1誘導(dǎo)活化NFKB/COX-2途徑,上調(diào)HIF-1α蛋白的表達,并最終上調(diào)VEGF的表達,促進腫瘤血管生成。STASINOPOULOS等[14]發(fā)現(xiàn)PGE-2可以增強絲裂原活化激酶(MAPK)的活性,從而加速HIF-1α翻譯轉(zhuǎn)錄和在核內(nèi)的積聚。上述研究均表明,COX-2可調(diào)控HIF-1α蛋白的表達。但也有學者持不同意見,認為COX-2是HIF-1α下游的靶基因之一,受缺氧的誘導(dǎo)活化[18]。CSIKI等[19]的最新的研究通過對缺氧反應(yīng)基因序列的比較,COX-2啟動子缺失分析和定向誘變,證實在COX-2啟動子內(nèi)存在缺氧反應(yīng)元件(hypoxia-responsive element,HRE),通過其與HIF-1α的結(jié)合,激活肺癌細胞中COX-2的表達。本組資料顯示,HIF-1α和COX-2 mRNA的表達呈正相關(guān)(rs=0.594,P<0.05),因此可以推斷,COX-2 mRNA的表達受HIF-1α水平的調(diào)控。HIF-1α可能通過與COX-2啟動子內(nèi)存在缺氧反應(yīng)元件(HRE)結(jié)合,促進COX-2的轉(zhuǎn)錄。從而認為COX-2是HIF-1α下游的靶基因之一。HIF-1α蛋白可能正向調(diào)控COX-2 mRNA的表達。
[1]OGAWA,KAZUHIKO,CHIBA,et al.Clinical significance of hiflalpha expression in patients with esophageal cancer treated with concurrent chemoradiotherapy[J].Anticancer Research,2011,31(6): 2351-2359.
[2]STASINOPOULOS I,SHAH T,PENET M F,et al.COX-2 in cancer:Gordian knot or Achilles heel[J].Frontiers in Pharmacology,2013,4:1-7.
[3]PENG L,PENG Z,XIN L,et al.Micro ribonucleic acid(RNA)-101 inhibits cell proliferation and invasion of lung cancer by regulating cyclooxygenase-2[J].Thoracic Cancer,2015,6(6):778-784.
[4]YONG P,YAN J,LIN T,et al.Deletion of cyclooxygenase-2 inhibits K-ras-induced lung carcinogenesis[J].Oncotarget,2015,6(36):38816-38826.
[5]TOOMEY D P,MURPHY J F,CONLON K C.COX-2,VEGF and tumour angiogenesis[J].Surgeon Journal of the Royal Colleges of Surgeons of Edinburgh&Ireland,2009,7(7):174-180.
[6]WU Q B,SUN G P.Expression of COX-2 and HER-2 in colorectal cancer andtheir correlation[J].World Journal of Gastroenterology,2015,21(20):6206-6214.
[7]OU C,ZHENG H P,SU J J,et al.Effect of Ginkgo biloba extract on the expressions of Cox-2 and GST-Pi in rats with hep atocellular carcinoma risk[J].African Health Sciences,2014,14(1): 37-48.
[8]YANG Y,ZHU J,GOU H,et al.Clinical significance of Cox-2,survivin and Bcl-2 expression in hepatocellular carcinoma(HCC)[J]. Medical Oncology,2011,28(3):796-803.
[9]MA J X,SUN Y L,WANG Y Q,et al.Triptolide induces apoptosis and inhibits the growth and angiogenesis of human pancreatic cancer cells by downregulating COX-2 and VEGF[J].Oncology Research Featuring Preclinical&Clinical Cancer Therapeutics,2013,20(8):359-368.
[10]CHOI J Y,JANG Y S,MIN S Y,et al.Overexpression of MMP-9 andHIF-1alpha in breast cancer cells under hypoxic conditions[J].Journal of Breast Cancer,2011,14(2):88-95.
[11]SHEN R J,JIANG X Y,PU J W,et al.HIF-1 alpha and-2 alpha genes in a hypoxia-sensitive teleost species megalobrama amblycephala:cDNA cloning,expression and different responses to hypoxia.[J].Comparative Biochemistry&Physiology Part B Biochemistry&Molecular Biology,2010,157(3):273-280.
[12]MASOUD G N,WEI L.HIF-1α pathway:role,regulation and intervention for cancer therapy[J].Acta Pharmaceutica Sinica B,2012,3(12):53-54.
[13]JANA D,SARKAR D K,GANGULY S,et al.Role of cyclooxygenase 2(COX-2)in prognosis of breast cancer[J].Indian Journal of Surgical Oncology,2014,5(1):59-65.
[14]STASINOPOULOS I,O'BRIEN D Z.Inflammation,but not hypoxia,mediated HIF-1alpha activation depends on COX-2.[J]. Cancer Biology&Therapy,2009,8(1):31-35.
[15]TAMMALI R,SAXENA A,SRIVASTAVA S K,et al.Aldose reductase inhibition prevents hypoxia-induced increase in hypoxia-inducible factor-1alpha(HIF-1alpha)and vascular endothelialgrowthfactor(VEGF)byregulating26Sprotea some-mediated protein degradation in human colon cancer cells.[J]. Journal of Biological Chemistry,2011,286(27):24089-24100.
[16]LIM W,RARK C,SHIM M K,et al.Glucocorticoids suppress hypoxia-induced COX-2 and hypoxia inducible factor-1α expression through the induction of glucocorticoid-induced leucine zipper[J].BritishJournalofPharmacology,2014,171(3): 735-745.
[17]JUNG Y J,ISAACS J S,LEE S,et al.IL-1 beta-mediated up-regulation of HIF-1 alpha via an NF kappa B/COX-2 pathway identifies HIF-1 as a critical link between inflammation and oncogenesis[J].Faseb Journal Official Publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology,2003,17(14):2115-2117.
[18]LEE J J,MITSUTERU N,SHINYA O,et al.Hypoxia activates the cyclooxygenase-2-prostaglandin E synthase axis[J].Carcinogenesis,2010,31(3):427-34.
[19]CSIKI I,YANAGISAWA K,HARUKI N,et al.Thioredoxin-1 modulatestranscriptionofcyclooxygenase-2viahypoxia-inducible factor-1 in non-small cell lung cancer[J].Cancer Research,2006,66(1):143-150.
(張蕾編輯)
Influence of the coexpression of HIF-1α and COX-2 on prognosis of patients with cervical cancer in stageⅠand stageⅡand possible functional mechanism*
Ai-hua Luo,Da-li Feng,Juan Fu,Xin Li
(Department of Chemo-irradiation Oncology,Yichang Second People's Hospital,Yichang,Hubei 443000,China)
Objective To investigate the influence of the coexpression ofHIF-1αandCOX-2on the prognosis of patients with cervical cancer in stageⅠ and stageⅡ and the possible functional mechanism.Methods The coexpressions ofHIF-1αandCOX-2were detected in 71 cases with cervical cancer by immunohistochemical.The levels ofHIF-1αmRNA andCOX-2mRNA were detected by RT-PCR.Chi-squared test was used to analyze the differences of survival rate from one year to three year in different groups;KM survival analysis was used for the survival time in different groups;correlation analysis was used to analyze the correlation between protein and mRNA level.Results The survival rate of three year in the group of coexpression ofHIF-1αandCOX-2was significantly lower than that in the non-coexpression group(P<0.05).The survival time in the group of coexpression ofHIF-1α andCOX-2was significantly shorter than that in the non-coexpression group(P<0.05).There was a positive correlation between theHIF-1αprotein level and theCOX-2mRNA level in the patients with cervical cancer in stageⅡ(rs=0.594,P<0.05).Conclusions The prognosis is poorer in the group of coexpression ofHIF-1αand COX-2of patients with cervical cancer in stageⅠ and stageⅡ than the non-coexpression group.TheHIF-1αprotein may upregulate the level ofCOX-2mRNA.
cervical cancer;HIF-1α;COX-2;coexpression;survival analysis
R737.33
A
10.3969/j.issn.1005-8982.2016.16.014
1005-8982(2016)16-0067-05
2016-04-14
宜昌市醫(yī)療衛(wèi)生科研項目(No:A14301-31)[通信作者]李欣,E-mail:lixinyc5189@163.com