白春艷,魏如騰,侯紅萍(山西農業(yè)大學 食品科學與工程學院,山西 太谷 030801)
多菌混合發(fā)酵產纖維素酶及生物法預處理秸稈的研究
白春艷,魏如騰,侯紅萍*
(山西農業(yè)大學 食品科學與工程學院,山西 太谷 030801)
對實驗室分離篩選的3株綠色木霉和6株枯草芽孢桿菌的生長及產酶情況進行了研究,綜合確定綠色木霉綠2與芽孢桿菌S3為混合菌中產纖維素酶酶活最高的組合。在此基礎上,采用解脂假絲酵母處理高粱秸稈。先將解脂假絲酵母的種子培養(yǎng)液按照3%的接種量接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基中,隔24 h將綠色木霉綠2的孢子懸浮液按照2.67%的接種量接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基中,再隔12 h將芽孢桿菌S3的種子培養(yǎng)液按照5.33%的接種量接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基中,測定出的濾紙酶活(FPA)最高,為389.89 U/m L,比優(yōu)化前提高了14.30%。
綠色木霉;枯草芽孢桿菌;混合菌;纖維素酶
Ketwords: Trichodermaviride;Bacillussubtilis;m ixed strain culture;cellulase
秸稈作為農作物經(jīng)加工提取出果實后的剩余物,是一類極重要的可再生物質資源。但是目前我國秸稈資源并沒有得到充分有效的利用,大量秸稈被直接用于焚燒、填埋,這不僅是生物質資源的極大浪費,并且嚴重污染空氣和水源,影響動植物和人類的健康。因此,認識并了解我國農作物秸稈資源的利用開發(fā)和存在的主要問題,對于秸稈資源的合理化利用具有重要的意義。常見的秸稈預處理方法為物理預處理、化學預處理、生物預處理和組合預處理(如超聲波與堿法聯(lián)合預處理)。相比較而言,生物預處理方法因具有低能耗和環(huán)境友好的特點,近年來成為國內外研究的熱點[1-3]。
真菌通過分泌到胞外的游離纖維素酶,以水解酶機制和氧化酶機制降解纖維素,細菌纖維素酶則是以形成多酶復合體結構而起作用。纖維素酶是多組分酶系,需要各組分協(xié)同作用才能分解纖維素物質。但是,現(xiàn)有菌株生產的纖維素酶普遍酶解效率偏低、易失活,因此,利用復合菌株發(fā)酵可以克服酶活力低,酶系不完全的缺點。經(jīng)研究表明,解脂假絲酵母可以將天然小麥秸稈表面的蠟質層分解掉,這樣可以省去利用酸、堿蒸煮法處理秸稈的步驟,降低對設備的要求,減少成本[4-7]。
本試驗以實驗室的幾株高產纖維素酶菌株為出發(fā)菌株,從混菌發(fā)酵的角度出發(fā),進行細菌與霉菌之間的混合發(fā)酵試驗,在此基礎上,確定最佳復合菌組合。在上述試驗基礎上,添加了解脂假絲酵母,利用高粱秸稈作為主要碳源,研究了解脂假絲酵母、綠色木霉綠2和枯草芽孢桿菌S3這3株菌的混合生長及產酶情況。本試驗的目的旨在利用解脂假絲酵母來分解高粱秸稈的蠟質層,然后綠色木霉綠2將秸稈的纖維束結構崩解掉,最后細菌S3來吞食殘部。這樣的菌種混合發(fā)酵對分解高粱秸稈有很大的幫助。
1.1料與試劑
1.1.1劑
羧甲基纖維素鈉(sodium carboxymethylcellolose,CMC-Na)(分析純):天津市科密歐試劑開發(fā)中心;微晶纖維素:國藥控股集團;水楊苷:美國Sigma公司;高粱秸稈、玉米芯粉、谷子秸稈:市售產品或自制;3,5-二硝基水楊酸(3,5-dinitrosalicylic acid,DNS):天津市科密歐試劑開發(fā)中心。
1.1.2種
3株綠色木霉(Trichodermaviride)(綠1~綠3)、6株枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)(S1~S6)、解脂假絲酵母(Candida lipolytica)均為山西農業(yè)大學微生物實驗室保藏。
1.1.3養(yǎng)基
(1)馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基:去皮馬鈴薯200 g切塊,加水煮沸20min,用四層紗布過濾,然后再在濾液中加入20 g蔗糖和15~20 g瓊脂,加熱溶化后補水至1 000m L,pH自然,121℃滅菌30min。
(2)牛肉蛋白胨培養(yǎng)基:牛肉膏0.5 g,蛋白胨1.0 g,氯化鈉0.5 g,水100m L,瓊脂2 g,pH 7.2,121℃滅菌20min。
(3)麥芽汁培養(yǎng)基:取一定量的大麥芽,研磨,加入麥芽量4倍水,在55~60℃保溫糖化,并不斷的攪拌3~4 h,用紗布過濾去渣,煮沸后再用濾紙或脫脂棉過濾一次,加水稀釋成10~12°Bx麥芽汁,加入2%瓊脂,pH自然,115℃滅菌20m in。
(4)混合發(fā)酵產酶培養(yǎng)基:麩皮5 g,蛋白胨0.3 g,(NH4)2SO40.3 g,KH2PO40.1 g,MgSO4·7H2O 0.03 g,NaCl 0.5 g,水100m L,pH自然,121℃滅菌20m in。
1.2器與設備
722E型可見分光光度計:上海光譜儀器有限公司;TGL-16G高速臺式離心機:上海安亭科學儀器廠;奧林巴斯CX23雙目顯微鏡:奧林巴斯(上海)映像銷售有限公司;DHP-500型電熱恒溫培養(yǎng)箱:北京光明醫(yī)療儀器廠;HH-4數(shù)顯恒溫水浴鍋:金壇市科析儀器有限公司;YXQ-LS-50S11壓力蒸汽滅菌鍋:上海博訊實業(yè)有限公司醫(yī)療設備廠。
1.3法
1.3.1維素酶活力的測定
纖維素酶活力的測定采用DNS法[8-9]。
1.3.2切葡聚糖酶活力的測定
在25m L刻度試管中加入0.5m L適當稀釋的澄清酶液和1.0m L用pH 4.8的磷酸氫二鈉-檸檬酸緩沖液配制的質量濃度1%的羧甲基纖維素懸浮液。蓋上塑料布,用橡皮筋扎緊。50℃水浴,振幅80mm,保溫30m in。取出迅速加入DNS溶液2m L,100℃煮沸5min,水浴冷卻后定容至25m L,搖勻,波長550 nm處測定吸光度值。反應生成的葡萄糖的量根據(jù)酶解葡萄糖標準方程(定容至25m L,測定CMC酶活)求得。酶活定義:在50℃、pH值4.8條件下,1min從底物溶液中分解產生1μg還原糖(表示為還原糖當量)所需要的酶量即為一個酶活單位,U/m L[10-12]。
1.3.3切葡聚糖酶活力的測定
在25m L刻度試管中加入0.5m L適當稀釋的澄清酶液和1.0m L用pH 4.8的磷酸氫二鈉-檸檬酸緩沖液配制的質量濃度1%的微晶纖維素懸浮液,測定外切葡聚糖酶活力,方法同上。
1.3.4-葡萄糖苷酶活力的測定
在25m L刻度試管中加入0.5m L適當稀釋澄清酶液和1.0m L用pH 4.8的磷酸氫二鈉-檸檬酸緩沖液配制成的質量濃度1%的水楊苷溶液,測定β-葡萄糖苷酶活力,方法同上。
1.3.5紙酶活力的測定
在25m L刻度試管中放入1 cm×6 cm的新華濾紙條,加入0.5m L適當稀釋澄清酶液和1.0m L pH 4.8的磷酸氫二鈉-檸檬酸緩沖液,測定濾紙酶活(filter paperactivity,F(xiàn)PA),方法同上。
1.3.6萄糖標準曲線的制作
用無水葡萄糖(105℃烘干至質量恒定)配制成1 mg/m L的葡萄糖標準溶液,分別取此標準溶液0、0.2m L、0.4m L、0.6m L、0.8m L、1.0m L、1.2m L于比色管中,補水至2.0m L,加入2.0m LDNS試劑,具塞沸水浴5min,立即冷卻,終止反應,定容至25m L,搖勻后,在波長550 nm處測定吸光度值,每管重復測3次,結果取平均值。以吸光度值為縱坐標,葡萄糖含量為橫坐標繪制曲線并建立回歸方程。
1.3.7菌組合的接種方式、比例和時間的確定
分別在綠色木霉和枯草芽孢桿菌中進行篩選,通過比較其產酶的影響,得出最佳菌株組合。并繼續(xù)與解脂假絲酵母進行組合,以三種復合菌株降解秸稈,并得出最佳接種量、時間以及接種比例。
2.1萄糖標準曲線的繪制
圖1 葡萄糖標準曲線Fig.1 Standard curve of glucose
由圖1可知,葡萄糖標準曲線回歸方程為y=0.560 7x-0.007 5,相關系數(shù)R2為0.999 1,表明標準曲線線性關系良好。
2.2 S系列枯草芽孢桿菌酶活力的測定
取250m L三角瓶,裝入100m L發(fā)酵產酶培養(yǎng)基,取8%細菌種子培養(yǎng)液接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基上,35℃、150 r/min搖床振蕩培養(yǎng)。培養(yǎng)液4 000 r/m in、4℃離心20 m in,上清液為酶液。分別取發(fā)酵1 d、2 d、3 d、4 d、5 d、6 d、7 d的粗酶液0.5m L測定其內切酶、外切酶、β-葡萄糖苷酶酶活和濾紙酶活,所得結果見表1。
表1 六株枯草芽孢桿菌各酶活之間的比較Table 1 Com parison ofenzyme activity ofsix strains of Bacillus subtilis
由表1可知,以內切酶活和外切酶活為例,枯草芽孢桿菌S2、S3、S4、S5酶活峰值較高,但枯草芽孢桿菌S2、S3、S4的峰值出現(xiàn)較早,分別在第4、第3天達到酶活最高值;以β-葡萄糖苷酶活和濾紙酶活為例,枯草芽孢桿菌S3、S4、S5酶活峰值較高,但枯草芽孢桿菌S3、S4的峰值出現(xiàn)較早。綜合考慮,枯草芽孢桿菌S3和S4的酶活較高,而且峰值出現(xiàn)較早,選擇S3和S4進行菌株混合試驗。
2.3色木霉酶活力的測定
酶液處理方法同2.2。分別取1 d、2 d、3 d、4 d、5 d、6 d、7 d的粗酶液0.5m L測定其內切酶、外切酶、β-葡萄糖苷酶酶活和濾紙酶活,所得結果見表2。
表2 三株綠色木霉各酶活之間的比較Table 2 Compa rison of enzym e ac tivity of three strains of Trichoderma viride
由表2可知,綠1、綠2酶活峰值較高,而且峰值出現(xiàn)較早,分別在第4、第3天達到酶活最高值,選擇綠1和綠2進行菌株混合試驗。
2.4佳混合菌組合確定
由于天然單菌的酶組分單一、配比不均衡,故將不同菌種進行混合培養(yǎng),優(yōu)勢互補,有利于完善纖維素酶組分、提高酶活、縮短產酶周期、提高纖維素降解效率,因此本試驗選用酶活峰值較高,并且峰值出現(xiàn)較早的枯草芽孢桿菌S3、S4和綠色木霉綠1、綠2作為混合菌研究對象,以比例1∶1進行組合,以篩選出最佳菌種組合,實驗結果見表3。
表3 四種混合菌各酶活之間的比較Table 3 Com parison of enzyme activity of four kinds of m ixed strain cu lture
由表3可知,四個組合所達到的最大酶活與四株單菌相比有不同程度的增加。說明組合后形成較好的生物降解體系。另外,據(jù)測得的酶活大小得出,組合2的內切葡聚糖酶活分別是出發(fā)菌枯草芽孢桿菌S3的2.24倍和綠色木霉綠2的2.15倍;外切葡聚糖酶活分別是出發(fā)菌枯草芽孢桿菌S3的2.81倍和綠色木霉綠2的2.55倍;β-葡萄糖苷酶活分別是出發(fā)菌枯草芽孢桿菌S3的3.00倍和綠色木霉綠2的3.34倍;濾紙酶活分別是出發(fā)菌枯草芽孢桿菌S3的2.03倍和綠色木霉綠2的2.06倍;綜合考慮,組合2的4種酶活都比較高而且出現(xiàn)的峰值也較早。因此,選擇枯草芽孢桿菌S3與綠色木霉綠2(1∶1)為最佳組合。
2.5合菌對不同秸稈的降解效果
為了研究綠色木霉與枯草芽孢桿菌酶系之間的互補作用,以內切酶、外切酶、β-葡萄糖苷酶酶活和濾紙酶活為考察指標,確定最佳混合菌組合。根據(jù)參考文獻[13-15]以水解濾紙的酶活力代表纖維素酶的總活力(FPA酶活)為考察指標。并采用折中的方法,取混合菌的培養(yǎng)溫度為33℃。
取250m L三角瓶,裝入100m L混合發(fā)酵產酶培養(yǎng)基,取組合2混合菌(綠色木霉綠2∶枯草芽孢桿菌S3=1∶1)培養(yǎng)液,以接種量8%接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基上、33℃、150 r/m in搖床振蕩培養(yǎng)。培養(yǎng)液4 000 r/m in、4℃離心20min,上清液為酶液。發(fā)酵原料是選自同一產地的高粱秸稈、谷子秸稈和玉米芯,粉碎過40目篩網(wǎng),接種混合菌組合2培養(yǎng)液,適宜條件下培養(yǎng)6 d,測定FPA酶活。將玉米芯為唯一碳源時測得的FPA酶活定義為100%,比較相對FPA酶活的大小,結果見圖2。
圖2 不同秸稈對產酶的影響Fig.2 Effects of different straw on enzyme production
由圖2可知,混合菌組合2對高粱秸稈的降解效果優(yōu)于谷子秸稈和玉米芯,故后續(xù)試驗采用高粱秸稈為發(fā)酵原料,即高粱秸稈作為主要碳源。
2.6色木霉與枯草芽孢桿菌接種方式、接種比例以及時間的確定
取250m L三角瓶,裝入100m L發(fā)酵產酶培養(yǎng)基,高粱秸稈作為主要碳源,33℃、150 r/min搖床振蕩培養(yǎng)。培養(yǎng)液4 000 r/min、4℃離心20min,上清液為酶液,取培養(yǎng)液進行試驗。
2.6.1合菌接種方式對秸稈降解效果的影響
取組合2混合菌培養(yǎng)液8%接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基上,在接種總量一定的條件下,將綠色木霉綠2和枯草芽孢桿菌S3按1∶1的比例采用同時接種、先接綠色木霉綠2,隔12 h接枯草芽孢桿菌S3和先接枯草芽孢桿菌S3,隔12 h接綠色木霉綠2三種接種方式,分別測定FPA酶活,結果見表4。
表4 不同接種方式對FPA酶活的影響Table 4 Effects of diffe rent inoculation m ethods on FPA activity
由表4可知,不同的接種方式酶活存在著差異。先接綠色木霉綠2,隔12 h接種枯草芽孢桿菌S3,這種接種方式其FPA酶活最高,為332.17U/m L。
2.6.2合2混合菌的接種比例對秸稈降解效果的影響
取組合2混合菌培養(yǎng)液在接種總量一定(8%)的條件下,先后接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基上,按照先接綠色木霉綠2,隔12h接枯草芽孢桿菌S3的接種方式,采用綠色木霉綠2∶枯草芽孢桿菌S3=1∶1、綠色木霉綠2∶枯草芽孢桿菌S3=1∶2、綠色木霉綠2∶枯草芽孢桿菌S3=2∶1三種接種比例,分別測定FPA酶活,結果見表5。
表5 不同接種比例對FPA酶活的影響Table 5 Effects of different inoculation ratio on FPA activity
由表5可以看出,當綠色木霉綠2∶枯草芽孢桿菌S3接種量為1∶2(即綠色木霉綠2接種量2.67%,芽孢異菌S3接種量5.33%)時,其FPA酶活最高,為341.11U/m L。
2.6.3合菌的接種時間對秸稈降解效果的影響
取組合2混合菌培養(yǎng)液接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基上,在接種總量為8%的條件下,按照先接綠色木霉綠2,再接枯草芽孢桿菌S3的接種方式,綠色木霉綠2∶枯草芽孢桿菌S3=1∶2的接種比例,采用不同的接種時間∶先接綠色木霉,隔12 h、24 h、36 h、48 h、60 h接枯草芽孢桿菌S3的種子液接入發(fā)酵培養(yǎng)基中發(fā)酵6 d,測定FPA酶活,結果見表6。
表6 枯草芽孢桿菌接種時間對FPA酶活的影響Table 6 Effects of Bacillus subtilis inocu lation time on FPA activity
由表6可以看出,菌齡對纖維素酶的生產有較大影響。當時間過短時,由于菌體數(shù)量不足,酶活較低;當時間過長時,酶活反而降低。所以,最適宜的接種時間為12 h,此時FPA酶活最高,為341.11U/m L。
綜上可知,混合菌的接種方式為先接綠色木霉綠2,隔12 h接枯草芽孢桿菌S3、接種比例為綠色木霉綠2∶接枯草芽孢桿菌S3=1∶2。
2.7脂假絲酵母與混合菌對高粱秸稈降解的最佳接種量,接種時間的確定
取250m L三角瓶,裝入100m L發(fā)酵產酶培養(yǎng)基,高粱秸稈作為主要碳源,33℃、145 r/m in搖床振蕩培養(yǎng)。培養(yǎng)液4 000 r/min、4℃離心20min,上清液為酶液。在得出綠色木霉與枯草芽孢桿菌的接種條件后,再與解脂假絲酵母進行復配,得出三種混合菌的接種條件。
2.7.1脂假絲酵母與混合菌對秸稈降解的最佳接種量的確定
先將解脂假絲酵母的種子培養(yǎng)液按照不同的接種量1%、2%、3%、4%、5%、6%接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基上,隔12 h再取8%組合2混合菌培養(yǎng)液按照優(yōu)化的條件接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基上,測定其FPA酶活,結果見表7。
表7 解脂假絲酵母接種量對FPA酶活的影響Table 7 Effects of C andida lipo lytica inoculum on FPA activity
由表7可知,解脂假絲酵母是可以將高粱秸稈表面的蠟質層分解掉,當解脂假絲酵母的接種量過高或過低時,其FPA酶活都很低,而當接種量為3%時,F(xiàn)PA酶活最高,為369.82U/m L。
2.7.2脂假絲酵母與混合菌對秸稈降解的最佳接種時間的確定
先將解脂假絲酵母的種子培養(yǎng)液按照3%的接種量接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基上,分別隔0、12 h、24 h、36 h、48 h、60 h后,隔24 h將綠色木霉綠2的孢子懸浮液按照2.67%的接種量接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基中,再隔12 h將枯草芽孢桿菌S3的種子培養(yǎng)液按照5.33%的接種量接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基中,測定其FPA酶活,結果見表8。
表8 綠色木霉接種時間對FPA酶活的影響Table 8 Effects of Trichoderma viride inoculation time on FPA activity
由表8可以看出,先將解脂假絲酵母的種子培養(yǎng)液按照3%的接種量接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基中,隔24 h將綠色木霉綠2的孢子懸浮液按照2.67%的接種量接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基中,再隔12h將枯草芽孢桿菌S3的種子培養(yǎng)液按照5.33%的接種量接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基中,其測定的FPA酶活最高,為389.89U/m L,F(xiàn)PA酶活比未優(yōu)化前提高了14.30%。
研究了綠色木霉與枯草芽孢桿菌共9株菌的生長及產酶情況,通過比較4組混合菌的酶活大小,綜合確定組合綠色木霉綠2與枯草芽孢桿菌S3是產酶酶活最高的混合菌,在此基礎上,采用解脂假絲酵母處理高粱秸稈。先將解脂假絲酵母的種子培養(yǎng)液按照3%的接種量接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基中,隔24 h將綠色木霉綠2的孢子懸浮液按照2.67%的接種量接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基中,再隔12 h將枯草芽孢桿菌S3的種子培養(yǎng)液按照5.33%的接種量接種到發(fā)酵產酶培養(yǎng)基中,其測定的FPA酶活最高,即389.89U/m L,其FPA酶活比未優(yōu)化前提高了14.30%。
[1]WEBER J,AGBLEVORFA.M icrobubble fermentation of Trichoderma reesei for cellulaseproduction[J].Process Biochem,2005,40:669-676.
[2]周建,羅學剛,蘇林.纖維素酶法水解的研究現(xiàn)狀及展望[J].化工科技,2006,14(2):51-56.
[3]RABINOVICHM L,MELINIKM S,BOLOBOVA A V.Cellulases from microorganisms[J].Prim Biokhim M ikrobiol,2002,38(4):355-373.
[4]方浩,宋向陽,趙晨,等.里氏木霉與黑曲霉混合發(fā)酵產纖維素酶的研究[J].林業(yè)化學與工業(yè),2009,29(6):16-19.
[5]包紅旭,王愛杰,任南琪.預處理方法對細菌降解小麥秸稈產氫能力的影響[J].大連海事大學學報,2008,34(2):41-44,52.
[6]WOOD TM.Fungal cellulases[J].Biochem Soc Trans,1992,20(1): 46-53.
[7]宋娜娜,宋向陽,連之娜,等.纖維素酶液中β-葡萄糖苷酶的分離純化[J].南京林業(yè)大學學報,2011,35(4):111-116.
[8]張英,侯紅萍.黑曲霉和芽孢桿菌混合菌產纖維素酶的研究[J].中國釀造,2010,29(12):91-94.
[9]楊盛,侯紅萍.高效降解纖維素混合菌的篩選及其產酶條件的研究[J].中國釀造,2008,27(21):20-23.
[10]王文平,郭祀遠,李琳,等.考馬斯亮藍法測定野木瓜多糖中蛋白質的含量[J].食品研究與開發(fā),2008,29(1):115-117.
[11]宋娜娜,宋向陽,歐陽嘉,等.里氏木霉與黑曲霉混合發(fā)酵產纖維素酶及其水解特性[J].生物加工過程,2010,8(5):5-10.
[12]王倩,周玉杰,張建安,等.液態(tài)發(fā)酵生產纖維素酶工藝研究進展[J].現(xiàn)代化工,2009,29(S2):62-64.
[13]TOMAZ C T,JOAO A.Queiroz fractionation of Trichoderma reesei cellulases by hydrophobic interaction chromatography on phenyl-Sepharose[J].Biotchnol Lett,2004,26(3):223-227.
[14]楊懂艷,李秀金,高志堅,等.化學與生物預處理對玉米秸稈生物氣產量影響的初步比較研究(英文)[J].農業(yè)工程學報,2003,19(5):209-213.
[15]楊玉楠,陳亞松,楊敏.利用白腐菌生物預處理強化秸稈發(fā)酵產甲烷研究[J].農業(yè)環(huán)境科學學報,2007,26(5):1968-1972.
Multi-strains fermentation for cellulose production and straw pretreatment with biological method
BA IChunyan,WEIRuteng,HOU Hongping*
(College ofFood Science and Engineering,ShanxiAgriculturalUniversity,Taigu030801,China)
The grow th and enzyme production conditions of three strains of Trichoderma viride and six strainsof Bacillus subtilis screened were studied.The results showed that the combination of T.viride 2 and B.subtilis S3 had the highest cellulose-producing activities.On this basis,sorghum straw was preprocessed by Candida lipolytica.Firstly,the seed cultureof C.albicans was inoculated into the fermentationmedium w ith inoculum 3%. Then after 24 h,spore suspension of T.viride 2 was inoculated into the fermentationmedium w ith inoculum 2.67%.Lastly,after 12 h,the seed culture of B.subtilis S3 was inoculated into the fermentationmedium w ith inoculum 5.33%.Under this condition,the FPA activity was highest of 389.89 U/m l,which increased by 14.30%than beforeoptim ization.
TS262.2
0254-5071(2016)01-0057-05
10.11882/j.issn.0254-5071.2016.01.013
2015-09-29
山西省科技攻關項目(No.201403110192)
白春艷(1988-),女,碩士研究生,研究方向為食品微生物與發(fā)酵技術。
侯紅萍(1965-),女,教授,碩士,研究方向為食品與發(fā)酵工程。