張喜峰，何　倩，張　斌，王明卉，羅光宏*

（1.河西學(xué)院農(nóng)業(yè)與生物技術(shù)學(xué)院；甘肅張掖734000；2.甘肅省河西走廊特色資源利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，甘肅張掖734000；3.河西學(xué)院凱源生物技術(shù)開(kāi)發(fā)中心，甘肅省微藻工程技術(shù)研究中心，甘肅張掖734000）

鹽誘導(dǎo)乙醇水體系萃取分離葡萄皮中原花青素

張喜峰1，2，何倩1，張斌1，王明卉1，羅光宏3*

（1.河西學(xué)院農(nóng)業(yè)與生物技術(shù)學(xué)院；甘肅張掖734000；2.甘肅省河西走廊特色資源利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，甘肅張掖734000；3.河西學(xué)院凱源生物技術(shù)開(kāi)發(fā)中心，甘肅省微藻工程技術(shù)研究中心，甘肅張掖734000）

采用鹽誘導(dǎo)乙醇水體系萃取分離葡萄皮中原花青素，利用單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)研究了鹽的種類和加入量、乙醇體積分?jǐn)?shù)、樣品加入量、溫度對(duì)原花青素萃取效果的影響。并且以1，1-二苯基-2-三硝基苯肼（DPPH）自由基清除能力、還原Fe3+能力、羥自由基清除能力分析葡萄皮中原花青素的抗氧化活性。結(jié)果表明，乙醇體積分?jǐn)?shù)為50%，料液比為1∶15（g∶m L）制備原花青素粗提液；然后向15 m L粗提液中加入3.6 g Na2HPO4，在30℃條件下充分混勻分相后，葡萄皮中原花青素萃取率和分配系數(shù)分別為85.51%和2.48。抗氧化實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，葡萄皮中原花青素有一定抗氧化活性，萃取后原花青素比粗提液中原花青素的抗氧化能力強(qiáng)。

葡萄皮；乙醇水提取液；鹽誘導(dǎo)；原花青素；抗氧化

河西走廊地處北緯36～40°，具有生產(chǎn)葡萄尤其是釀造葡萄的最佳光、熱、水、土資源組合狀態(tài)，屬我國(guó)釀造葡萄發(fā)展的最佳產(chǎn)區(qū)，是綠色食品理想的種植地區(qū)。在葡萄酒釀造過(guò)程中，會(huì)產(chǎn)生大量葡萄皮渣廢棄物，其被作為飼料和肥料，附加值較低。葡萄皮渣中可提取多種有效成分，如蛋白質(zhì)、多酚類化合物等［1］，這些成分具有良好的生物學(xué)功能。原花青素是葡萄皮中多酚類化合物之一，具有抑制癌細(xì)胞［2］、護(hù)肝［3］、抗氧化［4-5］、提高免疫力［6］等作用，其營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和醫(yī)療作用已得到國(guó)內(nèi)外研究人員充分肯定［7-8］。因此，對(duì)葡萄皮中原花青素分離方法進(jìn)行分析，可延長(zhǎng)葡萄酒產(chǎn)業(yè)鏈，對(duì)提高葡萄皮附加值具有重要意義。

誘導(dǎo)雙水相技術(shù)利用目標(biāo)產(chǎn)物在兩相中分配系數(shù)的差異而進(jìn)行分離的一項(xiàng)技術(shù)，具有傳質(zhì)速度快、能耗低、分相時(shí)間短等優(yōu)點(diǎn)。盛碧等［9］研究了梔子苷在乙腈水體系中誘導(dǎo)相分離分配行為，獲得了較好的萃取效果，并對(duì)無(wú)機(jī)鹽誘導(dǎo)乙腈/水分相機(jī)制進(jìn)行了分析。但是，乙腈水體系對(duì)萃取極性較大化合物相對(duì)較難，限制了該技術(shù)在活性物質(zhì)萃取中應(yīng)用。因此，采用乙醇水誘導(dǎo)相分離體系純化天然產(chǎn)物中活性成分，可為分離科學(xué)應(yīng)用提供新的思路。

本實(shí)驗(yàn)采用無(wú)機(jī)鹽誘導(dǎo)乙醇水體系萃取分離葡萄皮中原花青素，分別研究了無(wú)機(jī)鹽種類及其加入量、乙醇體積分?jǐn)?shù)、樣品加入量、萃取溫度對(duì)原花青素萃取效果的影響，并采用單因素及正交試驗(yàn)優(yōu)化鹽誘導(dǎo)萃取葡萄皮原花青素條件，并對(duì)其抗氧化性進(jìn)行了比較研究，以期為葡萄皮中原花青素廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥和開(kāi)發(fā)新型保健品提供參考。

1　材料與方法

1.1材料與試劑

葡萄皮由甘肅濱河食品工業(yè)集團(tuán)葡萄酒下腳料，經(jīng)挑選、清洗、曬干、粉碎。

兒茶素標(biāo)準(zhǔn)品（純度≥99%）：上海國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司；硫酸銨、磷酸氫二鈉、氯化鈉、硫酸鈉、乙醇；香草醛、濃鹽酸、甲醇、1，1-二苯基-2-三硝基苯肼（1，1-diphenyl-2-picrylhydrazyl，DPPH）自由基：上海阿拉丁生化科技股份有限公司。所有試劑均為分析純。

1.2儀器與設(shè)備

DL-820E超聲智能系統(tǒng)：上海之信儀器有限公司；722型分光光度計(jì)：上海光譜儀器有限公司；PL-203型電子天平：梅特勒-托利多儀器有限公司。

1.3方法

1.3.1原花青素乙醇超聲提取法

準(zhǔn)確稱取1 g葡萄皮粉末，按照料液比1∶15（g∶m L）加入體積分?jǐn)?shù)為50%乙醇，在超聲功率100W、超聲時(shí)間20m in條件下進(jìn)行提取，提取后進(jìn)行過(guò)濾，用體積分?jǐn)?shù)為50%乙醇將濾液補(bǔ)足至15 m L，得葡萄皮原花青素粗提液，4℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.3.2誘導(dǎo)乙醇水體系萃取過(guò)程

各取15 m L粗取液分別加入不同種類2.2 g無(wú)機(jī)鹽，充分混勻至無(wú)機(jī)鹽溶解，靜置10 min分層，讀取上相、下相體積，測(cè)定上、下相原花青素質(zhì)量濃度。其相比R、分配系數(shù)K及萃取率Y的計(jì)算公式如下：

式中：R為相比；Vt、Vb分別為上、下相體積，m L。

式中：K為分配系數(shù)；Ct、Cb分別為上、下相原花青素質(zhì)量濃度，

式中：Y為萃取率，%；R為相比；K為分配系數(shù)。

1.3.3原花青素質(zhì)量濃度的測(cè)定

原花青素質(zhì)量濃度的測(cè)定采用香草醛-濃鹽酸法［10］。

兒茶素標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備：準(zhǔn)確稱取10 mg兒茶素標(biāo)準(zhǔn)品，用甲醇配制成質(zhì)量濃度為1mg/m L的標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別取1.00 m L、2.00 m L、3.00 m L、4.00 m L、5.00 m L用甲醇定容至10 m L。從中各取0.5 m L分別加入3 m L 40 g/L的香草醛-甲醇溶液，1.5 m L濃鹽酸，混勻，在室溫下避光反應(yīng)15 min，以不加兒茶素標(biāo)準(zhǔn)品溶液為空白對(duì)照于波長(zhǎng)500 nm處測(cè)定吸光度，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。得到吸光度值（Y）與原花青素質(zhì)量濃度（X）的標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程：Y=0.396 8X-0.016，相關(guān)系數(shù)R2=0.991 0。

1.3.4葡萄皮中原花青素清除DPPH自由基能力

參照高行恩等［11］方法，略作改動(dòng)。分別取粗提液、萃取液和蒸餾水溶解后VC，再稀釋至5組不同質(zhì)量濃度的溶液，分別取2 m L稀釋液，加入2 m L上述濃度為0.2 mmol/m L的DPPH溶液，以2 m L無(wú)水乙醇和2 m L蒸餾水為空白，避光反應(yīng)30 m in，于波長(zhǎng)517 nm處測(cè)定吸光度值，根據(jù)以下公式計(jì)算DPPH自由基清除率。

式中：Ao為2 mL無(wú)水乙醇和2 mL蒸餾水的吸光度值；Ai為2 mL樣液和2 m LDPPH溶液的吸光度值；A j為2 m L樣液和2 mL無(wú)水乙醇溶液的吸光度值。

1.3.5葡萄皮中原花青素還原Fe3+能力的測(cè)定［12-14］

取10 m L試管，分別加入不同質(zhì)量濃度的粗提液、萃取液和維生素C（Vitam in C）VC各2.0 m L、與2 m L磷酸鹽緩沖液（phosphate buffer solution，PBS）緩沖液和質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的鐵氰化鉀2 m L充分混勻后在50℃水浴20 min，分別加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%三氯乙酸2.0 m L，混勻后2 000 r/min離心10 min，取上清液2.0 m L，加入2.0 m L蒸餾水和1%的三氯化鐵1.0 m L，以相應(yīng)試劑為參比，在波長(zhǎng)700 nm處測(cè)定吸光度值，以此反映原花青素的還原能力，吸光度值越大，還原能力越強(qiáng)。

1.3.6葡萄皮中原花青素清除羥自由基能力

參照陳虎等［15］方法，略作改動(dòng)。取10 m L試管，分別加入不同質(zhì)量濃度的粗提液、萃取液和VC各1.0 m L，加入2 mmol/L H2O22m L、2 mmol/L FeSO42 m L、9 mol/L水楊酸乙醇溶液2 m L，以蒸餾水為參比，于波長(zhǎng)510 nm處測(cè)定吸光度值，按照以下公式計(jì)算羥自由基清除率：

式中：Ao為空白對(duì)照溶液吸光度值；Ai為樣品液吸光度值；A j為不加H2O2樣品液的本底吸光度值。

1.3.7數(shù)據(jù)處理

使用Excel 2003和DPS 6.55軟件對(duì)單因素和正交試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理，每個(gè)試驗(yàn)均重復(fù)3次，取平均值。

2　結(jié)果與分析

2.1鹽誘導(dǎo)乙醇水體系萃取分離葡萄皮中原花青素單因素試驗(yàn)

2.1.1無(wú)機(jī)鹽的選擇

取體積分?jǐn)?shù)為50%乙醇原花青素粗取液各15 m L，分別加入NaCl、Na2SO4、（NH4）2SO4、Na2HPO4各2.2 g，充分混勻至無(wú)機(jī)鹽溶解，計(jì)算原花青素萃取效果，結(jié)果見(jiàn)表l。

表1　無(wú)機(jī)鹽種類對(duì)原花青素萃取效果的影響Table 1 Effect of inorganic salts types on the extraction efficiency of proanthocyanidins

由表1可知，NaCl、Na2SO4、（NH4）2SO4、Na2HPO4四種鹽對(duì)乙醇水分相萃取原花青素效果不同，主要是因?yàn)橐掖妓g主要存在氫鍵作用，加入無(wú)機(jī)鹽后，本質(zhì)上是乙醇與無(wú)機(jī)鹽離子爭(zhēng)奪水分子過(guò)程。從萃取效果看，Na2HPO4對(duì)乙醇水誘導(dǎo)分相萃取原花青素效果最好，因此選擇無(wú)機(jī)鹽種類為Na2HPO4。

2.1.2Na2HPO4加入量對(duì)原花青素萃取效果的影響

取體積分?jǐn)?shù)50%乙醇原花青素粗提取液各15 m L，分別加入0.8 g、2.2 g、3.6 g、5.0 g、6.4 g Na2HPO4，充分混勻至鹽溶解，待上下分層后，測(cè)定上下相中原花青素質(zhì)量濃度，計(jì)算原花青素萃取效果，結(jié)果見(jiàn)圖l。

圖1　Na2HPO4加入量對(duì)原花青素萃取效果的影響Fig.1 Effect of Na2HPO4addition on the extraction efficiency of proanthocyanidins

由圖1可知，當(dāng)Na2HPO4加入量為0.8 g時(shí)，與體積分?jǐn)?shù)為50%乙醇原花青素粗取液無(wú)法分相，因?yàn)辂}與乙醇分相過(guò)程屬于鹽與乙醇爭(zhēng)奪水分子過(guò)程，鹽量較少，對(duì)乙醇水之間氫鍵破壞較小，整個(gè)體系混亂度變化不大，導(dǎo)致無(wú)法分相。當(dāng)Na2HPO4加入量逐漸增加時(shí)，原花青素萃取率和分配系數(shù)先增大后減小，Na2HPO4加入量為3.6 g時(shí)，分配系數(shù)和萃取率均達(dá)到最大值。原因可能是大量鹽的加入嚴(yán)重破壞了乙醇水之間的氫鍵結(jié)構(gòu)，整個(gè)體系混亂度增大，從而促使分層現(xiàn)象；當(dāng)Na2HPO4加入量為5.0 g時(shí)，下層中出現(xiàn)鹽析現(xiàn)象。因此，該體系選擇Na2HPO4加入量為3.6 g。

2.1.3乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)原花青素萃取效果的影響

圖2　乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)原花青素萃取效果的影響Fig.2 Effect of the ethanol content of on the extraction efficiency of proanthocyanidins

取不同乙醇體積分?jǐn)?shù)的原花青素粗取液各15 m L，分別加入3.6 g Na2HPO4，充分混勻至鹽溶解，待上下分層后，測(cè)定上下相中原花青素質(zhì)量濃度，計(jì)算原花青素萃取效果，結(jié)果見(jiàn)圖2。

由圖2可知，隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)逐漸增加，葡萄皮原花青素萃取率和分配系數(shù)先增大后減小，當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)為50%時(shí)，萃取率可達(dá)83.56%，主要原因是乙醇體積分?jǐn)?shù)增加時(shí)，上相極性變小，原花青素由上相轉(zhuǎn)移至下相，導(dǎo)致萃取率逐漸下降，因此，選擇乙醇體積分?jǐn)?shù)為50%。

2.1.4樣品加入量對(duì)原花青素萃取效果的影響

分別稱取0.50 g、0.75 g、1.00 g、1.25 g、1.50 g葡萄皮粉末，加入15 m L體積分?jǐn)?shù)為50%乙醇，按照1.3.1方法制備原花青素粗提液，向粗提液中分別加入3.6 g Na2HPO4，充分混勻至鹽溶解，待上下分層后，測(cè)定上下相中原花青素質(zhì)量濃度，計(jì)算原花青素萃取效果，結(jié)果見(jiàn)圖3。

圖3　樣品加入量對(duì)原花青素萃取效果的影響Fig.3 Effect of samp les addition on the extraction efficiency of proanthocyanidins

由圖3可知，隨著樣品加入量逐漸增加，原花青素分配系數(shù)和萃取率逐漸增加，當(dāng)樣品加入量為1.25 g時(shí)，原花青素萃取效果最佳；這主要與原花青素在上相中趨于飽和有關(guān)，因此，選擇樣品加入量為1.25 g。

2.1.5萃取溫度對(duì)原花青素萃取效果的影響

圖4　萃取溫度對(duì)原花青素萃取效果的影響Fig.4 Effect of extraction tem perature on the extraction efficiency of proanthocyanidins

稱取1.25 g葡萄皮粉末，加入15 m L體積分?jǐn)?shù)為50%乙醇，按照1.3.1方法制備原花青素粗提液，分別加入3.6 g Na2HPO4，在不同溫度下水浴10 m in后，測(cè)定上下相中原花青素質(zhì)量濃度，計(jì)算原花青素萃取效果，結(jié)果見(jiàn)圖4。

由圖4可知，原花青素萃取率和分配系數(shù)隨著溫度逐漸升高先增大，當(dāng)萃取溫度為30℃時(shí)，萃取率和分配系數(shù)達(dá)到最大值。隨著溫度逐漸升高，原花青素萃取率和分配系數(shù)趨于下降。原因可能是，溫度過(guò)高，會(huì)破壞原花青素酚型結(jié)構(gòu)，加速其分解。因此，確定萃取溫度為30℃。

2.2正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)

在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上，選擇Na2HPO4質(zhì)量、乙醇體積分?jǐn)?shù)、樣品加入量和萃取溫度4個(gè)因素，按照正交試驗(yàn)4因素3水平設(shè)計(jì)，對(duì)原花青素萃取率和分配系數(shù)兩個(gè)指標(biāo)進(jìn)行加權(quán)處理，以綜合評(píng)分方式分析原花青素萃取效果，原花青素萃取率和分配系數(shù)評(píng)分比例分別為60%和40%。結(jié)果與分析如表2所示，方差分析結(jié)果見(jiàn)表3。

表2　萃取條件優(yōu)化正交試驗(yàn)結(jié)果與分析Table 2 Resu lts and analysis of orthogonal experiments for extraction conditions optim ization

表3　正交試驗(yàn)結(jié)果方差分析Table 3 Variance analysis of orthogonal experiments results

由表2可知，各因素對(duì)原花青素萃取率和分配系數(shù)結(jié)果影響由大到小順序?yàn)椋阂掖俭w積分?jǐn)?shù)＞Na2HPO4質(zhì)量＞樣品加入量＞萃取溫度，最佳萃取條件組合為A1B2C1D3，即稱取1 g葡萄皮粉末，加入15 m L體積分?jǐn)?shù)為50%乙醇，按照1.3.1方法制備原花青素粗提液，向15 m L粗提液中加入3.6 g Na2HPO4，充分混勻至鹽溶解，在30℃水浴10min，待上下分層后，測(cè)得原花青素萃取率和分配系數(shù)分別為85.51%和2.48。

由表3可知，乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)原花青素萃取率和分配系數(shù)影響顯著（P＜0.05），樣品加入量、Na2HPO4質(zhì)量和萃取溫度對(duì)結(jié)果影響均不顯著（P＞0.05）。

2.3抗氧化性測(cè)定結(jié)果與分析

取1 g葡萄皮粉末，加入15 m L體積分?jǐn)?shù)為50%乙醇，按照1.3.1方法條進(jìn)行提取后進(jìn)行過(guò)濾，得葡萄皮原花青素粗提液；向15 m L粗提液中加入3.6 g Na2HPO4，充分混勻至鹽溶解，在30℃水浴10 min，待上下分層后，上相為原花青素萃取液。

2.3.1原花青素清除DPPH自由基能力

由圖5可知，隨著質(zhì)量濃度逐漸增加，原花青素粗提液和萃取液及VC對(duì)DPPH自由基清除率也逐漸升高，對(duì)DPPH自由基清除能力大小為原花青素萃取液、原花青素粗提液、VC。原花青素萃取液、原花青素粗提液、VC對(duì)DPPH自由基的半抑制濃度（50%inhibitory concentration，IC50）分別為0.449mg/m L、0.485mg/m L、0.569mg/m L。結(jié)果表明，采用鹽誘導(dǎo)后原花青素萃取液比粗提液具有較好的DPPH自由基清除能力，可能是由于萃取后已除去部分雜質(zhì)，在相同的反應(yīng)條件下，使得萃取后原花青素利于與DPPH溶液接觸。并且二者DPPH自由基清除率均＞VC。

圖5　葡萄皮中原花青對(duì)DPPH自由基的清除能力Fig.5 Scavenging ac tivity of proan thocyanidins from grape skins on DPPH free radical

2.3.2原花青素還原Fe3+能力

采用在波長(zhǎng)700 nm條件下測(cè)定的吸光度值反映VC和葡萄皮中原花青素還原Fe3+能力。由圖6可知，原花青素粗提液和萃取液及VC隨質(zhì)量濃度增加，還原Fe3+能力越強(qiáng)；對(duì)還原Fe3+能力大小為原花青素萃取液＞原花青素粗提液＞VC。結(jié)果表明，原花青素萃取液具有較好的還原力。

圖6　葡萄皮中原花青素還原力Fig.6 Reducing power of proanthocyanidins from grape skins

2.3.3原花青素清除羥自由基能力

由圖7可知，原花青素萃取液、原花青素粗提液和VC對(duì)羥自由基具有較好清除能力，原花青素萃取液、原花青素粗提液、VC對(duì)羥自由基的半抑制濃度（IC50）分別為0.458 mg/m L、0.585 mg/m L、0.759 m g/m L。對(duì)清除羥自由基能力大小為原花青素萃取液＞原花青素粗提液＞VC。結(jié)果表明，采用鹽誘導(dǎo)相分離后原花青素萃取液比粗提液具有較好的清除自由基的能力。

圖7　葡萄皮中原花青素清除羥自由基能力Fig.7 Scavenging activity o f proanthocyanidins from grape skins on hydroxyl free radical

3　結(jié)論

采用鹽誘導(dǎo)乙醇水體系萃取分離葡萄皮中原花青素，通過(guò)實(shí)驗(yàn)首先確定鹽的種類為Na2HPO4，利用單因素和正交設(shè)計(jì)試驗(yàn)對(duì)鹽誘導(dǎo)乙醇水體系萃取分離葡萄皮中原花青素條件進(jìn)行優(yōu)化，得到最佳萃取條件為：1 g葡萄皮粉末，加入15 m L體積分?jǐn)?shù)為50%乙醇，制備原花青素粗提液，其中加入3.6 g Na2HPO4，充分混勻至鹽溶解，30℃水浴10 min，待上下分層后，測(cè)得原花青素萃取率和分配系數(shù)分別為85.51%和2.48。

通過(guò)還原力、DPPH及羥自由基清除能力實(shí)驗(yàn)，表明萃取后原花青素還原力、DPPH及羥自由基清除能力強(qiáng)于粗提液中原花青素，可能是萃取后已除去粗提液中部分雜質(zhì)，從而提高了原花青素抗氧化能力，有關(guān)除去的雜質(zhì)是如何影響抗氧化活力，有待于進(jìn)一步研究。因此，說(shuō)明該技術(shù)可為萃取純化天然產(chǎn)物中活性成分提供新的思考依據(jù)。

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Extractionandseparationofproanthocyanidinsfrom grapeskinsbysaltinducedethanol-watersolutionsystem

ZHANG Xifeng1，2，HE Qian1，ZHANG Bin1，WANG Minghui1，LUO Guanghong3*
（1.College of Agriculture and Biotechnology，Hexi University，Zhangye 734000，China；2.Key Laboratory of Hexi Corridor Resources Utilization of Gansu，Zhangye 734000，China；3.Kaiyuan Bio-Tech Development Center，Hexi University，Zhangye 734000，China）

The proanthocyanidins from grape skins were extracted by salts induce ethanol aqueous solution system.Using the single factor and orthogonal experiments，the effects of the type and addition of salt，ethanol content，samples addition and temperature on extraction efficiency of proanthocyanidins were researched.With the scavenging activity of DPPH free radical，reducing power on Fe3+and the scavenging activity of hydroxyl free radical as evaluation indexes，the antioxidant activity of proanthocyanidins from grape skins was analyzed.The results show that crude extracts of proanthocyanidins were prepared in the conditions of ethanol content 50%and solid-liquid ratio 1∶15（g∶m l）.Na2HPO43.6 g was added into 15 m l crude extracts，and incorporated thoroughly at 30℃.The extraction rate and partition coefficient of proanthocyanidins from grape skins were 85.51% and 2.48，respectively.The results of antioxidant experiments indicated that the proanthocyanidins from grape skins had a certain antioxidant activity，and the antioxidant ability of the procyanidins obtained by salt induced ethanol-water solution system was higher than that in crude extracts by single ethanol extraction.

grape skins；ethanol aqueous solution；salts induce；proanthocyanidins；antioxidant activity

R284．2

0254-5071（2016）05-0139-05

10．11882/j．issn．0254-5071．2016．05．029

2016-03-01

甘肅省中小企業(yè)創(chuàng)新基金項(xiàng)目（1047GCCG001）；國(guó)家級(jí)大學(xué)生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)訓(xùn)練計(jì)劃項(xiàng)目（201510740005）

張喜峰（1982-），男，講師，碩士，主要從事植物組織中活性成分提取與分析研究工作。

羅光宏（1965-），男，教授，碩士，主要從事食品化學(xué)方面的研究工作。