韓運(yùn)寧,亓建洪
體外組織培養(yǎng)法保存關(guān)節(jié)軟骨的研究進(jìn)展
韓運(yùn)寧,亓建洪
同種異體軟骨移植是成功治療大面積關(guān)節(jié)軟骨缺損的一種選擇。大量研究報(bào)道,異體骨軟骨移植后軟骨移植物的存活率較高,10 年存活率在 71% ~ 85% 之間,15 年存活率高達(dá) 74%,20 年存活率可以達(dá)到 66%[1]。相對于關(guān)節(jié)置換手術(shù),同種異體軟骨移植術(shù)后的患者恢復(fù)快、效果好。運(yùn)動(dòng)人群中 88% 的病人可重新運(yùn)動(dòng),其中 79% 的病人可以恢復(fù)到受傷前的運(yùn)動(dòng)水平[2]??傮w來說,同種異體骨軟骨移植治療已經(jīng)取得很好的效果。然而,在保存期間軟骨細(xì)胞生物活性的降低限制了同種異體軟骨移植的應(yīng)用。有研究發(fā)現(xiàn)保存 7 d 內(nèi)的軟骨細(xì)胞活性最適合應(yīng)用于臨床,超過這個(gè)時(shí)間軟骨細(xì)胞活性明顯降低[3-4],當(dāng)移植物細(xì)胞存活率低于70% 時(shí),手術(shù)效果很不理想[5]。而異體軟骨在移植到患者之前需要經(jīng)歷移植物的轉(zhuǎn)運(yùn)、病原檢查等必要步驟,至少需要 1 ~ 2 周的時(shí)間。因此延長體外軟骨的保存時(shí)間,并維持其原有的生物學(xué)、生物力學(xué)特性,對于擴(kuò)大軟骨移植臨床應(yīng)用與提高移植效果尤為重要,也是同種異體軟骨移植手術(shù)成功與否的關(guān)鍵。目前體外軟骨保存的方法有冷凍保存法、組織培養(yǎng)法等。有實(shí)驗(yàn)研究顯示組織培養(yǎng)法的保存效果要優(yōu)于冷凍保存法[6-8],且保存時(shí)間最長可達(dá) 60 d[9]。因此如何進(jìn)一步地提高組織培養(yǎng)法保存軟骨的效果成為研究的熱點(diǎn)及難點(diǎn),本文主要從軟骨保存液的成分和保存環(huán)境兩個(gè)方面綜述,以尋求更理想的保存方法。
目前組織培養(yǎng)法保存關(guān)節(jié)軟骨常用的保存溫度為 4 ℃、37 ℃ 和 25 ℃。4 ℃ 條件下可以減緩軟骨細(xì)胞的代謝,維持原有的細(xì)胞外基質(zhì)成分。LaPrade 等[10]在 4 ℃ 條件下保存軟骨 28 d,細(xì)胞存活率可以達(dá)到 70% 的閾值。Qi 等[11]采用每兩天換一次培養(yǎng)液的方法保存軟骨,實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示4 ℃ 條件下的保存效果優(yōu)于 37 ℃ 條件下的保存。有研究人員模擬軟骨細(xì)胞生存的生理溫度,即在 37 ℃ 條件下保存軟骨。Garrity 等[12]用一種無血清的保存液在 37 ℃ 下保存狗的膝關(guān)節(jié)軟骨 56 d,軟骨細(xì)胞存活率可以達(dá)到 70%。相比 4 ℃ 下保存,軟骨細(xì)胞存活率有了明顯的提高。但是黏多糖、膠原蛋白含量和生物力學(xué)性能與 4 ℃ 下保存效果相比沒有明顯差異。Pallante 等[13]研究發(fā)現(xiàn),37 ℃ 保存軟骨 28 d 后檢測軟骨細(xì)胞存活率,軟骨表面的細(xì)胞存活率可達(dá) 80%,淺層區(qū)域?yàn)?65%,中層為 70%。而該實(shí)驗(yàn)中 4 ℃保存條件下的細(xì)胞存活率分別只有 45%、20%、35%。Cook等[9]在室溫下,即在 25 ℃ 下用 MOPS 保存液保存羊關(guān)節(jié)軟骨獲得了理想的結(jié)果。由于保存液的成分和實(shí)驗(yàn)條件的不同,4 ℃、37 ℃ 和 25 ℃ 下的保存效果尚存在爭議,需要根據(jù)自己的實(shí)驗(yàn)條件選擇合適的保存溫度。
組織培養(yǎng)法保存軟骨與培養(yǎng)細(xì)胞類似,需要定期更換培養(yǎng)液。保存軟骨時(shí)多采用 2 d 更換一次培養(yǎng)液的方式來為體外軟骨提供足夠的營養(yǎng),維持其基本代謝[11]。但換液頻率對保存效果的影響尚沒有相關(guān)的研究。
正常的軟骨在體內(nèi)會(huì)受到周期性應(yīng)力的作用,有利于軟骨細(xì)胞吸收關(guān)節(jié)液中的營養(yǎng)物質(zhì)。組織培養(yǎng)法保存軟骨與體內(nèi)軟骨相比缺乏必需的應(yīng)力刺激,影響軟骨細(xì)胞的正常代謝。Diao 等[14]發(fā)現(xiàn),動(dòng)態(tài)循環(huán)的壓力刺激可以使調(diào)控軟骨生成的基因 SOX9 表達(dá)升高,同時(shí)降低軟骨細(xì)胞的代謝。楊健等[15]以一種非接觸性的力學(xué)加載形式作用于液體保存中的軟骨,對細(xì)胞外基質(zhì)結(jié)構(gòu)產(chǎn)生積極的作用。但是不同強(qiáng)度的壓力對軟骨細(xì)胞產(chǎn)生的作用不同,不合適的壓力會(huì)對軟骨細(xì)胞的增殖和凋亡產(chǎn)生負(fù)性作用[16]。以上實(shí)驗(yàn)表明適當(dāng)?shù)膽?yīng)力刺激對軟骨細(xì)胞會(huì)產(chǎn)生積極的作用,因此軟骨保存所需的應(yīng)力環(huán)境也是今后組織培養(yǎng)法保存關(guān)節(jié)軟骨方案的優(yōu)化方向。
隨著各種器官及組織移植技術(shù)的迅速發(fā)展,各國研究人員對組織培養(yǎng)液的研究越來越多。軟骨的組織培養(yǎng)液有很多種類,其中常用的組織培養(yǎng)液有最低必需培養(yǎng)液(Eagle's minimum essential medium,EMEM)、Iscove’s 改良培養(yǎng)液(IMDM)、Dulbecco’s 改良 Eagle 培養(yǎng)液(DMEM)、威斯康星大學(xué)液(UW 液)、RPMI1640 培養(yǎng)液以及乳酸林格液等。培養(yǎng)液的成分成為影響保存效果的重要因素,研究人員通過對已有培養(yǎng)液進(jìn)行處理,加入血清、蛋白、生長因子、細(xì)胞凋亡抑制劑、抗氧化劑等,使得軟骨保存的效果得到了提升。
血清中含有豐富的細(xì)胞生長必需的營養(yǎng)成分,在細(xì)胞培養(yǎng)和軟骨組織的保存中都有應(yīng)用。Pennock 等[17]向 EMEM培養(yǎng)液中加入 10% 的新鮮胎牛血清(FBS)保存關(guān)節(jié)軟骨。在 4 ℃ 條件下保存 28 d 后,研究發(fā)現(xiàn)含有新鮮胎牛血清的保存液保存的軟骨細(xì)胞存活率可達(dá) 68%,而無血清的培養(yǎng)液保存的軟骨細(xì)胞活性只有 27%。但軟骨基質(zhì)中黏多糖的含量并沒有明顯的差異。Onuma 等[18]向 UW 液中加入10% 同種異體血清,4 ℃ 條件下保存小鼠軟骨。實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)軟骨細(xì)胞存活率和細(xì)胞外基質(zhì)成分均得到了提升,血清的加入一定程度上提高了保存效果,但是異體血清可能會(huì)引起免疫排斥反應(yīng)以及增加疾病傳播的風(fēng)險(xiǎn)。
人體內(nèi)存在各種各樣的細(xì)胞生長因子,能夠促進(jìn)細(xì)胞的生長、修復(fù),補(bǔ)充所需營養(yǎng)。Teng 等[19]利用含有胰島素樣生長因子(IGF-I)的 DMEM 培養(yǎng)液,4 ℃ 條件下保存牛關(guān)節(jié)軟骨,21 d 后進(jìn)行細(xì)胞活性檢測發(fā)現(xiàn)細(xì)胞存活率高于不含胰島素樣生長因子培養(yǎng)液保存的軟骨,但 28 d 后細(xì)胞存活率迅速降低。Mickevicius 等[20]的研究也表明 IGF-I 在軟骨細(xì)胞的體外保存中可以在短時(shí)間內(nèi)起到延長保存時(shí)間,提高保存效果的作用。同時(shí),有研究發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)化生長因子(TGF-β)能夠促進(jìn)軟骨細(xì)胞生長和細(xì)胞外基質(zhì)的生成[21]。
細(xì)胞凋亡抑制劑在骨關(guān)節(jié)炎及軟骨體外保存的研究中得到了越來越多的應(yīng)用[22]。在軟骨保存期間,細(xì)胞凋亡基因隨著保存時(shí)間的延長會(huì)明顯上調(diào),導(dǎo)致軟骨細(xì)胞的凋亡,其中包括腫瘤壞死因子 α(TNF-α)[23]和含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白水解酶(caspase)。依那西普是治療類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎和強(qiáng)直性脊柱炎的有效藥物,屬于 TNF-α 抑制劑。Linn等[24]在 4 ℃ 條件下保存布爾山羊軟骨 28 d,發(fā)現(xiàn)含有依那西普的保存液保存的表層軟骨細(xì)胞存活率可以達(dá)到69.3%,TNF-α 的表達(dá)低于不含依那西普的對照組。但深層軟骨細(xì)胞的存活率較低,黏多糖成分和組織學(xué)觀察沒有明顯差異。Caspase 是一種與細(xì)胞凋亡相關(guān)的蛋白酶,Teng 等[19]向 DMEM 培養(yǎng)液中加入 caspase 抑制劑 ZVAD-fmk,4 ℃下保存牛關(guān)節(jié)軟骨 21 d 發(fā)現(xiàn),細(xì)胞凋亡抑制劑可以使軟骨細(xì)胞存活率升高,但是繼續(xù)保存 28 d 后細(xì)胞存活率嚴(yán)重降低。
激素在機(jī)體的生長、代謝、發(fā)育中起重要的調(diào)節(jié)作用,在軟骨細(xì)胞的代謝過程中也具有調(diào)節(jié)作用。Bian 等[25]在37 ℃ 下,用含有地塞米松的 DMEM 培養(yǎng)液保存牛關(guān)節(jié)軟骨,發(fā)現(xiàn)含有地塞米松的 DMEM 培養(yǎng)液對于軟骨組織的保存有積極的效果,生物力學(xué)性能和細(xì)胞外基質(zhì)成分優(yōu)于不含地塞米松培養(yǎng)液保存的軟骨。表明地塞米松等激素可以成為延長保存效果的有效物質(zhì)。
表沒食子兒茶素沒食子酸酯(EGCG)是從茶葉中提取的茶多酚,具有抗氧化、抗凋亡、抗炎特性的物質(zhì)[26]。對于軟骨保存也有積極的意義。Bae 等[27]在 4 ℃ 條件下用含有 EGCG 的 RPMI1640PE 培養(yǎng)液保存髖關(guān)節(jié)軟骨和半月板,盡管細(xì)胞存活率在保存 14 d 和 28 d 后下降明顯,但是 EGCG 能夠延緩細(xì)胞存活率下降速度。氫氣是一種新型的選擇性抗氧化劑,同時(shí)具有抗凋亡、抗炎作用[28],對多種疾病具有治療作用[29-31],具有廣泛的應(yīng)用前景。Yamada等[32]用含有氫氣的保存液來保存小鼠關(guān)節(jié)軟骨,發(fā)現(xiàn)氫氣可以提高軟骨保存效果。含有抗氧化、抗凋亡、抗炎特性物質(zhì)的保存液成為今后保存液研究的熱點(diǎn)。
多個(gè)臨床跟蹤研究證明了同種異體軟骨移植手術(shù)在臨床上的成功應(yīng)用[33-35]。美國同種異體軟骨移植手術(shù)數(shù)量近年迅速增多,由 2005 年的 660 例上升到 2011 年的 1619 例,同種異體軟骨移植成為治療關(guān)節(jié)軟骨疾病的重要方法[36],而軟骨的體外保存效果成為軟骨移植手術(shù)成功與否的關(guān)鍵。目前我們可以從保存環(huán)境和保存液成分來改善軟骨的體外保存效果,使得同種異體軟骨移植手術(shù)得到廣泛應(yīng)用。未來軟骨保存液的研究將會(huì)從細(xì)胞通路、生長因子、應(yīng)力環(huán)境等方面入手,模擬人體關(guān)節(jié)內(nèi)環(huán)境,解決軟骨保存過程中的問題,使同種異體軟骨移植手術(shù)的應(yīng)用更加廣泛和有效。
[1] Sherman SL, Garrity J, Bauer K, et al. Fresh osteochondral allograft transplantation for the knee: current concepts. J Am Acad Orthop Surg, 2014, 22(2):121-133.
[2] Krych AJ, Robertson CM, Williams RJ 3rd, et al. Return to athletic activity after osteochondral allograft transplantation in the knee. Am J Sports Med, 2012, 40(5):1053-1059.
[3] Williams SK, Amiel D, Ball ST, et al. Prolonged storage effects on the articular cartilage of fresh human osteochondral allografts. J Bone Joint Surg Am, 2003, 85-A(11):2111-2120.
[4] Williams RJ 3rd, Dreese JC, Chen CT. Chondrocyte survival and material properties of hypothermically stored cartilage: an evaluation of tissue used for osteochondral allograft transplantation. Am J Sports Med, 2004, 32(1):132-139.
[5] Cook JL, Stannard JP, Stoker AM, et al. Importance of donor chondrocyte viability for osteochondral allografts. Am J Sports Med, 2016, 44(5):1260-1268.
[6] Pallante AL, Chen AC, Ball ST, et al. The in vivo performance of osteochondral allografts in the goat is diminished with extended storage and decreased cartilage cellularity. Am J Sports Med, 2012, 40(8):1814-1823.
[7] Pallante-Kichura AL, Chen AC, Temple-Wong MM, et al. In vivo efficacy of fresh versus frozen osteochondral allografts in the goat at 6 months is associated with PRG4 secretion. J Orthop Res, 2013, 31(6):880-886.
[8] Song HQ, Qi JH, Xuan YH, et al. Application of tissue - cultured method on preservation of articular cartilage. Orthoped J China, 2007, 15(17):1340-1343. (in Chinese)宋洪強(qiáng), 亓建洪, 玄燕華, 等. 組織培養(yǎng)法在關(guān)節(jié)軟骨保存中的應(yīng)用. 中國矯形外科雜志, 2007, 15(17):1340-1343.
[9] Cook JL, Stoker AM, Stannard JP, et al. A novel system improves preservation of osteochondral allografts. Clin Orthop Relat Res, 2014, 472(11):3404-3414.
[10] LaPrade RF, Botker J, Herzog M, et al. Refrigerated osteoarticular allografts to treat articular cartilage defects of the femoral condyles. A prospective outcomes study. J Bone Joint Surg Am, 2009, 91(4):805-811.
[11] Qi JH, Hu ZJ, Song HQ, et al. Cartilage storage at 4 degrees C with regular culture medium replacement benefits chondrocyte viability of osteochondral grafts in vitro. Cell Tissue Bank, 2016, 17(3):473-479.
[12] Garrity JT, Stoker AM, Sims HJ, et al. Improved osteochondral allograft preservation using serum-free media at body temperature. Am J Sports Med, 2012, 40(11):2542-2548.
[13] Pallante AL, Bae WC, Chen AC, et al. Chondrocyte viability is higher after prolonged storage at 37 degrees C than at 4 degrees C for osteochondral grafts. Am J Sports Med, 2009, 37 Suppl 1:24S-32S.
[14] Diao HJ, Fung HS, Yeung P, et al. Dynamic cyclic compression modulates the chondrogenic phenotype in human chondrocytes from late stage osteoarthritis. Biochem Biophys Res Commun, 2017, 486(1):14-21.
[15] Yang J, Huang W, Song GL, et al. Collagen and tissue inhibitor of metalloproteinase-3 expression in human osteochondral allografts in storage media. J Clin Rehabilitative Tissue Eng Res, 2011, 15(33):6081-6084. (in Chinese)楊健, 黃偉, 宋國立, 等. 應(yīng)力環(huán)境組織培養(yǎng)法保存的人骨軟骨移植物中膠原和基質(zhì)金屬蛋白酶組織抑制劑 3. 中國組織工程研究與臨床康復(fù), 2011, 15(33):6081-6084.
[16] Wang X. The effects of different intensity hydrostatic pressure on the biological characteristics of chondrocytes of the knee joint. Xi’an: The Fourth Military Medical University, 2014. (in Chinese)王鑫. 不同強(qiáng)度靜水壓力對人膝關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞生物學(xué)特性的影響.西安: 第四軍醫(yī)大學(xué), 2014.
[17] Pennock AT, Wagner F, Robertson CM, et al. Prolonged storage of osteochondral allografts: does the addition of fetal bovine serum improve chondrocyte viability? J Knee Surg, 2006, 19(4):265-272.
[18] Onuma K, Urabe K, Naruse K, et al. Allogenic serum improves cold preservation of osteochondral allografts. Clin Orthop Relat Res, 2012, 470(10):2905-2914.
[19] Teng MS, Yuen AS, Kim HT. Enhancing osteochondral allograft viability: effects of storage media composition. Clin Orthop Relat Res, 2008, 466(8):1804-1809.
[20] Mickevicius T, Pockevicius A, Kucinskas A, et al. Impact of storage conditions on electromechanical, histological and histochemical properties of osteochondral allografts. BMC Musculoskelet Disord, 2015, 16:314.
[21] Poleni PE, Bianchi A, Etienne S, et al. Agonists of peroxisome proliferators-activated receptors (PPAR) alpha, beta/delta or gamma reduce transforming growth factor (TGF)-beta-induced proteoglycans' production in chondrocytes. Osteoarthritis Cartilage, 2007, 15(5):493-505.
[22] Huang Y, Wan G., Tao J. C1q/TNF-related protein-3 exerts the chondroprotective effects in IL-1beta-treated SW1353 cells by regulating the FGFR1 signaling. Biomed Pharmacother, 2017, 85:41-46.
[23] Robertson CM, Allen RT, Pennock AT, et al. Upregulation of apoptotic and matrix-related gene expression during fresh osteochondral allograft storage. Clin Orthop Relat Res, 2006, 442:260-266.
[24] Linn MS, Chase DC, Healey RM, et al. Etanercept enhances preservation of osteochondral allograft viability. Am J Sports Med, 2011, 39(7):1494-1499.
[25] Bian L, Stoker AM, Marberry KM, et al. Effects of dexamethasone on the functional properties of cartilage explants during long-term culture. Am J Sports Med, 2010, 38(1):78-85.
[26] Rasheed Z, Rasheed N, Al-Shaya O. Epigallocatechin-3-O-gallate modulates global microRNA expression in interleukin-1β-stimulated human osteoarthritis chondrocytes: potential role of EGCG on negative co-regulation of microRNA-140-3p and ADAMTS5. Eur J Nutr, 2017. [Epub ahead of print]
[27] Bae JY, Han DW, Wakitani S, et al. Biological and biomechanical evaluations of osteochondral allografts preserved in cold storage solution containing epigallocatechin gallate. Cell Transplant, 2010, 19(6):681-689.
[28] Ohsawa I, Ishikawa M, Takahashi K, et al. Hydrogen acts as a therapeutic antioxidant by selectively reducing cytotoxic oxygen radicals. Nat Med, 2007, 13(6):688-694.
[29] Noda K, Shigemura N, Tanaka Y, et al. A novel method of preserving cardiac grafts using a hydrogen-rich water bath. J Heart Lung Transplant, 2013, 32(2):241-250.
[30] Chen Y, Zong C, Guo Y, et al. Hydrogen-rich saline may be an effective and specific novel treatment for osteoradionecrosis of the jaw. Ther Clin Risk Manag, 2015, 11:1581-1585.
[31] Zhang X, Liu J, Jin K, et al. Subcutaneous injection of H2 is a novel effective treatment for type 2 diabetes. J Diabetes Investig, 2017. [Epub ahead of print]
[32] Yamada T, Uchida K, Onuma K, et al. Hydrogen supplementation of preservation solution improves viability of osteochondral grafts. ScientificWorldJournal, 2014, 2014:109876.
[33] Gobbi A, Scotti C, Lane JG, et al. Fresh osteochondral allografts in the knee: only a salvage procedure? Ann Transl Med, 2015, 3(12):164.
[34] Bugbee WD, Pallante-Kichura AL, G?rtz S, et al. Osteochondral allograft transplantation in cartilage repair: Graft storage paradigm, translational models, and clinical applications. J Orthop Res, 2016, 34(1):31-38.
[35] Levy YD, G?rtz S, Pulido PA, et al. Do fresh osteochondral allografts successfully treat femoral condyle lesions? Clin Orthop Relat Res, 2013, 471(1):231-237.
[36] McCormick F, Harris JD, Abrams GD, et al. Trends in the surgical treatment of articular cartilage lesions in the United States: an analysis of a large private-payer database over a period of 8 years. Arthroscopy, 2014, 30(2):222-226.
10.3969/j.issn.1673-713X.2017.06.012
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2017-10-17