張燕青
(天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津 300000)
木聚糖酶主要是誘導(dǎo)酶。木聚糖酶的生產(chǎn)除了和菌株本身的特點(diǎn)息息相關(guān),還與培養(yǎng)基中的誘導(dǎo)物密切相關(guān)。向基質(zhì)中加入誘導(dǎo)物可以產(chǎn)生誘導(dǎo)效應(yīng)或阻遏作用,并且一種物質(zhì)對(duì)于某一微生物生產(chǎn)木聚糖酶具有誘導(dǎo)活性,但對(duì)于另外一微生物可能是抑制劑。研究表明,木聚糖自身是絕大部分木聚糖酶菌株的有效誘導(dǎo)劑。此外,某些小分子物質(zhì)如葡萄糖、木糖、阿拉伯糖、乳糖等對(duì)不同菌株產(chǎn)酶的影響不同,例如葡萄糖、木糖對(duì)于一些菌株的產(chǎn)酶過(guò)程是誘導(dǎo)劑,而對(duì)于另一些菌株卻有明顯的阻遏作用。
來(lái)源不同的木聚糖酶的組成和性質(zhì)差別很大。例如來(lái)源于細(xì)菌和放線菌的木聚糖酶最適溫度在50~60℃,真菌木聚糖酶的最適溫度約為50℃,其耐熱性比細(xì)菌來(lái)源的木聚糖酶差,嗜熱微生物能產(chǎn)生耐高溫木聚糖酶,更有利于某些工業(yè)化生產(chǎn)過(guò)程。比如制漿過(guò)程是用高溫蒸煮方法除去木屑中的木質(zhì)素。因此,用于紙漿漂白的木聚糖酶應(yīng)該是耐熱的。
來(lái)源不同的木聚糖酶最適pH和pH的穩(wěn)定范圍也各不相同。一般來(lái)說(shuō),來(lái)源于真菌的木聚糖酶為酸性木聚糖酶,最適pH為4.0~6.0;細(xì)菌和放線菌的木聚糖酶為中性或堿性木聚糖酶,pH穩(wěn)定性較真菌高,穩(wěn)定在6.0~8.0,而極端微生物則能產(chǎn)生適宜于特殊環(huán)境的木聚糖酶?,F(xiàn)已有一些嗜酸性和耐堿性細(xì)菌的木聚糖酶基因通過(guò)載體構(gòu)建以及受體菌的選擇獲得高效表達(dá)。
鑒于其高效專一的催化特性,生物酶制劑已成功應(yīng)用于醫(yī)藥、化工、食品、新能源開(kāi)發(fā)及環(huán)保等領(lǐng)域,然而某些生產(chǎn)過(guò)程工藝環(huán)節(jié)復(fù)雜,對(duì)酶特性有嚴(yán)格要求,甚至需要高鹽、高溫、強(qiáng)堿、強(qiáng)酸、有毒介質(zhì)、非水相等特殊反應(yīng)體系,而自然界中的天然酶對(duì)外界條件較敏感極易失活。
為了獲得酶學(xué)特性優(yōu)良的酶制劑,研究不斷改進(jìn)人工改良酶分子的方法。由于改進(jìn)常規(guī)的誘變育種方法難以在短期內(nèi)達(dá)到預(yù)期目標(biāo),操作過(guò)程危險(xiǎn),因此逐漸被基因工程或蛋白質(zhì)工程技術(shù)取代。目前,人工改良酶蛋白質(zhì)分子主要通過(guò)理性設(shè)計(jì)、非理性設(shè)計(jì)及介于兩者之間的半理性設(shè)計(jì)來(lái)實(shí)現(xiàn)。
根據(jù)已有信息通過(guò)改變或修飾酶分子中的個(gè)別氨基酸殘基,而產(chǎn)生具有預(yù)期新功能的酶分子突變體的方法,即為理性設(shè)計(jì)。然而理性設(shè)計(jì)需要對(duì)所研究的蛋白酶分子進(jìn)行較全面了解,只有在掌握大量信息的前提下才能做出具有實(shí)用性改造方案。經(jīng)過(guò)大量的積累蛋白質(zhì)分子結(jié)構(gòu)與功能等相關(guān)方面的信息才能有目標(biāo)的選取突變位點(diǎn)并對(duì)其作出改造。理性設(shè)計(jì)不僅需要對(duì)酶分子的三維結(jié)構(gòu)進(jìn)行透徹的解析,而且還需要熟悉酶分子的一級(jí)結(jié)構(gòu)與立體結(jié)構(gòu)間復(fù)雜的對(duì)應(yīng)關(guān)系,并作出合理判斷。此外,經(jīng)修飾導(dǎo)致的特定區(qū)域內(nèi)某氨基酸殘基改變而導(dǎo)致的蛋白質(zhì)構(gòu)象的改變往往不能通過(guò)計(jì)算機(jī)輔助預(yù)測(cè)。但是隨著研究的進(jìn)一步發(fā)展,理性設(shè)計(jì)在分析和分子模擬對(duì)接的基礎(chǔ)上,找出酶結(jié)構(gòu)上的關(guān)鍵位點(diǎn)進(jìn)行相應(yīng)改造,目標(biāo)更為明確,操作相對(duì)簡(jiǎn)單,理性設(shè)計(jì)必將成為酶改造的主流方案。
通過(guò)隨機(jī)突變、基因重組等方法得到突變體庫(kù),然后采用定向篩選方法得到所需酶分子的方法,即為非理性設(shè)計(jì)。非理性設(shè)計(jì)無(wú)需了解酶蛋白分子準(zhǔn)確結(jié)構(gòu)及其他方面的相關(guān)信息。但此方法突變較為隨機(jī)、試驗(yàn)周期長(zhǎng)、工作量較大、篩選獲得目的菌株幾率低。
2.2.1 提高酶分子應(yīng)用性能的改造方法
酶的體外定向進(jìn)化即為分子進(jìn)化,人為模擬隨機(jī)突變、重組和自然選擇等自然進(jìn)化機(jī)制,創(chuàng)造體外特殊條件,隨機(jī)誘變酶基因,用高效簡(jiǎn)潔的篩選方法定向選出所需的突變酶。如易錯(cuò)PCR、DNA改組、串聯(lián)重復(fù)插入(TRINS)、體外隨機(jī)引發(fā)重組(PRP)、臨時(shí)模板隨機(jī)嵌合生長(zhǎng)(RACHITT)等。
易錯(cuò)PCR和連續(xù)易錯(cuò)PCR是改變普通PCR的反應(yīng)條件(調(diào)整4種dNTP的比例、添加Mn2+、上調(diào)Mg2+濃度、使用較低保真度的Taq酶等)將堿基隨機(jī)錯(cuò)配率相對(duì)提高,在原來(lái)序列上引入多點(diǎn)突變,構(gòu)建質(zhì)量高、容量大的突變庫(kù),利用簡(jiǎn)便的方法篩選出優(yōu)質(zhì)的目的突變體,此方法即為易錯(cuò)PCR。介于該方法只在單一分子內(nèi)部發(fā)生遺產(chǎn)改變,因此稱其為無(wú)性進(jìn)化[1]。其耗時(shí)費(fèi)力,故只用來(lái)對(duì)較小基因片段(<800 bp)進(jìn)行改造。通常經(jīng)一輪的易錯(cuò)PCR很難篩選到滿意的突變株,故需連續(xù)多輪易錯(cuò)PCR,該方法是將上一次易錯(cuò)PCR的有益突變基因片段作為下一次易錯(cuò)PCR的模板,依次循環(huán)連續(xù)地進(jìn)行隨機(jī)誘變,疊加每一次的有益突變而獲得大幅度突變的結(jié)果。
DNA改組和基因家族改組是一種在體外進(jìn)行的同源重組技術(shù)。對(duì)來(lái)源不同但功能相近的同源基因群進(jìn)行改造,從而獲得優(yōu)勢(shì)突變組合的蛋白質(zhì)?;静僮髁鞒蹋哼x定基因,經(jīng)過(guò)隨機(jī)突變生成帶有不同突變的基因群,用DNaseⅠ隨機(jī)切割,所得到的片段之間互為模板和引物進(jìn)行多輪不添加引物的PCR,直至獲得全長(zhǎng)基因,最后加入依據(jù)完整基因兩端序列設(shè)計(jì)的引物進(jìn)行常規(guī)PCR,獲得改組后的基因庫(kù)。此方法能快速積累有益突變,具有理論和實(shí)際應(yīng)用價(jià)值?;蚣易甯慕M利用DNA改組技術(shù)對(duì)在自然界進(jìn)化上相關(guān)的一系列基因或基因家族進(jìn)行同源改組。
串聯(lián)重復(fù)插入(TRINS)是通過(guò)滾環(huán)復(fù)制的方式將原始基因以兩個(gè)或多個(gè)序列串聯(lián)的形式插入到目的基因中。TRINS模擬自然進(jìn)化過(guò)程中的復(fù)制插入機(jī)制,當(dāng)沒(méi)有合適的高通量篩選時(shí),TRINS的優(yōu)勢(shì)就顯現(xiàn)出來(lái)。
交錯(cuò)延伸重組(STEP)將帶有不同點(diǎn)突變的模板進(jìn)行混合,合并普通PCR的退火和延伸兩步為一步,進(jìn)而縮短反應(yīng)時(shí)間,合成非常短的新生鏈,此后再以這些新生鏈作為引物隨機(jī)地雜交到含不同突變的模板上,繼續(xù)PCR,反復(fù)進(jìn)行該過(guò)程,結(jié)果會(huì)得到含有模板上間隔序列的新生的全長(zhǎng)基因。從而得到新性質(zhì)的酶。
臨時(shí)模板隨機(jī)嵌合生長(zhǎng)(RACHITT)是把隨機(jī)切割的基因短片段雜交到一個(gè)臨時(shí)DNA模板上,排序后進(jìn)行修剪重復(fù)、填補(bǔ)空隙和連接的方法。其中臨時(shí)模板是一條間隔一定序列插入尿嘧啶的單鏈DNA,懸垂切割獲得更短的片段,然后進(jìn)行重組。
2.2.2 提高酶蛋白異源表達(dá)產(chǎn)量的分子改造方法
工業(yè)發(fā)酵生產(chǎn)酶蛋白產(chǎn)品,通常希望能盡可能的提高產(chǎn)品的表達(dá)量,從而降低生產(chǎn)和使用成本?;蚬こ痰难该桶l(fā)展已使得很多蛋白質(zhì)產(chǎn)品實(shí)現(xiàn)了工程菌株的異源表達(dá),由于影響蛋白質(zhì)異源表達(dá)的因素較多,微生物酶分子設(shè)計(jì)時(shí)需關(guān)注的一個(gè)重要方面就是要消除影響外源基因表達(dá)的諸多不利因素,從而提高表達(dá)量??刹扇〉牟呗杂校好艽a子優(yōu)化、調(diào)整GC含量等手段,改造信號(hào)肽,截?cái)啾磉_(dá),融合表達(dá)等手段。
改造信號(hào)肽。需要被運(yùn)輸?shù)教囟ㄎ恢玫亩嚯亩己幸欢畏Q之為信號(hào)肽的氨基酸序列,其將多肽引導(dǎo)至對(duì)應(yīng)的位置。外源蛋白分泌至胞外,一方面消除對(duì)宿主細(xì)胞的正常生長(zhǎng)代謝影響,另一方面避免宿主對(duì)目的蛋白的降解,此外還可以提高純化效率。因此通過(guò)目的基因自身的信號(hào)肽或表達(dá)載體的信號(hào)肽實(shí)現(xiàn)分泌表達(dá)來(lái)提高外源基因的產(chǎn)量是比較可取的生產(chǎn)方式。合適的信號(hào)肽甚至可使分泌到胞外的目的蛋白含量>分泌到胞外總蛋白的90%。對(duì)于某些難分泌的蛋白,則可嘗試采用其他的信號(hào)肽,或者對(duì)原有信號(hào)肽進(jìn)行改造[2]。
密碼子優(yōu)化和GC含量調(diào)整。不同物種由于表達(dá)系統(tǒng)缺乏識(shí)別某些密碼子的tRNA而具有密碼子偏愛(ài)性。如果外源基因中含有較多的宿主菌非偏愛(ài)型密碼子,就會(huì)嚴(yán)重影響其在宿主菌中的表達(dá)。由于密碼子的兼并性,故可在不改變外源基因氨基酸序列的前提下,優(yōu)化外源基因,而提高外源蛋白的表達(dá)量。Mechold等將生物素酶BirA密碼子進(jìn)行優(yōu)化后,發(fā)現(xiàn)其表達(dá)量提高5倍[3]。然而Wu等優(yōu)化密碼子后,在大腸桿菌中表達(dá)組蛋白和谷氧還蛋白發(fā)現(xiàn)產(chǎn)量并未有所提高[4]。四種脫氧核苷酸基因序列中的排布以及含量和比例可以影響目的蛋白在宿主中的表達(dá)量。Burland等發(fā)現(xiàn),有些基因在畢赤酵母的表達(dá)系統(tǒng)中會(huì)導(dǎo)致轉(zhuǎn)錄的提前終止[5]。故為了保證表達(dá)效果需要進(jìn)行GC含量調(diào)整,又要兼顧密碼子偏好性。
截?cái)啾磉_(dá)。對(duì)于酶蛋白分子,其編碼基因序列的有些區(qū)域并非酶活性所必須的特定的或隨機(jī)截?cái)嗄承┗蚱?,通過(guò)此種改造方法可改善酶學(xué)性質(zhì)滿足生產(chǎn)需要。其中截?cái)辔稽c(diǎn)可以是單一的,也有進(jìn)行多位點(diǎn)截留的。通過(guò)隨機(jī)截?cái)鄰亩鴺?gòu)建出截?cái)鄮?kù),然后篩選得到目的突變酶。Hai等通過(guò)對(duì)來(lái)源于NE1的藻青素合成酶的截短研究表明,截去C端45個(gè)氨基酸后該酶仍然保留全酶的活性,繼續(xù)向上截去一個(gè)氨基酸Glu865,則酶活全部喪失;由此得出Glu865是該酶活性中心的一個(gè)關(guān)鍵氨基酸,同時(shí)截?cái)啾磉_(dá)還可以協(xié)助研究酶特定氨基酸殘基的功能[6]。
融合表達(dá)。雙功能酶是一條多肽鏈,能同時(shí)催化兩個(gè)不同的生化反應(yīng)。由于反應(yīng)發(fā)生在同一條肽鏈上,雙功能酶通常催化效率比較高。雙功能酶的出現(xiàn)對(duì)生命體的生存有著重要意義。目前普遍認(rèn)為是在自然進(jìn)化的選擇壓力下,編碼功能相關(guān)蛋白的基因之間的融合而形成的[7]。這樣功能相關(guān)的基因同位于一條肽鏈上即可享用同一套調(diào)控元件,能高效方便地調(diào)控蛋白質(zhì)表達(dá),還能拉進(jìn)空間位置進(jìn)而增強(qiáng)蛋白質(zhì)間的互作。雙功能酶通常由兩個(gè)或多個(gè)結(jié)構(gòu)域組成。研究表明從一株熱纖維梭菌中分離得到一個(gè)由GH10家族木聚糖酶和酯酶組成的雙結(jié)構(gòu)域蛋白質(zhì)[8]。
在酶分子基因序列比對(duì)分析的基礎(chǔ)上,找出潛在的關(guān)鍵氨基酸殘基位點(diǎn)進(jìn)行定點(diǎn)突變,通過(guò)驗(yàn)證得到目標(biāo)酶突變體,即為半理性設(shè)計(jì)。該方法相對(duì)非理性設(shè)計(jì)中的定向進(jìn)化目標(biāo)更明確、成功率也提高了,而且不需了解酶晶體結(jié)構(gòu),還避免了大量篩選工作,半理性設(shè)計(jì)改造策略成為酶分子改造的一種更合適的選擇。
前期的大量研究使得人們對(duì)木聚糖酶分子結(jié)構(gòu)和酶學(xué)性質(zhì)的相關(guān)性有了一定程度的了解,通過(guò)分子改造等生物技術(shù)得到了一些適合工業(yè)生產(chǎn)的改良蛋白酶,但還尚未形成系統(tǒng)的、具有指導(dǎo)性的、普遍適用的方法論。隨著基因工程和蛋白質(zhì)工程等高新技術(shù)的深入發(fā)展,科學(xué)的方法論體系必將在大量科研實(shí)踐的基礎(chǔ)上建成,從而創(chuàng)造出各行各業(yè)需要的性質(zhì)優(yōu)良的酶制劑。
[1]Wang Y,Yuan H,Wang J,et al.Truncation of the cellulose bind?ing domain improved thermal stability of endo-beta-1,4-gluca?nase from Bacillus subtilis JA18[J].Bioresource Technology,2009,100(1):345-349.
[2]Xiong A S,Yao Q H,Peng R H,et al.High level expression of asynthetic gene encoding Peniop horalyciiphytasein methylotro?phic yeast Pichiapastoris[J].Applied Microbiology&Biotechnolo?gy,2006,72(5):1 039-1 047.
[3]Mechold U,Gilbert C,Ogryzko V,et al.Codon optimization of the BirA enzyme gene leads to higher expression and an improved effi?ciency of biotinylation of target proteins in mammalian cells[J].Journal of Biotechnology,2005,116(3):245-259.
[4]Wu X,Jornvall H,Berndt K D,et al.Codon optimization reveals critical factors for high level expression of two rare codon genes in Escherichia coli:RNA stability and secondary structure but not tRNA abundance[J].Biochemicaland Biophysical Research Com?munications,2004,313(1):89-96.
[5]Burland T G.DNASTAR's Lasergene sequence analysis software.[J].Methods in Molecular Biology,2000,132:71-91.
[6]Hai T,Lee J S,Kim T J,et al.The role of the C-terminal region of cyanophycinsynthetase from Nostocellipsosporum NE1 in its enzy?matic activity and thermostability:a key function of Glu(856)[J].Biochimica et BiophysicaActa(BBA)-Proteins and Proteomics,2009,1 794(1):42-49.
[7]Joucla G,Pizzut S,Monsan P,et al.Construction of a fully active truncated alternansucrase partially deleted of its carboxy-termi?nal domain[J].FEBS Letters,2006,580(3):763-768.
[8]Davids T,Schmidt M,Bottcher D,et al.Strategies for the discov?eryand engineering of enzymes for biocatalysis[J].Current Opin?ion in Chemical Biology,2013,17(2):215-220.